Ministerio de la Producción
Secretaría de Agricultura, Ganadería, Pesca y Alimentación Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria
Buenos Aires, Argentina. Julio 2009
Ing. Agr. Clara Serena García Darderes [email protected]
Diaphorina citri Kuwayama (Hemíptera: Psyllidae), vector de la bact eria que
causa el Huanglongbing (HLB – Greening)
Componentes 1. Nombres y taxonomía
2. Biologia y características morfológicas
3. Distribución geográfica
3.1 En el mundo
3.2 En Argentina
4. Plantas hospederas
5. Daños e importancia económica
6. Interacción bacteria – vector
7. Monitoreo
8. Control
8.1 Químico
8.2 Biológico
9. Laboratorios en red
10. Referentes
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1. Nombres y Taxonomia
Nombre científico preferido: Diaphorina citri Kuwayama
Nombres comunes: Psílido asiático, Psílido asiático de los cítricos, chicharritas.
Sinónimo: Euphalerus citri
Clasificación taxonómica :
Clase: Insecta
Orden: Hemiptera
Suborden: Sternorrhyncha
Superfamilia: Psylloidea
Familia: Psyllidae
2. Biología y características morfológicas
Biología
La duración del período embrionario varía de 9,7 días a 15º C a 3,5 días a 28º C. Los
huevos son colocados en el extremo de los brotes tiernos, sobre y entre hojas tiernas
desplegadas, apareciendo con frecuencia un gran número en una misma ramita. La
oviposición está condicionada a la presencia de brotes tiernos. La hembra alcanza a poner
800 huevos en toda su vida. Posteriormente nacen las ninfas, que son sedentarias. Estas se
establecen sobre las ramitas tiernas y sobre los pecíolos, formando colonias con un número
variable de individuos. Las ninfas excretan una sustancia blanca cerosa a manera de hilos
que se deposita sobre las hojas.
Los adultos tienen poca capacidad para sostener vuelos muy largos, pero pueden ser
transportados a grandes distancias por las corrientes de aire.
La duración del ciclo biológico (huevo-adulto) varía de 14,1 a 49,3 días, a 28ºC a 15ºC,
respectivamente, siendo las temperaturas de 25 a 28ºC las más adecuadas para su
desarrollo. El psílido no se desarrolla a temperaturas de 33ºC y 10ºC. Presenta un pico
poblacional al final de la primavera e inicios del verano (coincidente con el período de
brotación de los cítricos).
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Características generales
• Duración total del ciclo (de huevo a adulto): 20 a 40 días, con una longevidad de 3 a
4 meses, dependiendo de las condiciones climáticas.
• Fases en que adquiere la bacteria: 4º y 5º estadio ninfal y adulto.
• No transmite la enfermedad a la descendencia (solamente adultos la transmiten
hasta el final de su vida).
Características morfológicas
Los huevos son de forma ovoide, alargados, con prolongación en una de las puntas. Son de
color amarillo claro (cuando son recién depositados) y se tornan a brillante anaranjado.
Miden aproximadamente 0,30 mm de longitud y 0,14 mm de ancho. Los huevos, son
colocados generalmente en el extremo de los brotes tiernos, sobre y entre las hojas
desplegadas, apareciendo con frecuencia un gran número en una misma ramita.
Las ninfas son aplanadas dorsoventralmente, de color anaranjado-amarillo, sin manchas
abdominales, con esbozos alares (alas pequeñas en formación) abultados, un par de ojos
rojos compuestos y dos antenas de color negro; presentan filamentos a lo largo del
abdomen. Los primordios de las alas son conspicuos; hilos cerosos cortos, pueden estar
presentes sólo en el ápice del abdomen.
Tienen 5 estadios ninfales: el 1er estadio miden 0,30 mm de longitud y 0,17 mm de ancho;
el 2do estadio miden 0,45 mm de ancho y 0,25 de ancho; el 3er estadio miden 0,74 mm d
longitud y 0,43 de ancho; el 4to estadio miden 1, 01 mm de longitud y 0,70 mm de ancho; el
ultimo estadio (5to) miden 1,60 mm de longitud y 1,02 mm de ancho. Las ninfas de quinto
estadio dan lugar al nacimiento de los adultos (machos y hembras).
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Las hembras son sedentarias, se establecen sobre los tallitos tiernos y sobre los pecíolos,
formando colonias con un número de individuos variable desde unos pocos hasta cientos.
El adulto presenta un cuerpo de color marrón moteado (pardo amarillento), recubierto de
polvo ceroso; ojos rojos; cabeza marrón claro; primer par de alas más ancho en el extremo,
con áreas color oscuro (principalmente en los bordes). Las antenas presentan el ápice negro
con dos manchas marrón claro en la parte media. Los machos son levemente más
pequeños que las hembras y con la punta del abdomen roma, mientras que el abdomen de
la hembra termina en una punta bien marcada. Los adultos pueden medir entre 3-4 mm. El
tamaño promedio de las mujeres es 3,3 mm de largo y 1 mm de ancho, en tanto que el de
los machos es 2,7 mm de largo y 0,8 mm de ancho. Generalmente, se encuentran en
posición inclinada con la parte posterior del cuerpo hacia arriba. Los adultos tienen poca
capacidad para mantener vuelos muy largos. Cuando son molestados saltan rápidamente.
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3. Distribución geográfica
3.1 En el mundo
Diaphorina citri es el vector de la bacteria C. Liberibacter asiaticus (forma asiática) y
americanus (forma americana, solamente detectada en Brasil). Está ampliamente distribuída
en las regiones tropicales y subtropicales de Asia; y también se encuentra difundida en el
continente americano.
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A continuación se citan los diferentes países donde ha sido detectada:
ASIA: Andhra Pradesh, Arabia Saudita, Archipiélago Ryukyu, Arunachal Pradesh,
Afghanistan, Assam, Bangladesh, Bihar, Burma, Camboya China, Delhi, Filipinas, Fujian,
Guangdong, Guangxi, Gujarat, Haryana, Henan, Himachal Pradesh, Hong Kong, India,
Indonesia, Irán, Jammu and Kashmir, Japón, Java, Karnataka, Kerala, Lakshadweep, Laos,
Macao, Madhya Pradesh, Maharashtra, Malasia, Maldives, Maluku, Manipur, Meghalaya,
Myanmar, Nepal, Nusa Tenggara, Pakistán, Punjab, Rajasthan, Sabah, Sikkim, Singapur, Sri
Lanka, Sumatra, Taiwán, Tamil Nadu, Tailandia, Tripura, Uttar Pradesh, Vietnam, West
Bengal, Yemen, Zhejiang.
AFRICA: Mauricio, Isla Reunión
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AMERICA (incluye norte, centro y sur): Argentina, Bahamas, Belize, Bolivia, Brasil,
Colombia, Costa Rica, Cuba, El Salvador, Guadalupe, Guatemala, Hawaii, Honduras, Islas
Caimán, Jamaica, México, Paraguay, Puerto Rico, República Dominicana, Uruguay, USA (
Texas, Louisiana, Florida), Venezuela.
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3.2 En Argentina
A continuación, se mencionan los departamentos y localidades donde ha sido detectada
Diaphorina citri.
Región NOA
� Tucumán : no ha sido detectado � Catamarca : no ha sido detectado
� Salta
� Dpto. San Martín � Embarcación � Gral. Mosconi
� Dpto. Colonia Santa Rosa � Urundel
� Dpto. Orán � Pichanal � Aguas blancas � Las Varas � Hipólito Yrigoyen � San Ramón de la Nueva Orán � Colonia Santa Rosa
� Dpto. Guemes � Guemes
� Dpto. Anta � Coronel Mollinedo � Monasterio � General Pizarro
� Jujuy � Dpto. Ledesma
� Yuto � Caimancito � Calilegua � Fraile pintado � Yuchán � Libertador General San Martín
� Dpto. Santa Barbara � Palma Sola � Santa Clara � El Piquete � Real de Los Toros
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� Dpto. Manuel Belgrano
� San Salvador de Jujuy
� Dpto. San Pedro � Arroyo colorado
� Dpto. Palpalá � Palpalá � El Remate
Región Chaco - Formosa
� Chaco
� Dpto. San Fernando � Dpto. 1° de Mayo � Dpto. Gral. San Martín � Dpto. Maipú
� Tres Isletas � Formosa
� Dpto. Pirané � El Colorado
� Dpto. Patiño
� Las Lomitas
� Dpto. Pilcomayo � Tres Lagunas
Región NEA
� Buenos Aires � San Pedro: no ha sido detectado
� Misiones
� Dpto. Oberá (solo en un foco localizado – en casa de familia) � Dpto. Montecarlo
� Montecarlo
� Corrientes: en toda la provincia
� Entre Ríos: � Dpto. Concordia � Dpto. Federación
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Región Santa Fe
� Dpto. General Obligado � Malabrigo
Fuente de Mapas: SINAVIMO
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4. Plantas hospederas
Diaphorina citri tiene preferencia por la familia de las Rutáceas. Afecta especialmente a los
cítricos, entre ellos, limones (Citrus limón), limón rugoso (C. jambhuri), naranja agria (C.
aurantium), pomelo (C. paradisi) y limas (C. aurantiifolia). También existen hospederos
alternativos, siendo sus preferidos los del género Murraya spp. (Murraya paniculata – Mirto).
Estos son utilizados como plantas ornamentales en parques, plazas y jardines. En
Argentina, se encuentra ampliamente distribuída en la región NEA y NOA.
� Aegle marmelos (L.)
� Aeglopsis chevalieri Swingle
� Afraegle gabonensis Engl.
� Afraegle paniculata (Schaum.) Engl.
� Artocarpus heterophyllus Lamarck
� Atalantia missionis Oliver
� Atalantia monophylla (L.) Corr.
� Atalantia sp.
� Balsamocitrus dawei Stapf
� Citropsis gilletiana Swingle &
� M. Kellerman
� Citropsis schweinfurthii (Engl.)Swingle & Kellerm.
� Citrus aurantifolia (Christm.) Swingle
� Citrus aurantium L.
� Citrus deliciosa Tenore
� Citrus grandis (L.) Osbeck (C. maxima)
� Citrus hystrix DC.
� Citrus jambhiri Lushington
� Citrus limon (L.) Burm.
� Citrus madurensis Loar.
� Citrus maxima (Burm.) Merr.
� Citrus medica L.
� Citrus meyeri Tan
� Citrus x_nobilis Lour.
� Citrus obovoidea Hort. ex Tanaka cv ‘Kinkoji’
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� Citrus x_paradisi Macfad.
� Citrus reticulata Blanco
� Citrus sinensis (L.) Osbeck Aubert
� Citrus spp
� Clausena anisum-olens Merrill
� Clausena excavata Burm
� Clausena indica Oliver
� Clausena lansium (Lour.) Skeels
� Eremocitrus glauca (Lindley) Swingle
� Eremocitrus hybrid
� Fortunella crassifolia Swingle
� Fortunella margarita (Lour.) Swingle
� Fortunella polyandra (Ridley) Tanaka
� Fortunella spp.,
� Limonia acidissima L.
� Merrillia caloxylon (Ridley) Swingle
� Microcitrus australasica (F.J. Muell.) Swingle
� Microcitrus australis (Planch.) Swingle
� Microcitrus papuana H.F. Winters
� Microcitrus sp. ‘Sidney’
� Murraya exotica L.
� Murraya koenigii (L.) Sprengel
� Murraya paniculata (L.) Jack
� Naringi crenulata (Royb.) Nicholson
� Pamburus missionis (Wight) Swingle
� Poncirus trifoliata (L.) Raf.
� Severinia buxifolia (Poiret) Ten.
� Swinglea glutinosa (Blanco) Merr.
� Toddalia asiatica (L.) Lam
� Triphasia trifolia (Burm. f.) P. Wilson
� Vepris lanceolata G. Don
� Zanthoxylum fagara (L.) Sarg..
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5. Daños e importancia económica
El mayor daño es causado por la transmisión de una bacteria gram negativa, denominada
Candidatus Liberibacter spp . (no cultivada en medios artificiales), produciendo así la
enfermedad HUANGLONGBING (HLB – GREENING. Esta enfermedad tiene alta incidencia
en Asia y Africa y es considerada como un factor limitante para la producción de cítricos en
esos continentes (Jagoueix et al. 1996). Ha sido reportada en el continente Americano en
los siguientes países: Brasil (2004), EEUU (2005), Cuba (2007), Republica Dominicana
(2008) y recientemente detectada en Belice (2009).
El daño directo es causado por ninfas y adultos debido a que extraen grandes cantidades de
savia de las hojas y pecíolos e inyectan toxinas, lo cual induce al enrollamiento de las
mismas, impidiendo así el crecimiento normal de la planta.
� Etapas afectadas de las plantas: floración, fructificación, fase vegetativa y
crecimiento.
� Partes afectadas de las plantas: frutas y hojas.
6. Interacción bacteria – vector En general la interacción entre el patógeno – vector está poco estudiada para la enfermedad
conocida como HLB – Greening, habiendo inclusive datos contradictorios en relación a la
eficiencia de transmisión y período de latencia. Probablemente esto se debe a las
diferencias entre especies y razas de vectores y bacterias envueltas en el patosistema HLB
en distintas regiones de Asia y Africa.
A pesar de lo expuesto, podemos decir que tanto las ninfas (4to y 5to estadio) como los
adultos pueden adquirir el patógeno (bacteria) al succionar la savia de una planta enferma.
El tiempo mínimo requerido para la adquisición es de 15-30 min (Capoor et al., 1974),
mientras que el umbral de la inoculación es inferior a 1 h (van Vuuren & da Graça, 1977).
Existe una considerable diferencia en los informes de períodos de latencia, que varían
desde 24 h (Buitendag & von Broembsen, 1993), 8-12 días (da Graça, 1991), y hasta 21
días (Capoor et al., 1974).
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El patógeno es probablemente propagativo en el vector, ya que ha sido observado en la
hemolinfa y en las glándulas salivales, pero no hay evidencias de transmisión trans
ovárica (Capoor et al., 1974, Hung et al., 2004).
La eficiencia de la transmisión puede ser variable (1-100%), siendo afectada por el biotipo
del psilido (Capoor et al., 1974, Huang et al., 1984, Su, 2001).
7. Monitoreo
7.1 Objetivos
� Unificar criterio de monitoreo (método visual acompañado de trampas adhesivas
amarillas).
� Determinar la presencia de Diaphorina citri en las diferentes regiones citrícolas de la
Argentina (NEA y NOA).
� Determinar la distribución y densidad poblacional del psílido.
Para implementar un sistema de vigilancia y monitoreo del insecto vector se deberá previamente tener en cuenta:
� Capacitación a campo de técnicos y monitoreadores sobre la biología y morfología
del psílido en períodos de mayor pico poblacional (primavera – verano).
� Priorizar monitoreos en las provincias donde aún no ha sido detectada la presencia
del psílido (Tucumán – Buenos Aires – Catamarca).
� No superponer monitoreos de departamentos y/o localidades que ya fueron
monitoreados por otros organismos (INTA, EEAOC, Universidades, etc.).
7.2 Metodología de monitoreo 1. Se procederá a la observación visual de ramas y brotes (jóvenes en su mayoría), en no
menos del 1% del total de las plantas; se mirarán los 4 cuadrantes de la planta; en lotes
chicos (menos de 1ha) se mirarán no menos de 10 plantas (este valor podrá ser ajustado,
de acuerdo al criterio del observador). El monitoreo visual se podrá complementar con el
empleo de trampas adhesivas amarillas, en una densidad de 1 trampa cada 100 plantas.
Cada lote deberá tener una ficha con los datos correspondientes para su identificación.
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2. Los monitoreos del insecto deberán realizarse con mayor intensidad en los meses de
primavera – verano, y viceversa con los de otoño – invierno.
3. Las trampas se recolectarán cada 15-20 días para su observación en laboratorio.
4. La información recolectada sobre los monitoreos será enviada al SENASA – SINAVIMO y
posteriormente publicados en la página web.
8. Control
8.1 Químico
El control químico es el criterio principal utilizado para el control de D. citri.
A continuación se detallarán recomendaciones generadas por personal técnico de
FUNDECITRUS (Brasil).
Para plantas jóvenes , se recomienda utilizar insecticidas sistémicos , y en plantas en
producción solo se recomienda la utilización de insecticidas de contacto.
También se recomienda,
• Plantines jóvenes : aplicación en vivero y también 10 días antes del plantío. Estos
insecticidas son aplicados en vivero para protegerlos de los vectores (psyllidos y
chicharritas)
• Plantas jóvenes hasta tres años : en períodos húmedos (lluvias) se recomienda
aplicar insecticidas sistémicos. En tanto que en períodos de sequía se recomienda
aplicar insecticidas de contacto.
• Plantas en producción (más de tres años): se recomienda aplicar insecticidas de
contacto.
8.2 Biológico
Diaphorina citri, puede ser controlado mediante parasitoides: Tamarixia radiata
(Hymenoptera: Eulophidae) y Diaphorencyrtus aligarhensis (Hymenoptera: Encyrtidae).
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9. Laboratorios en red
ENTIDAD TELEFONO REFERENTE
INTA - Montecarlo (03751) 48 - 0512 (int. 112) Olga de Coll
y Juan Pedro Agostini
INTA - Concordia (0345) 42 -90000 Juan Pedro Bouvet y Maria Inés Plata
EEAOC - Tucumán (0381) 42-76561
Gerardo Gastaminza (y equipo) y Gabriela
Fogliata
SENASA 4362-1177 (int 117) Alba Briano y Ma. Elena
Manna
INASE 4349-2077 Ana Laura Vicario y
Karina Asciuto
10. Referentes
Estación Experimental Agroindustrial Obispo Columbr es (EEAOC)
� Ing. Agr. Gerardo Gastaminza.
� Ing. Agr. Lucrecia Augier
� Ing. Agr. Eduardo Willink.
Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA )
NOA
� Ing. Agr. Silvia Tapia - INTA Yuto Jujuy.
NEA
� Ing. Agr. Gonzalo Segade – INTA San Pedro.
� Ing. Agr. Mariel Mitidieri - INTA San Pedro
� Ing. Agr. Olga de Coll - INTA Montecarlo, Misiones.
� Ing. Agr. Sara Cáceres y A. Aguirre – INTA Bella Vista, Corrientes.
� Biólogo Juan Pedro Bouvet – INTA Concordia, Entre Ríos.
Región Chaco - Formosa
� Ing. Agr. María Josefa Marinich – INASE Chaco.
� Lic. Carmen Peralta – INTA El Colorado, Formosa.
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SENASA
� Ing. Agr. Maria Luisa Pallares – SENASA Chaco.
Bibliografía
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