VIGILANCIA ENTOMOLÓGICA EN AEROPUERTOS Y … · propiciado a su vez, el aumento de las...

Informe de las actividades desarrolladas por la Universidad de Zaragoza

durante el año 2017 en virtud del procedimiento abierto N°2015/507 PA004

para la realización del trabajo técnico que lleva como título:

“VIGILANCIA ENTOMOLÓGICA EN AEROPUERTOS Y

PUERTOS FRENTE A VECTORES IMPORTADOS DE

ENFERMEDADES INFECCIOSAS EXÓTICAS, Y VIGILANCIA DE

POTENCIALES VECTORES AUTÓCTONOS DE DICHAS

ENFERMEDADES”

Coordinado por:

Dr. Javier Lucientes Dr. Ricardo Molina

Proyecto financiado por:

Vigilancia entomológica en aeropuertos y puertos frente a vectores importados de enfermedades infecciosas exóticas, y vigilancia de potenciales vectores autóctonos de dichas enfermedades 1

Informe 2017 – Universidad de Zaragoza

Índice

Índice 1 Introducción 5

Biología y ecología de los culícidos 7

Objetivos 11 Objetivo 1 12

Metodología 12

Muestreo de adultos 13

Monitorización de estadios inmaduros 15

Procesado de las muestras en el laboratorio 18

Zonas de estudio 20

Resultados 21

Aeropuertos civiles 21

- Madrid Barajas 21

- Barcelona El Prat 26

- Palma de Mallorca 30

Aeropuertos militares 32

- Base aérea de Torrejón de Ardoz 32

- Base aérea de Zaragoza 37

Puertos 42

- Valencia 42

- Palma de Mallorca 44

- Barcelona 46

Objetivo 2 49

Antecedentes 49

Metodología 51

Trabajo de campo 51

Procesado de muestras en el laboratorio 51

Zonas de estudio 52

Comunidad Valenciana 53

Región de Murcia 53

Islas Baleares 54

Andalucía 54

País Vasco 56

Aragón 57

Madrid 58

Ceuta 58



Resultados 58

Comunidad Valenciana 58

Región de Murcia 60

Islas Baleares 61

Andalucía 62

País Vasco 66

Aragón 67

Objetivo 3 70

Antecedentes 70

Metodología 72

Resultados por zonas de estudio (PdE) 73

Isla de Tenerife 74

- Aeropuerto Tenerife Sur (A-TS) 75

- Aeropuerto Tenerife Norte (A-TN) e invernaderos (I-T) 77

- Invernaderos (I2-T e I3-T) 81

- Puerto de S/C de Tenerife (P-T) 85

Isla de Gran Canaria 88

- Puerto de Las Palmas (P-C) 89

- Aeropuerto de Gran Canaria (A-C) e invernadero (I1-C) 90

Isla de La Palma 91

- Puerto de La Palma (P-P) e invernadero (I1-P) 91

Isla de Lanzarote 92

- Aeropuerto de Lanzarote (A-L) 93

- Puerto de Arrecife (P-L) e invernadero (I1-L) 94

Isla de Fuerteventura 95

- Aeropuerto de Fuerteventura (A-F) 96

- Puerto de Fuerteventura (P-F) e invernadero (I1-F) 96

Objetivo 5 101

Antecedentes 101

Metodología 102

Bioensayo con Tubos de la OMS 102

Impregnación de los papeles con las diferentes concentraciones de insecticidas 104

Resultados 106

Conclusiones 107

Objetivo 1 107

Objetivo 2 107

Objetivo 3 108



Objetivo 4 108

Objetivo 5 109

Conclusiones generales 110

Anexo I. Imágenes de los puertos y aeropuertos muestreados en 2017 Objetivo 1 111

Anexo II: Resultados de las capturas realizadas en 2017 en el Objetivo 1 115

Anexo III: Resultados de las capturas realizadas en 2017 en el Objetivo 3 116

Anexo IV: Biología y ecología de las especies capturadas en los muestreos de 2017 117

Equipos colaboradores 121 Referencias bibliográficas 122



Introducción

El crecimiento económico y la globalización han generado en los últimos años, un

incremento del transporte de mercancías y personas por todo el mundo, que ha

propiciado a su vez, el aumento de las posibilidades de transporte accidental de especies

biológicas de un ecosistema a otro. Algunos autores han sugerido un nombre para

caracterizar esta nueva era que conoce el planeta en la que el ser humano tiene sin duda

un gran impacto en la biota, es lo que han denominada “el Antropoceno” (Zalasiewicz y

cols., 2010).

En este contexto algunas especies de insectos pueden entonces llegar a desplazarse,

distancias muy largas de forma muy rápida utilizando aviones o barcos por ejemplo,

fenómeno denominado globalización biológica por algunos autores, y que han podido

producir problemas en los países destino, muy alejados de los de origen, con su evidente

importancia, por un lado agrícola, mediante la introducción de especies plaga por la

importación de especies vegetales (gorgojo rojo en los palmerales de Elche), y por el otro

sanitario mediante la introducción de especies con capacidad para transmitir

enfermedades, también llamadas “vectores”, en zonas libres de éstas.

La introducción continuada de estos vectores, unida a los cambios naturales en el

medioambiente y a la acción del hombre sobre la naturaleza (expansión de las ciudades

hacia zonas selváticas), ha propiciado la adaptación y el establecimiento de estas especies

a nuevos hábitats en ocasiones muy alejados de sus lugares de origen y ha facilitado la

transmisión de ciertos patógenos.

Esta situación está aconteciendo en Europa, donde se han introducido especies de

mosquitos exóticas con capacidad vectorial como Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse,

1984), Aedes (Stegomyia) aegypti (Linnaeus 1762), Aedes (Finlaya) atropalpus (Coquillet,

1902), Aedes (Finlaya) japonicus (Theobald, 1901) y Aedes (Finlaya) koreicus (Edwards,

1917) hecho que ha ocasionado la reaparición de enfermedades tropicales o subtropicales

en algunos países de nuestro entorno. El brote de chikungunya ocurrido en el norte de

Italia en el año 2007 y más recientemente en el sur de Francia (2014, 2017) y también en

Italia (2017), relacionado con Aedes (Stegomya) albopictus, culícido invasor originario de

Asia, son ejemplos de lo que está ocurriendo en el entorno sanitario internacional.

También son destacables los casos de dengue autóctonos ocurridos en la Isla de Madeira

(Portugal) en el año 2010, o en Francia en los años 2010, 2013 y 2014, relacionados con

Aedes aegypti y Aedes albopictus respectivamente, ambos invasores y capaces de

transmitir esta enfermedad. Sin duda lo destacable de los últimos años fue la epidemia de

virus Zika que se extendió rápidamente por las Américas, Asia y África, y puso de relieve la

necesidad de establecer buenos protocolos de vigilancia sanitaria de enfermedades

vectoriales a nivel internacional ya que se reciben a diario miles de viajeros procedentes de

países de riesgo.



El transporte intercontinental aéreo o marítimo ha sido considerado como un factor de

gran importancia para el desplazamiento eficaz de estas especies invasoras y por lo tanto

para la aparición de las enfermedades asociadas a la transmisión vectorial, ya sea

mediante el transporte del artrópodo hematófago, de individuos infectados o de ambos.

En lo que se refiere al transporte de vectores, los aviones, suponen un excelente foco

de atracción, las luces y en general al calor que desprenden, son factores particularmente

importantes para la atracción de las hembras de mosquitos (Scholte y cols., 2014).

Si a estos condicionantes le añadimos la gran plasticidad en cuanto a supervivencia de

estas especies, capaces de sobrevivir en condiciones ambientales adversas, es fácil

entender cómo se pueden producir desplazamientos de largas distancias.

Son numerosos los casos relacionados con un vector infectado, trasladado

accidentalmente en aviones a zonas lejanas y que han ocasionado problemas de salud

pública. Desde el año 1969 hasta 1999 se han notificado a nivel mundial 89 casos de

paludismo de aeropuerto. En España se produjo un caso de paludismo importado en el

área de influencia aeroportuaria en 2001 (CCAES, 2015).

Si bien es cierto que el establecimiento de estas poblaciones de artrópodos vectores en

los nuevos territorios, puede resultar complicada por las diferentes condiciones físico-

químicas o climatológicas de los nuevos biotopos. Son numerosos los casos descritos de

este fenómeno en el mundo. Especialmente llamativo es, por ejemplo, el asentamiento de

Aedes aegypti en la isla de Madeira, o el de Aedes albopictus en la mayoría de los países

europeos, incluida España. El éxito de estas dispersiones depende de multitud de factores,

entre los que se podría destacar las condiciones climáticas así como la época (periodo

estacional de la llegada) en el territorio destino, y la cantidad de ejemplares introducidos o

el estadio de desarrollo (no es lo mismo que se introduzca un adulto que 100 huevos) la

capacidad de adaptación a nuevos biotopos intrínseca de la especie en particular,

etcétera... En este caso es destacable la capacidad de adaptación de Ae. aegypti y

Ae. albopictus, que siendo de hábitos totalmente diferentes en África y Asia se han

adaptado a criaderos larvarios de origen antrópico como fuentes, macetas, platos,

etcétera… A todo ello se suma el cambio climático que genera estaciones menos extremas,

con inviernos más cálidos lo cual amplia el periodo de actividad de estos insectos y

disminuye su mortalidad invernal, modificando el rango de distribución a altitudes más

altas y cambiando particularmente el periodo y el riesgo de transmisión de ciertas

enfermedades.

Por todo lo dicho anteriormente es fácil inferir en la necesidad de implementar

programas de vigilancia entomológica en aeropuertos y puertos tanto frente a vectores

importados de enfermedades infecciosas exóticas, como de los potenciales vectores

autóctonos de dichas enfermedades.

En este marco y como consecuencia de la ratificación por el Reino de España del

reglamento Sanitario Internacional, que entró en vigor el 15 de julio de 2007, se estableció



un Programa de Vigilancia Entomológica en Aeropuertos y Puertos a nivel nacional. Para la

ejecución de este programa nacional se estableció una colaboración entre los Ministerios

de Defensa y de Sanidad, Servicios Sociales e Igualdad, para el desarrollo de un plan de

vigilancia de vectores importados en las principales bases aéreas españolas.

De igual manera, se continúa por cuarto año consecutivo con el convenio de

colaboración establecido con la Consejería de Sanidad del Gobierno de Canarias, para la

realización de actividades especialmente dirigidas a la vigilancia entomológica frente

Ae. aegypti y Ae. albopictus en la Comunidad Autónoma de Canarias.

En estos dos últimos años ha quedado constancia de la rápida expansión del mosquito

Ae. albopictus por la Península, y son varias las Comunidades Autónomas que han iniciado

las labores de vigilancia, tanto para una detección precoz como realizando el seguimiento

de sus poblaciones ya detectadas. En este sentido en el desarrollo de este trabajo técnico,

se ha colaborado proporcionando apoyo en el diseño y procesado de las muestras

recogidas en el Programa de Vigilancia del Mosquito tigre iniciado por la Consejería de

Sanidad de la Ciudad Autónoma de Ceuta, así como en el asesoramiento en el Programa de

Vigilancia del Mosquito tigre iniciado en 2016 por la Consejería de Sanidad del Gobierno de

Aragón, tras la confirmación de que la especie estaba presente en varios municipios

pertenecientes a las tres provincias aragonesas. Los resultados se reflejan también en este

informe para una mejor visualización de la situación de esta especie invasora en España.

En la Ciudad Autónoma de Melilla se ha trabajado en Vigilancia Entomológica pero solo

empleando trampas de luz como atrayente de forma puntual. Se espera en breve el poder

poner en marcha un Programa estandarizado usando ovitrampas como método de

detección.

La Universidad de Zaragoza y el Instituto de Salud Carlos III, en el seno de los contratos

que desde 2008 ha venido realizando con el Ministerio de Sanidad, han puesto en marcha

un plan de vigilancia entomológica en los principales puertos y aeropuertos de España a los

que se ha tenido acceso.

El plan de vigilancia implica la monitorización de las poblaciones de mosquitos

existentes en los aeropuertos donde aterrizan aeronaves procedentes de zonas de riesgo.

Este plan tiene como objetivo el determinar la presencia de especies alóctonas

potencialmente invasoras antes de que se puedan establecer en nuestro territorio o en el

caso de que se demuestren que ya están asentadas, establecer planes de control integrado

eficaces frente a las mismas, así como conocer las especies autóctonas con riesgo de ser

invasoras en otros países.

Biología y ecología de los culícidos

Bajo el nombre popular de mosquitos se conocen un buen número de insectos

voladores que muchas veces no tienen mucho que ver con los mosquitos verdaderos o

culícidos (Diptera: Culicidae). Estos últimos se caracterizan principalmente por tener un

aparato bucal modificado en forma de aguja que les permite penetrar la piel y realizar así



la ingesta de sangre, se denominan solenófagos. Hay que destacar que los mosquitos no

solo son importantes por sus molestas picaduras sino porque en ocasiones poseen la

capacidad de transmitir patógenos. Éstos pueden derivar en enfermedades, en muchos

casos olvidadas o desconocidas en los países desarrollados, pero que en las últimas

décadas están tomando de nuevo importancia debido al proceso de globalización que

experimenta el planeta. Existen unas 3.500 especies de mosquitos a nivel mundial, en

concreto en España se han citado 63 (Eritja y cols., 2006), de las cuales al menos 13 son

vectores de algún tipo de patógeno para el ser humano.

Los mosquitos experimentan una metamorfosis holometábola o completa lo que

implica que deben pasar por diferentes formas de desarrollo para completar su ciclo vital

(Figura 1). Así pues los adultos alados y aéreos depositan los huevos, ya sea en forma única

o de manera grupal, directamente sobre el agua o sobre superficies en contacto con la

misma. El foco larvario puede ser muy diverso según las propiedades del agua lo cual la

hará más o menos atractiva para los distintos géneros de mosquitos. Así pues los géneros

Anopheles y Culex tienden a criar en aguas estancadas o con poca corriente con más o

menos materia orgánica, y los géneros Aedes y Ochlerotatus prefieren poner los huevos

que pueden sobrevivir en zonas que temporalmente permanecen secas y que se inundan

periódicamente.

Existe gran variedad de hábitats acuáticos capaces de ser colonizados por los

mosquitos. Pueden ser naturales como charcos, zonas pantanosas, ríos con vegetación,

huecos en los árboles y en las rocas. Y también lugares artificiales como canales, sifones de

acequias y balsas de regadío, cultivos de arroz, piscinas y prácticamente cualquier objeto

susceptible de almacenar agua como macetas, neumáticos, latas, etc.

Tras la eclosión del huevo, la larva atraviesa cuatro formas de desarrollo que se

diferencian principalmente por el tamaño y que reciben el nombre de L1, L2, L3 y L4

consecutivamente (Figura 1). Se alimentan por filtración activa de las partículas orgánicas

en suspensión, o bien por raspado de los substratos. De forma general, la duración del

desarrollo larvario depende estrechamente de las condiciones atmosféricas y

principalmente de la temperatura ambiental y por lo tanto está directamente relacionada

con la época del año en la que nos encontremos. Así pues en época estival, el ciclo tiende a

acortarse durando aproximadamente 7 días a diferencia de épocas más frías en las que los

ciclos de algunas especies pueden alargarse alcanzando meses de duración. La

disponibilidad de alimento es otro factor determinante que influye directamente en la

velocidad de crecimiento de la fase larvaria.

La etapa pupal dura unos pocos días, durante la cual la pupa no se alimenta y alterna

movimientos rápidos por el agua con periodos de flotación en reposo en superficie que le

permite realizar el intercambio gaseoso. Cuando se ha completado el desarrollo, el estuche

pupal se desgarra y emerge el adulto o imago que permanece durante unos minutos sobre

la exuvia hasta que sus estructuras corporales se hayan secado y endurecido permitiendo

así el vuelo.



Figura 1. Esquema del ciclo biológico de un culícido.

Generalmente los machos emergen primero y maduran sexualmente para realizar la

cópula inmediatamente después de que emerjan las hembras. Los machos son poseedores

de antenas muy plumosas y aparentes y presentan sin excepción palpos largos muy bien

desarrollados. Además la disposición de su genitalia es externa y fácilmente apreciable. Las

hembras por el contrario presentan antenas filiformes y menos visibles y poseen una

genitalia interna. Ambos sexos se alimentan de sustancias azucaradas de origen vegetal

que les proporciona la energía necesaria para volar. Tan solo las hembras precisan ingerir

sangre, requisito indispensable en algunas especies para la maduración de los huevos. Los

mosquitos poseen diferentes preferencias tróficas según la especie, teniendo mayor

tropismo por mamíferos, aves e incluso por anfibios o reptiles. Las hembras una vez

saciadas con sangre inician la digestión y el desarrollo simultáneo de los ovarios, que

culminará en la puesta de los huevos al cabo de unos días; de estos huevos nacerán las

larvas, completándose así el ciclo. La supervivencia de los adultos al igual que en las etapas

inmaduras depende directamente de la temperatura y humedad ambiental, así como de la

disponibilidad de alimento. Por lo general los machos mueren antes que las hembras,

quienes en algunos casos son capaces de sobrevivir meses en reposo. Esto es lo que

sucede con algunas especies que hibernan en estado adulto en cuanto detectan el

descenso de temperaturas durante el invierno activándose nuevamente en la primavera

con la mejora de las condiciones ambientales.



La presencia de abundantes mosquitos adultos (concretamente la observación de

abundantes machos) en un lugar concreto puede dar la pista de la cercanía de focos

larvarios por lo que habría que buscarlos con el fin de eliminarlos o realizar alguna tarea de

control. No obstante las hembras de algunas especies, en situaciones de ausencia de

alimento, son capaces de desplazarse varios kilómetros sobre todo si son favorecidas por

corrientes de aire. Por lo tanto a la hora de realizar controles, es importante no ceñirse

únicamente a zonas cercanas a masas de agua sino ampliar el rango de búsqueda a zonas

con cierta vegetación o lugares de reposo para estos insectos.



Objetivos

Se detallan a continuación los objetivos del plan de vigilancia entomológica durante el año

2017 tal como está reflejado en el pliego de condiciones del procedimiento:

Objetivo 1

Detectar el establecimiento de especies de mosquitos alóctonos especialmente aquellas

con capacidad invasora. Se prestará especial atención a las que pueden representar un peligro

potencial para la salud humana por ser hematófagas y por consiguiente, posibles portadoras

de patógenos no presentes en España. Para ello se llevará a cabo un seguimiento de las

especies de mosquitos presentes en la zona de influencia de los principales Puntos de Entrada

(PdE), puertos y aeropuertos seleccionados en la Península: Madrid (Barajas y Torrejón),

Barcelona, Mallorca, Zaragoza y Valencia.

Objetivo 2

Realizar un seguimiento de las poblaciones de Aedes albopictus (mosquito tigre) en

recientes zonas de expansión así como la vigilancia en aquellas donde haya podido producirse

la dispersión.

Objetivos 3 y 4

Mantener la red de vigilancia entomológica para la detección de la presencia de Aedes

aegypti en los principales Puntos de Entrada (PdE) de mosquitos por vía marítima o aérea en el

archipiélago Canario. Para ello los objetivos se han centrado en los puertos y aeropuertos de

las islas de Gran Canaria, Tenerife, La Palma, Lanzarote y Fuerteventura.

Objetivo 5

Llevar a cabo pruebas de susceptibilidad de los mosquitos tigre (Aedes albopictus) adultos

frente a diferentes tipos de insecticidas en zonas seleccionadas, representativas de las áreas

de riesgo. Se deberán realizar al menos una vez al año, de cara a disponer de una base de

datos actualizada que sirva de referencia ante situaciones de emergencia.



Objetivo 1

Metodología

Los métodos de muestreo empleados han sido principalmente dirigidos a la captura de

mosquitos adultos. Se han empleado diferentes tipos de trampas para ampliar el rango de

especies así como para adecuar la metodología a las características de cada enclave. El

número de trampas utilizadas ha variado en cada instalación en función de sus

características; intentando muestrear en los diferentes tipos de ambientes tanto naturales

como antrópicos siempre que las medidas de seguridad de cada enclave lo hayan

permitido. Debido a la fototaxia positiva de los mosquitos, se han utilizado principalmente

trampas de succión tipo mini CDC (Communicable Diseases Center de EEUU), unas con luz

blanca y otras con luz ultravioleta. En alguno de los puntos de muestreo se han empleado

conjuntamente con Anhídrido carbónico (CO2), especialmente en aquellos con cierta

contaminación lumínica.

Para aumentar las posibilidades de detección, también se han empleado trampas que

llevan acoplados cebos químicos olorosos como método de atracción, éstos simulan los

metabolitos exudados por las personas o animales. Concretamente empleamos las

trampas de succión tipo BG-Sentinel (BioGents™), trampas de referencia en planes de

vigilancia del Ae. aegypti y Ae. albopictus a nivel internacional y que son especialmente

útiles para la monitorización de especies con actividad diurna (ECDC, European Center for

Diseasse Prevention and Control, 2012).

En cada una de las instalaciones, se ha seguido el mismo protocolo de actuación para

colocar y retirar las trampas. Protocolo diseñado específicamente para la elaboración de

este proyecto. Para el diseño del conjunto del trabajo se tuvo principalmente en cuenta las

zonas susceptibles de albergar insectos de interés sanitario. Los hangares y lugares de

carga y descarga de mercancías son especialmente interesantes para la colocación de

trampas debido a que se realizan en ellos actividades que podrían desempeñar un papel

importante en la introducción y/o exportación de insectos a y desde nuestro país. También

formaron parte de nuestras prioridades en la organización de los muestreos el trabajo en

ambientes naturales con abundante vegetación y presencia de masas de agua como

estanques o ríos cercanos, ya que éstos podrían albergar poblaciones de mosquitos así

como facilitar la cría y colonización de nuevas áreas por parte de algunas de ellas.

Con las premisas previas se identificaron y se trabajó en 5 zonas de la base aérea de

Zaragoza, 5 zonas en la base militar de Torrejón de Ardoz y 5 zonas en el área de influencia

del Aeropuerto Madrid-Barajas. En el aeropuerto de Barcelona se trabajó en 4 puntos y

también 4 en el de Palma de Mallorca.

En el puerto de Valencia se trabajó en 3 puntos, 4 en el puerto de Palma de Mallorca y

por último en el puerto de Barcelona se colocaron trampas en un solo punto como se

detallará más adelante.



Las trampas fueron colocadas con una periodicidad quincenal, mantenidas durante 24 h

en los puntos seleccionados siempre que las condiciones ambientales lo permitieran.

El diseño del trabajo se inició con la selección de los PdE y a continuación, se localizaron

los diferentes puntos de muestreo de cada PdE. Se consideró importante la obtención de

permisos que posibilitaran el acceso a los mismos de una forma continuada a lo largo del

periodo de muestreo establecido.

Las estaciones de muestreo fueron seleccionadas en los primeros años del Plan

Nacional de Vigilancia entomológica, en una fase previa en la que se realizaron visitas a las

áreas de estudio, tratando de seleccionar en cada PdE, puntos de agua representativos de

las diferentes unidades fisiográficas e intentando abarcar el máximo de superficie a

estudiar. Así como posibles lugares de entrada de adultos (hangares) procedentes de otros

países.

Muestreo de adultos

El modelo de trampa tipo CDC de luz blanca, suele colgarse de algún árbol o estructura a

una distancia de 1,5-1,8 m del suelo. Funciona como atrayente para distintos insectos y

consta de tres partes: la trampa propiamente dicha, formada por un cuerpo principal de

metacrilato que contiene un ventilador y una pequeña luz de baja intensidad, la parte

superior con los circuitos eléctricos que funcionan conectados a una batería de 6 V y por

último, en la parte inferior, el sistema de contención que consiste en un cilindro de tela

donde quedan atrapados los insectos. Toda esta estructura está cubierta por una bandeja

metálica o de material plástico que la protege de condiciones climáticas adversas (Figura

2).

Por otro lado la trampa tipo CDC de luz ultravioleta que es muy parecida a la anterior

con la diferencia de que la fuente lumínica es un tubo de luz ultravioleta. Las trampas con

célula fotoeléctrica funcionan desde una hora antes de la puesta del sol hasta una hora

después del amanecer. Se evita colocarlas cerca de fuentes de luz artificial porque se

reducen considerablemente las capturas (Figura 3).

En el aeropuerto de Barcelona Sants se ha empleado la trampa EVS (Encephalitis Virus

Survey) de luz blanca. Éste tipo de trampa también se basa en el fototaxia positiva de

algunos insectos incluyendo además un recipiente donde se introduce el CO2 que sirve

como atrayente suplementario para los mosquitos (Figura 4).



Figura 2. Trampas CDC New Standard Miniature Incandescent Light Trap (model 1012) cebada con CO2 .

Figura 3. Trampa CDC de luz UV. Figura 4. Trampa EVS de luz blanca con aporte de CO2

El cuarto modelo de trampa para captura de adultos empleada es la BG Sentinel Trap

que es muy distinta a las dos anteriores pues la captura de insectos esta vez se consigue

mediante atracción química. Ésta trampa consiste en un semioquímico que imita los

volátiles emitidos por la piel humana, compuesto a base de ácido láctico, ácido caproico

(=hexanoico) y amoniaco. En la parte superior dispone de una abertura provista de un

sistema de auto cierre, por el que entran las capturas, y de un ventilador que ejerce una

corriente de succión que retiene las capturas en una red de malla fina. Este flujo, a la vez



que retiene las capturas, incrementa la dispersión del semioquímico gracias al sistema de

perforaciones que presenta en la parte superior.

Figura 5. Trampa de cebo químico BG Sentinel.

La trampa tiene que ir conectada a una batería de 12 V y debido al tamaño, se coloca a

nivel del suelo, especialmente entre la vegetación (Figura 5). Como la fuente de atracción

no son las luces puede estar activa tanto por el día como por la noche.

Las trampas se colocaban en los lugares seleccionados y se recuperaban al día siguiente

por la mañana. Su funcionamiento durante 24h asegura las capturas durante los periodos

de máxima actividad de las diferentes especies de mosquitos.

Monitorización de estadios inmaduros

Igualmente, siguiendo las recomendaciones de la ECDC se han realizado muestreos para

la detección indirecta de Aedinos invasores mediante trampas de ovoposición u

ovitrampas. Se trata de un método sencillo y económico mediante el cual se puede

determinar la presencia del insecto y en ocasiones correlacionar el número de huevos con

la densidad poblacional de hembras (Manica y cols., 2017). Estas trampas consisten en un

recipiente, generalmente de color oscuro que dispone de un orificio de drenaje para evitar

el llenado completo por agua de lluvia. Las ovitrampas están provistan de un determinado

volumen de agua, que simula los lugares de cría de ciertas especies de culícidos. Como

sustrato de ovoposición, se sumergen en agua piezas de madera (pueden ser tablilla de

medidas determinadas según el propio volumen de la trampa o depresores linguales) o

piezas de propileno. Para los muestreos se utilizaron recipientes de color negro de 500-

1000 ml de capacidad. Las hembras de algunas especies del género Aedes se sienten

atraídas por la humedad que empapa la pieza porosa, realizando la puesta de huevos sobre

ella, justo en la interfase agua-aire. Estas piezas, de madera o de propileno, son sustituidas

periódicamente para determinar la presencia/ausencia de huevos. Cada ovitrampa queda



identificada mediante un código y geolocalizada, manteniéndose con una localización fija

durante todo el periodo de estudio. Las revisiones se realizan con periodicidad quincenal.

Siguiendo las recomendaciones del ECDC se buscó la localización más adecuada para

instalar las trampas de ovoposición:

1. En zonas de sombra, protegidas del viento, preferentemente entre arbustos.

2. A ser posible, situadas a nivel de tierra, no superando los 3 m de altitud.

3. Que no estén a la vista, evitando así que las trampas sean robadas o volcadas

4. Situadas lejos de aspersores de agua de jardines o cualquier otra fuente de agua.

La frecuencia de muestreo fue variable según la zona de estudio, realizándose recogidas

semanales (en aquellos puntos seleccionados para realizar el seguimiento anual) y

recogidas quincenales en el resto de puntos designados para la vigilancia.

Durante los muestreos se sustituye tanto el agua como las tablillas de madera de la

trampa. Éstas se etiquetan y almacenan individualmente para su envío al laboratorio. Si en

el agua de las ovitrampas se observan pupas, éstas se introducen en un eclosionador hasta

su metamorfosis a adulto y las larvas se montan entre porta y cubre con medio de montaje

para su posterior identificación. Las tablillas son revisadas bajo la lupa binocular entre 10 y

80 aumentos, identificando y realizando el recuento de los huevos. La eclosión de éstos en

condiciones de laboratorio se lleva a cabo siguiendo las recomendaciones de Alarcón-Elbal

y cols., (2010).

Figura 6. Vista de una ovitrampa y tablilla de ovoposición utilizadas en el estudio.



Figura 7. Huevos de Ae. albopictus vistos bajo la lupa binocular.

Se ha monitorizado en los ambientes naturales que poseían lugares susceptibles de

servir de refugio a los mosquitos durante el día (vegetación arbustiva y arbórea) así como

enclaves donde potencialmente puedan desarrollarse hábitats de cría (zonas encharcadas

de forma permanente o temporales) de las diferentes especies de mosquitos.

En los lugares con aguas estancadas se han prospectado buscando de forma activa la

presencia de larvas y pupas de mosquitos utilizando la técnica del Dipper aforado y

siguiendo los protocolos previamente establecidos. Esta técnica consiste en la recogida de

pequeñas muestras de agua mediante la utilización de un “cazo” enmangado y la

verificación de la presencia o ausencia de estadios inmaduros de mosquito. Permite hacer

una estimación de las densidades de mosquitos en esas zonas.

Figura 8. Técnica de dipping.

La elección de los días de muestreo estuvo estrechamente relacionada con las

condiciones atmosféricas pues hay que evitar hacer las capturas aquellas noches en las



que se prevean precipitaciones o fuertes ráfagas de viento pues aparte de reducir

considerablemente el número de capturas pueden romperse o estropearse las trampas.

La vigilancia se ha realizado, siempre que se ha podido, principalmente en la zona de

influencia de descarga de las aeronaves así como en los hangares y almacenes donde se

abren los contenedores de carga, lugares que puedan servir de refugio temporal de

mosquitos que lleguen dentro de las aeronaves o de los contenedores de mercancías.

Todas las trampas, por medidas de seguridad, se han ubicado siempre de acuerdo con

las directrices específicas de las autoridades de cada aeropuerto/puerto con el objetivo de

no suponer ningún obstáculo a las actividades de las instalaciones y de mantener los

niveles de seguridad necesarios.

Procesado de las muestras en el laboratorio

El material recogido en las trampas de adultos se introduce en cajas aislantes de

poliespan con termoplacas frías para conservar los mosquitos en condiciones adecuadas

de temperatura y humedad hasta su llegada al laboratorio.

Una vez allí, los contenedores se introducen en un congelador donde permanecen 24 h

con el fin de eutanasiar por frío a los artrópodos capturados, de esta manera se evita

dañar las muestras y se conservan todos los caracteres taxonómicos que serán necesarios

para su correcta identificación. Posteriormente se procesan las muestras separando todos

los ejemplares de insectos hematófagos de interés sanitario (culícidos, flebótomos,

ceratopogónidos, simúlidos…) pues el procesado será distinto según la familia de la que se

trate. Para ello se emplea una lupa binocular con objetivos de 20 a 90 aumentos y con

fuente de luz fría.

Una vez separados los culícidos, lo primero que se determina es el sexo puesto que la

identificación a nivel de especie se lleva a cabo con diferentes protocolos. Las hembras de

culícido, se introducen en seco en placas Petri para su conservación, también pueden ser

congeladas. Si se quiere, para mayor comodidad a la hora de manipular, se puede

proceder a montar los especímenes sobre minucias (pequeñas agujas entomológicas),

éstas deben ser insertadas en el tórax del insecto atravesándolo entre las patas (Figura 9).

El otro extremo de la aguja se clavará en un pedacito de corcho, que será lo que

manipulemos cuando se proceda a la identificación de los mosquitos bajo la luz de la lupa

binocular. Esta forma de trabajar evita el deterioro de los especímenes en los procesos de

identificación. Se tendrá en cuenta la morfología general de la hembra para la

determinación de la especie.



Figura 9. Hembra de Ochlerotatus caspius montada con una minucia entomológica.

Los machos en cambio, deben ser sometidos a otro procedimiento ya que tan solo se

emplea la genitalia para su identificación. Por ello, lo primero que hay que hacer es

introducir los machos en tubos Eppendorf con alcohol al 70% durante una semana para

fijar correctamente los tejidos. A continuación bajo la luz de una lupa binocular y con la

ayuda de dos agujas enmangadas, se realiza un corte a nivel del último segmento

abdominal dejando libre así la genitalia. Se coloca una gota de líquido de Hoyer (líquido de

montaje) sobre un porta y se dispone la genitalia de uno o varios machos sobre la gota, por

último se coloca el cubreobjetos teniendo de nuevo cuidado en no dejar burbujas

(Figura 10).

La preparación debe permanecer durante una semana a 55°C en una estufa, para que

las genitalias se aclaren lo suficiente y poder así observar las estructuras que permitan una

correcta identificación mediante la utilización de un microscopio y con la ayuda de claves

específicas.

Figura 10.Genitalia de macho de Culex pipiens montada entre porta y cubre.

Las larvas y pupas de culícidos, serán fijadas en alcohol al 70% durante una semana con

el fin de fijar los tejidos y mantener su anatomía en buen estado hasta su posterior



montaje entre porta y cubre. Las preparaciones deberán de permanecer durante una

semana a 55°C en una estufa, para que las muestras se aclaren lo suficiente y poder así

observar las estructuras de la cabeza y del los últimos segmentos del abdomen, que

permitan una correcta identificación (Figura 11).

La identificación de adultos y larvas se lleva a cabo mediante la utilización de un

microscopio y con la ayuda de claves dicotómicas específicas. (Schaffner y cols., 2001)

Figura 11. Larva de culícido montada entre porta y cubre.

Zonas de estudio

Se ha realizado este trabajo en 8 PdE, los cinco principales aeropuertos españoles, tanto

civiles como militares, seleccionados en función del tráfico aéreo con países de riesgo

endémicos de enfermedades vectoriales. Además se ha trabajado en tres de los principales

puertos del país. Dependiendo de las características de cada uno de los enclaves así como

de los protocolos de seguridad propios de cada punto hemos diseñado planes de

monitorización específicos y adaptados a cada uno de ellos, para la detección de los

mosquitos que puedan encontrarse en su área de influencia.

A continuación se detallan los aeropuertos civiles y militares así como los puertos donde

se ha establecido el plan de vigilancia entomológica.

Aeropuertos civiles:

* Aeropuerto de Madrid- Barajas- Adolfo Suárez

* Aeropuerto de Barcelona- El Prat

* Aeropuerto de Palma de Mallorca- Base aérea de Son Sant Joan

Aeropuertos militares

* Base aérea de Torrejón de Ardoz- Madrid

* Base aérea de Zaragoza



Puertos civiles

* Puerto de Valencia

* Puerto de Palma de Mallorca

* Puerto de Barcelona

Resultados

A continuación, se detallarán los resultados por zonas de muestreo (Aeropuertos civiles,

bases aéreas militares y puertos).

Aeropuertos civiles

Aeropuerto de Madrid- Barajas- Adolfo Suárez

El aeropuerto Madrid - Barajas - Adolfo Suárez es uno de los principales puntos de

entrada de personas en España. El aeropuerto se ubica en el noreste de la capital, a tan

solo 12 Km del núcleo urbano, lo cual le convierte en una pieza fundamental del sistema

nacional turístico. Tiene una superficie de 39 km², de los que 4,5 Km² corresponden a

zonas de espacios libres que incluye un área de protección ambiental de 2,5 Km². Tras su

ampliación, se consolida como un aeropuerto hub donde las compañías aéreas pueden

aumentar su conectividad entre los mercados hispanoamericano, nacional y europeo.

Todo esto no ha hecho más que afianzar su posición de liderazgo entre los principales

aeropuertos del mundo situándose en el quinto puesto entre los aeropuertos europeos y

el primer aeropuerto español por tráfico de pasajeros, carga aérea y operaciones. Las

terminales se localizan en el término municipal de Madrid, pero el campo de vuelos se

extiende también por Alcobendas, San Sebastián de los Reyes y Paracuellos del Jarama. Los

muestreos se enfocan de forma que se puedan abarcar las terminales de carga y descarga de

mercancías y equipajes que accidentalmente pudieran contener ejemplares de mosquitos

potencialmente invasores o portadores de alguna enfermedad.

Se han colocado cinco trampas mini CDC de luz blanca conservando aquellos lugares

estratégicos de las instalaciones y espacios naturales del área de seguridad del aeropuerto

seleccionados en años anteriores. Hay que destacar la importancia de zonas de agua como

arroyos, depuradoras y zonas verdes como el observatorio de fauna que contiene un lago

natural cerrado al público. Éste último enclave de gran importancia en la vigilancia

epidemiológica por acoger regularmente miles de aves de paso estrechamente

relacionadas con las diseminación y transmisión de arbovirus como el Virus del Nilo

Occidental entre otros.

Las trampas se han puesto quincenalmente desde el mes de junio hasta principios del

mes de octubre. En cada uno de los días de muestreo, que en total fueron 8, se colocaron

cinco trampas de luz y de cuatro ovitrampas repartidas por el recinto del aeropuerto. En la

estación de muestreo arroyo de las Zorreras (depuradora) no se colocaron trampas de



ovoposición porque las condiciones de seguridad no eran las adecuadas debido a que se

trata de un lugar de alta frecuencia de paso y al no tener abundante vegetación para

resguardar la trampa durante todo el periodo de muestreo, se decidió no colocarla.

Tabla 1. Puntos de vigilancia en el aeropuerto de Barajas.

Localización de las trampas

Arroyo de Rejas (CDC)

Observatorio de Fauna (CDC)

Antigua umbral RWY Caballos (CDC)

Arroyo de las Zorreras- Presas (CDC)

Arroyo de las Zorreras- Depuradora (CDC)

En total se han identificado tres especies de mosquitos culícidos diferentes: Culex

pipiens, Culiseta longiareolata y Culex hortensis.

Se capturó un total de 34 ejemplares cuya composición específica fue la siguiente.

Tabla 2. Especies identificadas en el aeropuerto de Madrid Barajas.

ESPECIE TOTALES

Culex pipiens 31

Culiseta longiareolata 2

Culex hortensis 1

Total 34

0

2

4

6

8

10

12

A. Rejas Obs. Fauna Antigüo umbral Arroyo Zorreras-Presa

Arroyo Zorreras-Depuradora

Culex pipiens Culiseta longiareolata Culex hortensis

Figura 12. Variación por estación de las capturas en el aeropuerto Madrid Barajas.

La gran mayoría de los ejemplares capturados, concretamente el 91,17% corresponde a

la especie Cx. pipiens y se encuentra presente en todas las estaciones de muestreo. Le

sigue Cs. longiareolata y Cx. hortensis con muy pocas capturas, aunque ambas coinciden

en la estación donde se han detectado. Culex pipiens es una especie cosmopolita, con gran

plasticidad ecológica implicada en la transmisión de múltiples enfermedades.



91%

6%

3%

MADRID- BARAJAS


Figura 13. Porcentaje de especies de culícidos en el Aeropuerto Madrid Barajas.

0

5

10

15

20

25


♂

♀

Figura 14. Proporción de machos y hembras de culícidos capturados en el Aeropuerto Madrid Barajas.

Se han capturado más hembras que machos lo que podría significar que estas se han

desplazado desde los lugares de cría en busca de alimento, este hecho es realmente

relevante desde el punto de vista epidemiológico puesto que son las responsables de la

posible transmisión de patógenos.



0

5

10

15

20

25

30

35

40

45

0

2

4

6

8

10

12

14

16

nº

de

ejem

pla

res

Culex pipiens

Culiseta longiareolata

Culex hortensis

Tª Máximas (ºC)

Tª Minimas (ºC)

Tem

per

atu

ra �

C

Figura 15. Evolución de las capturas de culícidos a lo largo del muestreo en el aeropuerto Madrid Barajas.

De nuevo este año Cx. pipiens ha sido la especie mayormente capturada a lo largo de

todo el muestreo, no es de extrañar puesto que es una especie muy abundante y capaz de

críar en hábitats muy diversos. La disminución de las capturas coincide con la bajada de

temperaturas tanto las mínimas como las máximas.

No se han contabilizado huevos ni larvas de especies de culícidos en ninguna de las

28 tablillas recogidas a lo largo del periodo de trabajo en los puntos seleccionados del

aeropuerto de Barajas (arroyo Rejas, observatorio fauna, arroyo Zorreras y umbral RWY).

Entre otros grupos de insectos hematófagos capturados en los muestreos realizados en

Madrid-Barajas, cabe destacar la identificación de ejemplares pertenecientes a la

subfamilia Phlebotominae. Concretamente ejemplares de las especies Sergentomyia

minuta y en mayor proporción Phlebotomus perniciosus, implicado en la transmisión de

leishmaniosis en España y recientemente relacionado con el brote ocurrido en

Fuenlabrada.

Tabla 3. Especies de flebotomos identificadas en el aeropuerto de Barajas.

ESPECIE Totales

Sergentomya minuta 78

Phlebotomus (L) perniciosus 70

TOTAL 148



0

10

20

30

40

50

60

70

80

A. Rejas Obs. Fauna Antigüo umbral Arroyo Zorreras-Presa

Arroyo Zorreras-Depuradora

Phlebotomus (L) perniciosus Sergentomyia (S) minuta

Figura 16. Recuento de flebotomos capturadas en las diferentes estaciones de muestreo.

0

5

10

15

20

25

30

35

40

45

50

Sergentomya minuta Phlebotomus (L) perniciosus

♂

♀

Figura 17. Proporción de machos y hembras de flebótomos capturados en el Aeropuerto Madrid Barajas.

0

5

10

15

20

25

30

35

40

45

0

10

20

30

40

50

60

nº

de

eje

mp

lare

s

Phlebotomus (L) perniciosus

Sergentomyia (S) minuta

Tª Máximas (ºC)

Tª Minimas (ºC)

Tem

per

atu

ra �

C

Figura 18. Detalle de la dinámica temporal de las capturas de flebotomos en el Aeropuerto de Madrid-

Barajas.



Aeropuerto de Barcelona- El Prat

El aeropuerto de El Prat se encuentra situado a 12 Km al suroeste de la Ciudad Condal,

entre los términos municipales de El Prat de Llobregat, Viladecans y Sant Boi. Es el segundo

aeropuerto más importante de España en cuanto a tráfico aéreo tras el aeropuerto

madrileño de Madrid-Barajas con el que mantiene el corredor aéreo regular de pasajeros

más transitado del mundo. El hecho de que esté solamente a 3 Km del Puerto de

Barcelona, uno de los puertos más importantes del Mediterráneo en tráfico de

contenedores y líder del mercado de cruceros, hace de éste aeropuerto un punto

estratégico en cuanto a la vigilancia de vectores importados. Un ejemplo claro de ello es la

vigilancia que se lleva a cabo desde hace años de las poblaciones de la especie invasora

Ae. albopictus.

Se han muestreado en dos enclaves, muy próximos a los hangares y a la Reserva natural

del Delta de Llobregat que presenta numerosos puntos de aguas estancadas que pudieran

servir de atracción a los mosquitos importados. Se han empleado cuatro trampas de luz

blanca, dos tipos CDC y dos EVS cebadas con un atrayente de CO2 con periodicidad

quincenal desde el mes de mayo hasta la segunda quincena de noviembre en las cercanías

de los salicorniales y praderas halófilas, muy abundantes en la zona. Este tipo de

ambientes suele atraer a multitud de especies de mosquitos del género

Aedes/Ochlerotatus. Se realizaron un total de 13 visitas.

Tabla 4. Puntos de vigilancia en el aeropuerto de Barcelona.


A: garita de la residencia militar (CDC)

B: garita de las residencia militar (CDC)

Aeropuerto Tcn: aparcamiento del bloque técnico (EVS)

Aeropuerto Res: garita de la residencia militar (EVS)

Desde el mes de mayo hasta noviembre, se han identificado un total de siete especies:

Ochlerotatus caspius, Ochlerotatus detritus, Aedes albopictus, Culex pipiens, Culiseta

longiareolata, Culiseta subochrea y Coquillettidia richiardii. Se subraya un año más la presencia

de mosquito tigre (Aedes albopictus) entre las capturas realizadas en las instalaciones del

aeropuerto.

Se han capturado un macho de Cs. longiareolata y un total de 548 ejemplares hembra

distribuidos por especies como sigue:



Tabla 5. Especies de culícidos identificadas en el aeropuerto de Barcelona.

ESPECIE TOTALES

Ochlerotatus caspius 382

Ochlerotatus detritus 56

Aedes albopictus 7

Culex pipiens 87

Coquillettidia richiardii 1


Culiseta subochrea 14

Total 549

La proporción de las capturas en 2017 ha sido parecida a la de 2016 ya que teniendo en

cuenta la localización del aeropuerto y el tipo de vegetación (salicorniales y praderas

halófilas que se encharcan con facilidad), la cría por parte de algunas especies se ve algo

limitada. Por ello, un año más, destaca Oc. caspius con 382 ejemplares correspondiente al

69,58 % de las capturas totales. Cx. pipiens es la segunda especie en abundancia con un

15,84% de las capturas. Destaca sin embargo este año el aumento de las densidades de

Oc. detritus, con un 10,2% de las capturas. Ae. albopictus, de nuevo presente aunque en

menor proporción lo que podría asociarse con el hecho de que esta especie es más activa

durante el día por lo que es probable que las capturas de mosquito tigre hayan tenido

lugar bien al amanecer o atardecer cuando este vector es activo y las trampas de luz

empleadas están en funcionamiento. Es posible también que a pesar de que es una

especie con cierta plasticidad ecológica, no haya encontrado en este ecosistema con

influencia marina, las condiciones más adecuadas para llevar a cabo su desarrollo. También

tiene influencia el hecho de que el recinto aeroportuario es un recinto controlado y no hay

abundancia de residuos tipo envases o recipientes que puedan convertirse en focos de cría

larvario. En la bibliografía es habitual encontrar que Cs. subochrea suele compartir nicho

larvario con Oc. caspius y Oc. detritus con lo que no es de extrañar el 2,55% detectado en

las capturas.



70%

10%

16%

1%

3%

BARCELONA- EL PRAT

Aedes caspius Aedes detritus Culex pipiens

Aedes albopictus Coquillettidia richiardii Culiseta longiareolataCuliseta subochrea

Figura 19. Porcentaje de especies de culícidos hembras en las distintas zonas de muestreo del Aeropuerto

de Barcelona.

0

20

40

60

80

100

120

140

160

BCN A BCN B Residencia Bloque Técnico

Aedes caspius

Aedes detritus

Culex pipiens

Aedes albopictus

Coquillettidia richiardii


Culiseta subochrea

Figura 20. Detalle de las capturas de culícidos en las distintas zonas de muestreo del Aeropuerto de

Barcelona.

Se han realizado capturas en todas las estaciones de muestreo seleccionadas en el

aeropuerto de Barcelona, no obstante donde mayor variabilidad específica ha habido es en

la estación más cercana a la residencia militar. Todos los ejemplares capturados fueron

hembras a excepción de un macho de Cs. longiareolata capturado en las inmediaciones de

la zona BCN B.

Ochlerotatus caspius ha sido capturado en todas las estaciones de muestreo salvo en la

del aparcamiento del bloque técnico, donde las características del enclave impiden que

haya cerca focos de cría larvarios ya que está en un entorno completamente urbanizado.

Las otras tres estaciones de muestreo están muy cerca de focos de cría que ocasiona que



al inundarse el sustrato donde han sido depositados los huevos, se den abundantes

eclosiones de adultos en momentos puntuales de lluvias abundantes.

0

5

10

15

20

25

30

35

0

25

50

75

100

125

150

175

200

225

nº

de

eje

mp

lare

s

Aedes caspius

Aedes detritus

Culex pipiens

Aedes albopictus

Coquillettidia richiardii


Culiseta subochrea

Tª Maximas ºC

Tª Minimas ºC

Tem

per

atu

ra �

C

Figura 21. Evolución de las capturas de culícidos a lo largo del muestreo en el Aeropuerto de Barcelona.

0

5

10

15

20

25

30

01/05/2017 01/06/2017 01/07/2017 01/08/2017 01/09/2017 01/10/2017 01/11/2017

Precipitaciones totales (mm)

Figura 22. Histórico de precipitaciones en el Aeropuerto del Prat durante el periodo de muestreo.

La única especie presente a lo largo de todo el periodo y en todas las estaciones de

muestreo ha sido Cx. pipiens y de forma prácticamente ininterrumpida ya que esas

poblaciones detectadas están asociadas a pequeñas masas de agua permanentes como

imbornales. A diferencia de Oc. caspius que presenta picos de actividad aproximadamente

a los 10 días de haberse registrado precipitaciones en la zona y cuando las temperaturas

son menos extremas. Eso concuerda con su biología en la que los huevos permanecen



inactivos hasta que se produce la inundación de los mismos y a los días una aparición

repentina de adultos.

Aeropuerto de Palma de Mallorca- Base aérea de Son Sant Joan

Se han seleccionado las infraestructuras con un mayor tráfico de personas y mercancías

en la isla de Mallorca, concretamente el Aeropuerto Internacional de Palma de

Mallorca (PMI).

Se encuentra situado dentro de la Bahía de Palma entre la ciudad y uno de los destinos

turísticos más importantes de la isla: la playa de Palma y s’Arenal de Llucmajor. Esta

comunicado a través de la autovía de Levante y de la carretera de Manacor.

Debido a las restricciones en la entrada de personal ajeno al aeropuerto, los muestreos

se realizaron dentro de las instalaciones militares de Son Sant Joan, que se encuentra

situada al final de las pistas del aeropuerto civil internacional.

Se buscaron las zonas más adecuadas para la instalación de las trampas, distinguiendo

tres puntos (Cuerpo de Guardia, Torre de Control-Spantax y Patio de Armas).

Los muestreos dieron comienzo a mediados de agosto hasta finales de octubre con una

frecuencia mínima quincenal, reforzando los muestreos a final de verano. Se realizaron un

total de 7 visitas. Las trampas BG y de luz se mantuvieron operativas durante un período

comprendido entre 12 y 24 h.

Tabla 6. Puntos de vigilancia en Son San Joan. Palma de Mallorca.


Torre de control-Spantax (BG-CDC)

Patio de Armas (BG-CDC)

Cuerpo de Guardia (BG-CDC)

Botiquín (BG-CDC)

Al igual que en 2016, se han identificado cinco especies diferentes: Culex pipiens, Aedes

albopictus, Ochlerotatus caspius, Ochlerotatus detritus y Culiseta longiareolata.

El número total de ejemplares capturados incluidos en la familia Culicidae ha sido de

615, siendo todos ellos hembras a excepción de un macho de Ae. albopictus capturado en

octubre. La composición específica se muestra a continuación.



Tabla 7. Especies de culícidos identificadas en el aeropuerto de Palma de Mallorca.

ESPECIE TOTALES

Aedes albopictus 28


Culex pipiens 368

Ochlerotatus detritus 2

Total 677

La especie capturada en mayor proporción es Cx. pipiens, supone un 54,35% de las

capturas, obteniéndose la mayor parte de las mismas en los muestreos realizados en las

instalaciones militares mediante las trampas mini CDC cebadas con CO2. Por su parte,

Oc. caspius ha supuesto el 41,21% de las capturas, estando presente en ambas

localizaciones al igual que Ae. albopictus (4,1%). Hay que destacar que la mayoría de

ejemplares de ésta última especie fueron capturados mediante la utilización de la trampa

BG-sentinel, por lo tanto la combinación de varios métodos de muestreo aumenta las

posibilidades de detectar diferentes especies así como densidades de las mismas.

4%

41%55%

PALMA DE MALLORCA

Aedes albopictus Ochlerotatus caspius Culex pipiens Ochlerotatus detritus

Figura 23. Porcentaje de mosquitos adultos capturados en el aeropuerto de Son Sant Joan en Palma de

Mallorca.

0

5

10

15

20

25

30

35

0

20

40

60

80

100

120

140

160

180

200

nº

de

ejem

pla

res

Ae. albopictus

Cx. pipiens

Oc. caspius

Oc. detritus

Tª Maximas ºC

Tª Minimas ºC

Tem

per

atu

ra �

C



Figura 24. Dinámica temporal de lo culícidos capturados en el aeropuerto de Son Sant Joan en Palma de Mallorca.

Culex pipiens aparece con dos picos de abundancia que concuerdan con las tormentas

acontecidas en agosto y septiembre, aproximadamente dos semanas antes de observar un

aumento importante en las capturas. La otra especie mayormente abundante Oc. caspius,

también se asocia a las precipitaciones acumuladas a finales de verano. Las capturas

disminuyen en concordancia con la bajada de temperaturas durante los meses de octubre

y noviembre.

Se han colocado cinco trampas de ovoposición en cada una de las tres zonas del área de

trabajo del aeropuerto de Palma de Mallorca (torre de control, patio de armas y cuerpo de

guardia). Desde mediados de agosto hasta principios de noviembre, se obtuvo un total de

178 muestras tablilla, siendo 41,7% positivas a huevos de morfología compatible con Ae.

albopictus. Se contabilizó un total de 1794 huevos, una media de 10,19 huevos/tablilla,

aunque la mayoría de tablillas positivas con mayor número de huevos fueron recogidas a

finales de agosto. Cabe destacar que un 10% de las trampas de ovoposición se encontraron

larvas de Ae. albopictus, un 2.,7% contenían huevos de otros Aedinos y un 0.6%

presentaba larvas de Culex spp.

Figura 25. Promedio de huevos/ovitrampa/día ± D. E. obtenido durante los muestreos realizados

mediante ovitrampas en el recinto del aeropuerto de Palma de Mallorca

Aeropuertos militares

Base aérea de Torrejón de Ardoz- Madrid

La Base Aérea de Torrejón de Ardoz se sitúa al Noroeste de la región madrileña y a unos

20 Km del centro de la ciudad. Incluida dentro del término municipal del que toma su

nombre, mantiene un perímetro de 20 Km e incluye una superficie aproximada de 11 Km2

de los que casi 2 Km² corresponden a un campo de golf con arboleda riparia. Siendo

recorrida por el arroyo Ardoz de NO-SE, y por el Torote que la recorre en el este de N-S.

Históricamente la Base aérea de Torrejón ha sido un punto clave para la logística nacional

e internacional ya que fue originalmente la sede del Instituto Nacional de Técnica

Aeroespacial así como fue una de las tres principales sedes de la Fuerza Aérea de los

Estados Unidos en España junto a las Bases Aéreas de Zaragoza y Morón. En la actualidad



multitud de vuelos realizan paradas técnicas en sus instalaciones por lo que esto implica un

alto riesgo de introducción de especies alóctonas de forma accidental.

Se han colocado cinco trampas en las inmediaciones de la base, cuatro trampas de luz

blanca en zonas verdes entre las que se encuentra el campo de golf y entre la vegetación

bajo influencia del arroyo que aporta la humedad necesaria para la supervivencia de estos

insectos. Además se ha colocado una trampa BG en el interior del hangar principal de la

base (T2) y cuatro trampas de ovoposición repartidas por las mismas zonas (arroyo SATA,

campo de golf y entrada).

Los muestreos con carácter quincenal, comenzaron este año en junio y hasta octubre se

han realizado un total de 8 visitas a la base aérea. Solo se representan en las gráficas y

tablas adjuntas los datos a partir de los primeros positivos. El tipo de muestreo que se

estableció fue tanto cuantitativo como cualitativo ya que se pretende recoger el mayor

número de especies de interés sanitarios presentes en el área. Los puntos seleccionados

para la colocación de trampas fueron los siguientes:

Tabla 8. Puntos de vigilancia en la Base aérea de Torrejón de Ardoz.


T2 Hangar nº2 (BG)

T4 A. Arroyo SATA (CDC)

T4 B. Arroyo SATA (CDC)

T5 Campo de golf (CDC)

T6 Entrada (CDC)

El número total de ejemplares capturados en 2017 ha sido de 83 cuya composición

específica se muestra a continuación.

Tabla 9. Especies de culícidos capturadas en la Base aérea de Torrejón de Ardoz.

ESPECIE TOTALES

Culex pipiens 79


Total 83

La especie mejor representada ha sido Cx. pipiens con el 95,18% de las capturas, siendo

el 50,6% de los ejemplares hembras.



95%

5%

TORREJÓN DE ARDOZ

Culex pipiens Culiseta longiareolata

Figura 26. Porcentaje de culícidos capturados en la Base aérea de Torrejón de Ardoz.

0

5

10

15

20

25

30

35

40

45

Culex pipiens Culiseta longiareolata

♂

♀

Figura 27. Proporción de machos y hembras de culícidos capturados en la Base aérea de Torrejón de

Ardoz.

0

5

10

15

20

25

30

Campo de golf

SATA SATABB Entrada Hangar SATA

Culex pipiens


Figura 28. Variación por estación de muestreo de las capturas realizadas en la Base aérea de Torrejón de

Ardoz.



Culex pipiens ha sido la especie más abundante desde el comienzo del muestreo en el

mes de julio y a falta del hangar de la SATA donde no se han realizado capturas, esta

especie ha sido identificada en todas las estaciones de muestreo.

0,0

5,0

10,0

15,0

20,0

25,0

30,0

35,0

40,0

0

5

10

15

20

25

nº

de

ejem

pla

res

Culex pipiens


Tª Maximas ºC

Tª Minimas ºC

Tem

per

atu

ra �

C

Figura 29. Evolución de las capturas durante el tiempo de muestreo en la base aérea de Torrejón de

Ardoz.

En la primera visita a la base aérea no se realizaron capturas. Las máximas densidades

se alcanzan en el mes de julio, y se observan varios picos de actividad de Cx. pipiens a lo

largo del periodo de trabajo, con oscilaciones debidas probablemente a las diferencias de

temperatura y a la disponibilidad de recursos hídricos donde poder criar. Las capturas

disminuyen y de nuevo se observa un pequeño pico de capturas de Cx. pipiens así como la

aparición en las trampas de la otra especie asociada, Cs. longiareolata. Todo ello ocurre

aproximadamente dos semanas después de las tormentas acontecidas a finales del mes de

agosto.

No se han contabilizados huevos de culícido en ninguna de las 28 tablillas recogidas

correspondientes a las cuatro ovitrampas colocadas en las inmediaciones de la base aérea

de Torrejón (entrada, campo de golf, SATA y SATA BB).

En los muestreos realizados en las de la base aérea de Torrejón de Ardoz, destaca

también las capturas de 29 ejemplares pertenecientes a la subfamilia Phlebotominae que

incluye una especie de interés vectorial, concretamente ejemplares de la especie

Ph. perniciosus, ésta última, la más abundante, está ampliamente distribuida por España y

se han capturado en los puntos cercanos a los hangares y arroyo de la SATA. También se

identificaron algunos ejemplares de Sergentomyia minuta, que carece de interés sanitario.

Se capturaron menos machos que hembras, quizás sea debido a que éstos tienen una tasa

de supervivencia menor en el tiempo o que los lugares de cría estén más alejados de los

puntos de muestreo.



Tabla 10. Especies de flebotomos capturadas en la Base aérea de Torrejón de Ardoz.

ESPECIE TOTALES

Phlebotomus perniciosus 21

Sergentomyia minuta 8

Total 29

0

2

4

6

8

10

12

14

16

18

20

Phlebotomus perniciosus Sergentomyia minuta

♂

♀

Figura 30. Proporción de machos y hembras flebotomos capturados en la base aérea de Torrejón de

Ardoz.

0

2

4

6

8

10

12

14

Campo de golf

SATA SATABB Entrada Hangar SATA

Sergentomyia minuta

Phlebotomus perniciosus

Figura 31. Variación por estación de las capturas de flebotomos en la Base aérea de Torrejón de Ardoz.



0

5

10

15

20

25

30

35

40

0

2

4

6

8

10

12

nº

de

eje

mp

lare

s


Sergentomyia minuta

Tª Máximas ºC

Tª Minimas ºC

Tem

per

atu

ra �

C

Figura 32. Evolución de las capturas de flebotomos capturados en la Base aérea de Torrejón.

Las capturas a lo largo del periodo de muestreo han sido irregulares, con un pico de

Ph perniciosus a finales de julio y desaparición hasta obtener de nuevo capturas puntuales

en septiembre.

No se han registrado apenas precipitaciones durante el periodo de estudio, y si las ha

habido han sido de carácter tormentoso (sobre todo en junio y julio), hecho que siempre

tiene gran impacto ambiental.

Base aérea de Zaragoza

La Base Aérea de Zaragoza está situada al suroeste de la ciudad, en el término municipal

de Garrapinillos, a unos 15 Km de la capital aragonesa. Se trata de un aeródromo de

utilización cívico-militar que tiene una superficie de 23 Km² y un perímetro de 36 Km

situado en la margen derecha del Canal Imperial de Aragón. Debido a su privilegiada

situación, donde en un radio de trescientos kilómetros se agrupan más de veinte millones

de personas, es un importante centro distribuidor de mercancías, en 2012 fue el tercer

aeropuerto de la red de Aena Aeropuertos en volumen de carga tras Madrid-Barajas y

Barcelona-El Prat. Por otro lado, la histórica de la Base Aérea de Zaragoza (BAZ) no deja

lugar a duda de la importancia que desempeña como apoyo a otras bases aéreas

nacionales e internacionales. En el pasado, fue utilizada por las unidades de la aviación

nacional además de por la Fuerza Aérea de los Estados Unidos (USAF) desde 1958 hasta

1994, siendo una de las tres bases aéreas de la USAF en España durante la Guerra Fría,

junto a la de Torrejón y a la de Morón. En la actualidad sigue ocupando un lugar estratégico

para la realización de las múltiples actividades que desarrolla el Ejército del Aire Español

por lo que la vigilancia entomológica realizada en sus instalaciones puede ser muy

representativa del riesgo de introducción de especies exóticas en nuestro país.



Se colocaron tres trampas tipo mini CDC de luz (dos de luz blanca y una de luz

ultravioleta) localizadas en zonas verdes, entre la vegetación cercana a las pistas y

hangares así como en aquella que rodea las balsas artificiales, piscinas y desagües. Además

se ha colocado una trampa BG sentinel en las inmediaciones del hangar de carga y

descarga del EADA, cerca de la torre de control donde hay mucha contaminación lumínica.

Por ello se ha empleado la trampa con cebo químico para aumentar las probabilidades de

captura.

La periodicidad del muestreo fue quincenal desde el mes de junio hasta finales del mes

de octubre con un total de 9 visitas. Se colocaron 10 trampas de ovoposición, 2 en cada

punto seleccionado (dos zonas de chalets, inmediaciones del hangar del EADA, torre de

control, golf y jardines de las piscinas de la residencia de oficiales).

Tabla 11. Puntos de vigilancia en Base aérea de Zaragoza.


EADA (BG)

Desagüe UME (CDC)

Central eléctrica/ Balsas (CDC)

Perros PA* (CDC)

*PA: policía aérea

El número total de ejemplares capturados ha sido de 323 cuya composición específica

se muestra a continuación.

Tabla 12. Especies capturadas en la Base aérea de Zaragoza

ESPECIE TOTALES

Cx.pipiens 210

Cs.longiareolata 112

Oc.caspius 1

Total 323

El 65,01% de las capturas identificadas corresponden a Cx. pipiens y el 34,67% a

Cs. longiarealata, la presencia de Oc. caspius ha sido anecdótica en los muestreos de 2017. Las

dos especies más abundantes suelen aparecen de forma habitual asociadas en multitud de

lugares de cría en proporción variable.



65%

35%

0,3%

ZARAGOZA

Cx. pipiens Cs. longiareolata Oc. caspius

Figura 33. Porcentaje de mosquitos adultos capturados en la Base aérea de Zaragoza.

Ha habido capturas en las cuatro estaciones muestreada. Como se observa en la gráfica, el

94,12% de las capturas se realizaron en la zona de desagüe de la UME que es un lugar donde

hay agua de manera semi-permanente y por lo tanto suele crecer vegetación aportando así

humedad , refugio y alimento a los mosquitos en esa zona. El 64,7% de los ejemplares de

Cx. pipiens capturados fueron hembras frente al 35,7% de machos. En cambio la mayoría de los

ejemplares capturados de Cs. longiareolata (77,7%) fueron machos y el 22,3% hembras.

0

20

40

60

80

100

120

140

160

180

200

220

Perros Central eléctrica Desagüe UME Torre de control

Cx. pipiens

Cs. longiareolata

Oc. caspius

Figura 34. Variación por estación de muestreo de las capturas de culícidos en la Base aérea de Zaragoza.



0

20

40

60

80

100

120

140

160

Cx.pipiens Cs.longiareolata Oc.caspius

♂

♀

Figura 35. Proporción de machos y hembras de culícidos capturados en la Base aérea de Zaragoza.

0

5

10

15

20

25

30

35

40

0

10

20

30

40

50

60

70

80

nº

de

eje

mp

lare

s

Cx.pipiens

Cs.longiareolata

Oc.caspius

Tª Máximas

Tª Minimas

Tem

per

atu

ra �

C

Figura 36. Evolución de las capturas de culícidos a lo largo del muestreo en la Base aérea de Zaragoza.

Cabe destacar un año más la presencia en las trampas de ejemplares adultos

pertenecientes a la subfamilia Phlebotominae que incluye algunas especies de interés

vectorial. Concretamente ejemplares de las especies Phlebotomus perniciosus, Phlebotomus

papatasi y Sergentomyia minuta. A excepción de la última especie, las demás están en mayor o

menor medida implicadas en la transmisión de la leishmaniosis y podrían convertirse en un

grave problema de sanidad animal y/o salud pública.



Tabla 13. Especies de flebotomos capturadas en la Base aérea de Zaragoza.

ESPECIE TOTALES

Phlebotomus perniciosus 146

Sergentomyia minuta 58

Phlebotomus papatasi 4

Total 208

0

20

40

60

80

100

120

Phlebotomus perniciosus Sergentomyia minuta Phlebotomus papatasi

♂

♀

Figura 37. Proporción de machos y hembras de flebotomos capturados en la Base aérea de Zaragoza.

La base aérea de Zaragoza posee grandes extensiones de tierra con multitud de

madrigueras de conejo. En su interior suelen encontrarse densidades elevadas de

flebotomos pues en ellas se desarrollan sus ciclos larvarios al encontrar abundante materia

orgánica y elevada humedad relativa. En todos los puntos de muestreo salvo en la torre de

control, que se encuentra a escasos metros de las pistas, se han producido capturas de

flebotomos, siendo el 56,2% de los totales hembras. Concretamente 32,17% hembras de

Ph. perniciosus, 12, 01% S.minuta y 0, 39% Ph. papatasi.

Los recientes estudios del Instituto de Salud Carlos III han determinado que las liebres y

conejos (Lepus granatensis y Oryctolagus cuniculus) son reservorios de la leishmaniosis

(Vilas y cols., 2012) por lo que es importante tener en consideración la coincidencia en este

enclave de vectores de leishmaniosis y reservorios, hecho que podría justificar el riesgo de

transmisión de la enfermedad a animales de la zona, como son los perros de la Policía

aérea, entre otros.



0

10

20

30

40

50

60

70

80

Central eléctrica

Perros Desagüe UME

Torre de Control


Sergentomyia minuta

Phlebotomus papatasi

Figura 38. Variación por estaciones de muestreo de las capturas de flebotomos en la Base aérea de

Zaragoza.

Finalmente, tras las 9 revisiones de las trampas de ovoposición colocadas en la BAZ, se

recogieron 90 muestras tablilla, todas ellas negativas a huevos compatibles con la

morfología de ningún culícido.

Puertos

Puerto de Valencia

El Puerto de Valencia es uno de los principales puertos de tráfico comercial en el

Mediterráneo. Acoge un tráfico regular de pasajeros y mercancías con otros puertos

españoles e internacionales. Asimismo, su privilegiada situación geográfica en el centro

del arco mediterráneo occidental, en línea con el corredor marítimo este-oeste que

atraviesa el Canal de Suez y el Estrecho de Gibraltar, le posiciona como primera y última

escala de las principales compañías marítimas de línea regular entre América, la Cuenca

Mediterránea y el Lejano Oriente. Por todo ello supone un punto estratégico para la

vigilancia de la introducción de vectores por el este de la Península Ibérica.

Se ha muestreado quincenalmente desde el mes de junio hasta finales del mes de

septiembre con un total de 9 visitas. Debido a cambios en las infraestructuras del puerto se

han reubicado dos trampas. Se han colocado una trampa de cebo oloroso (BG) en el

control de acceso al recinto portuario donde se producen paradas de los vehículos antes

de acceder al puerto y otra trampa cerca del retén de la Policía portuaria, situado junto a

un parking donde se realizan los controles a los coches que parten y regresan del ferry a

Argelia.

También se ha colocado una trampa tipo CDC de luz blanca en la zona de influencia del

PIF. Se colocaron ocho trampas de ovoposición, dos en cada punto seleccionado (junto al



club náutico (cerca del control de acceso al recinto portuario), zona de influencia del PIF,

alrededores del retén de PA, zona de influencia de embarque de cruceros).

Tabla 14. Puntos de vigilancia en el puerto de Valencia.


Control de acceso PP* (BG)

Espigón Turia Norte (CDC)

Retén PP* (BG) *PP: policía portuaria

Se han capturado un total de 33 ejemplares pertenecientes a 2 especies diferentes Culex

pipiens y Aedes albopictus.

Tabla 15. Especies de culícidos capturados en puerto de Valencia.

ESPECIE TOTALES

Cx.pipiens 30

Ae.albopictus 3

Total 33

Culex pipiens ha sido la especie más abundante representando el 90,9% de las capturas

totales de este año en el puerto de Valencia. Las capturas de Ae. albopictus han sido

puntuales en los puntos del retén de la policía portuaria y en el control de acceso al recinto

portuario. Ha habido algunos cambios en las instalaciones del puerto y apenas quedan

lugares con vegetación a excepción de algunas parcelas ajardinadas con difícil acceso. Las

trampas se han colocado entre la vegetación presente en cada punto y en concreto, la

mayoría de las capturas (42,42%) se han producido en el área de influencia del PIF, que se

encuentra cercano a un parque urbano (Parque de Nazaret) con abundante vegetación.

91%

9%

PUERTO DE VALENCIA

Cx.pipiens Ae.albopictus

Figura 39. Porcentajes por especie de los culícidos capturados en el puerto de Valencia.



A pesar de las quejas por picaduras de los trabajadores del puerto, las capturas este año

han sido escasas. No obstante el 54,6% han sido hembras, probablemente éstas se

desplacen a las inmediaciones del puerto para alimentarse, atraídas por las luces desde sus

lugares de cría (zona de desembocadura del río Turia, parques urbanos, etc…) y vuelvan de

nuevo a resguardarse entre la vegetación de las zonas de influencia del puerto.

Del mismo modo que la aparición de adultos tuvo lugar de forma puntual a finales de

agosto y mediados de septiembre, una sola muestra-tablilla de las 72 recogidas, presentó

huevos de Ae.albopictus correspondiente al periodo del 29 de septiembre al 13 de

octubre, ubicada en la zona de acceso al recinto portuario, junto al club náutico.

Puerto de Palma de Mallorca

El puerto de Palma de Mallorca es el más grande e importante de las islas Baleares,

cubriendo la línea de costa entre el muelle viejo y el dique del oeste de la Bahía de Palma.

Se trata de uno de los más importantes de todo el Mediterráneo en relación al tráfico de

mercancías, navegación deportiva, pesca y tráfico de cruceros.

Las zonas de muestreo fueron seleccionadas por presentar una elevada actividad tanto

de movimiento de coches y pasajeros como de mercancías. Se colocaron trampas en los

muelles comerciales y en dos zonas del dique de oeste. Se trabajó de forma quincenal y se

realizaron 10 visitas. Los muestreos de adultos realizados mediante trampas BG se

complementaron con muestreos mediante trampas de luz. Se colocaron un total de 15

trampas, 5 por punto de muestreo seleccionado (Dique-R. St Carlos, Plataforma adosada y

Muelle comercial).

Tabla 16. Puntos de vigilancia en el puerto de Palma de Mallorca.


Muelles comerciales (CDC-BG)

Ribera en San Carlos (CDC-BG)

Plataforma adosada al dique del oeste (CDC-BG)

Se han capturado un total de 73 ejemplares pertenecientes a tres especies diferentes Culex

pipiens, Aedes albopictus y Culiseta longiareolata como se detalla a continuación:

Tabla 17. Especies de culícidos capturados en puerto de Palma de Mallorca.

ESPECIE TOTALES

Culex pipiens 18

Aedes albopictus 54


Total 73



Llama la atención que Ae.albopictus, un año más, es la especie más abundante con un

73,97% de las capturas, confirmando así el establecimiento de la especie y resultando un

habitual de la culicidofauna de la isla de Mallorca. Hay que destacar que los 54 ejemplares

de mosquito tigre capturados, lo han sido mediante la utilización de trampa BG. Este hecho

refuerza la metodología descrita en los manuales del ECDC sobre vigilancia entomológica

de especies invasoras.

25%

74%

1%

PUERTO PALMA DE MALLORCA

Culex pipiens Aedes albopictus Culiseta longiareolata

Figura 40. Porcentajes de las especies de culícidos capturadas en el puerto de Palma de Mallorca.

0

5

10

15

20

25

30

35

Ae. albopictus Cx. pipiens Cs. longiareolata

♂

♀

Figura 41. Proporción de machos y hembras de culícidos capturados en el puerto de Palma de Mallorca.

Durante los muestreos realizados entre agosto y noviembre en la Ribera de San Carlos,

se capturaron un porcentaje de machos y hembras sin grandes diferencias, con un 45,2% y

54,8% respectivamente. Ae. albopictus presentó actividad desde el primer muestreo hasta

el último en noviembre, con varios picos de densidad. Cx. pipiens osciló desde el principio

de muestreo, presentando un aumento de densidad poblacional en octubre noviembre.



0

5

10

15

20

25

30

35

0

2

4

6

8

10

12

14

16

nº

de

eje

mp

lare

s

Ae. albopictus

Cx. pipiens

Cs. longiareolata

Tª Máximas ºC

Tª Minimas ºC

Tem

per

atu

ra �

C

Figura 42. Variación por fechas de las capturas de culícidos en el puerto de Palma de Mallorca.

Mediante las revisiones realizadas a través de la red de ovitrampas ubicadas en las

instalaciones portuarias desde el 16 de agosto, se obtuvieron un total de 176 muestras

tablilla, de las cuales el 24,43% fueron muestras positivas a huevos de Ae.albopictus con un

recuento total de 827 huevos. El valor promedio máximo de huevos/trampa/día se obtuvo

durante el muestreo realizado entre el 30 de agosto y el 6 de septiembre (239 huevos).

Figura 43. Promedio de huevos obtenido en las ovitrampas en el Puerto de Palma de Mallorca.

Se recogieron larvas en las trampas, correspondientes en un 16,7 % a Ae. albopictus en

su mayoría y un 1,1% de larvas de Culex spp.

Puerto de Barcelona

El Puerto de Barcelona está situado en el noreste de la ciudad de Barcelona, encajado

entre la nueva desembocadura del río Llobregat y el barrio de la Barceloneta. Con más de

800 ha de superficie, es el mayor puerto del Mediterráneo en tráfico de cruceros y

mercancías. Se trabajó de forma quincenal desde el mes de mayo hasta noviembre,

realizando así 12 visitas.



Tabla 18. Puntos de vigilancia en el puerto de Barcelona.


Puerto Comercial (EVS)

Se han capturado un total de 240 ejemplares pertenecientes a cuatro especies

diferentes Culex pipiens, Ochlerotatus caspius, Aedes albopictus, y Culiseta longiareolata

como se detalla a continuación, siendo la gran mayoría (97,5%) hembras.

Tabla 19. Especies de culícidos capturados en el puerto de Barcelona.

ESPECIE TOTALES

Aedes albopictus 10


Culex pipiens 171


Total 240

El 71,25% de las capturas pertenecen a la especie Cx. pipiens, seguido de Oc. caspius

con un 23,75% y un 4.17% de Ae. albopictus.

4%

24%

71%

1%

PUERTO DE BARCELONA

Aedes albopictus Ochlerotatus caspius Culex pipiens Culiseta longiareolata

Figura 44. Porcentaje de especies de mosquitos adultos capturados en el puerto de Barcelona.



0

5

10

15

20

25

30

35

0

5

10

15

20

25

30

35

40

45

50

nº

de

eje

mp

lare

s

Aedes albopictus

Ochlerotatus caspius

Culex pipiens


Tª Maximas ºC

Tª Minimas ºC

Tem

per

atu

ra �

C

Figura 45. Variación de las capturas de culícidos en el puerto de Barcelona a lo largo del periodo del

estudio.

De nuevo Cx. pipiens es la especie más frecuente y presente a lo largo de todo el

periodo en que se ha trabajado, asociada particularmente a las variaciones de

temperatura, sobre todo de las mínimas y a las precipitaciones de junio y septiembre,

octubre (Figura 22). El resto de especies han sido detectadas de forma puntual y sin

apenas continuidad, muy asociadas a las precipitaciones y los tratamientos realizados por

los servicios encargados del control de mosquitos en la zona.



Objetivo 2

Antecedentes

El segundo objetivo engloba asimismo el seguimiento de zonas potenciales de

expansión de las poblaciones de Aedes albopictus, comúnmente conocido como mosquito

tigre asiático. Esta especie invasora se reportó por vez primera en España en 2004 y se

encuentra en plena expansión por la geografía española, gracias a unas características

bióticas que le permiten vivir estrechamente ligado a zonas urbanas residenciales.

(Alarcón-Elbal y cols., 2014)

Nuestra actuación se ha centrado en el seguimiento de la expansión de mosquito tigre

en Andalucía, País Vasco, Baleares y Aragón; se ha hecho hincapié en las nuevas zonas de

expansión, en aquellos lugares donde todavía no se llevan a cabo tareas concretas de

control contra el Ae. albopictus. Además, se ha trabajado de manera continuada durante

todo el año en algunos puntos de la Comunidad Valenciana, Andalucía y Murcia donde ya

se conoce que el mosquito tigre está asentado, con el fin de seguir obteniendo datos de

distribución para conocer mejor la dinámica anual de su actividad (cuando empieza y

cuando aparecen los picos de abundancia).

Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse, 1984) (Diptera; Culicidae) llamado comúnmente

mosquito tigre es considerado una de las especies exóticas de mayor potencial invasor y

además posee una gran capacidad de transmisión de virus como el Dengue, el

Chikungunya, la Fiebre amarilla (La Ruche y cols., 2010; Amraoui y cols., 2016; Calba y cols.,

2017) y más recientemente el virus Zika (PAHO/WHO, 2016). También actúa como vector

de nematodos causantes de filariasis como Dirofilaria immitis (Cancrini y cols., 2003). Se

trata de una especie originaria de zonas tropicales, subtropicales y templadas del sudeste

asiático. Actualmente se puede encontrar en los cinco continentes gracias a su elevada

adaptabilidad y el incremento del transporte de mercancías por todo el Mundo

(ECDC, 2012).

Se trata de una especie con un ciclo holometábolo. La puesta de los huevos se realiza en

pequeños acúmulos de agua. Una vez que los huevos eclosionan, las larvas pasan por

cuatro estadios (L1-L4) con una intermuda entre cada uno de ellos. Durante la última

muda, el mosquito pasa a fase de pupa donde se produce la metamorfosis del insecto

hasta que el adulto o imago emerge. La duración del ciclo es variable en función de las

condiciones ambientales (Alarcón-Elbal, y cols., 2010).

Aedes albopictus, fue detectado por primera vez en Europa en 1979 concretamente en

Albania (Adhami y Reiter, 1998). A partir de ese momento se han ido sumando los países a

la lista de afectados por la presencia de la especie y son ya 28 si incluimos a Portugal como

último país afectado por la invasión de este vector (Marabuto y Rebelo, 2017).



En España, fue identificada por primera vez en 2004, concretamente en el municipio

barcelonés de San Cugat del Vallés (Aranda y cols., 2006) y fuera de la provincia de

Barcelona en Altafulla (Tarragona) en el año 2005. Desde entonces los Servicios de Control

de Mosquitos se han visto obligados a poner en marcha sistemas de vigilancia y control de

esta especie para evitar en lo posible su mayor dispersión. A pesar de todo ello, en 2006 se

detectó un nuevo foco, esta vez fuera de los límites de la Comunidad Autónoma de

Cataluña, concretamente en Orihuela, municipio de Alicante. En 2008 se puso en marcha

un Programa de Vigilancia del mosquito tigre financiado por el Ministerio de Sanidad,

Servicios Sociales e Igualdad (en aquel entonces denominado Ministerio de Sanidad y

Consumo, Política Social e Integración) que permitió no solo confirmar la presencia

consolidada de esta especie en el municipio de Orihuela sino además constatar su

dispersión siendo posteriormente detectado en 2009 en la próxima localidad de Torrevieja

(municipio colindante al anteriormente citado) (Delacour-Estrella y cols., 2009 y Bueno-

Marí y cols., 2010) y en 2010 en Benicàssim (municipio de Castellón) (Delacour-Estrella y

cols., 2010). Posteriormente en Murcia (Collantes y Delgado, 2011), Mallorca (2012)

(Miquel y cols., 2013), Valencia (2013) (Alarcon-Elbal y cols., 2013), en Andalucía

(Delacour-Estrella y cols., 2014), País Vasco (2015) (Delacour-Estrella y cols., 2015) y muy

recientemente Aragón (Delacour y cols., 2016).

La vigilancia se está llevando a cabo desde el año 2011 mediante trampas de

ovoposición. Esta estrategia permite obtener información más detallada de la magnitud

del problema que supone tener una especie invasora con gran capacidad colonizadora

como es el caso de este díptero, de gran importancia epidemiológica debido a su conocido

papel como vector de numerosas arbovirosis. No obstante, la gran capacidad de

adaptación a diferentes factores climáticos y ecológicos con la que se caracteriza esta

especie y su desplazamiento a través de vehículos ha facilitado que durante los últimos

años haya aumentado el número de municipios colonizados a lo largo de la geografía

española (Collantes y cols., 2016). En 2017 se ha trabajado en 122 municipios, siendo

14 de ellos nuevos positivos a la presencia de huevos de mosquito tigre.

Se han colocado trampas de ovoposición repartidas en 20 provincias de 7 comunidades

autónomas y la ciudad autónoma de Ceuta, haciendo especial hincapié en los municipios

del sur y del norte de la Península con fuertes probabilidades de albergar poblaciones en

expansión de mosquito tigre. Se ha trabajado en Madrid, País Vasco (Vizcaya, Álava y

Guipúzcoa), Aragón (Teruel, Zaragoza y Huesca), Comunidad Valenciana (Castellón,

Valencia y Alicante), Islas Baleares (isla de Mallorca), Región de Murcia y Andalucía

(Almería, Granada, Málaga, Jaén, Cádiz, Sevilla y Huelva). En 2017, se ha iniciado la

vigilancia mediante ovitrampas en el puerto de Ceuta.

Es de interés mencionar que en las CCAA de Navarra, La Rioja, Madrid y Castilla-La

Mancha, también se están realizando tereas de vigilancia entomológica para la detección

de Ae. albopictus pero los resultados quedarán reflejados en sus respectivos informes

de 2017.



Metodología

Trabajo de campo

Para el muestreo de Ae. albopictus, como se ha explicado en años anteriores se han

empleado trampas de ovoposición. En algunas de las estaciones de muestreo se han

empleado recipientes con mayor volumen para evitar que en época estival se evapore el

agua disminuyendo así la eficiencia de la trampa en zonas donde las temperaturas son más

extremas.

Cada una de las trampas es localizada mediante GPS, anotando las coordenadas

geográficas. Las trampas de ovoposición se dejan fijas durante todo el periodo de

muestreo que será variable en función de las posibilidades del muestreo. Cada una de las

estaciones (punto de muestreo) se revisa con periodicidad quincenal. En cada punto de

muestreo se dispusieron dos trampas de ovoposición que actúan de pseudorréplicas del

punto. Siempre dependiendo de las características del propio lugar. Tras cada visita se

sustituyen las tablillas de madera (muestras) de cada trampa por una nueva, guardándose

la anterior en una bolsa de plástico para su posterior análisis en el laboratorio.

Procesado de muestras en el laboratorio

Una vez en el laboratorio, cada tablilla de madera es examinada bajo la lupa binocular a

10/20 aumentos en busca de huevos, revisando la totalidad de la pieza (anterior y

posteriormente) e incluyendo los bordes, para localizar la presencia de huevos.

Todas aquellas positivas se guardaron a temperatura ambiente (± 20°C) y se dejaron

secar aproximadamente 7 días. A fin de confirmar la identificación se procedió a una cría

controlada en laboratorio, para ello se sumergieron las tablillas en bandejas de plástico con

agua declorada y se esperó unos días hasta la eclosión de las primeras larvas. Antes de que

llegaran a estadio de pupa se sacrificaron y se fijaron en alcohol de 70° para

posteriormente ser montadas con líquido de Hoyer e identificadas al microscopio.

Se tomaron todas las precauciones en el manejo de las muestras por tratarse de un

vector invasor citado en el Real Decreto 630/2013 que regula el Catálogo español de

especies exóticas invasoras del Ministerio de Agricultura, Alimentación y Medio Ambiente.

Una vez finalizado el estudio, todas las tablillas (positivas o no) y materiales empleados

(pipetas, bandejas, etc…) fueron esterilizados con agua hirviendo (>100°C) durante unos

minutos para neutralizar los huevos que pudieran quedar adheridos.

Los factores que se tuvieron en cuenta a la hora de organizar el muestreo fueron, por

un lado, los hábitos biológicos de las hembras para la elección de los lugares de colocación

de las trampas, a ser posible en zonas con abundante vegetación y sombra gran parte del

día, y por otro, el hecho de que este insecto se introduce de forma activa (adulto) o pasiva

(en formas preimaginales en el interior de mercancías) en vehículos, puede ser

transportado kilómetros desde su punto de origen, lo cual facilita y acelera su dispersión,



ya que por sí mismo, solo tiene una capacidad de vuelo de cientos de metros. De hecho,

las últimas detecciones dan a entender que el mosquito da saltos de dispersión de forma

imprevisible debido a que se introduce en los coches (Eritja y cols., 2017). Por ello se

eligieron principalmente carreteras que comunicasen municipios que ya se habían

catalogado como positivos a la presencia de mosquito tigre con municipios en los que no

se tenía información acerca de la presencia o ausencia de la especie. Para la colocación de

trampas, se hizo hincapié en las áreas de servicio (lugares donde las gente para sus

vehículos pudiendo transportar algún ejemplar adulto de Ae. albopictus), viveros,

urbanizaciones con amplias zonas ajardinadas, residenciales, rotondas urbanas, colegios,

campings y cementerios (conocidos por ser lugares de preferencia para la cría).

Zonas de estudio

La vigilancia tuvo lugar de forma quincenal, entre los meses de julio, agosto y

septiembre hasta noviembre en País Vasco. En los aeropuertos de Madrid desde junio a

octubre. En Alicante, Murcia y Andalucía en el periodo comprendido entre agosto y

octubre. En Mallorca, se trabajó desde el mes de mayo hasta noviembre. Y en Aragón se

dio comienzo el muestreo en junio hasta octubre. En algunos municipios de las provincias

de Castellón, Murcia y Málaga se está realizando un seguimiento anual, recogiendo

semanal o quincenalmente las tablillas con el fin de conocer la dinámica estacional de

Ae. albopictus.

Figura 46. Municipios en los que se ha realizado vigilancia de Ae. albopictus en 2017.

Comunidad Valenciana

Debido a la situación geográfica que sitúa a esta Comunidad limítrofe con Tarragona, la

vigilancia en años anteriores en esa zona permitió confirmar que el mosquito había



colonizado la vertiente mediterránea en dirección al sur y suroeste de la Comunidad. Se

está realizando el seguimiento durante varios años en el primer municipio afectado de la

provincia de Castellón: Benicasim. Nueve trampas de ovoposición llevan colocadas desde

finales de 2015 en el municipio, donde a pesar de los tratamientos, sigue habiendo

grandes densidades poblacionales de Ae. albopictus. De esta manera se dispondrá de

información acerca del inicio de su periodo de actividad así como los picos de máxima

abundancia de huevos. En Alicante, se han colocado trampas de seguimiento en Los

Montesinos y en Valencia en el puerto.

Región de Murcia

En 2011 se registró por primera vez el mosquito tigre en la Región de Murcia, en la

ciudad de Murcia en la Era Alta. En 2016, se detectaron siete nuevos municipios y en 2017

se ha trabajado en un total de cinco municipios, no se ha continuado trabajando en todos

aquellos en los que se había detectado poblaciones de mosquito tigre durante los últimos

años de muestreo. No obstante, se han mantenido Águilas, Cartagena, Mazarrón, Molina

de Segura y Murcia como referencia de la actividad del mosquito en esa Región. La

intensidad del muestreo (números de trampas y puntos) ha variado según las posibilidades

de cada enclave.

Figura 47. Municipios muestreados en 2017 en Comunidad Valenciana y Murcia.

Islas Baleares

Las Islas Baleares presentan un clima idóneo para el establecimiento del mosquito tigre.

Su ubicación y la gran afluencia turística desde diversas zonas del Mediterráneo, como

Francia, Italia o la misma España peninsular hacen de este archipiélago un lugar de gran

relevancia para la vigilancia. Fue detectado por primera vez en 2012 en la isla de Mallorca,



en 2014 en Ibiza y en 2015 en Menorca. Todos los años se confirma la presencia de

mosquito tigre tanto el puerto como en el aeropuerto de Palma de Mallorca.

En 2016 se detectó mosquito tigre en ocho nuevos municipios respecto a 2015. En 2017

se han colocado trampas en 22 municipios incluyendo Palma de Mallorca , Algaida,

Banyalbufar, Binissalem , Bunyola, Campos, Capdepera, Colonia de Sant Jordi, Deià,

Esporles, Estellencs, Inca, Llucmajor , Lloseta, Marratxí, Puigpunyent, Santa Eugènia, Santa

María del Camí, Sant Llorenç de Cardassar, Sóller, Son Servera y Valldemossa.

Figura 48. Municipios muestreados en 2017 en Mallorca.

Andalucía

En 2016 se detectaron cinco nuevos municipios con presencia de mosquito tigre, este

año se ha tratado de confirmar su establecimiento en algunos de ellos y se ha ampliado la

vigilancia a nuevos con riesgo de introducción.

En 2017 se ha trabajado siguiendo la metodología de años anteriores en los que se

elegían los lugares de muestreo en función de la localización de los municipios con

respecto a las vías de comunicación y siempre teniendo en cuenta la conexión con

municipios con presencia confirmada de mosquito tigre.

Se han colocado trampas siguiendo carreteras principales como la autopista A7 y

algunas carreteras secundarias principalmente de costa. Por motivos presupuestarios no

se han vuelto estudiar aquellos municipios que ya habían sido positivos durante varios

años. Sólo se han repetido los municipios con un positivo en años anteriores.

Se trabajó por tanto en los siguientes municipios:

Provincia de Almería

Se han colocado trampas en Adra, Almería, Berja, Carboneras, El Ejido, La Mojonera,

Níjar, Roquetas de Mar, Vera y Vícar.



Provincia de Granada

Se ha continuado trabajando en Albuñol, Motril, Polopos, Rubite y Salobreña.

Provincia de Málaga

Se han colocado trampas en Alhaurín de la Torre, Benalmádena, El Algarrobo, Casares,

Fuengirola, Manilva, Torremolinos, Torrox y Vélez-Málaga.

Provincia de Jaén

Como punto inicial en la provincia y teniendo en cuenta un aviso mediante una

fotografía en el proyecto de ciencia ciudadana Mosquito Alert, se consideró importante

colocar trampas en la ciudad de Jaén.

Provincia de Cádiz

Los municipios donde se han colocado trampas han sido: Barbate, Los Barrios, Cádiz,

Chiclana de la Frontera, Chipiona, Conil de la Frontera, Jerez de la Frontera, La Línea de la

Concepción, Puerto de Santa María, Puerto Real, Rota, San Fernando, San Roque, Sanlúcar

de Barrameda, Tarifa, Trebujena y Vejer de la Frontera.

Provincia de Sevilla

Se ha trabajado en Bollullos de la Mitación, Bormujos, Cabezas de San Juan, Lebrija, Dos

Hermanas, Los Palacios y Villafranca, Sevilla, Tomares y Umbrete.

Provincia de Huelva

En Huelva, ante la sospecha de su presencia se ha trabajado en nuevos municipios con

respecto a 2015 y se han colocado trampas en Chucena, Almonte, Huelva, Palos La Rabida

y Punta Umbría.

Figura 49. Municipios muestreados en 2017 en Andalucía.

País Vasco

Desde su detección en 2014, se ha podido confirmar el establecimiento de una

población de mosquito tigre en el municipio de Irún (Guipúzcoa) puesto que se ha

registrado durante años sucesivos la presencia de trampas positivas en distintos puntos del

municipio. En 2015 y 2016, se identificaron huevos con morfología compatible con



Ae. albopictus en repetidas ocasiones, en el entorno del parking del polideportivo Artaleku

de Irún (2015), en una gasolinera de Behobia (Zaisa III) (2015 y 2016) y en el centro

comercial de Behobia, Irún (2014 y 2016). De nuevo este año se ha trabajado

conjuntamente con la Dirección de Salud Pública del Gobierno Vasco, el Departamento de

Sanidad Animal de NEIKER, el área de Salud y Consumo del Ayuntamiento de Bilbao y el

Área de Salud y Consumo del Ayuntamiento de Donostia lo que ha permitido ampliar la

zona de muestreo en el País Vasco, seleccionando un total de 13 municipios de las 3

provincias. El objetivo ha sido comprobar si esta especie de mosquito estaba implantada y

extendiéndose por la Comunidad.

La semana del 17 de julio de 2017 se comenzó en los puntos de Guipúzcoa. En el resto de

Guipúzcoa se comenzó la semana del 7 de agosto. En Vizcaya empezaron la semana del 28 de

agosto, y, en Álava, la semana del 8 de septiembre.

Se trabajó por tanto en los siguientes municipios:

Provincia de Guipúzcoa

Se ha trabajado en concreto en 4 localidades: Donostia-San Sebastián, Hondarribia, Irún

y Usurbil.

Provincia de Vizcaya

En Arrigorriaga, Barakaldo, Basauri, Bilbao y Ugao-Miraballes

Provincia de Álava

En Altube, Vitoria-Gasteiz, Laguardia y Okiturri.

Figura 50. Municipios muestreados en 2017 en el País Vasco.

Aragón

Tras confirmarse en 2015 la presencia de mosquito tigre en la ciudad de Huesca y ante

la posibilidad de la existencia de otros municipios con presencia del vector, la Dirección



general de Salud Pública del Gobierno de Aragón inició un programa de vigilancia activa de

mosquitos del género Aedes en la Comunidad Autónoma.

En 2017 se ha continuado con el trabajo de vigilancia entomológica iniciado en 2016, en

el transcurso del cual se pudo comprobar que existían poblaciones de mosquito tigre en

nueve municipios aragoneses. Este año, se ha trabajado en 24 municipios de las tres

provincias, siete nuevos respecto al año anterior. Los puntos fueron seleccionados

teniendo en cuenta posibles vías de colonización, tanto por medios naturales (el vuelo de

los insectos permite la dispersión progresiva desde puntos positivos) como debido a la

acción humana a través de intercambio turístico o comercial con zonas donde ya ha sido

confirmada la presencia del vector.

Así pues en 2017 se trabajó en:

Provincia de Teruel

Albarracín, Alcañiz, Beceite, Calaceite y Mora de Rubielos.

Provincia de Zaragoza

Alfajarín, El Burgo de Ebro, Calatayud, Caspe, Cuarte de Huerva, La Joyosa, Mequinenza,

Nuévalos (Monasterio de Piedra), Nuez de Ebro, Pinseque, Utebo y Zaragoza.

Provincia de Huesca

Alquézar, Barbastro, Binaced, Fraga, Huesca, Jaca y Monzón.

Figura 51. Municipios muestreados en 2017 en Aragón.

Madrid

Los resultados que aparecerán en los mapas de seguimiento de mosquito tigre en

Madrid corresponderán a los resultados de las tablillas colocadas en los aeropuertos de

Madrid-Barajas y Torrejón. No obstante, la Comunidad de Madrid, desde 2016 ha realizado

la vigilancia de mosquito tigre en varios puntos y en 2017, se ha citado por primera vez su



presencia en uno de ellos, localizado en el área de influencia del principal eje que

comunica Madrid con el Levante. Los datos de la vigilancia aparecerán en el informe de

2017 elaborado por la Consejería de Sanidad de Madrid así como en Melero-Alcíbar y cols.,

2017.

Ceuta

El área de Salud Pública de la Consejería de Sanidad Servicios Sociales, Menores e

Igualdad de la Ciudad Autónoma de Ceuta ha iniciado este año por primera vez la vigilancia

en el puerto de Ceuta. Se han colocado 32 trampas de ovoposición repartidas por las zonas

de interés del recinto. Se repartieron cerca de la frontera, estación marítima, zonas de

embarque, parques, muelles y vivero municipal.

Melilla

Este año se han realizado capturas en tres enclaves de la ciudad de Melilla que tenían

problemas de picaduras. Los muestreos, puntuales, se han llevado a cabo desde Junio

hasta Octubre. Se han empleado trampas CDC de luz blanca.

Resultados

Para la vigilancia de potenciales zonas de expansión de Aedes albopictus (mosquito

tigre) en 2017 se ha ampliado la red de ovitrampas con respecto a 2016. Se ha trabajado

en siete comunidades autónomas con número variable de trampas en cada uno de ellos

(en función de las particularidades de cada lugar) repartidas en 122 municipios.



Figura 52. Municipios muestreados en la península para la detección de Ae. albopictus en 2017. En rojo los municipios positivos, en verde los negativos.

Comunidad Valenciana

En la Comunidad Valenciana se ha confirmado la presencia en Alicante en Los

Montesinos, además se ha sabido por parte de la empresa encargada de los muestreos

que los municipios Ibi, Crevillente y Elche también son positivos. En el puerto de Valencia

solo se han capturado algunos adultos en las trampas BG y se detectaron huevos en una

trampa de ovoposición. En Benicasim, se ha realizado un seguimiento durante todo el año.

Con el contaje de forma continuada de huevos, se podrá conocer en qué momento

aparece la actividad de la especie y dará una estimación de la abundancia de ésta. No

obstante, hay que decir que hay que emplear esta información con cierta cautela ya que

solo con el número de huevos no se puede hacer una valoración definitiva de la densidad

de la población de mosquito tigre debido a que en ocasiones no se puede estimar la

cantidad real de lugares de cría que puede encontrar la especie en el hábitat natural y que

por tanto entrar en competencia directa con las trampas de ovoposición.

Figura 53. Mapa de la distribución en la Comunidad Valenciana y Murcia de trampas positivas (puntos

rojos) y negativas (verdes).Los municipios en color rojo son considerados positivos y los de color verde negativos.



-10

10

30

50

70

90

110

0

50

100

150

200

250

300

350

huev

os/

tram

pa

PERIODO DEL AÑO

Promedio 2017

Promedio 2016

% positivos 2017

% positivos 2016

% d

e ta

blil

las

po

siti

vas

Figura 54. Evolución del promedio de huevos/trampa contabilizados en el seguimiento llevado a cabo

durante el periodo 2016-2017 en el municipio de Benicasim.

En 2016 la actividad se registró en el mes de abril y se negativizó a mediados del mes de

noviembre aunque ya se observó un descenso considerable en el número de huevos por

tablilla hacia mediados de octubre. Se observó un primer pico de abundancia de huevos a

principios del mes de junio con el 80% de muestras positivas (las nueve tablillas repartidas

por el municipio), que disminuye paulatinamente en los meses de mayor calor y vuelve a

alcanzar los máximos en el mes de septiembre con casi 300 huevos de media por tablilla.

En 2017, la actividad se registró en el mes de mayo, quizás porque las bajas

temperaturas se mantuvieron un poco más. De nuevo se observa el primer pico de

abundancia en junio alcanzando los máximos del año en los meses de julio y agosto para ir

disminuyendo hasta el siguiente pico registrado en septiembre, la abundancia de huevos

por trampas disminuye a partir de octubre. Conocer el comportamiento de la especie a lo

largo de los años aporta gran información que podría resultar muy útil para el diseño de

planes de vigilancia y control de estos mosquitos.

Los cambios observados en la actividad y dinámica poblacional del mosquito tigre en

estos municipios demuestra que su biología está muy condicionada por las características

ambientales (temperatura, pluviometría, fotoperiodo, vegetación, masas de agua, etc…)

intrínseco a cada municipio concreto. Algunos autores han estudiado el hecho de que las

hembras durante el verano tienden a dispersar los huevos por distintos lugares y

recipientes, mientras que suelen acumularlos en pocos lugares al iniciarse el otoño. Eso

explicaría parte de las variaciones observadas en las dinámicas de mosquito tigre (Fonseca

y cols., 2015).

Región de Murcia



En 2017, como se muestra en la Figura 51, todos los municipios muestreados han sido

positivos. Se confirma por tercer año consecutivo que las poblaciones de mosquito tigre

están bien establecidas en Murcia a pesar de las condiciones climáticas a priori adversas.

Tabla 20. Municipios muestreados en la Comunidad Valenciana y Murcia en 2017.

Provinc ia Munic ipio 2017

Castellón Benicasim POS

Valencia Valencia POS

Montesinos POS

Ibi POS

Elche POS

Crevillente POS

Águilas POS

Cartagena POS

Mazarrón POS

Molina de Segura POS

Murcia POS

Murcia

Alicante

Islas Baleares

En 2017, además de las trampas 15 trampas colocadas en el aeropuerto y las 15 en el

puerto, se ha trabajado en 22 municipios de Mallorca. Todos ellos han sido positivos,

siendo Sant Llorenç positivo por primera vez. Se confirma por lo tanto el establecimiento y

la dispersión de la especie en la isla con un elevado porcentaje de muestras positivas. La

especie parece mostrar varios picos de abundancia a lo largo de los años, un primer gran

en agosto para llegar a los máximos en septiembre y el último en el mes de octubre.

Figura 55. Municipios muestreados en Mallorca. Trampas positivas (puntos rojos) y negativas (verdes).Las

localidades en color rojo son considerados positivas.Datos de Consultoría Moscard Tigre.



0

1000

2000

3000

4000

5000

6000

7000

8000

9000

10000

Nº

hu

ev

os

acu

mu

lad

os

MALLORCA

2014

2015

2016

2017

Figura 56. Evolución del número de huevos acumulados en las trampas a lo largo del periodo 2014-2017

en la isla de Mallorca.

Tabla 21. Resultados de los municipios muestreados en Mallorca en 2017. Amarillo: Primer registro en 2017. Rojo: Confirmación de establecimiento.

Provincia Municipio 2017

Algaida POS

Banyalbufar POS

Binissalem POS

Bunyola POS

Campos POS

Capdepera POS

Deià POS

Esporles POS

Estellencs POS

Inca POS

Llucmajor POS

Lloseta POS

Marratxi POS

Puigpunyent POS

Santa Eugènia POS

Colonia de Sant Jordi POS

Sant Llorenç de Cardassar POS

Santa Maria POS

Sòller POS

Son Servera POS

Valldemossa POS

Mallorca

Andalucía

Se ha trabajado más intensamente en Andalucía debido a que es la zona donde

Ae. albopictus está en pleno proceso de expansión. Los puntos con mayor porcentaje de



muestras positivas (100%) se situaron en Carboneras (Almería), Albuñol (Granada), Vélez-

Málaga (Málaga) y Fuengirola (Málaga).

Figura 57. Municipios muestreados en Andalucía. Trampas positivas (puntos rojos) y negativas

(verdes).Las localidades en color rojo son considerados positivas, las de color verde negativas en 2017.

Figura 58. Porcentaje de muestras positivas por punto de muestreo en Andalucía.

Tabla 22. Municipios positivos 2014-2017. Amarillo: Primer registro en 2017. Rojo: Confirmación de establecimiento.



Provincia Municipio 2014 2015 2016 2017

Adra NEG NEG NEG NEG

Almería NEG NEG NEG NEG

Berja NEG NEG NEG NEG

Carboneras NEG NEG POS POS

El Ejido NEG NEG NEG NEG

La Mojonera NEG NEG NEG

Níjar NEG NEG NEG NEG

Roquetas de Mar NEG NEG NEG

Vera NEG NEG NEG POS

Vícar NEG NEG NEG

Albuñol NEG NEG NEG POS

Motril NEG NEG NEG POS

Polopos* POS NEG NEG POS

Rubite* NEG POS NEG

Salobreña NEG POS POS

Jaén Jaén NEG NEG

El Algarrobo POS NEG POS

Casares NEG NEG POS

Fuengirola POS POS POS

Manilva NEG POS POS

Torrox NEG NEG POS

Vélez-Málaga NEG POS POS

Almería

Granada

Málaga

*Conjunto de positivos y negativos en área de límite

Tabla 21bis. Continuación de la tabla de municipios muestreados en 2014-2017 en Andalucía. Amarillo: Primer registro en 2017. Rojo: Confirmación de establecimiento.



Provincia Municipio 2014 2015 2016 2017

Barbate NEG NEG NEG

Barrios (Los) NEG NEG

Cádiz NEG NEG NEG

Chiclana de la Frontera NEG NEG NEG

Chipiona NEG NEG NEG

Conil de la Frontera NEG NEG NEG

Jerez de la Frontera NEG NEG NEG

La Línea de la Concepción NEG NEG POS

El Puerto de Santa María NEG NEG NEG

Puerto Real NEG NEG NEG

Rota NEG NEG NEG

San Fernando NEG NEG NEG

San Roque NEG POS POS

Sanlúcar de Barrameda NEG NEG NEG

Tarifa NEG NEG NEG

Trebujena NEG NEG NEG

Vejer de la Frontera NEG

Bollullos de la Mitación NEG

Bormujos NEG NEG NEG

Las Cabezas de San Juan NEG NEG NEG

Dos Hermanas NEG NEG NEG

Lebrija NEG NEG NEG

Los Palacios y Villafranca NEG NEG NEG

Sevilla NEG NEG POS

Tomares NEG NEG NEG

Umbrete NEG

Huelva Almonte POS? NEG

Cádiz

Sevilla

De los 16 municipios positivos, lo son por primera vez en 2017 Vera (AL), Albuñol (GR),

Motril (GR), Casares (MA), Torrox (MA), La Línea de la Concepción (CA) y Sevilla (SE). Este

último, representa el primer positivo para la provincia de Sevilla.

No se han vuelto estudiar aquellos municipios que ya habían sido positivos durante

varios años. Sólo se han repetido los municipios con un positivo en años anteriores. Todos

ellos se confirman como positivos en 2017: Carboneras (AL), Polopos (GR), Salobreña (GR),

El Algarrobo (GR), Manilva (MA), Vélez-Málaga (MA) Y San Roque (CA).

En la zona de Punta de Baños (GR), en el límite municipal de Polopos y Rubite, hay dos

poblaciones, Castillo de Baños (Polopos) y Casarones (Rubite) separadas por 700 m de

invernaderos (1,1 Km por carretera) por lo que se podrían considerar la misma zona a los

efectos del estudio. En este área, se dispusieron tres puntos, dos en la localidad Castillo de

Baños (Polopos) y uno en Casarones (Rubite), formando un triángulo con una distancia

entre ellas de entre 500-900 m. Los positivos han sido irregulares desde que se estudia la

zona, pero casi constantes si se consideran como una unidad:



Figura 59. Detalle de situación de puntos positivos y negativo en límite municipios Rubite-Polopos en zona

costera.

El municipio de El Algarrobo (MA), en la localidad Algarrobo-Costa, fue positivo en 2015,

negativo en 2016 y, de nuevo, positivo en 2017. Para estos municipios, Rubite, Polopos y El

Algarrobo, se podría confirmar su presencia. Debido al escaso número de muestreos es

más posible que los positivos intermitentes se deban a baja densidad poblacional más que

a colonizaciones repetidas cada año que resultan positivos.

Como conclusión, señalar que desde el primer registro, en 2014, en Alhaurín de la

Torre, ya se contabilizan como positivos 32 municipios, pertenecientes a cinco provincias,

en la Comunidad Autónoma de Andalucía (Figura 60).

Figura 60. Resumen general de los resultados por municipios. Asentados; Confirmados en 2017;

Nuevos positivos 2017; Negativos.



0

20

40

60

80

100

120

0

50

100

150

200

250

300

hu

ev

os/

tra

mp

a

PERIODO DEL AÑO

Promedio 2016

Promedio 2017

% positivas 2016

% positivas 2017

%

Figura 61. Evolución anual del número de huevos promedio contabilizados en Benalmádena en el periodo

2016-2017.

Como se puede observar en la Figura 61, el seguimiento de puesta de huevos en el

municipio de Benalmádena muestra una serie de picos de densidad de huevos. En 2016 los

primeros positivos se observaron en mayo y las densidades oscilan al igual de los

porcentajes de tablillas positivas. Se observa que como hemos mencionado anteriormente

cuando se registra el 100% de tablillas positivas suele ser con baja cantidad de huevos lo

que concuerda con lo citado por Fonseca y cols (2015) en sus estudios. Sin embargo en

2017, la actividad empezó antes (en abril, probablemente por la eclosión de la primera

generación procedente de la diapausa invernal) y los picos de densidad coinciden con el

máximo de tablilla positivas puede que debido a la escasez de lugares donde ovipositar. El

segundo pico se registra al igual que en 2016 a finales de septiembre.

País Vasco

Tras el examen de 1747 muestras-tablilla, entre los días 16/08/2017 y 10/10/2017 se

observaron huevos de morfología compatible con Ae. albopictus en 21 de las recogidas en

4 puntos diferentes. En 2017 se ha detectado de forma muy considerable el aumento de

tablillas positivas con respecto a 2016. Tanto en el número de tablillas positivas como en

número de huevos contabilizados han sido sensiblemente mayores.

El Parking de la zona comercial de Behobia-Irún ha sido positivo en 2014, 2016 y en

2017, la gasolinera Zaisa III (Irún) ha mostrado resultados positivos en 2015, 2016 y 2017.

No obstante, el entorno del polideportivo de Irún que fue positivo en 2015, ha sido

negativo a la presencia de huevos de Aedes spp. durante los dos años posteriores, lo que

indica que el grado de dispersión no ha sido alto en las inmediaciones de Irún-Behobia.

En 2017, se han detectado, por primera vez en Vizcaya, dos puntos con presencia de

huevos con morfología compatible con Ae. albopictus, concretamente en Mercabilbao



(Basauri) y MegaPark (Barakaldo). Ambas zonas tienen una intensa actividad comercial,

con gran afluencia de tráfico y, en especial, de camiones de mercancías (Figura 62). Junto

con las tablillas se han recibido 23 contenidos de ovitrampas, sospechosos de albergar o

larvas de mosquito o mosquitos adultos. En ninguno de los casos se observaron larvas 4 o

adultos de Aedes spp.

Figura 62. Mapa de la distribución en País Vasco. Trampas positivas (puntos rojos) y negativas

(verdes).Las localidades en color rojo son considerados positivas, las de color verde negativas en 2017.

Tabla 23. Resultados de los municipios muestreados en País Vasco en 2016-2017. Amarillo: Primer registro en 2017. Rojo: Confirmación de establecimiento.

Provincia Municipio 2016 2017

La Guardia NEG

San Millán NEG NEG

Vitoria NEG NEG

Zuia NEG NEG

Donostia NEG NEG

Hondarribia NEG NEG

Irún PO S PO S

Ursubil NEG NEG

Arrigorriaga NEG NEG

Barakaldo NEG PO S

Basauri NEG NEG

Bilbao NEG PO S

Zamudio NEG NEG

Álava

Guipúzcoa

Vizcaya

Aragón

Se han obtenido un total de 2448 muestras-tablilla, correspondientes a 125 puntos. Tan

solo se perdieron un total de 54 tablillas, equivalente a un 2,21% del total, lo que implica

que los resultados obtenidos de la vigilancia son representativos.

De las tablillas totales obtenidas, 280 fueron positivas, correspondientes a 40% de los

puntos positivos. Finalmente 50 de los 125 puntos muestreados fueron positivos. Esos

puntos positivos se encuentran localizados en 18 de los 24 municipios muestreados en



2017 (Figura 24). El caso de Huesca (en verde en la tabla) es diferente al resto de

localidades, fue positiva en 2015 (primera detección de la Comunidad Autónoma), sin

embargo en 2016 no se detectaron huevos. Este año tan solo se contabilizaron huevos en

una tablilla a finales del mes de agosto por lo que es posible que la especie no esté

establecida y que se produzcan introducciones puntuales en el municipio.

Tabla 24. Municipios muestreados en Aragón 2016-2017. Amarillo: Primer registro en 2017. Rojo: Confirmación de establecimiento.

Provincia Municipio 2016 2017

Alquézar NEG

Barbastro POS POS

Binaced POS

Fraga POS POS

Huesca NEG POS

Jaca NEG NEG

Monzón POS POS

Albarracín NEG NEG

Alcañiz POS POS

Beceite POS

Calaceite POS POS

Mora de Rubielos POS

Alfajarin POS POS

Burgo de Ebro NEG NEG

Calatayud NEG POS*

Caspe POS POS

Cuarte de Huerva NEG POS*

La Joyosa POS POS

Mequinenza POS POS

Nuévalos POS

Nuez de Ebro NEG

Pinseque POS

Utebo NEG NEG

Zaragoza NEG

Huesca

Teruel

Zaragoza

*presencia de huevos compatibles con Ae. albopictus pero sin posibilidad de confirmación.

Los primeros positivos en la mayoría de municipios muestreados han sido en el mes de

agosto o septiembre, probablemente debido a que son épocas de mayor afluencia de

vehículos en el periodo estival. En los municipios de La Joyosa, Monzón y Caspe, las

muestras han sido positivas a lo largo de toda la campaña de vigilancia en 2017 (junio-

octubre) lo que podría significar que se reúnen las condiciones ambientales idóneas para

que se mantengan las poblaciones del vector y que por lo tanto esté bien establecido. El

resto de municipios ha presentado resultados más irregulares con presencia de huevos en

tablillas de forma más desordenada. Esto podría deberse a niveles muy bajos de densidad

de mosquitos tigre o la llegada continuada de nuevos ejemplares que de forma puntual

realizan la puesta en las ovitrampas.



Figura 63. Mapa de la distribución en Aragón de trampas de ovoposición. Trampas positivas (puntos

rojos) y negativas (verdes).Las localidades en color rojo son considerados positivas, las de color verde negativas en 2017.

Ceuta

En la Ciudad Autónoma de Ceuta se muestreó en 8 puntos diferentes situados en diferentes zonas del puerto, de la frontera con Marruecos y algún punto de riesgo por descarga de mercancias. En estos puntos se colocaron un total de 32 ovitrampas. Los muestreosa fueron semanales desde mediados de Junio hasta finales de Noviembre. Al final del periodo de muestreo se estudiaron un total de 659 tablillas y se persieron solo 13 tablillas. No se detectaron huevos de Aedes albopictus ni de ninguna otra especie de Culícido.

Melilla

Ya se ha comentado que solo se emplearon trampas CDC de luz blanca. Las capturas totales fueron de 106 mosquitos. La principal especie capturada fue Culex pipiens que se capturó desde Junio hasta Octubre y en los tres puntos de muestreo. Se capturaron un total de 66 ejemplares, 19 eran machos y 39 hembras. Se capturó también un macho de Culex laticintus, y un total de 26 hembras de Culex spp (no se puedo identificar correctamente la especie). La tercera especie capturada fue Culiseta longiareolata con 13 ejemplares, 8 machos y 5 hembras.

También se capturaron ejemplares de flebotomos, también en los tres enclaves pero menos abundantes y frecuentes que los mosquitos verdaderos. En total de oidentificaron 3 ejemplares de Phlebotomus perniciosus, un macho y dos hembras, y 8 ejemplares de Phlebotomus papatasi , dos machos y 6 hembras.



Objetivos 3 y 4

Antecedentes

Los cambios ambientales y el aumento del transporte son los factores responsables de

la emergencia y reemergencia mundial de las enfermedades transmitidas por mosquitos,

especialmente de las víricas, Dengue, Chinkungunya y Zika (CCAES, 2013). En el caso de

Europa estos factores han dado lugar a la entrada y establecimiento de los mosquitos

invasores, Aedes albopictus y Aedes aegypti (detectados en el año 1979 y 2004,

respectivamente) y al aumento del número de viajeros procedentes de áreas endémicas

(en 2010 más de 5,8 millones de viajeros procedentes de áreas afectadas por Dengue

entraron en Europa (ECDC, 2017). Estos mosquitos son los vectores potenciales de estas

enfermedades y han sido los responsables de la transmisión local en Europa del dengue y

chikungunya, ya que la transmisión local de Zika en este continente aún no ha sido

detectada. Ae. albopictus se ha establecido en países del sur de Europa y ha sido el

responsable de la transmisión local de dengue y chikungunya en Francia en el año 2010,

2014 y 2015, de dengue en Croacia en 2010 y de chikungunya en Italia en 2007 y

recientemente en septiembre de 2017. Ae. aegypti se ha establecido en la isla de Madeira

y en áreas de la costa del mar Negro, y ha provocado en el año 2012 la transmisión en

Madeira de dengue (ECDC, 2017). En España Ae. albopictus es detectado en 2004 en

Cataluña por primera vez y desde entonces se encuentra en clara expansión por la cuenca

mediterránea (Collantes y cols., 2016). En octubre del presente año se detecta por primera

vez en Madrid (Melero-Alcíbar y cols., 2017). Estos factores también han afectado a la

fauna local de mosquitos vectores, como Culex pipens y a especies del género Anopheles, y

por tanto al rango de distribución de las enfermedades que transmiten, como son la fiebre

del Nilo Occidental y el Paludismo, respectivamente (ECDC, 2014).

El actual Ministerio de Sanidad, Servicios Sociales e Igualdad, como consecuencia de la

firma del Reglamento Sanitario Internacional en 2005 por parte de España, implanta un

programa para la vigilancia y control de vectores en los puntos de entrada, y en las

cercanías de aeropuertos, puertos y pasos fronterizos. Como consecuencia de esta

actuación se viene desarrollando un Programa de Vigilancia Entomológica en Aeropuertos

y Puertos de España, para la detección precoz de mosquitos invasores potenciales vectores

de enfermedades infecciosas exóticas (MSSSI, 2016). Debido a la complejidad de su

realización se ha ido implantando desde el año 2008 de forma paulatina en los principales

puertos y aeropuertos de España. En el informe publicado en mayo de 2013 por el Centro

de Coordinación de Alertas y Emergencias Sanitarias (CCAES), Canarias es considerada una

de las CCAA españolas con riesgo elevado de introducción y establecimiento de estas

especies de mosquitos invasores. Ante los resultados de este informe y la emergencia de

Dengue que estaba aconteciendo en el entorno de Canarias, en concreto en Madeira,

Cabo Verde y Senegal, comienza ese mismo año la implementación en este Archipiélago de

la vigilancia de estos mosquitos invasores con el fin de detectar rápidamente su entrada y

establecimiento. Ésta se incluyó en el Programa de Vigilancia Entomológica en Puertos y



Aeropuertos a nivel nacional, del Ministerio de Sanidad, Servicios Sociales e Igualdad del

Gobierno de España (MSSSI), con la colaboración, establecida mediante un convenio, de la

Consejería de Sanidad del Gobierno de Canarias (BOE-A-2014). Al no contar con recursos

suficientes para implementar la vigilancia en la totalidad del territorio y al tratarse de un

territorio fragmentado (islas), se dio prioridad a aquellas Islas con riesgo mayor de

introducción, en base a: el nivel de tráfico, su procedencia (países de riesgo endémico de

enfermedades vectoriales) y presencia de hábitats del vector en el Punto de Entrada (PdE)

y su entorno. Hasta el año 2015 se ha llevado a cabo esta vigilancia en Puertos y

Aeropuertos de las islas de Tenerife, Gran Canaria y La Palma, por ser los posibles PdE de

los vectores en islas y ser estas Islas las consideradas de riesgo mayor de introducción.

Además de establecer la vigilancia en puertos y aeropuertos, la vigilancia se ha extendido a

otro posible PdE, en invernaderos de empresas importadoras de plantas, ya que el sector

de la flor y planta ornamental se trata de un comercio de riesgo de introducción del vector

(ECDC,2012), el cual es relevante en Canarias (14% de la superficie total estatal

(www.fepex.es, 2014).

Durante los años, 2013-2016, no se han detectado mosquitos invasores en los PdE

vigilados, ni se ha detectado su establecimiento, sin embargo, se han encontrado otras

especies de mosquitos residentes en Canarias que son vectores de enfermedades que

afectan al hombre y a los animales como son: el virus del Nilo Occidental, el Paludismo y la

Dirofilariosis.

Se han identificado ejemplares de Culex pipiens, Culex theileri, Ochlerotatus caspius,

Anopheles cinereus hispaniola y Anopheles sergentii.

Aunque la vigilancia se había implementado en aquellos PdE considerados con mayor

riesgo de introducción y establecimiento del vector, era conveniente ampliar la red al resto

de las Islas. En el año 2016, con la expansión del virus Zika y la detección de casos

importados en Canarias, algunos en Islas donde no se había implementado aún la vigilancia

del vector, la Fundación Canaria para el Control de las Enfermedades Tropicales (FUNCCET)

alerta de la necesidad de establecer la vigilancia del vector en el resto de las Islas ante la

falta de conocimiento sobre el estado actual de las poblaciones de mosquitos en islas

como, Fuerteventura, Lanzarote, La Gomera y El Hierro. La Dirección General de Salud

Pública (DGSP) del Servicio Canario de la Salud ante esta situación promueve la

implantación de la vigilancia del mosquito en el resto de las Islas. Finalmente, gracias a la

financiación del Cabildo de Lanzarote, a un proyecto de colaboración ciudadana

(Crowdfunding) y a la colaboración del personal del Área de Salud de Lanzarote y

Fuerteventura, del Cabildo de Lanzarote y del Ayuntamiento de Arrecife, se implementa la

vigilancia en la isla de Lanzarote y Fuerteventura, y se amplía la vigilancia en invernaderos

en Tenerife.



Metodología

Con respecto a la organización y ejecución de los trabajos de vigilancia ha sido el

Instituto Universitario de Enfermedades Tropicales y Salud Pública de Canarias (IUETSPC),

de la Universidad de La Laguna, el centro responsable de la coordinación de la vigilancia en

Canarias, además de la actividad de muestreos en la isla de Tenerife y del procesamiento e

identificación de las muestras obtenidas de la vigilancia en las Islas. La implementación y

desarrollo de la vigilancia en Canarias ha sido hasta el momento supervisado por los

responsables del contrato con el MSSSI, para la puesta en marcha del Programa de

Vigilancia Entomológica en Aeropuertos y Puertos de España, D. Javier Lucientes Curdi, de

la Universidad de Zaragoza, y D. Ricardo Molina Moreno, del Instituto de Salud Carlos III.

Los muestreos en las Islas de Gran Canaria y la Palma son realizados por investigadores de

la Universidad de las Palmas y por personal con formación en Biología contratados para

este fin, y en las islas de Fuerteventura y Lanzarote por personal de diversas

administraciones que trabajan en colaboración en esta tarea. Por tanto, no existe aún una

organización establecida dentro de un Plan de preparación y respuesta frente a

enfermedades transmitidas por vectores que además de recoger a los implicados,

establezca los protocolos de actuación, etc. Sin embargo, ya se está trabajando en ello

tanto a nivel autonómico como nacional (MSSSI, 2016).

Han sido dos los objetivos alcanzados en los tres primeros años.

Se ha implementado y mantenido la red de vigilancia entomológica para la detección

de la presencia de Ae. albopictus y Ae. aegypti en los principales PdE de mosquitos en el

archipiélago Canario (puertos, aeropuertos e invernaderos de las islas de Tenerife, Gran

Canaria y La Palma).

Además, ha implementado la vigilancia en el hábitat del vector para comprobar si los

mosquitos Ae. albopictus y Ae. aegypti se han establecido recientemente en las Islas.

Las actividades desarrolladas han sido las mismas que en los años anteriores así como

también la metodología empleada, descrita en anteriores informes. No obstante a

continuación se detallarán los métodos de trabajo empleados. En líneas generales la

vigilancia del vector Ae. aegypti ha consistido, en la monitorización de las poblaciones de

mosquitos existentes en los PdE y su entorno, mediante el muestreo periódico de adultos y

fases inmaduras a lo largo del año (cada 10-15 días), utilizando trampas e inspeccionando

criaderos, y el procesamiento e identificación morfológica y molecular, cuando fue

requerida, de las muestras en el laboratorio. Por otro lado, por iniciativa de la DGSP y del

IUETSPC se ha creado un portal web (AEMET, 2017) en la que dar información al ciudadano

sobre los mosquitos invasores, y la importancia de la participación ciudadana en la

detección de este tipo de insectos, donde además poder hacer llegar sus denuncias por

picaduras a la DGSP. En tres de las 22 denuncias recibidas las imágenes recibidas

permitieron identificar al mosquito como Ae. aegypti pero en ningún caso habían sido

capturados en Canarias (Uruguay y Argentina).



La frecuencia y periodicidad del trampeo fue determinada en base a los datos de

temperatura (datos obtenidos de la AEMET), factor climático que influyen sobre la

duración del ciclo de Ae. aegypti y otros datos relacionados con el transporte como el

aumento del volumen de tráfico y mercancías en determinados periodos durante el año.

Los métodos de captura empleados fueron elegidos en función del hábitat, especie y

estadio de desarrollo. Así, para la detección de huevos (larvas) de Aedes spp. se emplearon

trampas de ovoposición de 250 ml con sustrato de puesta poliuretano (claro). Estas se

colocaban en hábitat característicos de la especie. Para la captura de adultos se emplearon

trampas BG-Sentinel (Biogent) con BG-Lure que fueron ubicadas en espacios cerrados,

principalmente en puntos de apertura de mercancías. También fueron inspeccionados

criaderos, tanto fuera como dentro de los puertos y aeropuertos, en busca de larvas y

pupas que fueron capturadas mediante pipeteo. Mediante un aspirador bucal se realizó la

captura directa de ejemplares adultos detectados durante el monitoreo.

El informe que se presenta recoge los resultados de la vigilancia entomológica llevada a

cabo en 2017, en puertos, aeropuertos e invernaderos de las islas de Tenerife, Gran

Canaria, La Palma, Lanzarote y Fuerteventura.

Resultados por zonas de estudio (PdE)

En la Tabla 25 se detallan los distintos tipos de PdE vigilados a lo largo de los años 2016-

2017 así como las islas donde se ubican.

Los resultados de este año muestran la presencia de especies residentes con

importancia vectorial, su distribución, abundancia y fenología en los PdE vigilados. Entre

las especies detectadas, aparece por primera vez en los PdE de la isla de Fuerteventura

Anopheles cinereus hispaniola. Además, en noviembre de 2017 un aviso por picaduras de

unos vecinos de una Urbanización de Puerto del Rosario, Fuerteventura, alertó a las

autoridades sanitarias en la Isla de la posible presencia de una especie de mosquito

invasora. Poco después se pudo confirmar molecularmente que se trataba de ejemplares

de Aedes aegypti.



Tabla 25. PdE vigilados en Canarias: Principales puertos y aeropuertos que reciben tráfico procedente de áreas de riesgo así como invernaderos dedicados a la importación de plantas procedentes de áreas de riesgo.

PoE (abreviatura) Isla

Aeropuerto -

Aeropuerto Tenerife Norte (A-TN) Isla de Tenerife

Aeropuerto Tenerife Sur (A-TS) Isla de Tenerife

Aeropuerto de Gran Canaria (A-C) Isla de Gran Canaria

Aeropuerto de Lanzarote (A-L) Isla de Lanzarote

Aeropuerto de Fuerteventura (A-F) Isla de Fuerteventura

Puertos -

Puerto de Santa Cruz de Tenerife (P-T) Isla de Tenerife

Puerto de Las Palmas (P-C) Isla de Gran Canaria

Puerto de Santa Cruz de La Palma (P-P) Isla de La Palma

Puerto de Arrecife (P-L) Isla de Lanzarote

Puerto de Fuerteventura (P-F) Isla de Fuerteventura

Invernaderos -

Invernadero Gran Canaria (I-C) Isla de Gran Canaria

Invernadero 1 Tenerife (I1-T) Isla de Tenerife



Invernadero La Palma (I-P) Isla de La Palma

Invernadero Lanzarote (I-L) Isla de Lanzarote

Invernadero Fuerteventura (I-F) Isla de Fuerteventura

Isla de Tenerife

Los PdE vigilados en la isla de Tenerife fueron los aeropuertos de Tenerife Sur (A-TS) y

Tenerife Norte (A-TN), el Puerto de S/C de Tenerife (P-T) y los invernaderos de una

empresa dedicada a la importación de plantas (I1-T), localizados en las proximidades del

A-TN. Estos PdE se encuentran ubicados en el sur y noreste de la Isla (Figura 64). La

vigilancia también se ha realizado en dos empresas más dedicadas a la importación de



plantas ornamentales, ambas localizadas en el noreste de la isla de Tenerife (I2-T e I3-T,

Figura 64). Este año 2017 se han vigilado los mismos PdE y zonas que el año anterior,

reduciendo, aumentando o reubicando el número de puntos vigilados donde fue

necesario, a partir de la información recogida de cada muestreo.

A-TN

I1-T

P-T

I2-T

I3-T

A-TS

Figura 64. Localización de los PdE vigilados en la isla de Tenerife en 2017. Se indica la situación en la isla

del A-TN, A-TS, P-T, l1-T, I2-T e I3-T. (Capa de usos del suelo, http://idecan2.grafcan.es/ServicioWMS/SIOSE?).

Aeropuerto Tenerife Sur (A-TS)

El A-TS fue el segundo aeropuerto Canario con mayor nivel de tráfico de pasajeros y

operaciones y el tercero con mayor nivel de tráfico de mercancías en 2016. Se trata de un

aeropuerto localizado en el sur de Tenerife (Temperatura anual, 21,4 °C, y precipitación

anual, 131,6 mm) con un entorno formado principalmente por cultivos intensivos y

vegetación arbustiva o herbácea donde son escasos los puntos de agua estancada que

pudieran atraer al mosquito invasor. Por ello, todas las zonas vigiladas se encuentran

dentro del aeropuerto. Se continuó con la misma frecuencia de muestreos que en años

anteriores, cada 10 días, en los que el personal revisaba las trampas colocadas,

41 ovitrampas (Jardines del parking público, planta de procesamiento de aguas y residuos

sólidos) y 5 BG-Sentinel (Terminal de carga y patio de carrillos), y 3 trampas de

electrocución (Parque de bomberos y patio de carrillos), e inspeccionaba cada zona en

busca de posibles criaderos, permanentes y no permanentes, para la captura de larvas y

pupas, como los tanques de las plantas de procesamiento de aguas, los imbornales en ésta

y los localizados en el parking público.

Un total de 254 adultos (197 machos y 57 hembras) y 6 larvas fueron capturados en el

A-TS, un número superior respecto a 2016 (N= 76, 76 adultos). Estos fueron identificados

como: Culex pipiens, Culiseta longiareolata, Culex theileri, Aedes eatoni y Culex laticinctus,

las mismas especies que fueron detectadas durante la vigilancia en 2014-2016, con la



excepción de Ae. eatoni, especie asociada al bosque de Laurisilva y a zonas de cultivo

próximas a estos bosques (Tabla 26). De estas especies dos se consideran de importancia

sanitaria: Cx. pipiens y Cx. theileri, siendo la primera la más abundante y distribuida en el

PdE.

Este año fue la depuradora el punto donde los mosquitos fueron más abundantes

encontrándose principalmente en ovitrampas localizadas en esta zona adultos hembras de

Cx. pipiens. Aunque también se encontró a este vector en los insectocutores del parque de

bomberos, en las trampas BG-Sentinel localizadas en la terminal de carga y en el patio de

carrillos (Figura 66).

Tabla 26. Especies de culícidos capturados en el aeropuerto de Tenerife sur.

ESPECIE TOTALES

Culex pipiens 239

Culex laticinctus 1

Culex theileri 6


Aedes eatoni 6

Total 260

Ae. eatoni; 2,31Cs. longiareolata;

3,08

Cx. pipiens; 91,92

Cx. theileri; 2,31

Cx. laticinctus; 0,38

Figura 65. Recuento cualitativo de especies capturadas. Se presentan el porcentaje (%) de cada especie

(adultos y larvas), capturadas en el A-TS en 2017.



0

50

100

150

200

250

300

350

400

450

500

550

600

Terminal de Carga

Patio de Carrillos

Depuradora Parque de Bomberos

Nº Cx. pipiens

Figura 66. Abundancia de mosquitos en el A-TS (isla de Tenerife), 2017. Se muestra en el gráfico la

cantidad de Cx. pipiens, vector más abundante y distribuido en este PdE, en zonas del A-TS muestreadas.

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

0

50

100

150

200

250

300

350

400

T y

R

Nº

de

Cx.

pip

ien

s

Nº Cx. pipiens

T (°C)

R (mm)

Figura 67. Fenología de Cx. pipiens, 2017. Se representa el número de Cx. pipiens capturados cada mes en

el A-TS (año 2017), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación Tenerife Sur aeropuerto (fuente: AEMET).

El número de Cx. pipiens aumenta en los meses de abril, junio y octubre, con mayor

abundancia en los meses de verano y disminuyendo siempre drásticamente en los meses

de invierno.

Aeropuerto Tenerife Norte (A-TN) e invernaderos (I-T)

El A-TN e I1-T presentan en su entorno ambientes antrópicos (urbanos y agrícolas) que

favorecen la presencia de hábitats de cría del vector, por lo que los puntos de muestreo

fueron seleccionados tanto dentro como fuera de ellos. A largo del año 2017 se ha

reforzado la vigilancia en este aeropuerto aumentando el número trampas (de 21 a

32 ovitrampas y de 1 a 2 BG-Sentinel) y las zonas vigiladas (Hangar de la compañía Binter,

aeroclub, el perímetro del aeropuerto y su entorno). Por tanto, se muestrearon cada



10 días un total de 32 ovitrampas en A-TN y su entorno (Jardines del bloque técnico,

parque de bomberos, aeroclub, control de fauna, jardines de viviendas y huertas),

2 trampas BG-Sentinel (Terminal de carga y Hangar de Binter), 4 criaderos permanentes

(Huerta, control de fauna y bloque técnico) y 1 de electrocución (Parque de bomberos). En

el l1-T y con la misma frecuencia se vigilaron 18 ovitrampas en un invernadero donde se

depositan plantas procedentes de áreas de riesgo, 1 BG-Sentinel (dentro de invernadero) y

3 criaderos artificiales permanentes localizados dentro del invernaderos. El I1-T vigilado

durante este año 2017 se trata de la exposición de plantas de la empresa vigilada en años

anteriores, también muy próxima al aeropuerto A-TN (Figura 68).

Figura 68. Localización del I1-T, situado en la isla de Tenerife en 2017. Se indica la situación en el mapa

del I1-T y del A-TN.

Como en años anteriores fue el A-TN y el I1-T (En 2017, A-TN, N= 1230 e I1-T, N= 281,

Total= 1511) donde se capturó el mayor número de individuos en Canarias aunque en esta

ocasión el I1-T no es comparable ya que se trata de otro lugar. Así en esta ocasión el

número de individuos capturados en el invernadero fue muy inferior al de años anteriores

(En 2016, A-TN, N= 1428 e I1-T, N= 1329, Total= 2757).

Tabla 27.Especies de culícidos identificadas en el aeropuerto de Tenerife Norte.

ESPECIE TOTALES

Aedes eatoni 44


Culex pipiens 633

Culex theileri 1

Culex laticinctus 2

Total 1230



Ae. eatoni; 3,58

Cs. longiareolata; 44,72

Cx. pipiens; 51,46

Cx. theileri; 0,08 Cx. laticinctus; 0,16

Figura 69. Recuento cualitativo de especies capturadas. Se presentan los porcentajes (%) de cada especie (adultos y larvas), capturadas en el A-TN en 2017.

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

0

50

100

150

200

250

300

350

400

T y

R

Nº

Cx

. p

ipie

ns

Nº Cx. pipiens

T (°C)

R (mm)

Figura 70. Fenología de Cx. pipiens, 2017. Se representa el número de Cx. pipiens capturados en el A-TN.

La temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación Tenerife Norte aeropuerto (fuente: AEMET).

Tabla 28. Especies de culícidos identificadas en el invernadero 1 de Tenerife.

ESPECIE TOTALES

Aedes eatoni 20


Culex pipiens 105

Culex laticinctus 48

Total 281



Figura 71. Recuento cualitativo de especies capturadas. Se presentan los porcentajes (%) de cada especie

(adultos y larvas), capturadas en el I1-T en 2017.

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

0

50

100

150

200

250

300

350

400

T y

R

Nº

Cx

. p

ipie

ns

Nº Cx. pipiens

T (°C)

R (mm)

Figura 72. Fenología de Cx. pipiens, 2017. Se representa el número de Cx. pipiens capturados en el I1-T

(año 2017), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación Tenerife Norte aeropuerto (fuente: AEMET).

Se trataban de: Cx. pipiens, Cs. longiareolata, Aedes eatoni, Cx. laticinctus que

estuvieron presente en ambos PdE, y Cx. theileri que sólo fue detectado en la BG-Sentinel

de la terminal de carga. Igual que otros años la mayoría de individuos capturados fueron

larvas (N=1067) debido a la abundancia de criaderos artificiales que favorece el entorno

(huertas, jardines e invernaderos) (Figura 73).



050

100150200250300350400450500550600

Nº Cx. pipiens

Figura 73. Abundancia de mosquitos en el A-TN e I1-T (isla de Tenerife), 2017. Se muestra en el gráfico la cantidad de Cx. pipiens, vector más abundante y distribuido en estos PdE, en zonas del A-TN e I1-T muestreadas.

Se detectaron huevos (N=43) sólo en el A-TN que pertenecían al aedino residente

Ae. eatoni, en dos ocasiones y siempre en la misma ovitrampa. Los huevos de este aedino

fueron detectados sólo en el A-TN y adultos principalmente en el I1-T. En el año 2016 Ae.

eatoni fue el más abundante de los adultos capturados en el I1-T (trampa BG-Sentinel),

(72,73%), seguido de Cs. longiareolata (16,88%) y Cx. pipiens (5,19%). En esta ocasión fue

la segunda especie más abundante capturada en la BG-Sentinel del invernadero (Cs.

longiareolata (33,33%), Ae. eatoni (26,67%), Cx. pipiens (18,67%) y Cx. laticinctus

(21,33%)). Esta especie también vuelve a ser encontrada en las BG-Sentinel del A-TN. El

mosquito vector más distribuido y abundante en el A-TN y I1-T fue Cx. pipiens ya que Cx.

theileri sólo fue detectado en las trampas BG-Sentinel del A-TN. Así, en el A-TN se

detectaron dos especies de vectores (Cx. pipiens y Cx. theileri) frente al I1-T donde se

detectó sólo una (Cx. pipiens).

Respecto a la fenología del vector Cx. pipiens se detectó todos los meses en esta zona

con una abundancia mayor en los meses de febrero, julio y octubre. Aunque su abundancia

respecto al resto de especies es menor que en el caso del A-TS, donde las escasas

posibilidades de ambientes de cría y las temperaturas máximas más elevadas puede

favorecer la presencia de esta especie frente a otras (Figuras 70 y 72).

Invernaderos (I2-T e I3-T)

En 2016 comienza la vigilancia en el I2-T e I3-T localizados en el noreste de la isla de

Tenerife (Figura 1), en el municipio de San Cristóbal de La Laguna, en la localidad de Valle

Guerra, un valle intercolinar sometido a la influencia directa de los Alisios por lo que es una

zona eminentemente agrícola y productiva, donde son abundantes las empresas dedicadas

a esta actividad.



La vigilancia fue llevada a cabo con 20 ovitrampas y 2 trampas BG-Sentinel en cada una

de las empresas y se detectaron 3 posibles criaderos de tipo artificial, tanto permanentes

como no permanentes. Los puntos fueron revisadas por el personal responsable 2 veces al

mes a lo largo de todo el año.

Se capturaron un total de 231 individuos en el I2-T y 84 en el I3-T. Concretamente en el

I2-T 171 adultos y 60 larvas; en el I3-T 69 adultos y 15 larvas. Las especies identificadas

fueron Culex theileri, Culex pipiens y Culex laticinctus, en ambos invernaderos, y Cs.

longiareolata que sólo se detectó en el I2-T (Tablas 29 y 30).

La única especie de importancia sanitaria identificada fue Cx. pipiens y resultó ser la más

abundante y distribuida en el I2-T e I3-T .Ésta se detectó en criaderos, ovitrampas y

trampas BG-Sentinel localizadas en diferentes zonas del recinto (invernaderos, jardines,

exposición, canales de riego, etc.) (Figuras 74 y 76).

Tabla 29. Especies de culícidos capturados en invernadero 2 de Tenerife.

ESPECIE TOTALES


Culex theileri 3

Culex pipiens 212

Culex laticinctus 8

Total 231


Cx. pipiens; 91,77

Cx. theileri; 1,30

Cx. laticinctus; 3,46





Figura 75. Abundancia de mosquitos en el I2-T, 2017. Se muestra en el gráfico la cantidad de Cx. pipiens, vector más abundante y distribuido en estos PdE, en las zonas de los invernaderos muestreadas.

Tabla 30. Especies de culícidos capturados en el invernadero 3 de Tenerife

ESPECIE TOTALES

Culex theileri 1

Culex pipiens 79

Culex laticinctus 4

Total 84

Cx. pipiens; 94,05

Cx. theileri; 1,19Cx. laticinctus;

4,76





Figura 77. Abundancia de mosquitos en el I3-T, 2017. Se muestra en el gráfico la cantidad de Cx. pipiens, vector más abundante y distribuido en estos PoE, en las zonas de los invernaderos muestreadas.

Culex pipiens se detectó en el I2-T en todos los meses de muestreo siendo más

abundante en los meses de primavera, verano y otoño. En el I3-T este vector se capturó

más en los meses de primavera y verano (Figuras

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

0

50

100

150

200

250

300

350

400

T y

R

Nº

Cx

. p

ipie

ns

Nº Cx. pipiens

T (°C)

R (mm)


el I2-T (año 2017), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación Santa Cruz de Tenerife (fuente: AEMET).



0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

0

50

100

150

200

250

300

350

400

T y

R

Nº

Cx

. p

ipie

ns

Nº Cx. pipiens

T (°C)

R (mm)


el I3-T (año 2017), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación Santa Cruz de Tenerife (fuente: AEMET).

Puerto de Santa Cruz (S/C) de Tenerife (P-T)

El P-T igual que el A-TN y el I1-T se localiza en un ambiente urbano, en la ciudad de S/C

de Tenerife. Así los 64 puntos vigilados en este PdE se han situado tanto dentro como

fuera del Puerto. Se han empleado 54 ovitrampas y 5 BG-Sentinel las cuales eran revisadas

cada 10 días, además de 4 criaderos de tipo artificial y natural que fueron detectados

dentro y en el borde del Puerto (p. ej.: estanques en parques, fuentes ornamentales y agua

en el cauce del Bco. de Santos). Este año, a partir del mes de agosto, se ha intensificado la

vigilancia en el entorno del P-T incluyendo una nueva zona de muestreo, Barranco de

Santos, y se ha disminuido el esfuerzo en la zona del Palmetum (Jardín botánico anexo al

puerto). Este barranco discurre a lo largo del área metropolitana de la ciudad,

desembocando en el P-T.

Se capturaron un total de 975 individuos algo más que en 2016 (N=812), entre adultos y

larvas, que fueron identificados como: Cx. pipiens, Cs. longiareolata, Anopheles sergentii,

Cx. theileri, Anopheles cinereus hispaniola y Cx. laticinctus. En esta ocasión Aedes caspius y

Ae. eatoni estuvieron ausentes entre las capturas. An. sergentii y An. c. hispaniola son

vectores potenciales de malaria, y Cx. pipiens y Cx. theileri, vectores de arbovirus y filarias.

Tabla 31. Especies identificadas en el puerto de Santa Cruz de Tenerife (PT).

ESPECIE TOTALES

Cs. longiareolata 328

Cx. pipiens 341

Cx. theileri 69

Cx. laticinctus 14

An. c. hispaniola 168

An. sergentii 55

Total 975



Estos fueron detectados la mayoría en el Bco. de Santos, seguido del jardín botánico el

“Palmetum”, luego en los alrededores del CIF, a continuación en la terminal de

contenedores y por último en el CIF. La mayoría de las capturas se trataron de larvas que

se encontraron en criaderos artificiales y naturales. Hay que puntualizar que mientras

especies como Cx. pipiens y Cs. longiareolata se encontraron en criaderos de ambos tipos,

Cx. theileri y los anofelinos sólo fueron encontrados en criaderos de tipo natural (Bco. de

Santos) y Cx. laticinctus en una fuente ornamental. Aunque en menor abundancia, también

se detectaron mosquitos adultos en las BG-sentinel del CIF y en trampas de electrocución

situadas en el recinto portuario, terminal de contenedores (36 hembras y 12 machos). En

este año no se capturó ningún anofelino en las trampas de electrocución situadas en el

recinto portuario. Respecto a la abundancia y distribución, fue Cx. pipiens el vector

potencial más abundante y distribuido (N= 321, en 5 de las 5 zonas). Los vectores más

abundantes a continuación fueron los anofelinos y Cx. theileri pero estos fueron

detectados sólo en una zona.

Cs. longiareolata33,64

Cx. pipiens34,97

Cx. theileri

7,08

Cx. laticinctus1,44

An. c. hispaniola17,23

An. sergentii5,64


(adultos y larvas), capturadas en el P-T en 2017. En rojo se indican las especies con importancia vectorial.



0

20

40

60

80

100

120

140

160

180

Nº Cx. pipiens

Nº Cx. theileri

Nº An. c. hispaniola

Nº An. sergentii

Figura 81. Abundancia de mosquitos en el P-T (isla de Tenerife), 2017. Se muestra en el gráfico la cantidad

de Cx. pipiens, vector más abundante y distribuido en este PdE, así como de los vectores Cx. theileri, An. sergentii y An. c. hispaniola.

La variación estacional de la abundancia de Cx pipiens en este PdE muestra la presencia

del vector en todos los meses, con una abundancia mayor en julio y agosto. Los anofelinos

An. sergentii y An. c. hispaniola, fueron capturados a partir de agosto del año 2016 en

criaderos en el Bco. de Santos. Para este periodo de vigilancia esperábamos poder tener

una fenología de estas especies en esta zona, ambos vectores potenciales de

enfermedades humanas. Sin embargo, a partir del mes de junio y julio desaparece el agua

en este barranco y consecuentemente el criadero de estos mosquitos. Por tanto, no se ha

podido determinar su abundancia estacional en este PdE (Figuras 82 a 84).

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

0

50

100

150

200

250

300

350

400

T y

R

Nº

Cx

. p

ipie

ns

Nº Cx. pipiens

T (°C)

R (mm)


el P-T (año 2017), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación Santa Cruz de Tenerife (fuente: AEMET).



0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

0

50

100

150

200

250

300

350

400

T y

R

Nº

An

. se

rgen

tii

Nº An. sergentii

T (°C)

R (mm)

Figura 83. Fenología de los anofelinos, 2017. Se representa el número de An. sergentii capturados cada

mes en el P-T (año 2017), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación Santa Cruz de Tenerife (fuente: AEMET).

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

0

50

100

150

200

250

300

350

400

T y

R

Nº

An

. c.

his

pa

nio

la

Nº An. c. hispaniola

T (°C)

R (mm)

Figura 84. Fenología de los anofelinos, 2017. Se representa el número de y An. c. hispaniola capturados

cada mes en el P-T (año 2017), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación Santa Cruz de Tenerife (fuente: AEMET).

Isla de Gran Canaria

En 2017 se continuó la vigilancia en los PdEs en los que fue implantada en 2014: el

Puerto de Las Palmas (P-C), el Aeropuerto de Gran Canaria (A-C) y en una empresa próxima

al aeropuerto dedicado a la importación de plantas (I1-C) (Figura 85).



A-C

I1-C

P-C

Figura 85. Localización de los PdE vigilados en la isla de Gran Canaria en 2017 (Capa de usos del suelo, http://idecan2.grafcan.es/ServicioWMS/SIOSE?). Se indica la situación en la isla del A-C, P-C e l1-C.

Puerto de Las Palmas (P-C)

El P-C, igual que el P-T y el A-TN, está rodeado de ambiente urbano, al encontrarse

situado en la ciudad de Las Palmas, y por esta razón la vigilancia fue establecida tanto

dentro (Jardines del puerto y PIF) como fuera del perímetro del puerto (Jardines del

Ayuntamiento).

En el año 2017 los resultados han sido similares a 2016, 2015 y 2014, de las 47

ovitrampas y 6 trampas BG-Sentinel colocadas para la vigilancia de Ae. aegypti, sólo fueron

detectadas formas adultas (N= 23) en las trampas BG-Sentinel situadas en el PIF de este

Puerto (Figura 86). Todos los individuos pertenecían a la especie Cx. pipiens (14 hembras y

9 machos), la tónica habitual en este punto durante los años de vigilancia.



Figura 86. Abundancia de mosquitos en el P-C (isla de Gran Canaria), 2017. La superficie del P-C aparece

en color gris y en rojo se representa el suelo urbanizado (residencial continuo) que corresponde con la ciudad de Las Palmas. Se indican los puntos de muestreo en gris y la abundancia de Cx. pipiens (punto amarillo) que corresponde con la localización del PIF.

La abundancia de Cx. pipiens disminuyó con respecto a la tónica de años anteriores y

sólo fue detectando de enero a mayo, coincidiendo con episodios de precipitaciones.

Aeropuerto de Gran Canaria (A-C) e invernadero (I1-C)

Por otro lado el A-C comparte un entorno similar al del A-TS por lo que los puntos

fueron seleccionados en el interior del recinto aeroportuario (Terminal de Carga, jardines

de la central eléctrica y parking público). Durante este periodo los puntos seleccionados en

Gran Canaria fueron muestreados cada 10 días.

Como ya se hizo referencia, el A-C comparte una situación y características similares a

las del A-TS. Su perímetro limita con un entorno en el que predominan los cultivos

intensivos, poco favorables para la supervivencia de Ae. aegypti, y por este motivo la

vigilancia se ha dirigido al espacio del aeropuerto. Han sido 22 los puntos vigilados en el

A-C (20 ovitrampas y 2 BG-Sentinel). En el I1-C se ubicaron 7 ovitrampas en el recinto

donde se trabaja con las plantas de importación y se examinaron criaderos artificiales

(no permanentes), y no se detectó ningún mosquito. El número de individuos

capturados en el I-C durante 2016 ya fue muy inferior al de años anteriores (N= 24,

larvas) debido a la reducción de los criaderos. Estas larvas fueron identificadas como

Cx. pipiens y fueron encontradas en un criadero no permanente en dos ocasiones sólo

durante el mes de noviembre de 2016.



Este año en el A-C no se capturó ningún individuo en la terminal de cargas, punto

habitual de capturas en este PdE. Sin embargo, se capturaron un total de 9 larvas en un

criadero (no permanente) próximo a esta terminal en los meses de enero, febrero, agosto,

septiembre y noviembre. Todas las larvas fueron identificadas como Cx. pipiens. Ante la

ausencia de capturas en la terminal de carga en la visita de control a este PdE se revisará el

buen funcionamiento y estado de las trampas.

Isla de La Palma

En la isla de La Palma se ubican dos de los PdEs en los que se implantó la vigilancia en

2014, el Puerto de La Palma (P-P) y los invernaderos de una empresa que recibe plantas de

importación procedentes de áreas de riesgo (I1-P) (Figura 65).

En el caso del P-P la vigilancia también ha sido establecida fuera del perímetro del PdE,

en ambientes urbanos que limitan con el PdE, ya que el puerto queda anclado en la capital

de la isla, Santa Cruz (S/C) de Palma.

P-P

I-P

Figura 87. Localización de los PdE vigilados en la isla de La Palma en 2017 (Capa de usos del suelo,

http://idecan2.grafcan.es/ServicioWMS/SIOSE?.). Se indica la situación en la isla del P-P e l1-P.

Puerto de La Palma (P-P) e invernadero (I1-P)

Como ya se ha dicho el P-P se localiza en la ciudad de S/C de La Palma y por tanto

rodeado de un ambiente urbano. En el año 2017 han sido 41 las trampas vigiladas

(ovitrampas y BG-sentinel), las cuales en su mayoría se encuentran localizadas dentro y

fuera del perímetro portuario, y el resto en el invernadero (8 ovitrampas). También se han

vigilado posibles criaderos, principalmente en los invernaderos.



Se detectaron culícidos, huevos (N= 17), en el entorno del P-P, en trampas de

ovoposición (ovi-5 y ovi-10) y todos fueron identificados como Ae. eatoni. No se detectó

ninguna especie de importancia sanitaria. Estos huevos fueron detectados en los meses de

agosto y septiembre.

Los invernaderos de la empresa vigilada fue el único PdE donde se produjeron cero

capturas, el mismo resultado que en años anteriores. Queda pendiente la instalación de al

menos una trampa BG-Sentinel en este invernadero con el objetivo de detectar a los

mosquitos a través de la captura de las formas adultas.

Isla de Lanzarote

En el año 2016 se implantó la vigilancia en Lanzarote, la Isla más septentrional y oriental

del archipiélago Canario, además es la cuarta isla más extensa. Los PdE seleccionados

fueron: el Aeropuerto de Lanzarote (A-L), el Puerto de Arrecife (P-L) y los invernaderos de

una empresa dedicada a la importación de plantas (I1-L), localizados en las proximidades

del P-L. Estos PdE se encuentran ubicados en el este de la isla (Figura 88). En el caso del I1-

L y A-L se ha establecido la vigilancia en el PdE, sin embargo en el caso del P-L al ser

escasos los ambientes apropiados para la ubicación de las ovitrampas, éstas fueron todas

colocadas en sus inmediaciones. Los muestreos fueron realizados en todo el periodo de

vigilancia, año 2017, dos veces al mes.

P-L

I-L

A-L

Figura 88. Localización de los PdE vigilados en la isla de Lanzarote en 2017 (Capa de usos del suelo, http://idecan2.grafcan.es/ServicioWMS/SIOSE?.). Se indica la situación en la isla del A-L, P-L e l1-L.

https://es.wikipedia.org/wiki/Canarias



Aeropuerto de Lanzarote (A-L)

El A-L se encuentra a tan sólo 5 Km de Arrecife, a 14 msnm y en la latitud 28°56´44´´N y

longitud 13°36´19´´O. Según datos de 201615 es el cuarto aeropuerto Canario en tráfico de

mercancías y el segundo en pasajeros, además es el noveno a nivel nacional en tráfico de

pasajeros y el décimo sexto en tráfico de mercancías. Tiene conexiones con países y

ciudades españolas en los que existe presencia de vectores invasores, como Italia, Francia,

Barcelona y Valencia.

La vigilancia en este aeropuerto fue establecida dentro del recinto aeroportuario

aunque próximo a éste existen viviendas y viales, a tener en cuenta en el caso de ser

detectado el vector. Dentro de este recinto existían ambientes apropiados para la

ubicación de las ovitrampas (jardines), en el control de fauna, parque de bombero, parking

público, terminal llegadas y bloque técnico. Se colocaron un total de 20 ovitrampas y

3 trampas BG-Sentinel, estas últimas en la terminal de carga (2) y en el patio de carrillo (1).

También se inspeccionó la zona y se localizaron posibles criaderos artificiales

(permanentes y no permanentes), y se tomó muestras de una trampa de electrocución

ubicada en la cocina del parque de bomberos.

Se capturaron 164 mosquitos entre larvas (N= 155) y adultos (N= 9). Estos fueron

identificados como: Cs. longiareolata y Cx. pipiens (Figura 89).

Tabla 32. Especies de culícidos capturados en el aeropuerto de Lanzarote.

ESPECIE TOTALES


Cx. pipiens 16

Total 164

Cs. longiareolata;

90,24

Cx. pipiens; 9,76


(adultos y larvas), capturadas en el A-L en 2017.

Las larvas igual que en 2016 fueron capturas principalmente de una arqueta próxima al

parque de bomberos que mantiene agua de forma permanente. Este año aparece un



nuevo criadero artificial en la zona de Control de fauna. Los adultos fueron capturados en

la terminal de carga (BG-Sentinel), y en un punto de seguridad y en el bloque técnico

mediante captura directa. Los ejemplares adultos se trataron principalmente de Cx. pipiens

(una hembra y 6 machos) mientras que las formas inmaduras fueron mayoritariamente

Cs. longiareolata. El vector no fue detectado todos los meses, sin embargo fue más

abundante en el trimestre de julio, agosto y septiembre, los meses más secos.

Puerto de Arrecife (P-L) e invernadero (I1-L)

El Puerto de Arrecife está situado en la capital de la isla, arrecife de Lanzarote, en la

latitud, 28°58,0´N, longitud, 13°31,8´O, con viento dominante de NE a NO. Nació como un

puerto eminentemente pesquero, aunque el destacado crecimiento de su industria

turística lo ha convertido en el tercer puerto de Canarias en mercancías y primero en pesca

fresca. Sus principales tráficos son los contenedores y los cruceros de turismo, por el que

ocupa un importante puesto en el Atlántico Oriental. Entre los países de procedencia de

las mercancías se encuentra países europeos como Holanda, africanos como Guinea Bissau

y asiáticos como China, donde el vector Ae. aegypti y Ae. albopictus está presente.

Durante la actividad de diseño y organización de la vigilancia en este PdE, no se

encontraron lugares apropiados para la colocación de las trampas por lo que éstas fueron

ubicadas en sus proximidades, en el entorno urbano que caracteriza a la ciudad de Arrecife

(urbanizado construido). Las ovitrampas fueron colocadas en jardines ubicados en 4 zonas

de la ciudad y próximos al P-L (Escuela de Pesca, Hospital Insular, Charco de San Ginés,

parque próximo a la zona de nidificación de la garcilla bueyera (Bubulcus ibis). En total se

emplearon 20 ovitrampas y se inspeccionaron posibles criaderos artificiales que resultaron

no permanentes.

A las afueras de Arrecife se encuentra los invernaderos (I1-L), ubicados en suelo

urbanizado, rodeado de terreno de cultivo abandonado y próximo a viviendas. La vigilancia

se limitó al recinto del invernadero donde se ubicaron 20 ovitrampas, 1 trampa BG-

Sentinel y se inspecciones criaderos artificiales (permanentes y no permanentes).

En el puerto de Lanzarote sólo se detectó un criadero artificial localizado en la zona

próxima a las garcillas por una fuga de agua del riego de los jardines. Sólo una larva fue

detectada e identificada como Cs. longiareolata, especie sin interés sanitario.

A las afueras de Arrecife se encuentra los invernaderos (I1-L), ubicados en suelo

urbanizado, rodeado de terreno de cultivo abandonado y próximo a viviendas. La vigilancia

se limitó al recinto del invernadero donde se detectaron tan sólo 7 adultos que fueron

identificados como: Cs. longiareolata y Cx. pipiens. Ésta última estuvo representada por un

solo ejemplar adulto que fue capturado en el mes de mayo. En general ha sido muy baja la

abundancia de culícidos en estos PdE, especialmente de las especies de interés sanitario,

durante este periodo de vigilancia.



Cs. longiareolata;

85,71

Cx. pipiens; 14,29


(adultos y larvas), capturadas en el I1-L en 2017.

Isla de Fuerteventura

Fuerteventura es la Isla más cercana a la costa africana y junto a Lanzarote, son las islas

más áridas del Archipiélago. En el año 2016 (a partir de mayo) comenzaron los muestreos

en esta Isla. Concretamente en el Aeropuerto de Fuerteventura (A-F), el Puerto de Puerto

del Rosario (P-F) y en los invernaderos de una empresa dedicada a la importación de

plantas (I1-F), localizados en las proximidades del P-F. Estos PdE se encuentran en el este

de la isla como muestra la Figura 91. En el caso del P-F, además de establecer la vigilancia

en el PdE también se han ubicado trampas en el entorno antrópico (residencial) con el que

limita. Durante el año 2017 los muestreos fueron realizados como en 2016, en todo el

periodo de vigilancia y dos veces al mes.

I-F

P-F

A-F

Figura 91. Localización de los PdE vigilados en la isla de Fuerteventura en 2017 (Capa de usos del suelo,

http://idecan2.grafcan.es/ServicioWMS/SIOSE?.). Se indica la situación en la isla del A-F, P-F e l1-F.



Aeropuerto de Fuerteventura (A-F)

Este aeropuerto se ubica a 25msnm y en la latitud 28°27´10´Ń y longitud 13°51´50´Ó,

a 5 Km de Puerto del Rosario. En 2016 este aeropuerto fue el cuarto aeropuerto Canario

en tráfico de pasajeros y el quinto en mercancías, además del onceavo a nivel nacional en

tráfico de pasajeros y el décimo octavo en tráfico de mercancías. Tiene conexiones con

países y ciudades españolas en los que existe presencia de vectores invasores, como Italia,

Holanda, Francia, Barcelona y Valencia.

La vigilancia en este aeropuerto fue establecida dentro del recinto aeroportuario y fuera

en una zona residencial situada en el límite del aeropuerto, y próxima a la estación de

tratamiento de aguas del aeropuerto. Dentro del recinto de este PdE existían ambientes

apropiados para la colocación de ovitrampas, en jardines del bloque técnico, terminal de

carga y parking público. Se colocaron un total de 14 ovitrampas y 2 trampas BG-Sentinel,

estas últimas en la terminal de carga (1) y en el patio de carrillo (1). También se

inspeccionó la zona y se localizaron posibles criaderos artificiales (permanentes).

Se capturaron 12 mosquitos entre larvas (N=3) y adultos (N=9). Estos fueron

identificados como: Cx. pipiens y Cs. longiareolata, siendo la especie de importancia

sanitaria, Cx. pipiens, la menos abundante, con dos machos y una hembra.


Cx. pipiens; 25,00


(adultos y larvas), capturadas en el A-F en 2017. En rojo se indican las especies con importancia vectorial.

Las capturas fueron positivas en la estación de tratamiento de aguas, en la zona del

patio de carrillos y en la terminal de carga. El vector Cx. pipiens fue capturado en el mes de

enero y mayo, en la terminal de carga y patio de carrillos del A-F.

Puerto de Fuerteventura (P-F) e invernadero (I1-F)

El P-F se encuentra localizado en Puerto del Rosario, la capital de la Isla, en la latitud

28°30´00´Ń, longitud 13°52´00´Ó, y con viento dominante de NE a NO. Igual que el P-L el

tráfico es el de mercancía variada y dispone de infraestructura para recibir de cruceros de

turismo. La importante industria turística de la Isla ha propiciado un incremento del tráfico



de cruceros estos últimos años. El P-F cuenta con una infraestructura para el control de

seguridad de pasajeros no sólo por el aumento de los cruceros si no también ante el

posible restablecimiento de la línea con Tarfaya (Marruecos), lo cual no se ha producido

hasta el momento. Barcos procedentes de países africanos como Marruecos y Senegal,

asiáticos como China y Singapur o europeos como Holanda y Francia, donde la presencia

de los vectores invasores ha sido confirmada, embarcan y desembarcan mercancías en y

desde el P-F.

El perímetro del puerto limita con la ciudad por lo que la vigilancia fue establecida

dentro y fuera de éste. Se colocaron un total de 16 ovitrampas en jardines de la terminal

de contenedores, en el muelle deportivo, en la terminal de cruceros y en jardines

localizados a lo largo del perímetro de este puerto (residencial). En el CIF, donde se realiza

el control aduanero de las mercancías, se instalaron 2 BG-Sentinel y se localizaron posibles

criaderos (no permanentes) en la desembocadura del Barranco de los Pozos.

Muy próximo al P-F se encuentran los invernaderos de I1-F, ubicados en suelo

denominado matorral (vegetación arbustiva y/ herbácea) según el mapa de ocupación del

suelo. La vigilancia se limitó al recinto del invernadero donde se ubicaron 16 ovitrampas y

1 trampa BG-Sentinel, y se inspecciones criaderos artificiales (no permanentes).

En el P-F durante este año 2017 se detectaron larvas de culícidos en criaderos

localizado en la zona de la desembocadura del barranco en el que el agua procedía o de las

precipitaciones o de una fuga de agua de origen desconocido. También se detectaron

adultos en las trampas BG-Sentinel localizadas en el CIF. Los adultos fueron identificados

como Cs. longiareolata y Cx. pipiens (N= 7) y las larvas (N= 113) como Cs. longiareolata,

Cx. pipiens y An. c. hispaniola, detectándose por tanto en este PdE dos especie de interés

médico-veterinario. De los 120 mosquitos capturados fue Cs. longiareolata la que mostro

una abundancia relativa mayor respecto al resto de especies detectadas y Cx. pipiens el

más abundante y distribuido de los vectores en este PdE. Éste fue detectado en los meses

de primavera y verano.

Tabla 33. Capturas realizadas en el Puerto de Fuerteventura.

ESPECIE TOTALES


Cx. pipiens 7

An. c. hispaniola 1

Total 120



Cs. longiareolata;

93,33

Cx. pipiens; 5,83

An. c. hispaniola; 0,83


(adultos y larvas), capturadas en el P-F en 2017.

Próximo al P-F se encuentran los invernaderos de I1-F, ubicados en suelo denominado

matorral (vegetación arbustiva y/ herbácea) según el mapa de ocupación del suelo. La

vigilancia se limitó al recinto del invernadero donde se ubicaron 16 ovitrampas y 1 trampa

BG-Sentinel, y se inspecciones criaderos artificiales (no permanentes). Un total de 22

individuos en fase adulta fueron capturados e identificadas como: Cx. pipiens (90,91%) y

Cs. longiareolata (9,09%) (Figura 94).

Tabla 34. Capturas realizadas en los invernaderos I1-F.

ESPECIE TOTALES

Cs. longiareolata 2

Cx. pipiens 20

Total 22

Cs. longiareolata;

9,09

Cx. pipiens; 90,91


(adultos y larvas), capturadas en el I-F en 2017.



La única especie de interés sanitario, Cx pipiens, fue capturada en primavera (marzo,

abril y mayo). En esta ocasión no se detectaron larvas ni en posibles criaderos artificiales

encontrados en el I1-F ni en las ovitrampas.

Primera detección de Aedes aegypti en Fuerteventura.

El Área de Salud Pública de la Isla de Fuerteventura, que participa en esta vigilancia

entomológica, solicita en el mes de noviembre al Laboratorio de Entomología Medica del

IUETSPC la identificación de un ejemplar de mosquito capturado por un vecino de Puerto

del Rosario (Urbanización Las Granadas), cuya vivienda se localiza entre el P-F y el A-F.

Figura 95. Localización de la denuncia por picaduras en la isla de Fuerteventura. Localización del lugar de

la denuncia por picaduras de mosquitos y de los PdE en los que se realiza la vigilancia entomológica, A-F y P-F.

Los vecinos de esta urbanización habían presentado una denuncia por picaduras de

mosquitos al área de salud, aportando imágenes de las picaduras y un ejemplar que fue

enviado al citado laboratorio. Morfológicamente se pudo identificar este individuo como

una hembra del género Aedes, pero no fue posible confirmar la especie. Por tanto, se

realizó una extracción de ADN del ejemplar para tratar de identificar molecularmente de

qué especie se trataba. Se empleó para ello la secuenciación del extremo 5’ del gen

Citocromo Oxidasa I (COI) mayoritariamente utilizada para la identificación de especies

animales. El día 2 de diciembre se recibió el resultado del análisis y el Blast con la versión

MEGABLAST mostró gran número de secuencias con un 99% de identidad con Ae. aegypti.

Desde el mes de noviembre y hasta la semana del 18 de diciembre, se colocaron más

trampas en la urbanización y se realizó un cuestionario de picaduras con el objetivo de

limitar la distribución del vector. De esta manera se localizó en la zona de estudio que fue

denominada como B y que se limita a un área de la Urbanización Las Granadas (figura 96).



Figura 96. Limitación de las Zonas de estudio. Se muestran las zonas estudiadas mediante trampas y encuestas de picaduras. Estas están limitadas por líneas de color azul (zona A), naranja (zona B), verde (zona C) y rosa (zona D).

Una vez realizado el control durante la semana del 18 de diciembre, se estableció la

vigilancia entomológica del vector en la zona B para probar la calidad y efectividad de los

tratamientos. Se comenzó con los muestreos en las viviendas tratadas. Los primeros datos

sobre el vector post-tratamiento proceden de las inspecciones entomológicas y de avisos

recibidos de los vecinos por picaduras o por la captura del mosquito. El primer dato fue la

captura de una hembra de Ae. aegypti por los propietarios de la vivienda nº 12 de la C/

Jiménez Díaz, el día siguiente al tratamiento pero después no se volvió a recibir ningún

aviso de esta vivienda (por picaduras o presencia del vector) ni se ha detectado el vector

en las trampas colocadas. Las inspecciones entomológicas realizadas tampoco han

detectado la presencia del vector en esta vivienda. La inspección entomológica del día 26

de diciembre detecta el primer criadero y esto ocurre en la vivienda nº 11 de la C/ Dr.

Jiménez Díaz donde ya se habían detectado adultos antes del tratamiento. Al día siguiente

se capturan tres adultos de esta especie en la zona de lavandería de esta vivienda. Después

de esta fecha no se ha vuelto a tener avisos de los propietarios de esta vivienda ni se ha

detectado la presencia del mosquito durante las inspecciones ni en las trampas colocadas

en la vivienda. Sin embargo, para poder probar la ausencia del vector en la zona y con ello

su erradicación es necesario terminar de implementar la vigilancia entomológica en las

viviendas tratadas y demostrar la no detección del mosquito después de 18 meses de

muestreos.

Con respecto a los datos procedentes de la vigilancia entomológica de Ae. aegypti en los

PdE vigilados en Fuerteventura en el año 2017 no se ha detectado la presencia en estos

puntos del vector. Sin embargo, se intensificará la vigilancia en estos puntos y su entorno,

y se ampliaran los posibles puntos de entrada vigilados hasta el momento en Canarias con

el fin de detectar la presencia del vector en estos puntos y evitar su dispersión.



Objetivo 5

Antecedentes

En nuestra situación actual en la que el uso generalizado de insecticidas en ambientes

domésticos está siendo revisado y valorado por el riesgo de impacto en la salud humana y

animal (One Health) resulta imprescindible la vigilancia para detectar la aparición de

resistencia a los diferentes biocidas autorizados para su uso en ambientes humanizados.

El conocimiento de esta potencial resistencia de determinados compuestos es básico

para establecer protocolos efectivos de control de mosquitos que permitan la máxima

eficacia con las mínimas cantidades de producto empleado, lo que además permitirá

abaratar el coste de los tratamientos. Fundamental en caso de brotes de enfermedades

exóticas importadas de transmisión vectorial.

La base más racional del control de mosquitos es la destrucción de los habitats larvarios,

y el uso de larvicidas es la medida más eficaz para disminuir las poblaciones de estos

insectos y reducir o incluso eliminar la transmisión de enfermedades (OMS, 2006).

Durante los brotes epidémicos el uso de insecticidas frente adultos es lo recomendado

para disminuir el número de hembras voladoras y sobre todo las que pueden ser

portadoras de los patógenos. La aparición de resistencia a los insecticidas de uso habitual

representa un problema serio y grave en el desarrollo de los programas de control que

puedan ser eficaces.

La resistencia a insecticidas es la capacidad desarrollada por los insectos para adaptarse

a la toxicidad de los mismos ante una exposición continuada y sub-letal. La OMS define la

resistencia a insecticidas como la capacidad de una población de insectos de tolerar dosis

de un insecticida que serían letales para la mayoría de los individuos en una población

normal de la misma especie y es el resultado de la presión de selección positiva ejercida

por el insecticida (OMS 1975).

Conocer el estado de las resistencias en poblaciones de Aedes albopictus es

fundamental para el correcto diseño de cualquier campaña de control. Estos valores

deberían de conocerse antes de realizar tratamientos adulticidas ya que en brotes

epidémicos puede ser un factor clave para el éxito o fracaso de las campañas de control

(Marcombe y cols., 2009; Dusfour y cols., 2011; Macoris y cols., 2014).

Dos son las principales vías o mecanismo de aparición de resistencia frente a

insecticidas: un incremento de las enzimas de detoxicación y una insensibilidad (bloqueo)

de los puntos de actuación. Las principales enzimas implicadas en la desactivación de los

insecticidas son esterasas, la cytochrome P450 oxidasas y la glutathione-S-transferasas,

ofreciendo una resistencia de base metabólica. Las dianas insecticidas (insecticide targets)

son la acetilcolinesterasa sináptica, el ácido γ-amino butírico (GABA) y el canal de sodio, los

cuales están codificados por los genes (ace-1, Rdl, kdr respectivamente). Si surgen

mutación en alguno de estos genes puede inferir en insensibilidad a los insecticidas.



Metodología

Basándonos en los trabajos realizados el pasado año en el que se calculó las

concentraciones discriminantes de los principales insecticidas que se emplean en España,

se expondrán ejemplares precedentes de la generación F1 de poblaciones de Ae.

albopictus criadas en laboratorio a partir de tablillas de ovoposición procedentes de

poblaciones naturales. Además de ayudarnos a ver el estado de susceptibilidad de nuestras

diferentes poblaciones y su posible evolución en el tiempo, nos permitirá comparar

nuestros resultados con los obtenidos el año pasado así como aquellos de otros países de

nuestro entorno. Se han seleccionado una población ya establecida desde hace años y por

lo tanto ya expuesta a tratamientos (Benicasim), otras con pocos años de establecimiento

y en zonas donde a nuestro conocer no se realizan tratamientos (Alhaurin de la Torre,

Torremolinos y Benalmádena) y por último una población de reciente expansión en Aragón

(Beceite) y que por lo tanto apenas ha estado en contacto con insecticidas destinados a su

control.

Figura 97. Fotografía del insectario.

Bioensayo con Tubos de la OMS

Para llevar a cabo este ensayo se emplean unos kits suministrados por la propia OMS.

Cada kit de ensayo consiste en dos tubos que se pueden unir para transferir los mosquitos

de un tubo a otro mediante un soplido. Uno de los tubos (Tubo de recuperación) está libre

de insecticidas y está marcado con un punto verde, mientras que en el otro (Tubo de

exposición) es en el que se coloca un papel impregnado con insecticida, y está marcado

con un punto rojo.

El procedimiento del ensayo varía ligeramente según el tipo de dato que se quiera

obtener (Concentración Discriminante o Mortalidad de una población), aunque los pasos

básicos son los siguientes:



1. Se transfieren desde las jaulas de cría a los tubos de recuperación 25 mosquitos

hembras no alimentadas con sangre, de 4 a 6 días de edad. Se repite este proceso 4 veces

para testar 100 mosquitos

2. Se dejan los mosquitos en los tubos de recuperación durante 1 h, para descartar los

mosquitos moribundos o muertos.

3. Se inserta el papel impregnado con insecticida en el tubo de exposición.

4. Se unen tubo de exposición y tubo de recuperación mediante una guillotina, que

permite transferir mediante un soplido los mosquitos del tubo de recuperación al tubo de

exposición.

5. Los mosquitos son mantenidos en el tubo de exposición durante 1 h. El tubo ha de

mantenerse en posición vertical.

6. Tras la hora de exposición los mosquitos vuelven a ser transferidos al tubo de

recuperación, y se coloca un algodón impregnado con agua y azúcar al 10% en la rejilla.

7. Los mosquitos son mantenidos en el tubo de recuperación durante 24 h. Las

condiciones climáticas ambientales han de ser: 25 ± 1°C de temperatura y 75% ± 5% de

Humedad relativa, y un fotoperiodo de 12 horas de luz y 12 horas de oscuridad.

8. Al final del periodo de recuperación (24 h), se cuenta el número de mosquitos

muertos. Se considera que un mosquito está vivo si es capaz de volar, aunque le falten

patas. Se considera que un mosquito está muerto si está inmóvil o es incapaz de

mantenerse de pie o de volar.

Tubo de observación

(Punto verde)

Tubo de exposición

(Punto rojo)

Tapón

enroscado

Lámina

deslizante

Malla protectora

Figura 98. Esquema del Kit de la OMS para testar resistencias a insecticidas (traducido de

WHO/VBC/81.805).



Impregnación de los papeles con las diferentes concentraciones de insecticidas

Se han seleccionado inicialmente tres insecticidas, Deltametrina, Permetrina y

Cipermetrina, que son los tres principios activos más utilizados en ambientes urbanos. Los tres

pertenecen al grupo de los insecticidas Piretroides sintéticos.

Como se ha comentado antes se tienen que enfrentar los mosquitos a papeles impregnados

con distintas concentraciones de cada insecticida para determinar la dosis a la que se produce

la mortalidad.

Los papeles (de 12 x 15 cm) se impregnaron en el laboratorio de la Universidad de Zaragoza

en una campana de extracción para evitar intoxicaciones con los insecticidas. Se disolvieron

diferentes concentraciones de dichos insecticidas de grado técnico en acetona (2 ml por papel)

y aceite de silicona (0,66 ml por papel) siguiendo el método descrito por la OMS (OMS, 2006),

por lo que en cada papel se aplican 2,66 ml. Las concentraciones se expresaron como el

porcentaje de materia activa por unidad de volumen del aceite de silicona. Los mg de

insecticida que hay que aplicar en cada papel se calculan multiplicando la concentración

deseada por los ml de aceite de silicona. Dividiendo los mg de insecticida entre 0,018 m2 (la

superficie de cada papel es de 180 cm2) obtenemos la cantidad por metro cuadrado. También

se prepararon del mismo modo los papeles control, pero sin insecticida.

Las concentraciones discriminantes permiten realizar una evaluación rápida de la

resistencia de una población de mosquitos a un insecticida concreto. Estas concentraciones

están prefijadas por organizaciones mundiales como la OMS, aunque también pueden ser

establecidas en cada territorio para adaptarse mejor a las poblaciones existentes. Gracias a las

concentraciones discriminantes se pueden hacer evaluaciones más rápidas de las poblaciones

salvajes de insectos, sin necesidad de comparar estas poblaciones con cepas susceptibles

continuamente. La OMS recomienda unas concentraciones discriminantes para varios

mosquitos (Anophelinos, Culex quinquefasciatus o Aedes aegypti), pero no para Aedes

albopictus ni para todos los insecticidas.

Para calcular la concentración discriminante, se necesita una población susceptible de

referencia. Nosotros la calculamos en 2016 empleado una cepa de referencia en España,

recogida en Barcelona y mantenida desde 2008 en nuestros laboratorios de la Universidad de

Zaragoza. Esta población no ha sido expuesta a insecticidas en el laboratorio, por lo que puede

suponerse como no resistente. El coste normalmente asociado a mantener los mecanismos de

resistencia contra insecticidas acaba generando gradualmente poblaciones susceptibles

cuando desaparece la presión selectiva al retirar el insecticida de su entorno (Wan-Norafikah y

cols., 2008; Chan y Zairi, 2013).

La OMS define las concentraciones discriminantes mediante dos criterios: el doble de la

concentración más baja que obtiene una mortalidad del 100% o el doble del valor de la LC99

(concentración letal que mata al 99% de los mosquitos). Se optó por el primer criterio para fijar

nuestras concentraciones discriminantes. También se calcularon las LC99 de cada insecticida

para poder comparar los resultados. Las LC99 se calcularon mediante un análisis probit, con

tres variables numéricas: Concentración (covariable transformada en Log base 10), mosquitos



expuestos y mosquitos muertos. Según la OMS, una población se considera susceptible si la

mortalidad registrada tras las 24 h está entre el 90% y el 98%, y es resistente si la mortalidad

es inferior al 90%. La OMS también recomienda en el caso de poblaciones resistentes analizar

la intensidad de las resistencias. Se considera una población de baja intensidad de la

resistencia aquella que tenga menos mortalidad que el 90% con la concentración diagnóstico

pero más del 98% con la concentración diagnóstico multiplicada por 5. Sería una resistencia de

intensidad moderada si la mortalidad es inferior al 98% con la concentración diagnóstico

multiplicada por 5 pero superior al 98% con la concentración diagnóstico multiplicada por 10. Y

una población presentaría una resistencia de intensidad elevada si la mortalidad es inferior al

98% con la concentración diagnóstico multiplicada por 10. Estas clasificaciones de las

intensidades se han fijado por primera vez en la segunda edición de “Test procedures for

insecticide resistance monitoring in malaria vector mosquitoes” (noviembre 2016) de la OMS

(OMS, 2016).

Los datos del Knock Down anotados cada 15 min se emplearon para calcular el KDT50 de

cada población frente a cada insecticida. Con este dato podemos comparar las KDT50 de cada

población con la KDT50 de la cepa susceptible a insecticidas, calculando la proporción de

resistencia RR50 (KDT50 de la población de campo / KDT50 de la población susceptible). Valores

altos de la RR50, por encima de 2 pueden indicar un estado incipiente de resistencia

(Marcombe y cols., 2014).

Poblaciones seleccionadas para las pruebas de resitencia

Tomando como referencia los resultados obtenidos en años previos y las

concentraciones discriminantes de los tres insecticidas anteriormente citados

(Deltametrina, Permetrina y Cipermetrina), se seleccionaron tres poblaciones distantes

geográficamente con antecedentes históricos de invasión de mosquito tigre diferentes.

Por un lado se eligió trabajar con poblaciones F1 descendientes de huevos de trampas

colocadas en Benicasim, Castellón (donde la especie está establecida desde 2010), en

segundo lugar se trabajó con F1 de Alhaurin de la Torre (Málaga) donde Ae. albopictus fue

detectado en 2014 y está en plena expansión y por último, se obtuvo la generación F1 de

poblaciones detectadas en 2017 en Beceite (Teruel). Se tomo de referencia control la

población mantenida en laboratorio en la Universidad de Zaragoza.



Resultados

A continuación presentamos los resultados de los ensayos realizados para la

determinación de las resistencias de las poblaciones de mosquito tigre a distintos

insecticidas.

Tabla 35. Resultados de los tiempos de Knock-down (minutos)y del porcentaje de mortalidad a las 24h post tratamiento de las poblaciones de Ae.albopictus testadas frente a las concentraciones discriminanates de los tres insecticidas seleccionados.

Deltametrina 0,05%

Permetrina 1%

Cipermetrina 0,1%

Población KDT50 %Mortalidad

KDT50 %Mortalidad

KDT50 %Mortalidad

ZaragozaLab 19,926 100

20,695 100

19,139 100

Benicasim 18,947 100

21,173 100

19,568 100

Alhaurin 20,321 100

20,543 100

20,392 99

Beceite 18,567 99

21,119 100

19,139 100

KDT50, tiempo de volteo para que el 50% de la población expuesta

Los cuatro grupos de 25 hembras alimentadas con azúcar de cada población fueron

expuestas a las tres concentraciones discriminantes durante una hora. El volteo se

contabilizó con intervalos de 15minutos y la mortalidad a las 24horas.

Todas las poblaciones fueron sensibles a los tratamientos y no se han detectado

resistencias a los insecticidas Deltametrina, Permetrina y Cipermetrina.

Como perspectivas para futuros estudios, sería quizás interesante calcular las

concentraciones letales (CL50) de cada población frente a cada insecticida concreto.



Conclusiones

Objetivo 1

A lo largo del año 2017 en el que se ha continuado con las labores de prospección

entomológica en puertos y aeropuertos de la península y Baleares; se han podido

identificar un total de 2004 ejemplares, pertenecientes a ocho especies diferentes de

dípteros hematófagos pertenecientes a la familia de los culícidos: Culex pipiens, Culex

hortensis, Ochlerotatus caspius, Ochlerotatus detritus, Aedes albopictus, Culiseta

longiareolata, Culiseta subochrea y Coquillettidia richiardii. Se han capturado menos

ejemplares y dos especies menos que en 2016, probablemente debido a la escasez de

precipitaciones. La metodología ha sido la misma que la empleada en los últimos años de

trabajo entomológico. Se han empleado diferentes métodos de captura (trampas de luz,

de cebo químico y de ovoposición) con el fin de aumentar las posibilidades de detección de

culícidos que pudieran haber llegado de forma accidental a España. En los casos en los que

no ha habido impedimento climático ni burocrático, se ha muestreado quincenalmente

desde el mes de junio hasta noviembre.

Cuatro de las especies capturadas pueden estar relacionadas con la transmisión de

patógenos. Cx. pipiens ha sido con diferencia la especie mayormente capturada

representando el 49,2% de las capturas. Su presencia ha sido registrada en la totalidad de

las estaciones de muestreo. Le sigue Oc. caspius con un 35,9% de las capturas y ha sido

capturado en Barcelona (tanto en el aeropuerto como en el puerto) así como en el

aeropuerto de Palma de Mallorca y muy puntualmente en la base aérea de Zaragoza. Ae.

albopictus, ha aumentado con respecto a 2016 representando un 5,1% de las capturas en

Barcelona, Palma de Mallorca y Valencia.

No se han detectado hasta el momento la presencia de especies exóticas de mosquitos

a excepción del Aedes albopictus que sigue ampliando su rango de distribución por España

(ver detalles en Objetivo2).

Ver Anexo I, II y III.

Objetivo 2

Se han obtenido datos actualizados de la distribución de Ae. albopictus en siete

Comunidades autónomas: País Vasco, Aragón, Comunidad Valenciana, Islas Baleares,

Región de Murcia, Andalucía, Madrid y ciudad de Ceuta.

En la Comunidad valenciana se está llevando a cabo un seguimiento continuo de

trampas en los municipios de Benicasim, las observaciones a lo largo de los años 2016 y

2017 parecen indicar que los picos de abundancia suelen aparecer en primavera (abril y

mayo) y a finales del verano (agosto/septiembre). No obstante es una especie cuya

distribución y dinámica poblacional está estrechamente relacionada con las condiciones

atmosféricas y la disponibilidad de agua, así como con las actividades humanas y

caracterizada por una gran capacidad adaptativa, hecho que parece venir reflejado en la el



patrón observado en el seguimiento llevado a cabo en la Comunidad Autónoma de

Andalucía, concretamente en Benalmádena, donde se observan varios picos de actividad a

lo largo del año. La actividad del mosquito se inicia a en abril/mayo y en las tres localidades

está activo hasta finales de noviembre, presentando un periodo de actividad entre 6 y 8

meses. El conocimiento de la actividad de Ae. albopictus en cada zona es importante para

el diseño de las estrategias de vigilancia y control con el fin realizar los tratamientos que

puedan acabar con las primeras generaciones anuales y de esta manera mitigar las

molestias ocasionadas por esta especie exótica invasora.

Se ha trabajado en 122 municipios. Hay que destacar que ha habido municipios con

nuevas detecciones en 2017 en las provincias de Almería (Vera), Granada (Albuñol y

Motril), Málaga (Casares y Torrox), Cádiz (Línea de la Concepción), Sevilla (Sevilla), Baleares

(Sant Llorenç), Huesca (Binaced), Zaragoza (Cuarte de Huerva, Calatayud, Nuévalos,

Pinseque) y Teruel (Beceite y Mora de Rubielos). Se puede concluir con este tercer año de

trabajos intensivos en Andalucía que la especie sigue su dispersión en zonas muy

relacionadas con las actividades humanas y que se ha detectado por primera vez en la

ciudad de Sevilla (primera cita para la Provincia). En el País Vasco a la vista de los

resultados obtenidos, durante 4 años consecutivos se han detectado huevos de este

mosquito en las mismas zonas en Irún-Behobia, aunque no parece haberse expandido por

el centro de Irún, ni tampoco en localidades próximas, como Hondarribia. No obstante, la

aparición de nuevos puntos positivos en Vizcaya, MercaBilbao (Basauri) y Megapark

(Barakaldo), es decir, centros logísticos con alto movimiento de transporte de mercancías,

muestra la gran capacidad de dispersión del mosquito y, la posibilidad de que pueda

introducirse e implantarse en cualquier municipio donde haya una intensa actividad

industrial, comercial, con abundante tráfico vial y de transporte de mercancías.

Objetivos 3 y 4

En todos los PdE de las islas Canarias estudiados y su entorno se detectaron culícidos. Al

igual que en años anteriores, los PdE con mayor abundancia fueron aquellos que

favorecían la presencia de ambientes de cría, como los invernaderos, huertas, jardines,

etc... Sobre todo los de la isla de Tenerife, Fuerteventura y Lanzarote y en menor medida

en Gran Canaria y La Palma.

Respecto a las especies detectadas, de nuevo se ha registrado Ochlerotatus eatoni,

endémico de la Macaronesia. Si recordamos, esta especie experimentó una reciente

expansión en la isla de Madeira (Clairouin, 2010), ubicándose en ambientes antrópicos

como son los cementerios, y compartiendo hábitat con Ae. aegypti. Por este motivo altas

probabilidades de detectar precozmente a otros aedinos con preferencias bioecológicas

semejantes. Todos los huevos encontrados durante el estudio fueron identificados

mediante el análisis del ADN. Adultos y larvas de Oc. eatoni fueron encontrados en BG

traps, ovitrampas y en criaderos situados en Tenerife y solo huevos en La Palma. En estas

trampas, como era de esperar, la mayoría de las capturas hembras correspondieron a la



especie Culex pipiens. Esta especie resultó ser la más abundante con un 48,1% de las

capturas totales.

En 2017 se capturaron tanto ejemplares adultos y larvas de Anopheles cinereus

hispaniola en el Puerto de Santa Cruz de Tenerife (Terminal de contenedores), puerto

ubicado en un área que presentó paludismo en el pasado. Por este municipio discurren

gran número de barrancos en los que existen ambientes apropiados para la cría de estos y

otros anofelinos de importancia sanitaria como es Anopheles sergentii, ausente este año

pero capturado años anteriores en este mismo PdE. Por primera vez se capturó una larva

de esta especie en el aeropuerto de Fuerteventura.

Este año, el Área de Salud Pública de la Isla de Fuerteventura, que participa en esta

vigilancia entomológica, solicitó en el mes de noviembre al Laboratorio de Entomología

Medica del IUETSPC la identificación de un ejemplar de mosquito capturado por un vecino

de Puerto del Rosario, municipio localizado entre el puerto y el aeropuerto de

Fuerteventura. Morfológicamente se pudo identificar este individuo como una hembra del

género Aedes, pero no fue posible confirmar la especie. Tras la extracción de ADN del

ejemplar se pudo determinar que las secuencias tenían un 99% de identidad con Aedes

aegypti. Se puso en marcha un plan de actuación de urgencia mediante ovitrampas y BG-

Sentinel para la monitorización las poblaciones y se procedió a realizar tratamientos

adulticidas así como eliminación de posibles focos de cría. Se va a realizar un seguimiento

de al menos 18 meses para asegurar que los tratameintos han sido efectivos y no queda

ninguna población de Ae. aegypti establecida en la zona.

Ver Anexo III Y IV.

Objetivo 5

No se han detectado resistencias de las poblaciones expuestas a Deltametrina,

Permetrina ni Cipermetrina a las concentraciones testadas. Sin embargo sería conveniente

hacer un seguimiento de éstas a lo largo del tiempo con el fin de evaluar si surgen

resistencias debido a la aplicación en campo de estas materias activas.



Conclusiones generales

En los muestreos realizados en 2017 no se ha detectado, a excepción del Aedes

albopictus, la presencia de nuevos vectores importados exóticos en los principales puertos

y aeropuertos de España, tanto en la Península como en el archipiélago Balear. Sin

embargo los resultados preliminares indican la detección temprana de un ejemplar de

Aedes aegypti en la Isla de Fuerteventura en el archipiélago de Canarias.

Se han identificado 15 especies diferentes de Culícidos (Culex pipiens, Ochlerotatus

caspius, Ochlerotatus detritus, Aedes albopictus, Culiseta longiareolata, Culiseta subochrea,

Coquillettidia richiardi, Ochlerotatus eatoni, Culex theileri, Culex laticinctus y Anopheles

cinereus hispaniola.)

Destacar un año más, la presencia ubicuista y abundante de la especie Culex pipiens en

todos los puntos muestreados tanto en la península como en Baleares y Canarias, vector

reconocido de arbovirosis importantes.

Se ha confirmado de manera significativa que la expansión del mosquito tigre (Aedes

albopictus) no cesa, detectándose con intensidad en Andalucía en las provincias de

Almería, Granada, Málaga y Cádiz y por primera vez en la provincia de Sevilla. Además se

confirma su establecimiento en Guipúzcoa (Irún) y hay que destacar su nueva detección en

la provincia de Vizcaya (concretamente en Bilbao). En Aragón se ha continuado la vigilancia

y se ha podido confirmar que el vector está presente en más municipios de las tres

provincias además de los detectados en 2016. En la isla de Mallorca como se preveía se ha

observado un aumento notable de su área de distribución.

Vigilar las poblaciones de culícidos en el entorno de los PdE de España nos permite, no sólo

valorar el riesgo de importación de especies exóticas con importancia en la transmisión de

enfermedades, sino tener un conocimiento de las especies autóctonas presentes en los

principales PdE así como sus áreas de influencia y que podrían estar involucradas en la

transmisión de enfermedades o podrían ser exportadas de forma accidental a otros países

ocasionando problemas medioambientales o sanitarios.



Anexo I. Imágenes de los puertos y aeropuertos muestreados en

2017 Objetivo 1

Imagen satélite de las zonas muestreadas en la Base aérea de Zaragoza. Fuente: GoogleEarth

Imagen satélite de las zonas muestreadas en la Base aérea de Torrejón de Ardoz. Fuente: GoogleEarth



Imagen satélite del aeropuerto civil de Barcelona. Fuente: GoogleEarth

Imagen satélite de la localización del Aeropuerto Internacional de Palma de Mallorca y de la Base Militar

Aérea de Son Sant Joan (perímetro enmarcado en rojo). Fuente: GoogleEarth.



Imagen satélite de la Base Militar de Son Sant Joan. a: Cuerpo de Guardia; b: patio de armas. c: Torre de

Control-Spantax; Fuente: GoogleEarth.

Imagen satélite de las zonas muestreadas en el aeropuerto civil de Madrid Barajas. Fuente: GoogleEarth



Imagen satélite de las zonas muestreadas en el puerto de Valencia. Fuente: GoogleEarth

Zonas muestreadas en el Puerto de Palma de Mallorca. A: Muelles Comerciales; B: Dique del Oeste-

Muelle Ribera en San Carlos; C: Dique del Oeste: Plataforma adosada. Fuente: Autoridad portuaria

http://www.portsdebalears.com)

http://www.portsdebalears.com/



Anexo II: Resultados de las capturas realizadas en 2017 en el Objetivo 1

2017

sp/PdE BARAJAS EL PRAT SON SANT JOAN BARCELONA VALENCIA PALMA ZARAGOZA TORREJÓN Totales

Culex pipiens 31 87 368 171 30 18 202 79 986

Culiseta longiareolata 2 2 0 2 0 1 112 4 123

Culex hortensis 1 0 0 0 0 0 0 0 1

Ochlerotatus caspius 0 382 279 57 0 0 1 0 719

Ochlerotatus detritus 0 56 2 0 0 0 0 0 58

Aedes albopictus 0 7 28 10 3 54 0 0 102

Coquillettidia richiardii 0 1 0 0 0 0 0 0 1

Culiseta subochrea 0 14 0 0 0 0 0 0 14

Totales 34 549 677 240 33 73 315 83 2004

AEROPUERTOS CIVILES PUERTOS BASES AÉREAS MILITARES

*se refleja en rojo las especies con importancia sanitaria (potencial transmisión de patógenos a humanos)



Anexo III: Resultados de las capturas realizadas en 2017 en el Objetivo 3

sp/PdE P-T A-TN I1-T A-TS I2-T I3-T P-C A-C I1-C P-P I1-P A-L P-L I1-L A-F P-F I1-F Totales

Ae. eatoni 0 44 20 0 0 0 0 0 0 17 0 0 0 0 0 0 0 81

Cs. longiareolata 327 510 108 8 8 0 0 0 0 0 0 126 1 6 9 112 1 1216

Cx. pipiens 313 573 102 234 197 63 21 5 0 0 0 14 0 1 3 7 17 1550

Cx. theileri 69 1 0 5 2 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 78

Cx. laticinctus 14 2 48 1 6 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 75

An. c. hispaniola 168 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 169

An. sergentii 55 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 55

Totales 946 1130 278 248 213 68 21 5 0 17 0 140 1 7 12 120 18 3224

ISLAS CANARIAS2017

TENERIFE GRAN CANARIA LA PALMA LANZAROTE FUERTEVENTURA

*se refleja en rojo las especies con importancia sanitaria (transmisión de patógenos a humanos)

P-T: puerto de Tenerife; A-TN: aeropuerto Tenerife Norte; I1-T, I2-T, I3-T: invernaderos Tenerife; A-TS: aeropuerto Tenerife Sur; P-C: puerto de Las

Palmas de Gran Canaria; A-C: aeropuerto de Gran Canaria; I1-C: invernadero de Gran Canaria; P-P: Puerto de La Palma; I1-P: invernadero de La Palma; A-L:

aeropuerto de Lanzarote; P-L: puerto de Lanzarote; I1-L: invernadero de Lanzarote; A-F: aeropuerto de Fuerteventura; P-F: puerto de Fuerteventura; I1-F:

invernadero de Fuerteventura.



Anexo IV: Biología y ecología de las especies capturadas en los

muestreos de 2017

Culex pipiens Linné, 1758

Se trata de un complejo de especies que se encuentran en toda Europa y Norte de Africa.

Un año más ha sido la especie más frecuentemente capturada y presente en todos los PdE a

excepción de la isla de La Palma donde no ha habido capturas. Esto se debe a que es capaz de

criar en todo tipo de aguas, desde las estrictamente peri domésticas a aquellas situadas en

pleno campo. Este hecho facilita mucho la subsistencia de la especie pues permite llevar a

cabo varias generaciones al año e incluso resistir a los inviernos más fríos. Las hembras

procedentes de las últimas generaciones de larvas del año entran en hibernación sin realizar

ninguna toma de sangre. Parece ser que es una combinación de temperaturas bajas y

fotoperiodos cortos los que actúan en la naturaleza como señal fenológica para alterar la

fisiología de las hembras provocando que entren en diapausa. Éstas reemprenderán su

actividad entre marzo y abril, después desaparecen y es en el mes de Junio cuando

generalmente se produce un aumento masivo de actividad de la especie, fenómeno que

podría interpretarse como resultado de las primeras generaciones larvarias del año. Tanto

machos como hembras, en su periodo activo, prefieren ambientes con temperaturas

comprendidas entre 15-20°C y una humedad relativa en torno al 60-70%, condiciones que se

hallan de forma nocturna al principio del verano. Durante el día esta especie suele cobijarse

entre la vegetación, alcantarillas, grutas, en definitiva lugares que mantienen unas

temperaturas, respecto a la ambiental, más bajas.

Importancia médica: Se considera que Culex pipiens está relacionado con la transmisión a

humanos de arbovirosis como el virus del Nilo Occidental, filariasis linfáticas así como

encefalitis.

Culex laticinctus Edwards 1913

Posee una distribución Mediterránea, pasando por la Península Arábica hasta Asia central.

No se han realizado abundantes capturas de esta especie pero todas ellas han tenido lugar en

Tenerife (tanto en el puerto como en el aeropuerto y sus áreas de influencia). Sus larvas suelen

encontrarse en contenedores artificiales o macetas en zonas ajardinadas, generalmente

asociadas a los géneros Anopheles y Culiseta. Es una especie exófila que raramente pica a

humanos por lo que no se le ha atribuido ningún papel vectorial.

Culex theileri Theobald, 1903

Se trata de una especie ampliamente distribuida por la región Paleártica, África y Europa.

Este año solo se ha capturado en la isla de Tenerife. Su biología se caracteriza por tener varias

generaciones anuales con gran resistencia a altas altitudes y con cierta diversidad en la

elección de lugares de cría. Este mosquito puede encontrarse tanto en pantanos como

arrozales o criaderos artificiales con aguas muy contaminadas. Suelen ser zoófilos y exófilos,

aunque en ocasiones pueden picar a humanos.

Importancia médica: Se relaciona a la especie con la transmisión del virus de la Fiebre del

Rift y con la Dirofilaria canina.



Ochlerotatus caspius (Pallas, 1771)

Se trata de una especie Paleártica. Se caracteriza por ser muy agresivo, capaz de picar a

través de la ropa y a plena luz del día. Son capaces de desplazarse grandes distancia volando

con el único fin de alimentarse. Sus hábitats larvarios se relacionan con zonas inundables, bien

por el desbordamiento de acequias y ríos en épocas estivales bien por encontrarse en charcos

de aguas permanentes junto a juncos y carrizos e incluso árboles. Esto concuerda con los

hábitats en los que se ha identificado en los muestreos de este año, El Prat, Palma de Mallorca

y un solo ejemplar en la base aérea de Zaragoza. La hibernación se hace en fase de huevo,

éstos son depositados en sitios que están expuestos a inundaciones intermitentes. Es

frecuente que se dé la eclosión de los adultos a finales de abril o primeros de mayo y que se

mantengan todo o parte del verano lo cual explica algunos de los resultados obtenidos en los

muestreos realizados estos últimos años.

Importancia médica: Se ha detectado virus del Nilo Occidental así como la bacteria causante

de la tularemia en poblaciones naturales de esta especie por lo que puede jugar un papel

importante como vector de enfermedades.

Ochlerotatus eatoni (Edwards, 1920)

Especie endémica de los archipiélagos de Canarias y Madeira. Las larvas desarrollan su ciclo

vital dentro de cavidades naturales, muy frecuentemente en los agujeros que presentan

algunos árboles, en donde el agua de lluvia queda retenida durante los meses de primavera y

verano, acumulando una gran cantidad de taninos y materia orgánica vegetal en

descomposición. Las hembras de esta especie no son antropofílicas. Este año, de nuevo solo se

ha registrado en Tenerife y La Palma.

No hay descrita ninguna relación con patógenos de importancia médica.

Ochlerotatus detritus (Haliday, 1833)

Es una especie Paleártica con una distribución costera a lo largo de toda Europa.

Ochlerotatus detritus es una especie multivoltina capaz de cerrar más de 3 generaciones por

año. Normalmente la especie hiberna en estadio de huevo y las primeras larvas eclosionan

algunas semanas después de la mayoría de las especies que hibernan debajo del hielo cuando

la temperatura supera los 10°C. La especie tiene una gran tolerancia a la salinidad por lo que

corresponde con los enclaves donde se colocan las trampas y ha sido capturada, en los

aeropuertos de Barcelona y Palma de Mallorca. Las hembras son muy agresivas sobre los seres

humanos y siempre pican en gran número. Pueden alimentarse durante todo el día pero están

más activas al atardecer.

No se asocia con la transmisión de ningún patógeno.

Aedes albopictus (Skuse 1895)

Es una especie originaria del sureste asiático aunque desde hace unos años ha colonizado

todos los continentes a excepción de la Antártida ocasionando importantes molestias y

problemas sanitarios derivados de sus picaduras. Es una especie muy agresiva y principalmente

diurna aunque también pica al amanecer y anocheces cuando las temperaturas son más

adecuadas. Este año se han identificado ejemplares de esta especie en Barcelona, Palma de



Mallorca y en Valencia. Se caracteriza por criar en gran variedad de ambientes y contenedores.

Desde huecos en árboles (ambientes de orígen) a recipientes más humanizados como pueden

ser ceniceros e incluso floreros y neumáticos usados. Pasan el invierno en forma de huevo y las

hembras suelen ser muy antropófilas aunque también se alimentan de forma oportunista de

otros mamíferos (perros, conejos, …) y aves. Éste hecho indica que esta especie posee grandes

ventajas a la hora de participar en ciclos de transmisión de gran variedad de arbovirus que

utilizan a estos animales como principales hospedadores. Suelen picar tanto de día como de

noche.

Importancia médica: Esta especie es un principal vector de dengue, Chikungunya además de

otras arbovirosis y Dirofilaria immitis. Recientemente ha tenido un papel importante en los

brotes epidémicos del virus Zika.

Aedes aegypti (Linnaeus 1762)

Se trata de una especie que se encuentra preferentemente en regiones templadas de

ambos hemisferios. Es originaria del continente africano y sufrió una importante expansión en

el siglo XVIII hacia el continente americano (a través de los barcos). Desapareció de Europa a

mediados del s. XX pero en la última década, debido a la globalización, ha sido reintroducido.

Se ha descrito en Madeira, Rusia, Turquía y Países Bajos y como hemos comentado en el

presente informe, en Canarias (desde donde se teme que sea introducido a Europa

continental). Es una especie multivoltina con gran plasticidad ecológica, adaptada a ambiente

urbanos y antropicos, suele presentar un pico de abundancia entre los meses de agosto a

octubre. Pasan el invierno en forma de huevo, aunque sin capacidad de entrar en diapausa y

las hembras suelen ser mamófilas, preferentemente antropófilas. Suelen alimentarse varias

veces durante un mismo ciclo gonotrófico, hecho que tiene importanyes implicaciones en la

dinámica de transmisión de enfermedades.

Importancia médica: Es conocido como el mosquito de la fiebre amarilla aunque también es

el principal vector de dengue, chikungunya y zika. Se considera que es vector potencial del

virus del Nilo Occidental y de encefalitis equina venezolana (ECDC, 2017).

Culiseta longiareolata (Macquart, 1838)

Se trata de una especie ampliamente distribuida por todo el sur de la región Paleártica, sur

de África y parte de Asia aunque presenta una fuerte influencia mediterránea.

Se trata de una de las especies más abundantes identificada en los muestreos y a menudo

asociada a Cx pipiens. Sus hábitats larvarios varían desde charcos o fosas de riego a pilones de

abrevaderos de animales domésticos. Se ha capturado en Tenerife, Lanzarote y Fuerteventura,

además de en Barcelona, Barajas, Mallorca y Zaragoza.

A pesar de ser un culícido de gran tamaño no plantea problemas para el ser un humano por

lo que no tiene implicaciones a nivel de salud pública.

Culiseta subochrea (Edwards 1921)

Esta especie suele encontrarse por toda Europa e incluso en el norte de África.



Suelen hibernar en forma de adulto escondiéndose en sótanos, cobertizos e incluso en el

interior de las casas. Con los primeros cambios de temperatura de la primavera, tiene

comienzo su actividad y alcanzan un máximo de poblaciones entorno al mes de septiembre.

Suelen evitar las altas temperaturas y crían en todo tipo de hábitats acuáticos, desde charcas

limpias hasta aguas estancadas e incluso resisten un cierto grado de salinidad. Solo ha sido

capturada en el aeropuerto y puerto de Barcelona.

Importancia médica: Se ha relacionado con la transmisión del virus Tahyna. Pueden

alimentarse de sangre humana aunque también se conoce que tienen un papel importante en

la transmisión de patógenos a pájaros.

Anopheles cinereus hispaniola (Theobald, 1903)

Especie distribuida por el Mediterráneo y Norte de África. Su presencia en los muestreos

desde 2015 se limita a las islas Canarias, concretamente a la isla de Tenerife y un ejemplar en

Fuerteventura. Posee varias generaciones anuales y puede encontrarse tanto a nivel del mar

como en alta montaña. Acostumbran a criar en arroyos con aguas limpias y poco profundas,

pero también pueden encontrarse en los márgenes de lagos o pantanos. Son de preferencia

zoófilos aunque también pican a humanos.

Importancia médica: Es un vector potencial de paludismo en el sur de Europa.

Coquilletidia richiardii (Ficalbi, 1889)

Esta especie es habitual en toda Europa y está ampliamente distribuida en las regiones

Paleárticas del Oeste. Tiene una generación por año en el norte y de 2 a 3 generaciones en el

sur. Las hembras depositan los huevos en racimos circulares. Las larvas eclosionan dos

semanas tras la ovoposición y suelen hibernar en L3 o L4. Las larvas y pupas viven sumergidas y

obtienen el oxígeno del parénquima de las plantas acuáticas moviéndose muy poco. Los

lugares de cría pueden ser diferentes cuerpos de agua permanente ricos en Acorus sp., Typha

sp., Phragmites sp., etc… la pupación tienen lugar a finales de mayo o principios de junio

coincidiendo con los ocurrido en el aeropuerto de Barcelona. Las hembras pueden ser muy

numerosas y causar severas molestias a los humanos y animales domésticos en los alrededores

de lagunas, lagos, marismas y estuarios. Se ha identificado alimentándose sobre el ser humano

dentro de las casas en Portugal e Inglaterra. Las molestias suelen estar restringidas a los

alrededores de los focos de cría pero pueden llegar a ser desplazadas por acción del viento e

invadir altitudes de 800-900 metros. Las hembras tienen preferencias tróficas sobre los

mamíferos pudiéndose alimentar también sobre pájaros y anfibios.

Importancia médica: Las hembras son capaces de transmitir el Virus del Oeste del Nilo y el

Virus de la Fiebre hemorrágica de Omsk en la naturaleza, además de la tularemia en

condiciones de laboratorio.



Equipos colaboradores

Javier Lucientes Curdi, Sarah Delacour Estrella, Rosa Estrada Peña. Facultad de Veterinaria.

Universidad de Zaragoza.

Ricardo Molina y Rosario Melero Alcíbar. Instituto de Salud Carlos III. Majadahonda,

Madrid.

Carles Aranda. Servei de Control de Mosquits, Consell Comarcal del Baix Llobregat,

Barcelona.

Mikel Bengoa. Consultoría Moscard Tigre. Palma de Mallorca.

Francisco Collantes, Juan Antonio Delgado y Umberto Guinea. Departamento de Zoología

y Antropología Física, Facultad de Biología, Universidad de Murcia.

Jesús Félix Barandika y Ana L. García-Pérez. NEIKER, Instituto Vasco de Investigación y

Desarrollo Agrario, Derio, Bizkaia.

Basilio Valladares Hernández, Mª Cristina Pou Barreto, Carolina Fernández Serafín e Irene

Serafín Pérez. Instituto Universitario de Enfermedades Tropicales y Salud Pública de

Canarias (IUETSPC), ULL.

Francisco Javier Falo Forniés, Pilar Cisneros y Alberto Alcolea. Dirección General de Salud

Pública del Gobierno de Aragón.

Mercedes Navarro, Emilio Martínez y David López. Instituto Municipal de Salud Pública del

Ayuntamiento de Zaragoza

Miguel-Ángel Miranda y Carlos Barceló. Departamento de Zoología. Universitat de les Illes

Balears (UIB).

Compañía de tratamientos Levante. (CTL)

Rafaela Belmonte Nortes

Compañía de Control de Plagas GesplaSur

Andaluza de Tratamientos e Higiene SA (ATHISA)



Referencias bibliográficas

Adhami, J. & Reiter, P. (1998). Introduction and establishment of Aedes (Stegomyia)

albopictus Skuse (Diptera: Culicidae) in Albania. Journal of the American Mosquito Control

Association. 14: 340-343.

Alarcón-Elbal, P.M., Delacour-Estrella, S., Pinal, R., Ruiz-Arrondo, I., Muñoz, A., Bengoa,

M., Eritja, R. & Lucientes, J. (2010). Establecimiento y mantenimiento de una colonia

autóctona española de Aedes (Stegomyia) albopictus Skuse, 1894, (Diptera: Culicidae) en

laboratorio. Revista Ibero-Latonoamericana de Parasitología. 69: 140-148.

Alarcon-Elbal, P., Delacour- Estrella, S., Collantes, F., Delgado, J.A., Ruiz-Arrondo, I.,

Pinal-Prieto, R., Melero-Alcibar, R., Molina,R., Sierra, M.J., Amela, C. & Lucientes, J. (2013).

Primeros hallazgos de Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse, 1894) en la provincia de

Valencia, España. Anales de Biología. 35: 95-99.

Alarcón-Elbal, P.M., Delacour-Estrella, S., Ruiz-Arrondo, I., Collantes, F., Delgado, J.A.,

Morales-Bueno, J., Sánchez-López, P.F., Amela, C., Sierra-Moros, M.J., Molina, R. &

Lucientes, J. (2014). Updated distribution of Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) in Spain:

new findings in the mainland Spanish Levante, 2013. Memorias do Instituto Oswaldo Cruz.

109: 782-786.

Amraoui, F., Vazeille, M. y Failloux, A.B. (2016). French Aedes albopictus are able to

transmit yellow fever virus. Eurosurveillance. 21 (39): 14-16.

Aranda, C., Eritja, R. & Roiz, D. (2006). First record and establishment of the mosquito

Aedes albopictus in Spain. Medical and Veterinary Entomology. 20: 150-152.

Baéz, M. (1988) Análisis faunístico de los Dípteros de la laurisilva de Tenerife, Islas

Canarias (Insecta, Diptera). Boletín de la Asociación Española de Entomología. 12: 181-208.

Bueno-Marí, R., Chordá-Olmos, F.A., Barnués-Bañeres, A., Jiménez-Peydró, R. (2010).

Detección de Aedes albopictus (Skuse, 1894) en Torrevieja (Alicante, España). Boletín de la

Asociación Española de Entomología. 33: 529-532.

Bueno Marí, R. & Jiménez Peydró, R. Situación actual en España y eco-epidemiología de

las arbovirosis transmitidas por mosquitos culícidos (Diptera: Culicidae). Revista Española

de Salud Pública. 84(3): 255-269.

Barceló, C., Bengoa, M., Monerris, M., Molina, R., Delacour-Estrella, S., Lucientes, J. &

Miranda, M.A. (2015). First record of Aedes albopictus (Skuse, 1894) (Diptera; Culicidae)

from Ibiza (Balearic Islands; Spain). Journal of the European Mosquito Control Association.

33: 1–4.

Becker, N., Petric, D., Zgomba, M., Boase, C., Minoo, M., Dahl, C. & Kaiser, A. (2010).

Mosquitoes and Their control.. Second Edition. Ed. Springer.



Cancrini, G., Frangipane di Regalbono, A., Riccia, I., Tessarin, C., Gabrielli, S. &

Pietrobelli, M. (2003). Aedes albopictus is a natural vector of Dirofilaria immitis in Italy.

Veterinary Parasitology. 118: 195-202.

Calba, C., Guerbois-Galla, M., Franke, F., Jeannin, C. Auzet-Caillaud, M., Grard, G. y cols.,

(2017). Preliminary report of an autochthonous Chikungunya outbreak in France, July to

September 2017. Eurosurveillance. 22: 17-00647.

Clairouin, I. (2010). Estudo dos culicídeos (Diptera: Culicidae) nos cemitérios das ilhas da

Madeira e Porto Santo. Tesis de Maestría. Universidade Nova de Lisboa.

Chen, C.D., Nazni, W.A., Lee, H.L., Norma-Rashid, Y., Lardizabal, M.L. & Sofian-Azirun M.

(2013) Temephos resistance in field Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse) from Selangor,

Malaysia. Tropical Biomedicine 30(2):220-230.

Collantes, F. & Delgado, J.A. (2011). Primera cita de Aedes (Stegomia) albopictus (Skuse,

1894) en la región de Murcia. Anales de Biología. 33: 99-101.

Delacour-Estrella, S., Alarcón-Elbal, P., Bengoa, M., Melero-Alcíbar, R., Pinal, R., Ruiz-

Arrondo, I., Molina, R. & Lucientes, J. (2009). Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse, 1894)

primera cita en Torrevieja (Alicante). Boletín de la Sociedad Entomológica Aragonesa. 45:

518.

Delacour-Estrella, S., Bravo-Minguet, D., Alarcón-Elbal, P.M., Bengoa, M., Casanova, A.,

Melero-Alcibar, R., Pinal, R., Ruiz-Arrondo, I., Molina, R. & Lucientes, J. (2010). Detección

de Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse, 1894) (Diptera: Culicidae) en Benicàssim. Primera

cita para la provincia de Castellón (España). Boletín de la Sociedad Entomológica

Aragonesa. 47: 440

Dusfour, I., Thalmensy, V., Gaborit, P., Issaly, J., Carinci, R. & Girod, R. (2011) - Multiple

insecticide resistance in Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) populations compromises the

effectiveness of dengue vector control in French Guiana.- Memorias Instituto Oswaldo Cruz.

106 (3): 346-52.

European Centre for Disease Prevention and Control (2012). Guidelines for the

surveillance of invasive mosquitoes in Europe. Stockholm: ECDC.

Eritja, R., Aranda, C. & Báez, M. (2002). Catálogo de los Diptera de España, Portugal y

Andorra (Insecta) Culicidae. Monografías SEA, vol. 8.

Eritja, R., Escosa, R., Lucientes, J., Marqués, E., Molina, R., Roiz, D. & Ruiz, S. (2005).

Worldwide invasion of vector mosquitoes: present European distribution and challenges

for Spain. Biological Invasions. 7: 87-97.

Gratz, NG. (2004). Critical review of the vector status of Aedes albopictus. Medical and

Veterinary Entomology. 18: 215–227.

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Chen%20CD%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23959487

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Nazni%20WA%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23959487

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Lee%20HL%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23959487

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Norma-Rashid%20Y%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23959487

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Lardizabal%20ML%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23959487

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Sofian-Azirun%20M%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23959487

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Dusfour%20I%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=21655824

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Thalmensy%20V%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=21655824

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Gaborit%20P%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=21655824

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Issaly%20J%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=21655824

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Carinci%20R%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=21655824

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Girod%20R%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=21655824



Khadem, M. (2015) Deep Interisland Genetic Divergence in the Macaronesian Endemic

Mosquito Ochlerotatus eatoni (Diptera: Culicidae), Indication of Cryptic Species. Journal of

Medical Entomology. 52(5):1175-80.

La Ruche, G., Souarès, Y., Armengaud, A., Peloux-Petiot, F., Delaunay,P., Desprès P., y

cols. (2010). First two autochthonous dengue virus infections in metropolitan France,

September 2010. Euro Surveillance. 15(39):pii=:19676.

Márquez Arce, D. (2015). Evaluación del riesgo de transmisión de paludismo en

Canarias. Trabajo Fin de Máster. Máster Investigación y Diagnóstico de Enfermedades

Tropicales. ULL.

Macoris, M.L.G., Andrighetti, M.T.M., Otrera, V.C.G., Carvalho, L.R., Júnior, A.L.C. &

Brogdon, W.G. (2007). Association of insecticide use and alteration on Aedes aegypti

susceptibility status. Memorias do Instituto Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro 102(8): 895-900

Manica, M., Rosà, R., Della Torre, A. & Caputo, B. (2017). From eggs to bites: do ovitrap

data provide reliable estimates of Aedes albopictus biting females? PeerJ 5:e2998

Marabuto, E. y Rebelo, M.T. (2017). The Asian tiger mosquito, Aedes albopictus (Skuse,

1894), a vector of dengue, Chikungunya and zika, reaches Portugal. bioRxiv. 22 septiembre

2017.

Marcombe, S., Poupardin, R., Darriet, F., Reynaud, S., Bonnet, J., Strode, C., Brengues, C.,

Yébakima, A., Ranson, H., Corbel, V. & David, J.P. (2009). Exploring the molecular basis of

insecticide resistance in the dengue vector Aedes aegypti: a case study in Martinique Island

(French West Indies). BMC Genomics. 10:494.

Márquez, D. (2015). Evaluación del riesgo de transmisión de paludismo en Canarias.

Trabajo Fin de Máster. Máster Investigación y Diagnóstico de Enfermedades Tropicales.

ULL.

Miquel, M., Del Rio, R., Borràs, D., Barceló, C., Paredes-Esquivel, C., Lucientes, J. &

Miranda, M.A. (2013). First detection of Aedes albopictus (Skuse, 1894) (Diptera: Culicidae)

in the Balearic Islands (Spain). Journal of the Eurpean Mosquito Control Association. 31: 8-

10.

Mitchell, C. J. (1995) The role of Aedes albopictus as an arbovirus vector. Parassitologia.

37: 109–113.

Morchón R., Bargues M. D., Latorre-Estivalis J. M., Pou-Barreto C., Melero-Alcibar R.,

Moreno M., Va. Culex theileri is a potencial natural vector of Dirofilaria immitis in Canary

Islanad, Spain. Journal of Clinical & Experimental Pathology. 3-001: 1-7.

Robayna, G. (1952). El paludismo en Tenerife. Revista de Sanidad e Higiene Pública, 26:

1-16.

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Poupardin%20R%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Darriet%20F%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Reynaud%20S%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Bonnet%20J%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Strode%20C%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Brengues%20C%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Y%C3%A9bakima%20A%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Ranson%20H%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Corbel%20V%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=David%20JP%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255



Schaffner, F., Angel, G., Geoffroy, JP., Hervy, A., Rhaiem, A. & Brunhes, J. (2001) The

mosquitoes of Europe. An identification and training programm (CD-Rom). IRD Editions &

EID Méditerranée. Montpellier, France.

Scholte, E.J., Ibáñez-Justicia, A., Stroo,A., De Zeeuw, J., den Hartog, W. & Reusken,

C.B.E.M. (2014). Mosquito collections on incoming intercontinental flights at Schiphol

International airport, the Netherlands, 2010-2011. Journal of the European Mosquito

Control Association; 32.

OMS (1975). Manual on Practical Entomology in Malaria. Part II. Methods and Techniques.

World Health Organization, Geneva.

OMS (2006). Guidelines for testing mosquito adulticides for indoor residual spraying and

treatment of mosquito nets. World Health Organization, Geneva

OMS (2006). Pesticides and their application for the control of vectors and pests of public

health importance. Disponible en URL: http://apps.who.int/iris/bitstream/10665/69795

/1/WHO_CDS_NTD_WHOPES_GCDPP_2006.1 _eng.pdf

Vilas, F., Carpintero, J., Sevilla, S., Martínez, A., Ordobás, M., Bernal, J., Díaz, R., Iriso, A.,

Sevillano, O., Escacena, C., de la Fuente, S., Arce, A., Estirado, A., Frutos, J., & Fúster, F. (2012).

Brote de Leishmaniasis en la zona suroeste de la Comunidad de Madrid. Medidas de

investigación y control Medioambiental. Profesión veterinaria, 17(79): 6-15.

Wan-Norafikah, O., Nazni, W.A., Lee, H.L., Chen, C.D., Wan-Norjuliana, W.M., y cols., (2008)

Detection of permethrin resistance in Aedes albopictus Skuse, collected from Titiwangsa Zone,

Kuala Lumpur, Malaysia. ASEAN Congress of Tropical Medicine and Parasitology; 3: 69–77.

Evaluación del riesgo de introducción y circulación del virus de dengue en España. Mayo

2013. Centro de Coordinación de Alertas y Emergencias sanitarias (CCAES). Ministerio de

Sanidad, Servicios Sociales e Igualdad.

Ministerio de Sanidad, Servicios Sociales e Igualdad (2015). Informe de situación y

evaluación del riesgo para España de Paludismo. Centro de Coordinación de Alertas y

Emergencias sanitarias (CCAES).

Coordinadora de organizaciones de agricultores y ganaderos. (2014). Agricultura-Planta

ornamental y flor cortada. Análisis agroganadero.

Zalasiewicz, J., Williams, M., Steffen, W. & Crutzen, P. (2010). The new world of the

Anthropocene. Environmental Science & Technology; 44(7): 2228–2231.

https://www.msssi.gob.es/profesionales/saludPublica/ccayes/.../doc/actDen27_11.pdf

https://www.boe.es/boe/dias/2014/12/03/pdfs/BOE-A-2014-12583.pdf

http://www.palmasport.es/web/guest/publicaciones

http://www.who.int/ith/en/



ECDC. (2017). Aedes aegypti - Factsheet for experts. Disponible en URL:

http://ecdc.europa.eu/en/healthtopics/vectors/mosquitoes/Pages/aedes-aegypti.aspx

ECDC. (2017). Factsheet for experts. Disponible en URL: Aedes albopictus.

http://ecdc.europa.eu/en/healthtopics/vectors/mosquitoes/Pages/aedes-albopictus.aspx

http://ecdc.europa.eu/en/healthtopics/vectors/mosquitoes/Pages/aedes-aegypti.aspx

http://ecdc.europa.eu/en/healthtopics/vectors/mosquitoes/Pages/aedes-albopictus.aspx

VIGILANCIA ENTOMOLÓGICA EN AEROPUERTOS Y … · propiciado a su vez, el aumento de las...

Documents

Transcript of VIGILANCIA ENTOMOLÓGICA EN AEROPUERTOS Y … · propiciado a su vez, el aumento de las...