UNlVERSlDAD NAClONAL DE EDUCAClÓN
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UNIVERSIDAD NACIONAL DE EDUCACIÓN Enrique Guzmán y Valle. “Alma Máter del Magisterio Nacional” FACULTAD DE AGROPECURIA Y NUTRICÍON TESIS LOS FERTILIZANTES ORGÁNICOS Y SU INCIDENCIA EN LA GERMINACIÓN DE LA SEMILLA BOTÁNICA DE GUANÁBANA (ANNONA MURICATA) EN EL VIVERO EXPERIMENTAL DE LA CANTUTA PRESENTADA POR Isrrael, CALLE SAAVEDRA ASESOR: Dr. Tiburcio Rufino, SOLANO LEÓN Para optar al Título Profesional de Licenciado en Educación Especialidad: Agropecuaria LIMA – PERÚ 2015
Transcript of UNlVERSlDAD NAClONAL DE EDUCAClÓN
UNIVERSIDAD NACIONAL DE EDUCACIÓN
Enrique Guzmán y Valle.
“Alma Máter del Magisterio Nacional”
FACULTAD DE AGROPECURIA Y NUTRICÍON
TESIS
LOS FERTILIZANTES ORGÁNICOS Y SU INCIDENCIA EN LA
GERMINACIÓN DE LA SEMILLA BOTÁNICA DE GUANÁBANA (ANNONA
MURICATA) EN EL VIVERO EXPERIMENTAL DE LA CANTUTA
PRESENTADA POR
Isrrael, CALLE SAAVEDRA
ASESOR:
Dr. Tiburcio Rufino, SOLANO LEÓN
Para optar al Título Profesional de Licenciado en Educación
Especialidad: Agropecuaria
LIMA – PERÚ
2015
ii
TÍTULO
Los fertilizantes orgánicos y su incidencia en la germinación de la semilla
botánica de guanábana (Annona Muricata) en el vivero experimental de la
Cantuta.
Bachiller: Isrrael CALLE SAAVEDRA
MIEMBROS DEL JURADO
Dr. Julio césar, VÁSQUEZ LUYO
PRESIDENTE
Ing. Armando, RIVADENEIRA ANDRADE
SECRETARIO
Mg. Cesar Agusto, FUERTES PINEDA.
VOCAL
ASESOR:
Dr. Tiburcio Rufino, SOLANO LEÓN
Lima – Perú, 2015
iii
A Dios, por guiar mis pasos y ayudarme a superar los
obstáculos que se presentaron a lo largo del camino estudiantil.
A mi padre, quien está en el cielo, madre, hermanos y familia en
general.
iv
AGRADECIMIENTOS
A la Universidad Nacional de Educación Enrique Guzmán y Valle; en especial a
la Facultad de Agropecuaria y Nutrición por haberme brindado una sólida
formación profesional.
A mis padres, quienes siempre lucharon por sacarme adelante, dándome
fuerzas y ejemplos dignos de superación y entrega, y porque en gran parte
gracias a ellos, hoy puedo alcanzar mí meta.
A mis hermanos y mi familia en general, que de una u otra manera
contribuyeron para que logre mi meta y por haber fomentado mi deseo de
superación.
A los docentes de las áreas de especialidad, M.V. Agustín Napurí Correa, Ing.
Armando Rivadeneira Andrade. M.V Hermes Rodrigo Almeyda Tueros, Lic.
César A. Fuertes Pinedo. Ing, Julio Vásquez Luyo, Ing. Teodoro Rivero
Macavilca, Dr. Rufino Solano León; ellos siempre me brindaron sus
enseñanzas y motivaciones para seguir adelante; y a mis compañeros de aula,
con quienes compartí hermosas experiencias a lo largo de nuestra formación
profesional.
v
ÍNDICE
Dedicatoria
Agradecimientos Resumen Abstrac
Índice Introducción. CAPÍTULO I
MARCO TEORICO 1.1. Antecedentes de la investigación…………………………………………11 1.2. Bases teóricas....……………………………………………………………15
1.2.1. Origen y distribución………………………………………………………..15 1.2.2. Clasificación taxonómica de la guanábana………………..……….……16 1.2.3. Descripción botánica del guanábano……………………………………..16
1.2.4. Propagación del guanábano…………………………………………….…17 1.2.5. Propiedades nutritivas…………………………………………………...…18 1.2.6. Propiedades curativas de la fruta…...…………………………………….19
1.2.7. Formas de consumo de la guanábana…………….………………….….24 1.2.8. Otros usos…………………………………...…………………………...…26 1.2.9. Características para el cultivo del guanábano………………………..…26
1.3. Pasos para el cultivo del guanábano……………………………………..36 1.4. Definición de términos básicos……………………………………………49 CAPITULO II PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
2.1. Determinación del problema ……….…………………………….….……45 2.2. Formulación del problema…………………………...………………….…47 2.3. Objetivos ……………………………………………..………….……….…47
2.4. Justificación del problema…………………………………..…………..…48 2.5. Importancia y alcances de la investigación …………………………..…49 2.6. Limitaciones de la investigación …………………….…………….……...50
CAPÍTULO III METODOLOGÍA 3.1. Hipótesis……………………………………………………………...…..….…51
3.2. Variables………………………………………………………………...……...51 3.3. Operación de variables……………………………………..………..…….....52 3.4. Tipo y Método…………….……………………………………………… …...52
3.5. Diseño de la investigación desarrollada ………………..………………….52 3.6. Población y muestra ……………………………………………………...…..53 CAPÍTULO IV
INSTRUMENTOS Y RESULTADOS 4.1. Selección y validación de instrumentos.......…….………….………….......54 4.2. Técnicas de recolección de datos……………………………………….......55
4.3. Fases de campo……………………………………………………............…57 4.4. Tratamiento estadístico e interpretación de cuadros………………….......63
vi
4.4.1. Fechas de germinación de la semilla de guanábana.......................…..63 4.4.2. Fechas del número de hojas………………………………...................…65 4.4.3. Fecha en cm de altura de la planta de guanábana……………….……..67
4.5. Prueba de hipótesis y resultados…………………………………….………71 4.6. Discusión de los resultados………………………………………………..…73
CONCLUSIONES…………………………………………………………..………75
RECOMENDACIONES………………………………………………………….…76 REFERENCIAS…………………………………………………………….…….…77 ANEXOS………………………………………………………………………...…..79
vii
ÍNDICE DE GRÁFICOS
GRÁFICO N°1………………………………………………………………63
GRÁFICO N°2……………………………………………………………... 64 GRÁFICO N°3………………………………………………………………64 GRÁFICO N°4………………………………………………………...…….65
GRÁFICO N°5……………………………………………………………....65 GRÁFICO N°6……………………………………………………………....66 GRÁFICO N°7………………………………………………………………66
GRÁFICO N°8……………………………………………………………... 67 GRÁFICO N°9……………………………………………………….……...67 GRÁFICO N°10…………………………………………………………......68
GRÁFICO N°11……………………………………………………………..68 GRÁFICO N°12…………………………………………………………......69 GRÁFICO N°13…………………………………………………………..…69
GRÁFICO N°14………………………………………………………….….70 GRÁFICO N°15………………………………………………………….….70 GRÁFICO N°16………………………………………………………….….71
viii
RESUMEN
Este trabajo es una investigación cuantitativa tecnológica, y el método es el
experimental llevándose a cabo en el campo y en el laboratorio. La finalidad de
la investigación es demostrar y determinar la incidencia de los fertilizantes
orgánicos en la germinación y crecimiento de la semilla botánica del
guanábano. En la investigación se aplicó el diseño experimental tipo Diseño
Block completamente Randomizados y, para manejar con mayor facilidad el
análisis estadístico se tomó como referencia la letra T con un número del uno al
cuatro es decir: El T1, compuesto por el sustrato de tierra más humus de
lombriz. El T2, compuesto por el sustrato de tierra agrícola más guano de isla.
El T3, compuesto por el sustrato de tierra agrícola más compost. Y finalmente
el T- 4 solo tierra agrícola. Al realizarse el análisis de la variancia del
experimento, aplicándose las pruebas estadísticas y límites de significación
correspondientes, se determinó que existe variabilidad entre los promedios de
las muestras. También se demostró que el sustrato de la mezcla de humus de
lombriz con tierra agrícola es la adecuada e influye significativamente en la
germinación, crecimiento, color, numero de hojas y sistema radicular de las
plántulas de la guanábana, esto debido a que el humus de lombriz tiene mayor
nutrientes que favorecen a la planta notándose una diferencia significativa con
los demás tratamientos.
Palabras clave: fertilizantes orgánicos, incidencia, germinación y vivero
experimental.
ix
ABSTRACT
This work is a technological quantitative research, and the experimental method
is being carried out in the field and in the laboratory. The purpose of the
research is to demonstrate and assess the impact of organic fertilizers on the
germination and growth of soursop TPS. In research experimental design type
Design Block completely Randomized applied and to manage more easily the
statistical analysis was taken as reference the letter T with a number from 1 to 4
ie T1, composed by the soil substrate more vermicomposting. T2, the substrate
comprises more agricultural land island guano. T3, the substrate comprises
more compost farmland. And finally the only T-4 agricultural land. By analysis of
variance of the experiment performed, applying statistical tests and
corresponding limits of significance it was determined that there is variability
between sample averages. It was also shown that the substrate of the mixture
of humus with agricultural land is the right and significantly influences the
germination, growth, color, number of leaves and root system of seedlings of
soursop, this due to the humus worm has more nutrients that favor the plant
noticing a significant difference with other treatments.
Keywords: organic fertilizers, incidence, germination and experimental nursery.
x
INTRODUCCION
La investigación es una tarea ineludible de los estudiantes universitarios, en
particular de la carrera profesional de Educación Agropecuaria, como la
primera fuente económica sostenible de la humanidad. Asimismo, es tarea de
los docentes investigar para enseñar a los estudiantes y campesinos a cultivar
árboles frutales aplicando los fertilizantes orgánicos.
En estos últimos tiempos muchos países le han dado mayor importancia a los
productos orgánicos, por ello cada día se incrementan mercados que solo
exportan productos orgánicos porque así los consumidores lo exigen. Como
sabemos, en el Perú todavía contamos con muchos productos orgánicos y uno
de ellos es la guanábana.
La guanábana es una de las anonáceas más apreciadas en nuestro país por su
alto valor nutritivo y por ser una agradable variación dentro de la dieta diaria.
Este árbol frutal se adapta con mayor facilidad en climas tropicales.
Actualmente las zonas que la están cultivando son Huánuco, Ica, Junín, la
libertad, Lambayeque, Lima, Loreto, Piura y Ucayali; recién hoy en día le
están dando mayor importancia por los beneficios y bondades que tiene.
También, en los últimos años, se ha incrementado el uso de fertilizantes
químicos que afectan a la humanidad y la contaminación del medio ambiente,
por ello esta investigación nos ayudara a reducir el uso de fertilizantes químicos
y los remplazaremos por fertilizantes orgánicos que no dañan la salud ni
contaminan el medio ambiente.
Por ello el presente estudio se divide en cuatro capítulos el primero se refiere a
los antecedentes de la investigación, las definiciones conceptuales y las bases
teóricas que sustentan científica y tecnológicamente el presente trabajo de
investigación. Los subsiguientes capítulos se refieren al problema, los
objetivos, las variables y la hipótesis de investigación, además de la
metodología e instrumentos y técnicas de investigación. Así mismo se
desarrolla la validación, confiabilidad de los instrumentos, el tratamiento
estadístico y la discusión de resultados. Finalmente se concluye con las
conclusiones, recomendaciones, referencias consultadas y los anexos.
11
CAPÍTULO I
MARCO TEÓRICO
1.1. ANTECEDENTES DE LA INVESTIGACION.
1.1.1. Antecedentes internacionales.
Pirela, C. y col. (2007). Efecto del tipo de propagación y forma de fertilización
nitrogenada y potásica sobre las características químicas de frutos de Annona
muricata. Utilizaron plantas propagadas por semilla, plantas injertadas sobre
Aannona muricata y sobre annona montana. Determinaron Brix, pH y acidez
titulable. Encontraron que los grados Brix fueron afectados significativamente por
el tipo de propagación y la fertilización nitrogenada y el pH por la interacción entre
el tipo de propagación, la fertilización nitrogenada y la potásica. Mientras que la
acidez titulable no fue afectada por ninguno de los factores estudiados. Los
resultados indicaron que los factores de estudio determinan frutos con calidad
competitiva en cualquier mercado.
Según García, A. Mercedes (2008). En su Tesis evaluación del método de
propagación y tipo de fertilización sobre la calidad físico-química de frutos de
guanábana (annona muricata l.), señalo que en su trabajo obtuvo frutas más
grandes y con mayor contenido de pulpa con un plan de fertilización de 480 kg.
En el primer año de fertilizante nitrogenado, aplicado de manera trimestral. El
contenido de fotoquímicos en las plantas se vio afectado por el patrón. En este
sentido, quedó demostrado que la selección del patrón determina el éxito de la
cosecha y la calidad nutricional.
12
El fruto de guanábana provee valores promisorios de vitamina C y de fenoles al
consumidor, dándole además de valor nutricional como alimento, propiedades
antioxidantes importantes para ayudar a prevenir ciertas enfermedades, como las
cardiovasculares, cerebro vasculares y el cáncer.
El uso de los patrones Annona montana y Annona glabra le proporciona a los
frutos contenidos de fenoles totales, ácido cítrico y ácido ascórbico, que pueden
ser atractivos para la promoción de frutos de guanábana para consumo fresco y
también para su procesamiento en la agroindustria.
Se recomienda realizar investigaciones en este cultivo durante todo el período
productivo, con respecto a la frecuencia de fertilización nitrogenada y al uso de
diferentes variedades como patrones.
López,M.; Martinez,R, y Valdez,C.(2001), el aporte de nutrientes a los cultivos y el
efecto de los abonos orgánicos en los suelos varían según su procedencia edad y
manejo. Además, el valor de la materia orgánica que contiene ofrece grandes
ventajas que difícilmente pude lograrse con fertilización inorgánica. (Castellanos
2000)
GUILLÉN VALENCIA, Carlos Enrique. (2010), en su tesis Respuesta a la
fertilización con enmiendas orgánicas, y química como complemento del Híbrido
de Pepino Humocaro (Cucumis sativus L.) En la zona de Babahoyo, provincia de
Los Ríos, concluye que:
Los tratamientos humus + bocashi, humus + fertilización química y bocashi +
fertilización química influyen en mayor altura de plantas de pepino, y el de menor
altura se registró con humus.
El pepino híbrido Humocaro presentó plantas con mayor número de frutos, con
dosis de tres toneladas por hectárea en el tratamiento bocashi, y el de menor
promedio se dio con humus.
El promedio de peso del fruto de mayor rendimiento se obtuvo con los
tratamientos humus y humus + fertilización química, y el de menor fue solo con
fertilización química.
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En el promedio de diámetro del fruto el que influye mayor promedio fue el
tratamiento edáfico, siendo bocashi + fertilización química el de menor promedio.
1.1.2. Antecedentes nacionales
Nieto Garibay (2002).desde el punto de vista ecológico ha incrementado la
preocupación por fomentar las prácticas agrícolas que armonicen el cuidado del
ambiente. El uso de abonos orgánicos mejora las condiciones del suelo que han
sido deteriorados por el uso de agroquímicos y su explotación.
La fertilización orgánica es una forma de asignarle una mayor fertilidad al suelo en
donde cultivaremos nuestros alimentos. De este modo, las plantas que hemos
sembrado pueden nutrirse mejor y así crecer y desarrollarse de buena forma.
Las plantas necesitan nutrientes, los cuales obtiene directamente del suelo y del
agua con la que las regamos. Cuando una planta crece, extrae nutrientes del
suelo y los utiliza para desarrollar las hojas, las flores, los frutos. Debido a esto, el
suelo va perdiendo fertilidad, porque cada vez se va quedando con menos
nutrientes.
Para que la fertilización sea “orgánica” es importante no aplicar sobre la tierra,
fertilizantes químicos. La fertilización orgánica se basa en otorgarle una mayor
fertilidad al suelo con abonos naturales.
La incorporación de los fertilizantes y abonos orgánicos como (estiércoles,
desechos agrícolas verdes y secos, compostas y vermicompostas, etc.) con fines
de mejorar los suelos es una práctica que se le ha tomado importancia en los
últimos años a nivel mundial.
El compost.- El compost suministra todos los nutrientes necesarios para el
crecimiento de las plantas no tienen efecto negativos en los humanos los
animales el medio ambiente y es prácticamente imposible sobre dosificarlos.
Gros (1992) manifiesta que el humus sirve de alimento a una magnitud de
microorganismos y lombrices de tierra que hacen del suelo un medio vivo. Estos
microbios que viven a expensas del humus y contribuyen a su transformación, son
tan numerosos y activos cuando mejor provisto esté el suelo de humus. El humus
14
aumenta verdaderamente la actividad microbiana del suelo, sobre todo para los
productos transitorios formados en la primera fase de la descomposición de la
materia orgánica.
Ica (1998) afirma que el humus ejerce una acción favorable sobre la estructura del
suelo, es decir sobre la agrupación de las partículas en agregados de tamaño
medio, las cuales permiten una buena circulación del agua, del aire y de las raíces
en el suelo. Se obtiene un aumento de la permeabilidad, mayor capacidad de
retención del agua y menor cohesión del suelo. La tierra bien provista de humus
es más esponjosa, mas aireada, menos pesada y menos sensible a la sequía.
15
1.2. BASES TEÓRICAS
1.2.1. ORIGEN Y DISTRIBUCIÓN
León (1968) cita al Brasil como lugar de origen de la guanábana. Fouqué (1972)
lo amplía a las tierras de América tropical distribuida en la cuenca amazónica.
Hernández de Oviedo describió por primera vez este frutal en 1526 en su Historia
Natural de las Indias, donde menciona que los exploradores españoles lo
encontraron creciendo en forma abundante en Centro y Sur América. La
guanábana fue una de las principales frutas en ser llevadas desde el nuevo
mundo a otras regiones tropicales. Es una fruta popular en zonas tan lejanas
como el sur de China, Australia y África.
El área de distribución natural de la guanábana es desde la región tropical del sur
de México, Centro América, el norte de América del Sur y las Antillas. Hoy en día,
crece en áreas tropicales y húmedas a escala mundial ya que es una especie que
climas húmedos, baja
altitud y no es exigente en
cuanto al suelo.
En el Perú los principales
departamentos
productores de esta fruta
son la selva chanchamayo,
Junín, La Libertad, Ucayali,
Loreto, Ica y Lima.
16
1.2.2. CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA DE LA GUANÁBANA
CLASIFICACIÓN CIENTÍFICA
Reino: Plantae
División: Magnolioplyta
Clase: magnoliopsida
Orden: magnoliales
Familia: annonaceae
Subfamilia: annonoideae
Tribu: Annoneae
Género: Annona
Especie Annona muricata
1.2.3. DESCRIPCIÓN BOTÁNICA DEL GUANABANO
El árbol.- Es casi siempre verde (solo pierde las hojas al florecer), mide 3 a 7 m
de altura, con crecimiento erecto, las hojas son alternadas, simples, enteras, de
superficie exterior coriácea y color verde brillante, muy atractivas y de forma
alargada, al estrujarse despiden un olor característico. El tronco es recto y de
color grisáceo, ramifica a baja altura.
Flores.- Posee tres sépalos, tiene de tres a seis pétalos y numerosos estambres,
tiene varios pistilos y un solo óvulo. Las semillas son negras, brillantes y se
encuentran diseminadas en la pulpa.
Raíces.- Su sistema radicular extensivo le permite soportar períodos
relativamente largos de sequía, ya que explora y cubre una amplia franja de
17
terreno. En suelos sin ningún obstáculo, las raíces llegan a penetrar más de un
metro de profundidad, por lo que, al seleccionar un sitio para establecer una
plantación comercial, se deben buscar suelos con esa profundidad mínima
efectiva.
Variedades.- Por su sabor se clasifica en:
Semiácida
Semidulce
Dulce
Forma.- Su forma ovalada se asemeja mucho a un corazón, le recubre una
cáscara de color verde oscuro con varias espinas pequeñas, suaves y carnosas
que se desprenden fácilmente cuando la fruta ya está madura.
Tamaño y peso.- La fruta alcanza los 10 a 30 cm de longitud y su peso va de 1 a
8 kilos.
Descripción de la pulpa.- Su textura suave y blanca es muy similar al algodón,
además es cremosa y jugosa, y recubre las semillas negras de un tamaño que va
desde 1,25 a 2cm de largo. Cada fruta puede tener hasta 200 semillas.
Sabor.- Su sabor se caracteriza por ser muy similar al de la chirimoya; es
subácido.
1.2.4. PROPAGACIÓN DEL GUANÁBANO
Los árboles de altos rendimientos, calidad de fruta y resistentes a enfermedades
son los recomendados para propagarse por vía sexual (semillas); también se
puede utilizar la vía asexual (injertos y esquejes).
a) Propagación por semillas
Las semillas deben ser extraídas de frutos maduros, provenientes de árboles
sanos, lavadas y secadas a la sombra durante 3 a 4 días. Germinan entre 15 y 20
días después de la siembra y se pueden almacenar por más de un año reteniendo
el 70% de germinación. Para la obtención de un kg de semillas (2 800 semillas)
son necesarias de 30 a 40 kg de fruta.
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b) Propagación por injerto
El injerto se realiza sobre patrones adaptados a las condiciones del medio
ambiente donde se desarrollarán los cultivos comerciales, con el fin de garantizar
su rendimiento.
La injertación tiene una serie de ventajas:
Asegurar las características de la planta que se desea multiplicar.
La floración y la fructificación es precoz.
Posibilita la explotación de plantas en tierras que no son propicias para la
especie injertada, pero que sí lo son para el patrón.
Permite la utilización de porta-injerto, resistente a ciertas enfermedades y
plagas del suelo.
Modifica el porte (altura) de las plantas.
Permite cambiar las especies y variedades en las plantas adultas.
El patrón recomendado es la misma especie, aunque existe compatibilidad
con A. montana Macfad y A. glabra.
1.2.5. PROPIEDADES NUTRITIVAS
La guanábana destaca por su bajo contenido en grasas y su completo aporte
vitamínico y mineral. También es una moderada fuente de fibra. La pulpa contiene
glúcidos de fácil metabolismo, una pequeña porción de proteínas y de lípidos, así
como vitamina C en pequeña cantidad, y sales minerales, especialmente de
fósforo y potasio.
19
Cuadro N°1
1.2.6. PROPIEDADES CURATIVAS DE LA FRUTA
Se considera como principal propiedad de esta fruta su principio activo, la
“Acetogenina”, ya que puede inhibir selectivamente el crecimiento de células
cancerosas y tumorales resistentes a la Adriamicina, ingrediente común en la
Quimioterapia.
Hay diversos estudios sobre los compuestos de la Guanábana que la acreditan
efectos anticancerígenos. Sin embargo, esos estudios fueron realizados
solamente in vitro o in vivo en animales, no existiendo aún ningún estudio clínico
en humanos.
El motivo que justifica la falta de estudios clínicos en humanos parece tener una
fuerte relación con el hecho de que los laboratorios no han conseguido sintetizar
las acetogeninas anonáceas, circunstancia que les aleja por tanto de la
posibilidad de poder obtener una patente.
Los estudios más relevantes son los de:
El Doctor Jerry Mc. Laughlin de la Universidad de Purdue (Indiana – USA), en
1976. Después de numerosos años dedicados al estudio de la Guanábana;
20
descubrió las acetogeninas de las anonáceas (siendo su hoja su fuente
principal). Las investigaciones fueron continuadas por el Instituto Nacional del
Cáncer, comprobando su efectividad en cáncer de colon y próstata. El National
Health Center probó su eficacia en el cáncer gástrico, de riñones y mamas. Y la
Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad Católica de Corea del Sur hizo un
estudio comparativo con la adriamicina (quimioterápico) en tratamientos de cáncer
de pulmón.
El Departamento de Ciencias Biomédicas de la Facultad de Medicina y Ciencias
de la Salud, de la Universidad de Putra Malasia, Serdang, Selanga, Malasia en
2012 - experimento "in vivo" sobre ratas ICR con cáncer de piel, publicado en la
revista "Asian Pacific Journal of Cáncer Prevención" y Biblioteca Nacional de
Medicina de los Institutos Nacionales de Salud de EE.UU.
El Instituto Universitario de Productos Naturales, Universidad Médica de
Kaohsiung: Kaohsiung 807, Taiwán, República de China descubre de
nuevas acetogeninas de las anonáceas con actividad citotóxica contra varios
tipos de cáncer.
El ensayo Lima Perú en 2006 - efecto citotóxico selectivo in vitro de "Muricin H" -
(acetogenina de Annona muricata), en cultivos celulares de cáncer de pulmón.
El Departamento de Medicina y Farmacia - Universidad Jenderal Soedirman -
Indonesia - efecto citotóxico de extracto de Annona Muricata contra línea celular
T47D - cáncer de mama.
Según estudios realizados en Estados Unidos, se ha establecido una gran
efectividad de la guanábana en la destrucción de células cancerosas en diversos
tipos de cáncer.
La pulpa de la guanábana contiene vitamina C, también tiene efectos digestivos y
se le atribuye al jugo de la fruta madura, propiedades diuréticas, además de ser
un remedio para la hematuria y uretritis.
El jugo de la fruta madura se dice que es diurético y un remedio para la hematuria
y la uretritis; tomado en ayunas se cree que sirve para aliviar afecciones del
21
hígado y la lepra. Las frutas inmaduras pulverizadas, son muy astringentes y
pueden ser de ayuda en la disentería.
Los efectos tranquilizantes y soporíferos de las hojas, de las que gozan de
popularidad en las Indias Occidentales, no han sido sometidos a estudios clínicos
convincentes. De esta forma, en la Guyana Británica se dice que un cocimiento de
hojas de la planta puede devolver la sobriedad a un borracho; en Las Antillas
Holandesas se colocan las hojas dentro de la almohada para conciliar el sueño y
dormir plácidamente; un cocimiento de ellas se usa con el mismo propósito.
En la provincia de Esmeralda (Ecuador), se usan como analgésico y
antiespasmódico.
En África, se usa tanto el cocimiento como el frotado de las hojas a los niños para
bajar la fiebre. Una decocción de las hojas o brotes jóvenes se considera en las
Indias Occidentales como un remedio para problemas de vesícula, así como para
la tos, catarro, diarrea, disentería e indigestión; se dice que puede detener los
vómitos y es de ayuda en los partos. La decocción también se emplea en
compresas mojadas sobre las inflamaciones y los pies hinchados. Las hojas
masticadas y mezcladas con saliva se aplican a incisiones después de la cirugía,
causando que sanen sin dejar una cicatriz. Las hojas machacadas se utilizan
como cataplasma para aliviar el eccema y otras afecciones de piel y reumatismo,
y el jugo de las hojas jóvenes se pone en la piel para las erupciones.
La Doctora Hulda Clark cuyo libro The Cure for All Cancers (La cura para todos
los cánceres) ha vendido millones de copias. Hay cientos de personas que dan
testimonio del éxito del tratamiento herbal de la doctora Clark con el que han
detenido totalmente el progreso de un cáncer en sus cuerpos con este
tratamiento. 1
http://www.sabelotodo.org/agricultura/frutales/guanabana.html 24/11/12
22
Composición química y datos científicos
Según La Dra. Hulda Clark en su libro "The cure for all cancers"
CUADRO N°2
Composición química y valor nutricional del fruto (100 gramos de fruta fresca) Humedad 80,6 %
Fibra 1,63 %
Cenizas 0,73 %
Grasa 0,31 %
Proteína 1,22 %
Almidón 1,62 %
Vitamina C 0,021 %
Azúcares ( Gluc., Fruct.) 15,63 %
Potasio 45,8 mg
Sodio 23 mg
Magnesio 23,9 mg
Fósforo 26,0 mg
Hierro 0,47 mg
Citrulina (proteína)
Arginina (aminoácido)
Acido caproico (lípido)
Anonaine (isoquinolina)
Anoniine (isoquinolina)
Asimilobine (isoquinolina)
2
CUADRO N°3
Componentes químicos de la hoja de anona muricata
Lactonas
Annohexocina
Annomuricina A, B, C y E
2 La Doctora Hulda Clark en su libro "The cure for all cancers" (La cura para todos los cánceres)
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Annomutacina
Annopentocinas A, B y C
Muricoreacina
Gigantetronemina
Murihexocina A y C
Javoricina
Isoquinolinas
Anonaine
Anoniine
Atherospermine
Coreximine
Lípidos
Acido gentísico
Acido lignocérico
Acido linoleico
Acido esteárico.
CUADRO N°4
Componentes químicos de la
semilla acetogeninas de la hoja con actividad anticancerígena.
annomonicina
Lactonas
annomontacina
annonacina
annomuricatina
annonacinona
javoricina
24
1.2.7. FORMAS DE CONSUMO DE LA GUANÁBANA
Esta fruta es muy conocida en Ecuador por su delicioso sabor y aroma para la
preparación de jugos, helados, mermeladas, jaleas, etc. La guanábana de sabor
menos ácido y menos consistencia fibrosa se cortan en secciones y la masa se
come directamente con una cuchara. La pulpa puede ser separada o cortada en
trozos y se añade a las ensaladas de frutas, o son refrigeradas y servidas como
postre con azúcar y un poco de leche o nata. Durante años, se ha sembrado
guanábana en México para ser enlatada y servida en restaurantes mexicanos en
Nueva York y otras ciudades del norte de los Estados Unidos. Más extendido en
todo el trópico es la elaboración de bebidas refrescantes de la fruta (llamadas en
Brasil y Cuba champola; carato en Puerto Rico). Para ello se bate la pulpa del
fruto con leche o agua y se agrega azúcar, para luego servirla colada y muy
fría. Si se usa una batidora eléctrica, primero hay que tener cuidado de quitar
todas las semillas, ya que son algo tóxicas, y ninguna debe romperse e ir a parar
accidentalmente al jugo.
Un refresco de guanábana, que contiene 12 a 15% de pulpa, se somete a un
proceso de conservación en Puerto Rico, después de conservado puede durar un
año o más. El jugo se prepara como una bebida carbonatada embotellada en
Guatemala, y una suerte de cidra fermentada se utiliza a veces en las Indias
Occidentales. La pulpa se dice que es un manjar mezclado con el vino o el brandy
y condimentado con nuez moscada. El jugo de la guanábana, espesado con un
poco de gelatina, produce un agradable postre.3
En la República Dominicana, se confecciona un flan de guanábana cocinando la
pulpa con un sirope de azúcar al que se le agrega canela y cáscara de limón.
Es común que el jugo de la guanábana con azúcar se congele en cubos en los
refrigeradores domésticos (llamados "durofríos" en Cuba) para disfrutarlo helado
en los países cálidos. En muchas partes se producen comercialmente de la pulpa
de la guanábana helados, sorbetos, jaleas, tortas, néctares y refrescos. También
se vende la pulpa congelada envasada en bolsas plásticas.
3 http://www.sabelotodo.org/agricultura/frutales/guanabana.html 24/11/12
25
Las guanábanas aún sin madurar se cocinan como vegetal o se usan en sopas en
Indonesia y se comen asadas o fritas en Brasil.
CUADRO N°5
Toxicidad
Se ha reportado la presencia de los alcaloides anonaine y anoniine en esta
especie, también los alcaloides muricine (posiblemente des-N-methylisocorydine o
des-N methylcorydine) se encuentran en la corteza.
La corteza tiene un alto contenido de Ácido cianhídrico pero hay solo pequeñas
cantidades en las hojas y raíces; huellas en la fruta. Las semillas contienen un
45% de un aceite amarillo no secante que es muy irritante a los ojos provocando
grave inflamación.
Valor alimenticio por 100 g de porción
comestible.
Los análisis realizados en el Laboratorio de Nutrición
FIM, La Habana, Cuba.
26
1.2.8. Otros usos
Fruto: En las Islas Vírgenes, la fruta se coloca como cebo de peces en las
trampas.
Semillas: Pulverizadas las semillas son eficaces contra los piojos de la cabeza; el
extracto etéreo es tóxico para las larvas de los escarabajos. El aceite de las
semillas mata los piojos de la cabeza.
Hojas: La decocción de hojas es letal para los piojos y chinches.
Corteza: La corteza del árbol se ha utilizado en el curtido. La fibra de la corteza
es fuerte, pero como los árboles están en producción no se utilizan, a menos que
sea necesario eliminarlos. La corteza, así como semillas y raíces, se han utilizado
como veneno de peces.
Madera: La madera es amarillo pálido, aromática, blanda, ligera y no duradera.
Se ha utilizado para yugos de bueyes, ya que no causa pérdida del pelo en el
cuello.
1.2.9. CARACTERÍSTICAS PARA EL CULTIVO DE GUANÁBANO
a). Aspectos eco-fisiológicos del cultivo de la guanábana
La eco-fisiología o ecología fisiológica estudia el crecimiento y desarrollo de las
plantas en diferentes ambientes; aplica los métodos de la fisiología a los
problemas de la ecología, que tradicionalmente se han centrado en estudios de
distribución de plantas y animales y, como estos, se adaptan a esos ambientes.
La Eco fisiología se orienta a solucionar problemas como:
1. Respuesta de las plantas al ambiente físico (radiación, fotoperiodo,
temperatura, vientos, intercambio de energía).
2. Estudio de las relaciones suelo-planta-atmósfera, captación, transporte y
almacenamiento de agua, transpiración, estrés por inundación.
3. Modelación de respuesta fotosintética, al ambiente, utilización de agua y
fotosíntesis entre otras.
27
4. Respuesta al ambiente químico y biológico, ecología de la nutrición,
interacciones planta-animal polinización.
5. Biosidas y reguladores de crecimiento y respuesta a factores ambientales
múltiples.
El ambiente de las plantas es el complejo de factores bióticos, físicos (climáticos y
de suelo), que están actuando sobre un organismo o una comunidad ecológica y
que finalmente determinan su forma, supervivencia y sostenibilidad.
Algunos de los problemas antes mencionados son frecuentes en el cultivo de
guanábana. La respuesta de los cultivos establecidos en varios ambientes difiere
y se hace difícil definir con certeza las zonas donde la oferta ambiental sea
favorable.
b). Requerimientos nutricionales en el cultivo de la guanábana.
Aplicación de fertilizantes y abonos.- Las aplicaciones se realizan cada cuatro
meses para procurar que la planta disponga de los nutrientes en forma
permanente y dosificada.
Se recomienda la aplicación de 250 kg/ha de la fórmula NPK 12-24-12 en los dos
primeros años, doblando la dosis a 500 kg/ha para el tercer año después de la
plantación, y en los años sucesivos utilizar la fórmula NPK 18-06-18 con Calcio y
Magnesio, aumentando las dosis de aplicación en función del suelo, y el cuajado
de frutos, hasta 1 000 o 1 250 kg/ha.
A partir del octavo año se recomienda aplicar úrea o sulfato de amonio a razón de
0,25 kg/ha como complemento a la fertilización de nitrógeno.
Las aplicaciones se realizan cada cuatro meses para procurar que la planta
disponga de los nutrientes en forma permanente y dosificada, evitando de esta
forma la aplicación masiva (una vez al año) con riesgo de intoxicación a la planta.
Cuando no se dispone de riego, la mejor época para la aplicación de fertilizantes
es cuando se inicia el periodo de lluvias con el fin de dar una adecuada
disponibilidad de nutrientes en el suelo, listos para ser aprovechados por las
plantas.
28
Para el arranque inicial del cultivo, es necesario disponer de una buena provisión
de nitrógeno, fósforo y potasio (fórmula 10.30.10), esto ayuda a la planta a formar
adecuadamente su follaje y raíces.
SEGÚN una investigación tomada de: ICA, programa de frutales. 1992. En este
tema juega un papel importante la denominada relación suelo, agua, planta y
ambiente, de cuyas interacciones depende el establecimiento del cultivo, su
fenología y su comportamiento productivo a través del tiempo.
Factores que afectan el abonamiento:
- Tamaño de las partículas.- la taza de descomposición es mayor con partículas
de estiércol de menor tamaño. La razón es que las partículas más pequeñas
tienen mayor área de superficie y, por lo tanto, hay más espacio para los
microorganismos para la descomposición de las partículas orgánicas.
- contenido húmedo.- el contenido óptimo del abono es de un 40 a 60 % de
sólidos y depende del tamaño de las partículas y de la aireación.
c). Generalidades de la relación suelo-agua ambiente.
El suelo
Durante el proceso de formación de los suelos, a través de los sucesos de
descomposición de las rocas y materiales orgánicos, los minerales y la materia
orgánica quedan reducidas a partículas de tamaño muy pequeño denominadas
coloides que incluyen las arcillas y la materia orgánica. Cada coloide presenta una
carga negativa (-) durante el proceso de formación del suelo, pudiendo atraer y
retener partículas con carga positiva. Un elemento o compuesto con carga
eléctrica es denominado "ION". El potasio (K+), el sodio (Na+), el hidrógeno (H+),
el calcio (Ca++), el magnesio (Mg++) tienen cargas positivas y se denominan
cationes. Los iones con cargas negativas, como el cloro (CI -), el nitrato,(NOa -) y
el sulfato (SO 4 =) son llamados "aniones". Los coloides de carga negativa atraen
los cationes de carga positiva. 4
4 Según una investigación Tomada de: ICA, programa de frutales. 1992.
29
Los cationes retenidos en los coloides pueden ser sustituidos por otros cationes,
esto significa que son intercambiables. El número total de cationes
intercambiables que un suelo puede retener (o cantidad total de carga negativa)
se denomina capacidad de intercambio catiónico (C.I.C). Un suelo con alto
contenido de arcilla puede retener más cationes intercambiables que un suelo con
poca arcilla; las partículas de arena presentan muy baja capacidad para retener
iones debido al número bajo de cargas que presentan y a la poca fuerza con que
pueden retenerlos.
La nutrición en las plantas
La nutrición vegetal es una importante rama de la fisiología vegetal que estudia
los elementos que las plantas deben absorber por diferentes estructuras para
vivir, crecer y desarrollarse. Incluye estudios sobre el tipo de elementos, la forma
en que están disponibles, sus cantidades, las funciones que cumplen estos en las
plantas y que los hacen esenciales, las respuestas (por excesos) o las
deficiencias que ocasionan y las técnicas o formas de suministro más adecuadas,
de acuerdo con el tipo de planta y su etapa de desarrollo.
Elementos esenciales
Un elemento es esencial si el vegetal no puede completar su ciclo de vida (esto
es, formar semillas viables) en ausencia de tal elemento. Si un elemento es
esencial, debe actuar de manera directa en el interior de la planta, sin influir en
que algún otro elemento sea más fácilmente disponible, ni ser antagonista del
efecto de algún otro elemento. Un último criterio habla de que un elemento es
esencial si aparecen síntomas de deficiencia, cuando no se agrega este elemento
a una solución nutritiva, aun cuando tales plantas produzcan semillas viables.
En nutrición de plantas hay tres conceptos importantes que debemos tener en
cuenta: uno, el de requerimientos nutricionales; dos, la exportación de nutrientes y
tres, los desórdenes nutricionales.
1. El requerimiento nutricional se refiere a las cantidades aproximadas de
nutrientes, que una planta con un desarrollo normal necesita extraer del suelo
para cumplir su ciclo productivo y generar un rendimiento adecuado.
30
2. La exportación de nutrientes por la planta es el concepto referido a la cantidad
de nutrientes que se retiran o exportan del suelo, para obtener un volumen de
producción dado y que son los que habría necesidad de devolver al suelo para
mantener un nivel adecuado de nutrientes, lo cual depende del rendimiento
obtenido, la capacidad de extracción de la variedad o híbrido, la disponibilidad de
agua, el tipo de suelo, la disponibilidad de los nutrientes, su balance y la población
de plantas y los problemas fitosanitarios.
3. La carencia de uno o varios nutrimentos en una etapa determinada del cultivo,
o el exceso de elementos como Aluminio o el Sodio, al igual que las altas
concentraciones de sales disueltas en la solución del suelo, dan lugar a los
denominados "Desórdenes nutricionales" de la planta que tienen diferentes
manifestaciones.
Importancia de los nutrientes en guanábana
Estudios realizados por varios investigadores han demostrado que la guanábana,
los elementos existentes en mayores cantidades en la materia seca de la hoja son
en su orden: el potasio, el nitrógeno, el calcio, el fósforo y el magnesio. La
extracción de nutrientes por el cultivo en la etapa de plena producción para
obtener un volumen de 6.4 toneladas de fruta fresca son: 18,9 Kg de N, 16 Kg de
K, 6,3 Kg de Ca, 3,41Kg de P y 0,98 de Kg de Mg.
En este mismo estudio, los resultados sobre contenidos de nutrientes en las
diferentes partes del fruto, muestran que en la pulpa se concentran los mayores
contenidos de N, K, Ca y 8; mientras que el P y el Zn se concentran en mayor
proporción en la semilla y en la cáscara el N y el K.
Los estudios sobre fertilización del cultivo en Colombia han sido relacionados por
varios autores. El lCA en 1992, en su programa de frutales determinó una guía
para el uso de fertilizantes con base en elementos mayores (N, P, K) teniendo en
cuenta la edad de los árboles y las características de los suelos en diferentes
regiones productoras del país.
31
Requisitos para que ocurra la germinación
Asumiendo que no existen mecanismos de latencia que impidan germinación, se
requiere de la concurrencia de varios factores para que el embrión contenido en la
semilla reinicie su desarrollo.
Absorción de agua
Imbibición: Es un caso especial de un fenómeno físico denominado difusión, y
como tal, se da si existe una gradiente de difusión. Se caracteriza por un
aumento de volumen de la sustancia o cuerpo que embibe y está íntimamente
relacionada con las propiedades de materiales coloidales.
Las partículas coloidales en la semilla forman una red miscelar, medianamente
rígida, en la que cargas eléctricas de signos opuestos están orientadas en una
manera definida. Cuando el agua penetra en la semilla, una fracción ocupa los
espacios libres 5y otra se une químicamente a las sustancias de que están
compuestas las semillas.
El volumen de las semillas aumenta con la imbibición, pero el volumen final del
sistema (semilla + agua) es menor que la suma de los volúmenes individuales
iniciales de semillas y agua. Esta contracción del sistema es prueba de la
ocupación de los espacios libres dentro de la semilla y de la absorción de agua en
la matriz coloidal.
La tasa de imbibición se ve afectada por varios factores que pueden determinar la
respuesta a germinación de las semillas.
a. Permeabilidad de la cubierta seminal
El caso más evidente es el de semillas cuyas cubiertas son totalmente
impermeables al agua, ej. Semillas duras de leguminosas, de algodón, etc. Sin
embargo, también se dan ejemplos en que la penetración de agua es restringida y
no impedida.
b. Concentración del agua
5 PINEDO PANDURO, M.H., Evaluación preliminar de la germinación. Tesis 1990.
32
En general, la imbibición es más rápida cuando la semilla está en contacto con
agua pura que cuando el agua contiene solutos. El principio que opera es el de
presión de difusión del agua. De aquí que las semillas absorben agua más
lentamente en suelos secos o salinos, no solo porque hay menos agua, sino que
también es causa de una menor presión de difusión del agua.
c. Temperatura
El calor es una forma de energía. Cuando se calienta el agua que está en
contacto con la semilla, parte de la energía suministrada se invierte en aumentar
la difusión de agua, por lo tanto, aumenta la tasa de absorción de agua, dentro de
ciertos límites. Se ha encontrado experimentalmente que un aumento de 10°C en
la temperatura duplica la tasa de absorción al inicio del proceso de imbibición.
d. Presión hidrostática
Conforme el agua penetra en las semillas, esta provoca un aumento de volumen y
presión en las membranas celulares. Igualmente, las membranas celulares
oponen resistencia de igual magnitud, la que resulta en un aumento de la presión
de difusión del agua interna, aumentando su difusión hacia afuera y, por lo tanto,
disminuyendo la tasa de absorción de la semilla.
e. Área de la semilla en contacto con agua
Considerando otros factores constantes, la tasa de absorción de agua es
proporcional a la magnitud del área de las semillas en contacto con el agua. En
algunas clases de semilla, ciertas regiones son más permeables que otras.
Ejemplo: el hilo en las semillas de leguminosas.
f. Fuerzas intermoleculares
Son en general fuerzas de naturaleza eléctrica. Cualquier aumento en estas
fuerzas disminuye la presión de difusión del agua y, por tanto, la tasa de
absorción de las semillas. El efecto de estas fuerzas es más evidente en el suelo.
Suelos de bajo contenido de agua sujetan tenazmente la humedad mediante
fuerzas intermoleculares.
33
g. Diferencias entre especies
Algunas especies absorben agua más rápidamente que otras. Ejemplo: semilla
de algodón absorbe agua más lentamente que la semilla de frijol.
h. Absorción diferencial por órganos de la semilla
Las semillas están compuestas de diversos órganos. Estos se pueden agrupar,
arbitrariamente en las siguientes categorías:
1) Cubierta seminal (testa, pericarpio, etc.).
2) Tejidos nutritivos de reserva (cotiledones, endospermo, peri esperma, etc.).
3) Eje embrionario (compuesto de radícula, plúmula y estructuras asociadas).
Estos componentes absorben agua a diferentes velocidades y magnitudes. Se ha
hallado que en semillas de algodón, maíz y frijol la máxima hidratación ocurre en
las primeras 24 horas de imbibición, y que: (a) la cubierta seminal funciona como
órgano de transporte de agua, con su curva característica de absorción; (b) el
endospermo y los cotiledones absorben agua lentamente; actúan como
reservoríos de agua y no como estructuras activas de absorción; (c) el eje
embrionario absorbe agua rápida y continuamente.
Contenido de humedad mínimo para que ocurra germinación.
Cada especie necesita absorber un cierto mínimo de humedad para que ocurra
germinación.
Se ha encontrado que las semillas con alto contenido de proteína necesitan un
contenido de humedad mayor que semillas con niveles bajos de proteína; esto se
puede observar en los siguientes ejemplos (Tabla l).
34
Tabla 1. Contenido de humedad necesario para que ocurra la germinación de
algunas semillas de especies cultivadas.
Cultivo Contenido de humedad
Maíz (Zea mays) 30,5%
Soya (Glycine max) 50,0%
Remolacha (Beta ssp.) 31,0%
Algodón (Gossypium spp.) 50-55,0%
Higuerilla (Ricinus comunis) 32-36,0%
Arroz (Oryza sativa) 32-35,0%
Avena (Avena sativa) 32-36,0%
Maní (Arachis hypogaea) 50-55,0%
Adaptado de Burck, B. and J. C. Delouche. 1959. Water absorption by seeds. Proc. AOSA 49:1426
Conviene aclarar que la relación suelo y semilla en lo que a absorción de agua se
refiere es un tanto más complicada. La evidencia experimental enseña que el
hecho de que la semilla necesite un contenido de humedad alto para germinar no
implica que su germinación se retarde por esa condición. Por regla general, la
velocidad de emergencia se reduce conforme la humedad del suelo se acerca al
punto de marchitez; en algunas especies también se reduce el porcentaje de
emergencia en condiciones de escasa humedad del suelo.
El exceso de agua puede ser tan pernicioso para la semilla como la carencia. Si el
nivel de agua llega a excluir o restringir la penetración de oxígeno a la semilla, la
germinación se retarda o no ocurre, en un gran número de especies. En otras no
se han observado daños. Ejemplo, la germinación de semilla de arroz se puede
acelerar por inmersión; por el contrario, la inmersión de semilla de frijol por
períodos relativamente cortos puede causar daños reversos.
La mejor metodología para la evaluación de la viabilidad de los embriones,
mediante la prueba de tetrazolio fue la imbibición de la semilla, con el químico, en
6 FERNÁNDEZ, E. 2004. Estudios de viabilidad y latencia de semillas de guanábana (Annona muricata L.) y chirimoya (Annona cherimola M.). Trabajo de grado. Universidad Nacional de Colombia, Medellín. 35 p.
35
condiciones de oscuridad, por un lapso de 24 h, con cortes posteriores
longitudinales ventrales o dorsales.
• A través de la evaluación de viabilidad con tetrazolio, se pudo detectar que en
los dos taxa, objeto de la investigación, se presentaron semillas no viables, con
valores de alrededor del 20% de las semillas, aparentemente normales.
• Las semillas de chirimoya y guanábana no exhiben latencia exógena, por testa
impermeable; esto se comprobó por medio de la ganancia de peso obtenida al
imbibir estas con agua, por espacio de 24 h.
• Estas poseen embriones poco desarrollados en tamaño, en el momento de la
madurez de los frutos, y requieren del pos maduración para germinar.
• El pos maduración de la semilla se logró con estratificación caliente húmeda, a
25 °C, durante 90 días, lo que condujo a germinación posterior de la semilla, al
ser incubada para tal fin.
• En las dos especies también existe latencia fisiológica, la cual fue removida, en
ambos taxa, a través de la imbibición de las semillas en AG3.
• La imbibición con 800 ppm de AG3 causó la mayor germinación, en ambas
especies, al incubar las semillas, luego de la aplicación de la hormona.
Según Delgado, Cartagena, Fernández Y Medina:7
• Se categorizó el bloqueo de germinación como latencia morfo-fisiológica simple,
no profunda.
• La combinación del AG3 y la estratificación caliente húmeda incrementaron la
germinación en chirimoya; en guanábana esto no fue evidente.
• Ya que las dos frutas estudiadas presentan semilla ortodoxa se puede conservar
por esta vía un duplicado de las colecciones de campo.
7 DELGADO, CARTAGENA, FERNÁNDEZ Y MEDINA: Categorización de la germinación y la latencia en semillas de chirimoya 242 Agron. Colomb. 25(2) 2007
36
• Los datos obtenidos brindan una primera aproximación para procesos de
monitoreo y germinación, lo cual permite la utilización del material conservado
como semilla.
• También proporcionan soporte para la implementación de un modelo dinámico
de conservación del germoplasma de chirimoya y guanábana, cuyos
componentes son: la colección de campo, semilla de las colectas originales
conservada a largo plazo y semilla de polinización abierta, colectada
periódicamente en cada subpoblación de campo, para procesos de selección y
clonación, con miras al uso del recurso genético de estas especies.
• Es conveniente estudiar el efecto de la variabilidad intraespecífica sobre la
latencia, al igual que el del ambiente de producción de la simiente y la interacción
genotipo por ambiente al respecto.
1.2.10. PASOS PARA EL CULTIVO DEL GUANÁBANO
Selección del terreno.- El terreno seleccionado para la siembra debe cumplir con
las características anteriormente mencionadas.
Preparación del terreno.- La preparación del terreno es de gran importancia para
el desarrollo de la planta, por lo tanto, debe alcanzar los niveles del 4 y 5 por
ciento que son ideales para la siembra. Esto se lo puede obtener mediante una
buena incorporación de materia orgánica que mejora la estructura del terreno.
Arado.- El terreno requiere de un arado profundo (30 cm) y dos pasadas de rastra
a 25 cm de profundidad.
Delineación.- Esta se realiza con cuerdas templadas sobre el suelo y con varas
de 7 y 6 m, que ayudan a señalar el lugar con estacas para su posterior hoyado,
las distancias entre filas y entre plantas van de acuerdo con la topografía del
terreno, clima, uso del riego, uso de maquinaria agrícola y mano de obra. En
promedio, se utilizan 7 metros entre hileras y 6 m entre plantas. Las hileras deben
estar alineadas hacia el Este.
Hoyado.- Se realiza en el lugar señalado por las estacas; esto se hace de 50 x 50
x 50 cm.
37
Trasplante.- El trasplante se realiza colocando la raíz principal en la mejor forma
posible y procurando que la planta quede al centro del hoyo. Puede realizarse en
cualquier fecha del año siempre que exista agua de riego, de lo contrario se hará
cuando comienzan las primeras lluvias de la estación invernal.
Deshierba.- Se realiza para evitar la competencia por los nutrientes, el agua del
suelo y el sol entre las plantas de guanábana y las malezas. Es necesario tener la
plantación libre de malas hierbas, evitando de esta forma también el ataque de
plagas y enfermedades.
Podas.- Las podas son cortes de ramas y ramillas que están en exceso Se
realizan para facilitar las prácticas culturales, ventilación y reducción del desarrollo
de enfermedades en la guanábana generalmente se practica la poda de
formación.
Poda de formación.- Consiste en la eliminación de la yema terminal, ramas
quebradas, torcidas y de aquellas que están en exceso, favoreciendo el
crecimiento de las ramas laterales, obteniendo un árbol robusto de copa más
amplia, esta acción pretende que las nuevas plantas estén acorde con la
iluminación, ventilación y producción.
Poda de mantenimiento.- Se da luego de la recolección de la fruta y consiste en
eliminar ramas rotas, enfermas o secas.
Fito sanidad y fisionarías
Plagas: Las principales plagas que afectan al cultivo de la guanábana son:
- Polilla de la guanábana…………………… (Thecla ortygnus)
- Avispa de la guanábana…………………. (Bephrata maculicollis)
- Perforador de la semilla………………….. (Cerconota annonella)
- Chinche de encaje…………………………… (Corythucha sp.)
- Escama hemisférica o globosa……….. (Saissetia sp.)
- Afidos………………………………………………. (Pulgones)
38
- Taladrador del tallo…………………………. (Cratosomus sp.)
- Ácaros……………………………………………… (Frophysanonae)
Broca del Fruto Broca del Tallo
Enfermedades: La principal enfermedad que ataca a la guanábana es la
- Antracnosis producida por el hongo Colletrotrichum gloesporoides, el cual ataca
las ramas, el tallo, a las hojas y a los frutos.
- Secamiento de ramas, causado por Diplodia sp. El síntoma principal radica en
el necrosamiento de las ramas terminales y su posterior secamiento.
- Mancha de las hojas (Scolecotrichum sp.)
Cosecha
Tiempo de producción.- La producción de la fruta comienza a partir del tercer año
y se estabiliza a partir del quinto con un rendimiento anual que oscila entre los 8
000 y 12 000 Kg. por ha., esto dependerá de las labores culturales de fertilización,
abonamiento y controles fitosanitarias que tenga la plantación.
Períodos de cosecha.- La planta de guanábana tiene una producción casi
permanente, habiendo meses en que su producción es mayor. Cuando la fruta
alcanza su completo desarrollo madura en corto tiempo, dos o tres días en la
costa y 4 a 8 días en la sierra.
Indicadores para la cosecha.- Se reconoce que la fruta está de cosecha porque
pierde su color brillante y adquiere un tono mate, es cuando ha alcanzado su
madurez fisiológica, por lo tanto se recomienda una constante vigilancia para la
cosecha de la fruta, con el fin de no dejarla madurar en el árbol o no cosecharla
antes de llegar a maduros.
39
Pos cosecha
Manejo de pos cosecha.- La fruta que ha sido recolectada y que no puede ser
rápidamente clasificada debe ser guardada en cuartos fríos, pero debe
considerarse que la fruta no puede ser almacenada por mucho tiempo ya que su
período de maduración es demasiado corto, en la costa es de 3 a 5 días y en la
sierra de 4 a 8 días, y cuando la fruta se mantiene en atmósfera controlada se
puede prolongar de 3 a 5 días su maduración.
Pesaje.- Esta operación implica los datos sobre el volumen para la cuantificación
del rendimiento.
Selección.- Se hace para separar las frutas sanas de las descompuestas.
Clasificación.- Permite separar entre las frutas ya seleccionadas, aquellas que
están listas para ser procesadas de acuerdo con su estado de madurez y las que
aún su estado es verde o Semi-maduro que deben ser almacenadas. El color,
aroma o dureza de las frutas son los mejores indicadores para elegir las frutas
adecuadas.
Almacenamiento.- Puede aplicarse para acelerar o retardar la maduración de las
frutas en la fábrica. La aceleración de la madurez se logra ajustando la
temperatura y humedad de una cámara donde se puede almacenar la fruta. El
retardo de la madurez se hace con la disminución de la temperatura y ajuste de la
humedad relativa de la cámara. Para lograr un almacenamiento positivo, lo
principal es manejar un estricto control de las condiciones en las que la fruta ha
sido almacenada.
Desinfección.- Una vez que la fruta haya alcanzado la madurez adecuada, se
inicia el proceso de limpieza a medida que se acerque el momento de extraer la
pulpa.
Se empieza con la inmersión de la fruta, es decir con agua a cierta presión, esto
ayuda a retirar de la fruta la tierra que contamine la superficie de la fruta y de esta
manera minimizar la necesidad del desinfectante en el siguiente proceso.
40
El siguiente paso es desinfectar la fruta; esto se hará mediante la aplicación de
hipoclorito de sodio que es el más utilizado y recomendado por su efectividad y
bajo costo. Este proceso consiste en sumergir las frutas en la solución
desinfectante durante un tiempo que puede ser de 5 a 10 minutos. Y, como último
paso, tenemos el enjuague que consiste en lavar las frutas con agua potable, si
es posible por aspersión con agua que corra y se renueve para quitar todos los
residuos de desinfectante y microorganismos.
1.3. DEFINICIÓNTÉRMINOS BÁSICOS
Acidez: La acidez en los productos agrícolas está determinada por la
concentración de ácidos orgánicos presentes. En general, la acidez va
formándose a medida que ocurre el desarrollo fisiológico o maduración.
Acidez titulable: Establece los niveles mínimos de ácido que debe poseer cada
pulpa, expresados en porcentaje masa/masa de ácido cítrico anhidro. Con esta
medida, se puede deducir el grado de madurez de la fruta que se empleó o si la
pulpa ha sido diluida.
Antioxidantes: Es un compuesto químico que hallándose presente a bajas
concentraciones con respecto a las de un sustrato oxidable, retarda o previene la
oxidación de dicho sustrato.
Arcilla: Partículas minerales pequeñas del suelo de menos de 0,002 mm. de
diámetro.
Arena: Es la fracción gruesa del suelo, compuesta por granos que miden 0.05
mm. Provienen de la intemperización de las rocas; no contiene nutrientes
minerales, tampoco capacidad de amortiguamiento químico; se usa
principalmente en combinación con materias orgánicas.
Abonos: Es cualquier sustancia orgánica e inorgánica que mejora la calidad del
sustrato, a nivel nutricional, para las plantas arraigadas en este.
SEGÚN el Reglamento de Abonos de la Unión Europea, el abono es materia
orgánica cuya función principal es proporcionar elementos nutrientes a las
plantas. Los abonos han sido usados desde la Antigüedad a partir de que se
41
añadían al suelo de forma empírica los fosfatos de los huesos (calcinados o no) el
nitrógeno de las deyecciones de los animales y humanos o el potasio de las
cenizas.
Abonamiento: Reposición de los nutrientes extraídos en base a las fuentes
orgánicas (compost). Además, sirve para mejorar las propiedades físico-químicas
del suelo.
Calidad: Es el grado en que un conjunto de características inherentes a bienes y
servicios cumple con unas necesidades o expectativas establecidas. Asimismo,
“calidad” también implica la aptitud al uso o la conformidad con los requerimientos
del usuario que tiene un determinado producto.
Compost: Es un abono orgánico que resulta de la transformación de la mezcla de
residuos orgánicos de origen vegetal y animal que se han descompuesto bajo
condiciones controladas.
Drenaje: Consiste en la remoción del agua sobrante, superficial o del subsuelo
retirándola por medio de conductos superficiales o subterráneos.
El guano de las islas: Es un fertilizante natural completo, ideal para el buen
crecimiento, desarrollo y producción del cultivo. Contiene macro-nutrientes como
el Nitrógeno, Fósforo y Potasio en cantidades de 10-14, 10-12, 2 a 3 %,
respectivamente.
Elementos secundarios como el Calcio, Magnesio y Azufre, con un contenido
promedio de 8, 0,5 y 1,5 % respectivamente. También contiene micro-elementos
como el Hierro, Zinc, Cobre, Manganeso, Boro y Molibdeno en cantidades de 20 a
320 ppm (partes por millón).
Enemigos naturales: Son las plagas (insectos) y las enfermedades (patógenos)
que afectan los distintos órganos de la planta reduciendo la producción o
destruyéndola completamente.
Estiércol: Son los excrementos de los animales que resultan como desechos del
proceso de digestión de los alimentos que consumen materia orgánica en
42
descomposición de origen animal, pudiéndosele mezclar con correctores como
cal, nitrógeno y fósforo.
Fertilización: Reposición de los nutrientes extraídos en base a las fuentes
inorgánicas (insumos químicos) y fuentes orgánicas (compost).
Fertilizantes: Abono que contiene sustancias químicas capaces de
transformarse, al entrar en contacto con la fase líquida del suelo, en iones. Estos
iones deben ser aptos para que las plantas los absorban y se nutran.
Germinación: Es el fenómeno fisiológico por el que el embrión emerge de la
semilla para, posteriormente mediante la absorción del agua conteniendo los
nutrientes, convertirse en una planta similar a la que le dio origen.
Humus de lombriz: Son los desechos de la lombriz de tierra al transformar, por
efecto de la digestión, los residuos sólidos con los que se alimenta artificial o
naturalmente. Materia orgánica que ha llegado a un estado más o menos estable
y avanzado de descomposición. Generalmente se caracteriza por su color oscuro,
su alto contenido de nitrógeno, por la proporción de carbono y nitrógeno que se
aproxima a 10,1 y por diversas propiedades físicas y químicas, tales como una
alta capacidad de intercambio catiónico, de absorción de agua e hinchamiento.
Humedad: Es el porcentaje de líquido contenido en el suelo o que existe en el
ambiente.
Materia orgánica: Está representada por los residuos descompuestos de plantas
y animales.
Musgo: Es un producto deshidratado de residuos jóvenes o porciones vivientes
de las plantas que desarrollan en los pantanos ácidos del género Shorgum, como
spapillosum, copillaceum y palustre. Es un producto relativamente estéril, ligero
con gran capacidad para la retención de agua, siendo capaz de absorber de 10 a
20 veces su peso en agua. Antes de proceder a su esterilización, es
desmenuzado manual o mecánicamente; contiene pequeñas cantidades de
minerales que favorecen el crecimiento de las plantas; tiene un pH de 3,4 a 4,
contiene algunas sustancias asépticas que impiden el desarrollo de patógenos
dañinos a las plantas.
43
Nutrientes de la planta: Elementos o grupos de elementos que la planta toma y
son esenciales para su crecimiento y que los emplea para su crecimiento y para
la formación de sus tejidos.
PH: Medida numérica de la acidez o alcalinidad de los iones de hidrógeno del
suelo. El punto neutro en pH es 7; todos los valores inferiores a 7 son ácidos y los
superiores son alcalinos.
Propagación asexual: O multiplicación vegetativa, se basa en la facultad que
tienen algunas partes de la planta para producir nuevos brotes y raíces, o bien
para unirse entre sí para formar un nuevo elemento.
Propagación sexual: La semilla es la unidad de dispersión y supervivencia de
una especie vegetal, sea esta silvestre o cultivada, que lleva en sí el
germoplasma. La propagación por semillas es uno de los métodos de
reproducción de plantas más usados en la naturaleza y, además es uno de los
más eficientes, pues se encarga de mantener las características genéticas que le
confiere a las plantas la resistencia necesaria para su supervivencia.
Suelo: Es un compuesto de materiales que se encuentran al estado sólido,
líquido y gaseoso, los que al presentarse en proporciones adecuadas se destinan
a favorecer el desarrollo satisfactorio de las plantas. La parte sólida está
compuesta por elementos orgánicos e inorgánicos, la parte líquida está formada
por agua con diversas cantidades de minerales disueltos, la parte gaseosa
contiene oxígeno y bióxido de carbono.
La proporción gaseosa, conjuntamente con la líquida del suelo, son importantes
para el crecimiento de las plantas ya que suelos encharcados el exceso de agua
desplaza al aire con los contenidos gaseosos, dificultando la respiración de las
raíces y de muchos microorganismos aeróbicos benéficos que dependen del
oxígeno para su existencia. La parte sólida determina la textura del suelo, la que
de acuerdo con la proporción de arena, limo y arcilla, orienta la aptitud del suelo
para el desarrollo de los cultivos.
44
Sustrato: Es la mezcla en proporciones iguales que se hacen de acuerdo con el
requerimiento de la semilla que se desea propagar, utilizando tierra, humus y
musgo.
Temperatura: Es el grado de calor o de frío que poseen los cuerpos. Para que el
prendimiento de la semilla se lleve a cabo en forma normal y en tiempo
conveniente, la temperatura debe estar algo superior a la que exige la especie
para desarrollar normalmente una vez enraizada.
45
CAPÍTULO II
PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
2 Determinación del problema.
Actualmente la investigación en guanábana está en curso. Cuatro nuevos
estudios se han publicado en 1998 sobre avances fitoquímicos específicos que
están demostrando las características anticancerígenas y antivirus más fuertes.
Los acetogénesis de Anonáceas se encuentran solamente en la familia del
annonaceae. En general, los varios acetogénesis anonáceos se han
documentado con actividades antitumorales, antiparasitarias, pesticidas,
antiprotozoarias, antimetastasis, antihelmínticas, y antimicrobianas. Ha habido
mucho interés en los productos químicos que han demostrado característica
antitumoral potente y varios grupos de investigación están intentando sintetizar
estos productos químicos para las drogas quimioterapéuticas nuevas.
De acuerdo con estos estudios realizados en distintos países del mundo nos
dicen que este árbol, frutal como es la guanábana, contiene gran cantidad de
nutrientes que son necesarios para la nutrición humana por ello; teniendo en
cuenta que el clima y las condiciones ambientales del lugar de origen de esta
planta son similares a las condiciones climáticas que tenemos en la Universidad
Nacional de Educación Enrique Guzmán y Valle. Por ende se evaluó la
46
incidencia de los fertilizantes orgánicos en la germinar de la semilla botánica con
diferentes tipos de abonos orgánicos. SI esta planta germina y se adapta a este
ambiente y los resultados serían excelentes se comenzaría a cultivar este árbol
frutal en la Universidad, conjuntamente con las especialidades de Agropecuaria,
Nutrición Humana e Industria Alimentaria, Con el fruto se prepararía porciones
nutritivas probarlas y distribuirlas en las escuelas y barrios marginados que se
encuentran distribuidos dentro del área de influencia de la Universidad,
resolviendo en parte el problema de desnutrición de los niños y adultos.
A este árbol frutal actualmente se le está dando uso desde la raíz hasta sus hojas
para:
El uso sanitario
Usos farmacológicos
Usos en la agricultura
Usos alimenticios (alimentación humana)
Para usos médicos
En el Perú, casi no se cultiva a gran escala; los hombres y las mujeres del campo
lo vienen sembrando como complemento esporádicamente en las orillas y
esquinas de sus terrenos o crece como mala yerba.
Esto hizo que el investigador se plantee estudiar de cómo inciden los abonos
orgánicos en la germinación de las semillas botánicas, con la finalidad de lograr
plántulas de buen nivel y calidad y ofertar a los interesados y, en función a las
exigencias del mercado dedicarse a la producción de plántulas orgánicas para
hacer agricultura en gran escala en cualquier lugar del país, y por qué no decir su
exportación de plántulas a los mercados agropecuarios del mundo. Así mismo,
generaría mayor demanda de los fertilizantes orgánicos como el compost, humus
de lombriz y guano de isla.
47
2.2. FORMULACIÓN DEL PROBLEMA
Problema General
¿De qué manera los fertilizantes orgánicos inciden en el crecimiento de la semilla
botánica del guanábano en el Vivero Experimental de La Cantuta?
Problemas Específicos
¿Cuál es el nivel de incidencia de los fertilizantes orgánicos en el crecimiento de
la semilla botánica del guanábano en el Vivero Experimental de La Cantuta?
¿Cuál es el fertilizante orgánico de mayor incidencia en el crecimiento de la
semilla botánica del guanábano en el Vivero Experimental de La Cantuta?
¿Cuál es el nivel de aceptación del fertilizante de mayor incidencia por las
fruticulturas de la zona?
2.3. OBJETIVOS
Objetivo General
Determinar y demostrar la incidencia de los fertilizantes orgánicos en el
crecimiento de la semilla botánica del guanábano en el Vivero Experimental de
La Cantuta.
Objetivos Específicos
Establecer el nivel de incidencia de los fertilizantes orgánicos en el crecimiento de
la semilla botánica del guanábano en el Vivero Experimental de La Cantuta.
Identificar el fertilizante orgánico de mayor incidencia en el crecimiento de la
semilla botánica del guanábano en el Vivero Experimental de la Cantuta.
Evaluar el nivel de aceptación del fertilizante de mayor incidencia por las
fruticulturas de la zona.
48
2.4. JUSTIFICACIÓN DEL PROBLEMA
Los frutales son cultivos de gran importancia a nivel mundial por proporcionar
alimentos de un alto valor vitamínico y ser una agradable variación dentro de la
dieta diaria. El Perú no es una excepción a lo que acontece a nivel mundial y cada
vez las especies frutales vienen cobrando una mayor importancia dentro del
sector agrícola. Desde inicios de la década pasada la exportación de productos
frutícolas en forma fresca y/o procesada viene siendo una realidad cada vez más
atractiva.
Los beneficios que brinda la presente investigación es una opción muy importante
para los estudiantes de la Facultad de Agropecuaria y Nutrición, especialmente a
la especialidad de Industrias Alimentarias, Agropecuaria y Nutrición Humana. Ya
que al obtener excelentes resultados los estudiantes, y docentes apostarían por
producir abonos orgánicos y a cultivar al guanábano para obtener los frutos de
este árbol, toda vez que les serviría para convertirlos en subproductos como
mermeladas, yogur, refrescos, néctar, vinos, etc. La guanábana está siendo muy
apreciada en estos últimos años no solo por su aceptación en el gusto, sino
porque también posee vitaminas, minerales y aminoácidos esenciales muy
importantes para la salud.
Aplicar tecnologías con los campesinos ya que son fáciles de aplicar y adoptar por
los productores toda vez que se los capacita para elaborar sus propios insumos
con subproductos de la propia unidad de producción o con residuos de la misma o
con algunos componentes de fácil acceso en la región y que son de bajo costo.
Todas estas tecnologías promueven al 100% la conservación y desarrollo de los
recursos naturales como el suelo, el agua y la pureza del aire.
Transferir tecnología y capacitar a los productores para la producción de
guanábana orgánica, con el objetivo de que incrementen su rendimiento,
recuperen la fertilidad de sus tierras, a bajo costo, sin contaminar el ambiente y
sin riesgo de intoxicaciones para los trabajadores del campo, obteniendo
productos libres de residuos tóxicos, certificados como orgánicos después del
tercer año de transición para tener acceso a los Precios Premium del Mercado
Orgánico.
49
El fruto de guanábana también puede exportarse en diferentes presentaciones
como en estado fresco, las presentaciones en forma procesada incluyen harina de
guanábana, pasta de guanábana, jugos y néctares de guanábana, pasteles de
guanábana y pulpa congelada de guanábana.
2.5. IMPORTANCIA Y ALCANCES DE LA INVESTIGACIÓN
Importancia:
En la actualidad se ha incrementado el uso de fertilizantes químicos que afectan
a la humanidad y la contaminación del medio ambiente; por ello esta investigación
nos ayudará a reducir el uso de fertilizantes químicos y que serán remplazados
por fertilizantes orgánicos que no dañan la salud ni contaminan el ambiente.
También en nuestra tarea educativa nos vemos en la necesidad de promover,
fortalecer y brindar toda la enseñanza necesaria para que los campesinos y
estudiantes adopten un sistema de producción de plantas de forma natural,
mediante el uso de sustratos orgánicos de reconocido valor ecológico que son de
suma importancia y necesidad para los intereses de la comunidad.
Los estudiantes y agricultores serán los actores directos de la transferencia de
esta tecnología apropiada y sostenible como alternativa a las necesidades de los
productores y exigencias de la comunidad rural.
Por tanto, la adopción de producir plantas de guanábano, en forma natural en
base a sustratos orgánicos, sirve a la comunidad para mejorar la calidad
productiva lo cual reducirá además los costos de producción, incentivando la
producción y renovación de plantas con deficiente producción.
Alcances:
Los resultados de esta investigación favorecen a campesinos, fruticulturas y a las
personas que usen los abonos orgánicos en las comunidades, además
contribuirá como alternativa didáctica para docentes, estudiantes, de los
diferentes niveles educativos agricultores e investigadores.
50
2.6. LIMITACIONES DE LA INVESTIGACIÓN
Dentro de la principal limitación es la obtención de semillas libres de patógenos
causantes de enfermedades y de estados inmaduros de insectos que podrían
afectar el normal brotamiento de la semilla y posterior desarrollo de las plántulas;
así mismo, las naturales dificultades para la validación de los análisis de los
sustratos que se emplean en la investigación.
Limitaciones de tipo económico.
Los gastos de bienes, servicios, materiales, insumos y herramientas, los cuales
fueron cubiertos con recursos propios.
Limitaciones de tiempo.
Esta limitación es visible ya que el tiempo utilizado para la investigación es
compartido con las horas laborales y nuestro quehacer universitario.
51
CAPÍTULO III
METODOLOGÍA
3.1. HIPÓTESIS.
Hipótesis General
Los fertilizantes orgánicos inciden significativamente en el crecimiento de la
semilla botánica del guanábano en el Vivero Experimental de La Cantuta.
Hipótesis específicas
La incidencia de los fertilizantes orgánicos es de un nivel alto en el crecimiento de
la semilla botánica del guanábano en el Vivero Experimental de La Cantuta.
Identificar el fertilizante orgánico de la mayor incidencia en el crecimiento de la
semilla botánica del guanábano en el Vivero Experimental de La Cantuta.
Establecer el nivel de aceptación del fertilizante de mayor incidencia por las
fruticulturas de la zona
3.2. VARIABLES
- Variable independiente:
Fertilizantes orgánicos
- Variable dependiente:
Germinación de la semilla botánica del guanábano
- Variable interviniente:
Factores ambientales.
52
3.3. OPERACIÓN DE VARIABLES
VARIABLES DIMENSIÓN INDICADORES
VI. Fertilizantes orgánicos
Humus de lombriz 50%
Excelente = 3
Bueno = 2 Deficiente = 1
Guano de isla 75% Excelente = 3 Bueno = 2
Deficiente = 1
Compost 50% Excelente = 3 Bueno = 2 Deficiente =1
Tierra agrícola 100% Excelente =3 Bueno =2
Deficiente =1
V.D. Germinación y
crecimiento de la semilla
botánica del guanábano
Bueno = 2 Regular = 1 Malo = 0
N° de hojas
Bueno = 2
Regular = 1 Malo = 0
Altura de planta Bueno = 2 Regular =1 Malo = 0
V. Interviniente Factores ambientales Agua Sustrato
Clima.
3.4. Tipo y método de la investigación
Este estudio de investigación corresponde al tipo de investigación cuantitativa
tecnológica, y el método aplicado ha sido el experimental, llevándose a cabo en
el campo y en el laboratorio.
3.5. Diseño de la investigación desarrollado.
Así mismo, para el trabajo de campo se realizó con el diseño de bloques
completamente randomizados con cuatro repeticiones, manipulándose la variable
independiente mediante el empleo de tres fuentes de sustratos (humus de
lombriz, compost y guano de isla, mezclados con tierra agrícola, observando el
53
efecto durante el proceso de brotamiento y crecimiento de la semilla de
guanábano, la misma que constituye la variable dependiente.
Diseño estadístico:
El diseño estadístico que se aplicó es un diseño experimental, del tipo de Diseño
Block Completamente Randomizados, con las correspondientes pruebas de
significación con la distribución de “F” y la “T” de student, y entre los límites de
confianza de 0,05 y de 0,01.
3.6. POBLACIÓN Y MUESTRA
En las áreas agrícolas de la Universidad Nacional de Educación La Cantuta,
actualmente se cuenta con 200 plantas de guanábano (anona muricata), una
cierta cantidad en producción y otra en crecimiento.
La muestra está constituida por las 48 semillas de guanábano (anona muricata)
DISTRIBUCIÓN DE LOS TRATAMIENTOS
54
CAPÍTULO IV
INSTRUMENTOS Y RESULTADOS
4.1. Selección y validación de instrumentos.
El proceso de evaluación se realiza en forma continua, desde la germinación de la
semilla hasta que la planta alcanzó la altura de 20 a 30 cm, presentando las
características de una plántula lista para ser trasplantadas.
Los instrumentos seleccionados y validados empleados para recaudar los datos
obtenidos durante la investigación fueron los indicadores contenidos en la
paralización de las variables el análisis de la variancia y cuadros estadísticos para
ella se complementaron los siguientes materiales.
Regla y centímetro
Calendario
Cámara fotográfica
Materiales impresos
¼ de ciento de papel bond
4 lapiceros
2 correctores de tinta
1 libreta de campo
Herramientas
2 lampas
55
1 rastrillo
1 carretilla
2 regaderas y 1 cernidor
Materiales para el sustrato
1 carretilla bugí de humus
1 carretilla bugí de compost
1 carretilla bugí de guano de isla
1 carretilla bugí de tierra agrícola
Materiales para desinfección de semillas y sustrato
1 recipiente
Ácido giberílico.
4.2. Técnicas de recolección de datos
Para la investigación se aplicó el diseño de bloques completamente randomizado,
con cuatro tratamientos y cuatro repeticiones, manipulándose la variable
independiente mediante el empleo de tres fuentes de abono orgánico que fueron:
humus de lombriz, guano de isla y compost, las tres mezcladas con tierra agrícola
en cada bolsa. Durante el proceso, se observó de acuerdo con los indicadores
establecidos.
Unidad Experimental:
La Unidad Experimental fue constituida por 48 bolsas debidamente adecuadas
con capacidad de 5 kg. cada uno, correspondiendo cuatro bolsas por tratamiento
en donde se depositó respectivamente dos semilla, teniéndose un total de 12
bolsas por bloque con sus correspondientes semillas; para el segundo, tercero y
cuarto bloque se procedió de la misma manera, la distribución de los tratamientos
en los bloques se realizó completamente al azar.
56
1er. Tratamiento 50% humus de lombriz
+ 50% tierra agrícola.
2do. Tratamiento 25% guano de isla
+ 75% tierra agrícola.
4to. Tratamiento 100% tierra agrícola.
3cer. Tratamiento 50% compost
+ 50% tierra agrícola.
Campo Experimental:
El área que ocupó el
experimento fue de 5 mts.
De largo por 5 m. de ancho,
en total serán 25 m2. Donde
fueron distribuidos
armónicamente las bolsas
experimentales.
Tratamiento de datos
El trabajo de campo o experimento consta de 4 tratamientos con 4 repeticiones,
cada tratamiento con 4 semillas de guanábana efectuándose los riegos y
desmalezando de acuerdo con el requerimiento de la planta.
Tratamientos:
57
El procedimiento que permitió obtener los datos y la información correspondiente
para las evaluaciones y conclusiones respectivas, fue la siguiente:
Se midió el porcentaje de germinación en todos los tratamientos.
Se evaluó el color de las plántulas durante el proceso del desarrollo, por el
método comparativo en cada tratamiento.
Se contó el número de hojas después de la germinación y el desarrollo de
las hojas verdaderas, cada dos semanas.
Se midió la altura de la planta desde el nivel del cuello hasta el ápice de
crecimiento, cada semana, después de la germinación, hasta que alcance
la altura de 20 a 30 cm.
Se evaluó el sistema radicular de la planta, permitiendo la diferenciación
del efecto de los sustratos aplicados por cada tratamiento, midiendo la
densidad de raíces. Este proceso se llevó a cabo cuando la planta las
condiciones de ser trasplantada.
El experimento se dio por concluido cuando la planta alcanzó la altura de
20 a 25 cm. Con estos datos o medidas obtenidos, la planta no obtuvo el
diámetro de un lápiz como se esperaba.
58
4.3. Fases de campo.
Elección y preparación del terreno.
El experimento se realizó en un área determinada cerca de la plantación de
frutales como mango, granadilla y palto en el margen izquierdo del cerro
Talcomachay de la Universidad Nacional de Educación, en donde se instaló los
tratamientos para la investigación. Para este proyecto de los fertilizantes
orgánicos y su incidencia en la germinación de la semilla botánica del guanábano
en el Vivero Experimental de La Cantuta se tuvo que adecuar e implementar con
algunos detalles para poder trabajar y tener éxito en la investigación.
Preparación de la tierra
agrícola para los sustratos.
La preparación de sustratos es un proceso muy importante en el cual se tiene que
elegir un área de terreno para sacar la cantidad de tierra agrícola que se mesclara
en ciertos porcentajes con los abonos orgánicos. La tierra agrícola de preferencia
debe ser de color negro libre de rocas.
Luego de picar y extraer tierra se debe pasar
por una zaranda, para obtener una tierra
refinada y libre de rocas.
59
Obtenida la tierra necesaria, pasamos a
mezclar la tierra agrícola con los abonos
orgánicos en las siguientes proporciones:
El 50% de humus de lombriz más el 50% de tierra agrícola es el primer
sustrato.
75% de guano de isla más el 25% de tierra agrícola es el segundo
sustrato.
El 50% de compost más el 50% de tierra agrícola es el tercer sustrato.
El cuarto sustrato es 100% de tierra agrícola.
Llenado de bolsas.
Para el llenado de bolsas, se recomienda usar en este caso bolsas de polietileno
color negro, para plantas frutales. El llenado se realiza manualmente. Para esta
investigación se llenaron doce bolsas por cada tratamiento sumando en total
cuarenta y ocho bolsas.
Selección y desinfección de semillas
Las semillas de guanábano que se eligió no fueron certificadas ni compradas de
un centro comercial; fueron obtenidas del fruto de guanábana que se compró del
mercado y luego fueron lavadas, secadas en sombra, se eligieron las semillas por
su color, tamaño y aspecto, por ello es necesario desinfectar las semillas antes de
60
sembrarlas para que no les ataque los insectos que están en el suelo antes de
germinar o para que no desarrollen enfermedades cuando la planta haya
germinado.
La desinfección de semillas puede ser mediante productos fitosanitarios
específicos (fungicidas o insecticidas). Para la investigación, se usó un producto
químico BOTRIMEX que es un fungicida.
Se deben saber que si este producto no se aplica adecuadamente puede resultar
nocivo para la salud.
Para la desinfección de semillas, se recomienda que usen otros desinfectantes
ecológicos, ya que así estaremos cuidando el ambiente.
En la investigación también se usó un producto muy conocido el ÁCIDO
GIBERILICO que es una hormona que ayuda a acelerar el brotamiento o
germinación de la semilla.
Siembra de la semilla de guanábano.
Para la siembra se recomienda que el suelo este húmedo; así, el suelo este en un
punto neutro ni tan seco ni charcoso, en este caso los tratamientos se regaron
unos días antes.
Las semillas para la siembra se escogieron por su color, tamaño y aspecto, luego
de escoger las semillas se colocó dos semillas en cada bolsita con el objetivo de
que si una moría la otra sería su reemplazo.
61
Evaluación de la germinación, brotamiento y
desarrollo de las plántulas.
En este caso, se midió el porcentaje de
germinación en todos los tratamientos, siendo el
100% el total de las 48 semillas, por ser de la
misma variedad y procedentes de un mismo lugar.
Se evalúo el color de las plántulas durante el proceso del desarrollo, por el
método comparativo en cada tratamiento.
Se tomaron las medidas del diámetro del tallo en el proceso del desarrollo
cada una o dos semanas dependiendo del desarrollo hasta alcanzar el
diámetro de un lápiz después de la germinación.
Se contó el número de hojas después de la germinación y el desarrollo de las
hojas verdaderas, cada dos semanas.
Se midió la altura de la planta desde el nivel del cuello hasta el ápice de
crecimiento, cada dos semanas, después de la germinación, hasta que
alcance la altura de 30 a35 cm.
Se evaluó el tamaño, color y forma de la planta, por cada tipo de tratamiento,
permitiendo observar la homogeneidad de las plantas según los diferentes
sustratos aplicados, que fue después de la germinación.
Finalmente, se tuvo que evaluar la formación y el tamaño de las raíces,
permitiendo la diferenciación del efecto de los sustratos aplicados por cada
tratamiento, midiendo la densidad de raíces. Este proceso se llevó a cabo
cuando la planta se encontraba en condiciones de ser trasplantada.
Registro de la observación.
Durante el proceso de observación de las plántulas de guanábano, al tercer
mes después de la siembra se observó que algunas plantas no podían salir o
botar la capa protectora ni los cotiledones y estaban creciendo torcidos por
motivo que no podían romper la envoltura protectora ni los cotiledones.
62
También algunas de las semillas que ya estaban creciendo y no podían botar la
envoltura protectora, por lo que se optó por ayudarlas abriendo la envoltura
protectora y dejándola en cotiledones. Algunas de ellas se beneficiaron y otras se
pudrieron las dos primeras hojas dentro de su cotiledones y quedaron solo la base
sin hojas y ellas seguían verdes pero ya no crecieron hojas por más que pasó el
tiempo (observar imagen). Estas plantas se descartaron y se aprovechó para
observar las raíces; en algunas se encontró que las raíces estaban picoteadas
producto de una plaga que las ataca.
Otro de los casos que se presentó a los tres y medio de edad de la planta fue la
presencia de pulgones, araña y larvas de color marrón un poco gris oscuro estas
se estaban comiendo las hojas. Para controlar las placas se aplicó un producto
químico llamado Botrimex.
63
4.4. Tratamiento estadístico e interpretación de cuadros.
El experimento se realizó en un área determinada cerca de la plantación de
frutales como mango, granadilla y palto en el margen izquierdo del cerro
Talcomachay de la Universidad Nacional de Educación, en donde se
instaló los tratamientos para la investigación. Para la obtención de datos y
la información para su evaluación y llegar a las conclusiones. A
continuación se presenta la lectura de los siguientes cuadros.
4.4.1. Fechas de germinación de la semilla de guanábana.
Gráfico N°1
Germinación de la semilla, tomado en la fecha 12-08-14
Humus + tierra Guano de isla + tierra. Compost + tierra Testigo.
%
100 75 50 25 0
T-1 T-2 T-3 T-4
En el cuadro se observa que de los cuatro tratamientos el sobresaliente es el T.1, con un 50 % de germinación, siendo 4 el 100%. Así mismo el T.3 le sigue con
0,25%. El T2, y T.4 aún no se tienen resultados debido a que la semilla recién está hinchando.
64
Gráfico N°2
Germinación de la semilla, tomado en la fecha 22-08-14
Humus + tierra Guano de isla + tierra. Compost + tierra Testigo.
%
100 75 50 25 0
T-1 T-2 T-3 T-4
De los cuatro tratamientos el T.1 sobresale alcanzando el 100% de germinación de la semilla, así mismo el T.2, T.3 y T.4, se encuentran distantes del T.1.
Gráfico N°3
Germinación de la semilla, tomado en la fecha 03-09-14
Humus + tierra Guano de isla + tierra. Compost + tierra Testigo.
%
100 75 50 25 0
T-1 T-2 T-3 T-4
A esta fecha se observa que los tratamientos T.2, T.3 y T.4, alcanzan al T.1, retardadamente. Así mismo se observa que el mayor porcentaje de germinación en relación con el T-1 siempre se ha mantenido en primer lugar siendo igualado
por los demás después de 21 días por los demás tratamientos
65
4.4.2. Fechas del número de hojas de la planta de guanábana.
Lectura de número de hojas tomado en la fecha 07-10-14
Gráfico N°4
En lo que respecta a los tratamientos el que más sobresale es el T.1 con
un promedio de seis hojas. Y el T.2, T.3 y T.4, se encuentran distantes del T.1.
Lectura de número de hojas tomado en la fecha 27-10-14
Gráfico N°5
De los cuatro tratamientos el T.1 sobresale alcanzando un promedio de
ocho hojas, así mismo el T.2, T.3 y T.4, se encuentran distantes del T.1.
0
1
2
3
4
5
6
7
T.1 T.2 T.3 T.4
Humus + tierra
Guano de isla + tierra
Compost + tierra
Testigo
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
T.1 T.2 T.3 T.4
Humus + tierra
Guano de isla + tierra
Compost + tierra
Testigo
66
Lectura de número de hojas tomado en la fecha 15-11-14
Gráfico N°6
Se observa al T.1 destacándose significativamente con un promedio de 10 el número de hojas, seguidamente es el T.2 el T.3 y el T.4 que están lejos
del T.1. Esto quiere decir que el del humus de lombriz influye significativamente.
Lectura de número de hojas tomado en la fecha 10-12-14
Gráfico N°7
De los tratamientos experimentales, el T.1 logra una planta con un
promedio de 14 hojas en dos meses con tres días después de la germinación, siendo este el más sobresaliente de los cuatro tratamientos. Es seguido por el T.2, T.3 y T.4 que están distantes del T.1.
0
2
4
6
8
10
12
T.1 T.2 T.3 T.4
Humus + tierra
Guano de isla + tierra
Compost + tierra
Testigo
0
2
4
6
8
10
12
14
16
T.1 T.2 T.3 T.4
Humus + tierra
Guano de isla + tierra
Compost + tierra
Testigo
67
Cm
Lectura de número de hojas tomado en la fecha 16-12-14
Gráfico N°8
El T.1 a los 3 meses después de la germinación llega eficazmente con un promedio de 16 hojas siendo este el promedio más alto. Le siguen
distantemente el T.2, T.3 y T.4.
4.4.3. Fecha en cm de altura de la planta de guanábana.
Lectura en cm, tomada en la fecha 17-09-14
Gráfico N°9
En dicha fecha que fue la primera toma de los cuatro tratamientos experimentales se observa que el T.1, logra una plántula con un promedio
de 8 cm. Siendo esta la de mayor tamaño. El T.2, T.3 y T.4 a esta fecha alcanzan un promedio por debajo de los 3cm.
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
T.1 T.2 T.3 T.4
Humus + tierra
Guano de isla + tierra
Compost + tierra
Testigo
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
T.1 T.2 T.3 T.4
Humus + tierra
Guano de isla + tierra
Compost + tierra
Testigo
68
Lectura en cm, tomada en la fecha 07-10-14
Gráfico N°10
En el cuadro se observa que T.1 es el que más sobresale con una planta de 9 cm mayor que el T.2, T.4 y T.3 que están con un promedio por debajo de 5 cm
Lectura en cm, tomada en la fecha 27-10-14
Gráfico N°11
Con respecto a los cuatro tratamientos experimentales el T.1 es el que más sobresale alcanzando una plántula con un promedio de 11 cm. Y el T.2, T.3 y T.4, se encuentran distantes del T.1.con un promedio de 5 a 6 cm de
tamaño de la planta.
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
T.1 T.2 T.3 T.4
Humus + tierra
Guano de isla + tierra
Compost + tierra
Testigo
0
2
4
6
8
10
12
T.1 T.2 T.3 T.4
Humus + tierra
Guano de isla + tierra
Compost + tierra
Testigo
69
Lectura en cm, tomada en la fecha 15-11-14
Gráfico N°12
En dicha fecha el tratamiento que más resalta es el T.1 con una planta de un promedio de 13 cm. Mayor que el T.2, T.3 y T.4. Este resultado se debe a que el humus contiene más elementos químicos que el resto.
Lectura en cm, tomada en la fecha 10-12-14
Gráfico N°13
A los tres meses con 7 días después de la germinación el tratamiento que
ha obtenido la planta más alta es el T.1, con una planta de un promedio de
16 cm. y el resto le sigue con plantas que están por debajo de 11 cm.
0
2
4
6
8
10
12
14
T.1 T.2 T.3 T.4
Humus + tierra
Guano de isla + tierra
Compost + tierra
Testigo
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
T.1 T.2 T.3 T.4
Humus + tierra
Guano de isla + tierra
Compost + tierra
Testigo
70
También se evaluó el color de la planta en dos fechas que corresponde;
una, al inicio cuando la planta tenía un mes después de la germinación y
otra, al finalizar, el experimento se evaluó por el método comparativo por
cada tratamiento.
Lectura de color de la planta en la primera fecha.27-10-14
Gráfico N°14
Tratamientos Lectura de color de la planta
Verde intenso Verde oscuro Verde claro
T.1 x
T.2 x
T.3 x
T.4 X
Aplicando el método comparativo de cada tratamiento en el cuadro se define qué el T.1, adquiere un color intenso mucho mejor que el T.2, T.3 y el T.4. Esto se debe a que el humus influye en el color de la planta.
Lectura de color de la planta en la última fecha.06-01-15
Gráfico N°15
Tratamientos color de la planta
Verde intenso Verde oscuro Verde claro
T.1 x
T.2 X
T.3 x
T.4 X
Se concluye que el T.1 ha mantenido su color. En cambio el T.2, varó su color, excepto el T.3 y el T.4 que mantuvieron su color, pero no es
aceptable en la investigación.
Por último se evaluó el sistema radicular de la plántula por cada
tratamiento aplicando el método comparativo.
71
Lectura del sistema radicular de la planta en la última fecha 06-01-15.
Gráfico N°16
Tratamientos sistema radicular de la planta
Abundante Normal Escasa.
T.1 x
T.2 x
T.3 X
T.4 X
Con respecto a los cuatro tratamientos el que más sobresale es el T.1 obteniendo plantas con abundante sistema radicular y buena conformación. En
el T.2 y T.3, el sistema radicular es normal y el T.4 ha sido escaso en sistema radicular.
4.5. Prueba de hipótesis y resultados
Para el análisis se tiene en cuenta los siguientes resultados obtenidos durante el proceso del experimento llevándose los registros correspondientes para cada tratamiento, en donde se anotó la información obtenida.
Ultima lectura en cm. tomada en la fecha 06-01-14
El tratamiento estadístico que se aplicó para esta investigación como ya se
mencionó fue el diseño Block completo Randomizado, con las pruebas
correspondientes de límite significación al 0,05% y la T de student.
BLOQUES
TRATAMIENTOS TOTAL
(X) 𝑥2
1 2 3 4
I 10 9 10 9 38 1444
II 22 14 9 11 56 3136
III 16 13 11 13 53 2809
IV 23 15 11 13 62 3844
TOTAL(X) 71 51 41 46 209
𝑥2 5041 2601 1681 2116
72
Para el análisis de la varianza se aplicó el siguiente cuadro.
Dónde:
GL = Grado de libertad
SC = Suma de cuadrado
CM = Cuadrado medio
FC = Variable calculada
SCb = Suma cuadrado bloks
R = repeticiones
t= tratamientos
SCT= suma de cuadrados total
𝑇𝐶 = (209)2 / 16 =43681/16=2730
SC total = 3001-2730 =271
SC bloques =11233/4 - 2730 = 2808 - 2730=78
SC tratamientos = 11439 /4 = 2860 – 2730 = 130
Error experimental = 271 – (130 + 78)= 208 – 271= 63
ANÁLISIS DE LA VARIANCIA
Fuente de
variabilidad
GL SC CM
F. Calculado
Bloques
Tratamientos
Error
experimental
r-1
t-1
(r-1)(t-1)
De bloques
De tratamientos
SCT-(SCT+SCt
SCb/GL
SCt/GL
SCt/E.Exp
0.05*
Total (t) (r)-1 SCb+SCt+Error
73
ANÁLISIS DE LA VARIANCIA
El valor obtenido de Fc 6.14 nos está indicando que estadísticamente existen
diferencias significativas entre los promedios de los tratamientos conforme se
observa al comparar el valor de Ft 3.86 en la tabla correspondiente.
Observando el cuadro de la lectura efectuada en la última fecha, se nota que en el
promedio de los tratamientos sobresale el tratamiento con sustrato de humus de
lombriz sobre el más próximo que es el tratamiento con sustrato de guano de isla.
4.6. Discusión de los resultados
Medición fenológica de los tratamientos
a). V.I Los fertilizantes orgánicos
En el cuadro se observa que el t.1, ha dado excelentes resultados esto se debe a
que la composición química del humus de lombriz es mayor que el t.2 y t3, pero también es aceptable excepto el t-1 que es deficiente.
ANÁLISIS DE LA VARIANCIA
Fuentes de
variabilidad GL SC CM Fc
Bloques 4-1=3 78 26
Tratamientos 4-1=3 130 43 6.14*
Error
experimental (3)(3)=9 63 7
Total 15
Indicadores Excelente Bueno Deficiente
Tratamientos
Tratamiento 1 x
Tratamiento 2 x
Tratamiento 3 x
Tratamiento 4 x
74
b). Plántulas de guanábano.
TRATAMIENTOS T-1 T-2 T-3 T-4
INDICADORES B R M B R M B R M B R M
DIM
EN
SIO
NE
S
Porcentaje de
Germinación.
X X X X
N° de hojas X X X X
Altura de planta X X X X
Color de la planta. X X X X
Sistema radicular
de la planta.
X X X
Con relación al análisis de la variancia, se observa que el resultado obtenido
existen diferencias significativas entre los resultados de los promedios de los
tratamientos, puesto que al comprobar el resultado del factor tabular (Ft) que es
3,86, al nivel del 0,05 con lo obtenido del factor calculado (Fc) que es de 6,14 se
demuestra que hay evidencia que existen diferencias en las que se indican.
75
CONCLUSIONES
Al realizarse el análisis de la variancia del experimento, aplicándose las
pruebas estadísticas y límites de significación correspondientes, se
determinó que existe variabilidad entre los promedios de las muestras, por
lo que se asume que las semillas de guanábana no todas germinan al
mismo tiempo aunque sean de su misma procedencia.
Se demostró que el sustrato de la mezcla de humus de lombriz con tierra
agrícola es la adecuada e influye significativamente en la germinación,
crecimiento, color, número de hojas y sistema radicular de las plántulas de
la guanábana. Esto debido a que el humus de lombriz tiene más nutrientes
que favorecen a la planta, notándose una diferencia significativa con los
demás tratamientos.
Se concluye que los sustratos que le siguen al humus de lombriz es el
sustrato de tierra agrícola con guano de isla, compost más tierra agrícola y
el testigo. Debido a que dichas mezclas contienen menos nutrientes para
favorecer a la planta.
Se determinó que el promedio de las características fenológicas que
presentaron las plantas del tratamiento humus de lombriz con tierra
agrícola durante la germinación y crecimiento es el más sobresaliente de
los cuatro sustratos. También es aceptable el T.2 el T.3 a aceptó el T4 que
tiene retrasos. Debido a que la tierra sola no tiene la cantidad necesaria de
micro-elementos para satisfacer las necesidades de las plantas.
Se define que a los tres meses después de la germinación se obtiene una
planta con un promedio de 18cm, con buen número de hojas de color verde
intenso y con abundantes raíces. Esto se logra con el sustrato de la mezcla
de humus de lombriz, a diferencia del T.2, T3, T.4 que no logran estas
características.
76
RECOMENDACIONES
Difundir y fomentar los fertilizantes orgánicos considerando el sustrato de
humus de lombriz con tierra agrícola que es el que da mayores resultados
en el crecimiento de guanábana y de otras frutas.
Darles mayor importancia a los fertilizantes orgánicos para los
abonamientos de los frutales; así mismo, estaremos reduciendo los
fertilizantes químicos y la contaminación del medio ambiente.
Utilizar el humus de lombriz como elemento constituyente en la preparación
de sustratos orgánicos; además de mejorar las propiedades físicas del
suelo, aporta muchos nutrientes que favorecen el desarrollo de las plantas.
Que los docentes y estudiantes de la Facultad de Agropecuaria y Nutrición
continúen con esta investigación hasta llegar a la producción de la
guanábana, ya que así se definiría hasta qué etapa incide el humus de
lombriz en la planta.
Para una investigación que trabaja con plantas se debe tener en cuenta la
procedencia de la semilla y la sanidad. Para mayor seguridad se debe
adquirir semilla certificada.
77
REFERENCIAS
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guanábana (Annona muricata L.) en Colombia. Apuntes de campo.
Mecanografiada. 50p
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del método de propagación y tipo de fertilización sobre la calidad
físico-química de frutos de guanábana (annona muricata l.)
- AGRICULTURA ORGANICA. Perú (2010). Guía técnica n°35 serie cultivos.
- CALZADA, B.J. (1980). Ciento cuarenta y tres frutales nativos. La Molina. Perú
Universidad Nacional de Agronomía. pp. 33-39.
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- MIRANDA Diego L, EDUARDO BARRAGÁN Q, DARIO BARRETO. Y
ANTONIO Maria Caicedo. Perú (2009)
Manejo integrado del cultivo de guanábana (innovaciones
tecnológicas).
- FERNÁNDEZ, E. (2004). Estudios de viabilidad y latencia de semillas de
guanábana (Annona muricata L.) y chirimoya (Annona cherimola
M.). Trabajo de grado. Universidad Nacional de Colombia,
Medellín.
- HULDA CLARK (1991) cuyo libro "The Cure for All Cancers" (La Cura para
Todos los Canceres)
- ICA, programa de frutales. 1992.
- KIEHL, J. E., 1985. Fertilizantes Orgánicos. Ed. Agronómica Ceres Ltda. 492 pp.
- KONONOVA, M., (1982). Materia orgánica del suelo. Su naturaleza, propiedades
y métodos de investigación. Ediciones Oikos Tau S.A.
Barcelona. 356 pp.
78
- LÓPEZ M. J MARTINES R. Y VALDEZ C (2001). Abonos orgánicos y su efecto
en propiedades físicas y químicas del suelo y rendimiento de maíz.
Universidad autónoma chapingo.
- LEON R., (1997). Efecto del sustrato, dosis de fertilizante y uso de cubierta en
almácigos de tabaco negro (Nicotiana tabacum) var. Tarapoto.
Tesis Ingeniero Agrónomo. UNA La Molina. Lima. Perú.
- REVISTA Ministerio de agricultura Perú (2011). Instituto de Investigaciones en
Frutícola tropical “Instructivo técnico para el cultivo de la guanábana”.
- SIERRA EXPORTADORA (2010) “Perfil comercial de la guanábana”
- PIRELA, C. Y COL. (43). “Efecto del tipo de propagación y forma de fertilización
nitrogenada y potasica sobre las características químicas de
frutos de Annona muricata”
- PINEDO PANDURO, M.H., Tesis 1990.Evaluación preliminar de la germinación.
- YAEL VENTO y MARÍA EUGENIA GARCÍA ÁLVAREZ, SIICEX, Perú (2010).
Instructivo técnico para el cultivo de la guanábana. Sistema
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-http://www.innatia.com/s/c-huerta-organica/a-fertilizacion-organica.html
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11.05.10---Cultivo-de-la-Guana--769-bana.pdf
http://www.exofrut.com/espanol/guayabana.ht
http://aupec.univalle.edu.co/informes/2003/diciembre/guanabana.html.
79
ANEXOS
80
Preparación del terreno Materiales
Seleccionando la tierra agrícola libre de rocas
81
Mezcla de los sustratos
82
Llenado de bolsas
Sustratos en el campo definitivo colocación de letreros
83
Elección y desinfección de las semillas y siembra
Riego de sustratos
84
Germinación de las primeras semillas
85
Germinación de las semillas en el sustrato de humus más tierra
Germinación de las semillas en el sustrato de compost más tierra
86
Germinación de las semillas en el sustrato testigo.
Germinación de las semillas en el sustrato guano de isla más tierra
87
PLANTAS DE GUANÁBANA EN CRECIMIENTO
88
TOMA DE DATOS DE LA PLANTA
RIEGO DE LAS PLANTAS DE GUANÁBANA
89
PLANTAS AL FINAL DE LA INVESTIGACIÓN
Plantas con sustrato de humus más tierra
Plantas con sustrato de compost más tierra
90
Plantas con sustrato de guano de isla más tierra
Plantas con testigo (tierra)
91
Sistema radicular de las plantas de guanábana
92
Plantas con plagas y enfermedades
93
