UNIVERSIDAD TÉCNICA ESTATAL DE QUEVEDO FACULTAD DE...
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UNIVERSIDAD TÉCNICA ESTATAL DE QUEVEDO FACULTAD DE CIENCIAS AMBIENTALES CARRERA DE INGENIERIA FORESTAL Proyecto de Investigación previo a la obtención del título de Ingeniero Forestal. TEMA: “Efectos de tres concentraciones de fertilizantes en el crecimiento vegetativo de Pinus radiata D. Don, en condiciones de vivero en el sector de Itulcachi, parroquia Pifo, provincia de Pichincha.” AUTOR: Burgos Guerra José Andrés DIRECTOR: Dr. Ing. For. Belezaca Pinargote Carlos Eulogio COOTUTOR: Ing. For. Cristhian Villalba Quevedo - Los Ríos – Ecuador 2019
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UNIVERSIDAD TÉCNICA ESTATAL DE QUEVEDO
FACULTAD DE CIENCIAS AMBIENTALES
CARRERA DE INGENIERIA FORESTAL
Proyecto de Investigación
previo a la obtención del título
de Ingeniero Forestal.
TEMA:
“Efectos de tres concentraciones de fertilizantes en el crecimiento vegetativo de
Pinus radiata D. Don, en condiciones de vivero en el sector de Itulcachi,
parroquia Pifo, provincia de Pichincha.”
AUTOR:
Burgos Guerra José Andrés
DIRECTOR:
Dr. Ing. For. Belezaca Pinargote Carlos Eulogio
COOTUTOR:
Ing. For. Cristhian Villalba
Quevedo - Los Ríos – Ecuador
2019
i
DECLARACIÓN DE AUDITORÍA Y CESIÓN DE DERECHOS
Yo, José Andrés Burgos Guerra, declaro que la investigación aquí descrita es de
mi autoría; que no ha sido previamente presentada para ningún grado o calificación
profesional; y, que he consultado las referencias bibliográficas que se incluyen en
este documento.
La Universidad Técnica Estatal de Quevedo puede hacer uso de los derechos
correspondientes a este documento, según lo establecido por la Ley de Propiedad
Intelectual, por su Reglamento y por la normatividad institucional vigente.
f.
José Andrés Burgos Guerra
C.C. #120799146-2
ii
CERTIFICACIÓN DE CULMINACIÓN DEL PROYECTO DE
INVESTIGACIÓN
El suscrito, Dr. Carlos Eulogio Belezaca Pinargote, Docente de la Universidad Técnica
Estatal de Quevedo, certifica que el estudiante José Andrés Burgos Guerra, realizó el
Proyecto de Investigación de grado titulado “Efectos de tres concentraciones de
fertilizantes en el crecimiento vegetativo de Pinus radiata D. Don, en condiciones de
vivero en el sector de Itulcachi, parroquia Pifo, Provincia de Pichincha”, previo a la
obtención del título de Ingeniero Forestal, bajo mi dirección, habiendo cumplido con las
disposiciones reglamentarias establecidas para el efecto.
f.
Dr. Carlos Eulogio Belezaca Pinargote
DIRECTOR DEL PROYECTO DE INVESTIGACIÓN
iii
UNIVERSIDAD TÉCNICA ESTATAL DE QUEVEDO
FACULTAD DE CIENCIAS AMBIENTALES
CARRERA DE INGENIERÍA FORESTAL
PROYECTO DE INVESTIGACIÓN:
Título:
“Efectos de tres concentraciones de fertilizantes en el crecimiento vegetativo de Pinus
radiata D. Don, en condiciones de vivero en el sector de Itulcachi, parroquia Pifo,
provincia de Pichincha.”
Presentado al Consejo Directivo como requisito previo a la obtención del Título de
Ingeniero Forestal:
Aprobado:
PRESIDENTE DEL TRIBUNAL
Ing. José Luis Muñoz Marcillo
INTEGRANTE DEL TRIBUNAL INTEGRANTE DEL TRIBUNAL
Ing. Freddy Sabando Ávila Ing. Edison Solano Apuntes
Quevedo - Los Ríos – Ecuador
2019
iv
AGRADECIMIENTO
Agradezco a Dios por haberme brindado la oportunidad de vivir y permitirme
culminar mis estudios.
A mis padres, por su comprensión, apoyo, amor, siendo el pilar fundamental en mi
vida para no desmayar en el intento.
A mis hermanos, cuñada y sobrino por su constante apoyo para culminar mi carrera
profesional.
A la empresa NOVOPAN S.A., por abrirme sus puertas y apoyo para realizar mi
investigación, al Ing. Cristhian Villalba, Sr. José Atyy por sus conocimientos y
ayuda a lo largo de mi investigación, a la Sra. Ana del Consuelo por abrirme las
puertas de su casa y brindarme su amistad.
Al Dr. Carlos Belezaca Pinargote, Director del Proyecto de Investigación, por su
colaboración y apoyo incondicional en la presente investigación.
A mi profesor y gran amigo Ing. Rolando López Tobar por brindarme esa amistad y
ayuda con sus conocimientos a lo largo de mi carrera y a todos mis profesores, por
sus aprendizajes.
A mis amigos y compañeros que durante el periodo de estudio, esfuerzo y
sacrificio, ayudaron para que cumpla una de mis metas, en especial a Ambrosi A.,
Castro J., Granados C., Peñaherrera K., Peña D., Vélez M.
A mis mejores amigos Raúl Oquendo y Carol Guzmán, gracias por cada una de sus
palabras y consejos para no dar mi brazo a torcer.
v
DEDICATORIA
Mi proyecto de investigación lo dedico con todo mi amor a mis padres Pedro
Burgos Monserrate y Leonor Guerra Gómez, por su sacrificio y esfuerzo para
verme triunfar, enseñándome que nada en esta vida es regalado, y que siempre hay
que poner de nuestro esfuerzo para no dar marcha atrás para ser un ejemplo a
seguir, pensando en mi futuro, para que el día en el que sea padre y tenga mis hijos
le pueda enseñar y dar todo el amor que ellos me brindan, se lo dedico a mis
hermanos Pedro Burgos Guerra y Luis Burgos Guerra, por aconsejarme y
enseñarme cada día que todo en la vida es difícil pero no imposible triunfar.
José Burgos Guerra
vi
RESUMEN EJECUTIVO
La presente investigación tuvo como objetivo evaluar el efecto de tres concentraciones de
fertilizantes en el crecimiento inicial de P. radiata, en condiciones de vivero. Para ello se
estableció un Diseño Completamente al Azar (DCA), con tres tratamientos. Los
tratamientos estuvieron constituidos por las siguientes dosis de fertilización: T1= Aumento
de Dosis de fertilización en un 25% con relación al control, T2= Disminución de Dosis de
fertilización en un 25% con relación al control, T3= Control. Cada tratamiento estuvo
constituido por 3 repeticiones (2880 plantas por tratamiento). A partir de los 45 días de
haber sido sembradas las semillas se procedió a calcular los datos como lo fue la altura y el
diámetro, diámetro de copa, índice de vigor y porcentaje de sobrevivencia. El promedio
más alto de altura fue de 5,34 cm perteneciente al tratamiento 1 y con una superioridad a
los generados en los tratamientos 2 y 3 (5,29 cm y 5,21 cm respectivamente), pero el
tratamiento 2 pese a mostrar un valor menor en la altura fue quien tuvo un mejor
comportamiento en las variables de diámetro de copa (1,66 cm) y sobrevivencia (48,76%),
pero también el mismo promedio de diámetro (0,10 cm) que todos los tratamientos, y
también el que tuvo un mayor porcentaje de ganancia en comparación al tratamiento 1 y 2,
tomando en cuenta que solo existieron diferencias estadísticas significativas en la variable
sobrevivencia y en la altura al día 66.
Palabras claves: Fertilizantes, Índice de vigor, Altura, Diámetro, Dosis.
vii
ABSTRACT
The objective of this research was to evaluate the effect of three fertilizer evaluations on
the initial growth of P. radiata, in nursery conditions. For this, a Completely Random
Design (DCA) is established, with three treatments. T1 = Increase in fertilization dose by
25% in relation to control, T2 = Decrease in fertilization dose by 25% in relation to
control, T3 = Control. Each treatment consisted of 3 repetitions (2880 plants per
treatment). From 45 days after the seeds were sown, the data were calculated, such as
height and diameter, crown diameter, vigor index and survival rate. The highest average
height was 5.34 cm belonging to treatment 1 and superior to those generated in treatments
2 and 3 (5.29 cm and 5.21 cm respectively), but treatment 2 despite showing a lower height
value was the one who had a better performance in the variables of cup diameter (1.66 cm)
and survival (48.76%), but also the same average diameter (0.10 cm) as all treatments , and
also the one that had a higher percentage of gain compared to treatment 1 and 2, taking into
account that there were only specific statistical differences in the survival variable and in
height at day 66.
Keywords: Fertilizers, Vigor index, Height, Diameter, Dose.
viii
ÍNDICE
Pág.
DECLARACIÓN DE AUDITORÍA Y CESIÓN DE DERECHOS ...................................... i
CERTIFICACIÓN DE CULMINACIÓN DEL PROYECTO DE INVESTIGACIÓN ........ ii
AGRADECIMIENTO .......................................................................................................... iv
DEDICATORIA .................................................................................................................... v
RESUMEN EJECUTIVO ..................................................................................................... vi
ABSTRACT ........................................................................................................................ vii
ÍNDICE ............................................................................................................................... viii
CÓDIGO DUBLÍN ............................................................................................................. xiii
Introducción ........................................................................................................................... 1
CAPÍTULO I ......................................................................................................................... 2
CONTEXTUALIZACIÓN DE LA INVESTIGACIÓN ....................................................... 2
1.1. Problema de Investigación ........................................................................................... 3
1.1.1. Planteamiento del Problema .................................................................................... 3
1.1.2. Formulación del problema ....................................................................................... 3
1.1.3. Sistematización del problema .................................................................................. 3
1.2. Objetivos ...................................................................................................................... 5
1.2.1. Objetivo General ..................................................................................................... 5
1.2.2. Objetivos Específicos .............................................................................................. 5
1.3. Hipótesis de la Investigación ........................................................................................ 5
1.4. Justificación .................................................................................................................. 6
CAPÍTULO II ........................................................................................................................ 7
FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA DE LA INVESTIGACIÓN........................................... 7
2.1. Marco Conceptual ........................................................................................................ 8
2.1.1. Origen geográfico natural de Pinus radiata D. Don ............................................... 8
2.1.2. Descripción botánica de Pinus radiata D. Don ....................................................... 8
2.1.3. Taxonomía ............................................................................................................... 9
2.1.4. Medio Ecológico o Habitad Natural del Pinus radiata D. Don ............................ 10
2.1.5. Requerimientos del Pinus radiata D. Don ............................................................ 10
2.1.6. Clima ..................................................................................................................... 11
2.1.7. Nutrientes esenciales para los árboles ................................................................... 11
2.1.7.1. Macronutrientes ..................................................................................................... 12
ix
2.1.7.1.1. Nitrógeno ............................................................................................................. 12
2.1.7.1.2. Fósforo. ................................................................................................................ 13
2.1.7.1.3. Potasio. ................................................................................................................ 13
2.1.7.1.4. Magnesio .................................................................................................................. 14
2.1.7.1.5. Azufre .................................................................................................................. 14
2.1.7.1.6. Calcio ........................................................................................................................ 14
2.1.7.2. Micronutrientes ..................................................................................................... 15
2.1.7.2.1. Hierro ................................................................................................................... 15
2.1.7.2.2. Zinc ...................................................................................................................... 15
2.1.7.2.3. Cobre ................................................................................................................... 16
2.1.7.2.4. Boro. .................................................................................................................... 16
2.1.7.2.5. Manganeso ........................................................................................................... 16
2.1.7.2.6. Molibdeno ............................................................................................................ 16
2.1.7.2.7. Cloro. ................................................................................................................... 17
2.2. Marco Referencial ...................................................................................................... 17
2.2.7. Los fertilizantes ..................................................................................................... 17
2.2.8. Vivero Forestal ...................................................................................................... 18
CAPÍTULO III .................................................................................................................... 20
METODOLOGÍA DE LA INVESTIGACIÓN ................................................................... 20
3.1. Localización del sitio experimental ........................................................................... 21
3.1.1. Características edafoclimáticas ............................................................................. 22
3.2. Tipo de investigación ................................................................................................. 22
3.2.1. Diagnóstica ............................................................................................................ 22
3.3. Métodos de investigación ........................................................................................... 22
3.3.1. Analítico ................................................................................................................ 22
3.3.2. Inductivo ................................................................................................................ 23
3.4. Fuentes de recopilación de información .................................................................... 23
3.4.1. Fuentes primarias................................................................................................... 23
3.4.2. Fuentes secundarias ............................................................................................... 23
3.5. Diseño de la investigación ......................................................................................... 23
3.5.1. Características del campo experimental ................................................................ 23
3.5.2. La preparación del sustrato. ................................................................................... 24
3.5.3. Tratamientos y diseño experimental ...................................................................... 24
x
3.6. Tratamiento de los datos ............................................................................................ 26
3.6.1. Procedimiento ........................................................................................................ 26
3.6.2. Población y muestra .............................................................................................. 28
3.7. Recursos humanos y materiales ................................................................................. 29
3.7.1. De campo ............................................................................................................... 29
3.7.2. De oficina .............................................................................................................. 30
3.7.3. Insumos ................................................................................................................. 30
3.7.4. Softwares ............................................................................................................... 31
CAPÍTULO IV .................................................................................................................... 32
RESULTADOS Y DISCUCIÓN ........................................................................................ 32
4.1. Resultados .................................................................................................................. 33
4.1.1. Altura de plantas (cm) ........................................................................................... 33
4.1.2. Diámetro de plantas (cm) ...................................................................................... 33
4.1.3. Diámetro de copa (cm) .......................................................................................... 34
4.1.4. Análisis del índice de vigor ................................................................................... 34
4.1.5. Sobrevivencia de plántulas (%) ............................................................................. 35
4.1.6. Análisis beneficio-costo. ............................................................................................ 35
4.2. Discusión .................................................................................................................... 37
CAPÍTULO V...................................................................................................................... 39
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES .................................................................. 39
5.1. Conclusiones .............................................................................................................. 40
5.2. Recomendaciones ....................................................................................................... 41
CAPÍTULO VI .................................................................................................................... 42
BIBLIOGRAFÍA ................................................................................................................. 42
6.1. Bibliografía ................................................................................................................ 43
CAPITULO VII ................................................................................................................... 47
ANEXOS ............................................................................................................................. 47
7.1. Anexos........................................................................................................................ 48
xi
ÍNDICE DE CUADROS
Pág.
Cuadro 1. Dosis de insumos aplicados en los tratamientos en estudio……….. 25
Cuadro 2. Altura (cm) calculada en plantas de Pinus radiata (Pino), en la
etapa de vivero……………………………………………………..
33
Cuadro 3. Diámetro (cm) calculada en plantas de Pinus radiata (Pino), en la
etapa de vivero……………………………………………………..
34
Cuadro 4. Resultado del ANOVA donde muestra que no existió una
diferencia significativa entre los tratamientos, mostrando los
promedios de diámetro de copa (cm) en plantas de Pinus radiata...
34
Cuadro 5. Resultados del ANOVA mostrando que no existe nivel de
significancia en los tratamientos, para medir el efecto de la
fertilización sobre el índice de vigor (cm3)………………………..
35
Cuadro 6. Resultados del ANOVA mostrando que existe una diferencia
estadística significativa entre los tratamientos. Porcentaje (%) de
sobrevivencia………………………………………………………..
35
Cuadro 7. Análisis de Costo – Beneficio de los diferentes tratamiento……….. 36
xii
ÍNDICE DE ANEXOS
Pág.
Anexo 1. Llenado de contenedores y siembra de plántulas de pino……………… 46
Anexo 2. Establecimiento de los tratamientos en los bancos del vivero…………. 46
Anexo 3. Toma de datos a los 45 días, diámetro (calibrador) y altura (regla
graduada en cm)………………………………………………………...
47
Anexo 4. Mortalidad de plántulas………………………………………………… 47
Anexo 5. Análisis estadístico de la variable altura a los 45 días………………….. 50
Anexo 6. Análisis estadístico de la variable altura a los 66 días………………….. 50
Anexo 7. Análisis estadístico de la variable altura a los 87 días………………….. 50
Anexo 8. Análisis estadístico de la variable altura a los 108 días………………… 51
Anexo 9. Análisis estadístico de la variable altura a los 129 días………………… 51
Anexo 10. Análisis estadístico de la variable diámetro a los 45 días……………… 51
Anexo 11. Análisis estadístico de la variable diámetro a los 66 días……………… 52
Anexo 12. Análisis estadístico de la variable diámetro a los 87 días……………… 52
Anexo 13. Análisis estadístico de la variable diámetro a los 108 días…………….. 53
Anexo 14. Análisis estadístico de la variable diámetro a los 129 días…………….. 53
Anexo 15. Análisis estadístico de la variable diámetro de copa…………………… 54
Anexo 16. Análisis estadístico del índice de vigor………………………………… 54
xiii
CÓDIGO DUBLÍN
Título: Efectos de tres concentraciones de fertilizantes en el crecimiento vegetativo de
Pinus radiata D. Don, en condiciones de vivero en el sector de Itulcachi, parroquia
Pifo, provincia de Pichincha.
Autor: Burgos Guerra José Andrés
Palabras claves: Fertilizantes Índice de
vigor Altura Diámetro Dosis
Fecha de publicación:
Editorial: FCAMB; Carrera de Ingeniería Forestal; Burgos, J.
Resumen:
La presente investigación tuvo como objetivo evaluar el efecto de tres
concentraciones de fertilizantes en el crecimiento inicial de P. radiata, en
condiciones de vivero. Para ello se estableció un Diseño Completamente al Azar
(DCA), con tres tratamientos. Los tratamientos estuvieron constituidos por las
siguientes dosis de fertilización: T1= Aumento de Dosis de fertilización en un 25%
con relación al control, T2= Disminución de Dosis de fertilización en un 25% con
relación al control, T3= Control. Cada tratamiento estuvo constituido por 3
repeticiones (2880 plantas por tratamiento). A partir de los 45 días de haber sido
sembradas las semillas se procedió a calcular los datos como lo fue la altura y el
diámetro, diámetro de copa, índice de vigor y porcentaje de sobrevivencia. El
promedio más alto de altura fue de 5,34 cm perteneciente al tratamiento 1 y con una
superioridad a los generados en los tratamientos 2 y 3 (5,29 cm y 5,21 cm
respectivamente), pero el tratamiento 2 pese a mostrar un valor menor en la altura
fue quien tuvo un mejor comportamiento en las variables de diámetro de copa (1,66
cm) y sobrevivencia (48,76%), pero también el mismo promedio de diámetro (0,10
cm) que todos los tratamientos, y también el que tuvo un mayor porcentaje de
ganancia en comparación al tratamiento 1 y 2, tomando en cuenta que solo
existieron diferencias estadísticas significativas en la variable sobrevivencia y en la
altura al día 66.
Descripción: 48 Hojas: dimensiones, 29 x 21 cm
URI:
1
Introducción.
Una de las principales especies forestales plantadas a nivel mundial es el Pinus radiata D.
Don, estimándose una superficie total de cuatro millones de hectáreas (Ferrere et al.,
2015). Es originaria de una estrecha franja costera de California…y en menor medida en
algunos valles cordilleranos de la Patagonia Norte (Ferrere et al., 2015). Como
característica es de madera versátil, con aplicaciones estructurales y decorativas, como
paredes, marcos, tableros, vigas y chapas. En los últimos tiempos las plantaciones de esta
especie han favorecido como sumidores de carbono y también para la producción de
biomasa (Ferrere, Lupi y Boca, 2015).
El Ecuador cuenta con una superficie terrestre de 28´356.000 ha. (aproximadamente
256.370 km2) de las cuales, se estima que existen 14,4 millones de hectáreas (130.002 km2)
son de uso preferencial forestal, es decir, más del 50 % del territorio nacional corresponde
a plantaciones forestales. Las plantaciones forestales principalmente son de Pinus spp.
como Eucalyptus spp. que se encuentran principalmente en la Región Sierra, y Teca-
Tectona grandis en la Región Costa, que son de mayor valor comercial en el mercado tanto
interno como externo. En la Región Amazónica es más influyente la presencia de árboles
en cultivos (sistemas agroforestales) (Córdova y Rodrigo, 2016).
La fertilización foliar se ha convertido en una práctica común e importante para los
productores, porque corrige las deficiencias nutrimentales de las plantas, favorece el buen
desarrollo de los cultivos y mejora el rendimiento y la calidad del producto. La
fertilización foliar no sustituye a la fertilización tradicional de los cultivos, pero si en una
práctica que sirve de respaldo, garantía o apoyo para suplementar o completar los
requerimientos nutrimentales de un cultivo que no se pueden abastecer mediante la
fertilización común al suelo. El abastecimiento nutrimental vía fertilización edáfica
depende de muchos factores tanto del suelo como el medio que rodea el cultivo. De aquí,
que la fertilización foliar para ciertos nutrimientos y cultivos, bajo ciertas etapas del
desarrollo de la planta y del medio, sea ventajosa y a veces más eficiente en la corrección d
deficiencias que la fertilización edáfica (Trinidad y Aguilar, 1999).
2
CAPÍTULO I
CONTEXTUALIZACIÓN DE LA INVESTIGACIÓN
3
1.1. Problema de Investigación.
1.1.1. Planteamiento del Problema.
La falta de información técnica y científica de la nutrición de las plántulas de Pinus radiata
D. Don. en la etapa de vivero, es uno de los principales factores que inciden en la
producción y población de plantas.
Diagnóstico.
La escasa información de la dosificación exacta de los fertilizantes usados en el área de
vivero en la etapa inicial del Pinus radiata D. Don, provoca que las plántulas puedan tener
la deficiencia de algunos nutrientes esenciales en su crecimiento y como consecuencia
tener un problema en su parte fisiológica que no le permita soportar las condiciones de
campo y de esta manera originar perdidas económicas.
Pronóstico.
La correcta dosificación de los fertilizantes propuestos en la etapa inicial de vivero en las
plántulas de Pinus radiata D. Don incrementara el buen desarrollo y crecimiento
mejorando su parte fisiológica, para poder tolerar las condiciones de campo.
1.1.2. Formulación del problema.
¿Cuáles son los efectos de tres concentraciones de fertilizantes en el crecimiento vegetativo
de Pinus radiata D. Don, en condiciones de vivero, en el sector de Itulcachi, Parroquia
Pifo, Provincia de Pichincha?
1.1.3. Sistematización del problema.
¿Cómo influirá la aplicación de fertilizantes en el comportamiento de las plantas en las
variables a analizar?
4
¿Cuál tratamiento tendrá un mejor desarrollo en el tiempo de estudio tomando en
consideración el efecto de los fertilizantes en los tratamientos a estudiar?
¿Cuánto será el análisis de beneficio - costo del proyecto?
5
1.2. Objetivos.
1.2.1. Objetivo General.
Evaluar el efecto de tres concentraciones de fertilizantes en el crecimiento inicial de P.
radiata, en condiciones de vivero.
1.2.2. Objetivos Específicos.
Determinar el comportamiento de las plántulas con la aplicación de fertilizantes en
las variables a analizar.
Comparar el efecto de los fertilizantes en los tratamientos a estudiar.
Realizar el análisis beneficio costo del proyecto.
1.3. Hipótesis de la Investigación
Ho: No existen diferencias entre los tratamientos aplicados para la sobrevivencia y sus
características morfológicas (altura, diámetro, índice de vigor) en el pino.
H1: Existen diferencias entre los tratamientos aplicados para la sobrevivencia y sus
características morfológicas (altura, diámetro, índice de vigor) en el pino.
6
1.4. Justificación.
Existe una inexactitud en cuanto al conocimiento sobre la aplicación de la dosis exacta del
fertilizante para obtener plántulas de Pinus radiata D. Don. con un buen desarrollo y
crecimiento, tomando en cuenta el producto que brinde óptimos resultados a un bajo costo.
La no utilización de fertilizantes en la etapa de vivero se tendrá como resultado plántulas
que tienden a ser más susceptibles a los cambios climáticos que se presentan en su fase de
campo provocando la muerte de la misma por ataques de plagas y enfermedades.
Este estudio permitirá evaluar el crecimiento vegetativo de Pinus radiata D. Don. en la
etapa de vivero mediante el uso de distintas dosis de fertilizantes, indispensables en las
etapas iniciales de las plántulas para obtener el producto final deseado.
7
CAPÍTULO II
FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA DE LA INVESTIGACIÓN
8
2.1. Marco Conceptual.
2.1.1. Origen geográfico natural de Pinus radiata D. Don.
Las primeras descripciones hechas de esta especie datan de 1542. Esta especie, en su lugar
de origen, se puede apreciar ejemplares de más de 200 años de edad, no 4 ocupa más de
unas 12000 ha, de extensión en la Costa de California, en las localidades de:
Swanton (aprox. 37 N)
Monterrey (aprox. 36 N)
Cambria (aprox. 35 N)
Guadalupe Island (aprox. 37 N)
Por estar concentrado la mayor parte del recurso en el área de Monterrey se ha llamado
también a esta especie pino de Monterrey. (Herrera, 2003).
2.1.2. Descripción botánica de Pinus radiata D. Don.
2.1.2.1. Árbol.
Es una especie muy variable, de 30 a 40m de altura (Vergara, Ipinza y Pérez, 1995). Según
Pérez (2014) es un árbol de tronco recto, con ritidoma pardo – rojizo grueso, al fin pardo
oscuro. Copa alta, cónica y largamente apuntada cuando es joven, globosa y truncada
cuando es adulta.
2.1.2.2. Hojas.
Hojas de 7-15 x 0,12 -0,17 cm, persistentes, simples, aciculares, flexibles y color verde
brillante, reunidas en grupos de 3 (en la estirpe de la isla de Guadalupe en grupo de 2),
rodeados en la base por una vaina membranosa. Yemas ovoideo – agudas, con escamas
rojizas, poco resinosas. Campos del cruce de leño con dos o más punteaduras lenticulares u
ovaladas, generalmente desiguales, con rebordes gruesos (Pérez, 2014).
9
2.1.2.3. Flores.
Unisexuales, las masculinas reunidas en conos de 2 cm, color pardo amarillento con tinte
rosado, muy abundante y agrupado en la base de los brotes anuales. Las femeninas
reunidas en conos color purpura violeta, agrupados por pares o en verticilos de 3-5,
situados en el ápice de los brotes (Pérez, 2014).
2.1.2.4. Frutos.
Piñas (estróbilos): de 7-14 x 5-8 cm, verticiladas por tres o cinco, subsentadas y muy
asimétricas. Apófisis inferiores externas muy abultadas, casi planas las de la cara interna.
Muy serótinas, especialmente en los ambientales húmedos en los que se cultiva esta
especie (Pérez, 2014).
2.1.2.5. Semilla.
Semillas de 5-8 mm, anegrada, con ala estrecha de 15-20 mm y cabeza lignificada. Madura
en otoño del año siguiente a la floración (Pérez, 2014).
2.1.2.6. Uso.
Se utiliza para producción de madera, pulpa y celulosa (Arteaga et al.; 1985, citado por
CONAFOR, 2015), a nivel mundial se le ha utilizado para aserrío, postería, cajas y en la
construcción (Sierra et al.; 1994, citado por CONAFOR, 2015).
2.1.3. Taxonomía.
La taxonomía de P. radiata se presenta a continuación (Herrera, 2003):
Familia: Pinaceae
Genero: Pinus
Especie: P. radiata D. Don
Variedades: P. radiata D. Don.; P. radiata binata
Sinónimo: Pino Insigne, Pino insignias
Nombre común: Pino de Monterrey
10
2.1.4. Medio Ecológico o Habitad Natural del Pinus radiata D. Don.
Según el departamento de Agricultura de los Estados Unidos el P. radiata crece en
California con un limitado rango de altura, desde el nivel del mar hasta los 300m de altitud,
totalmente a la sombra, de rápido crecimiento pasando de 30 a 60 años para su explotación.
El clima para su desarrollo es considerado mediterráneo con bajas precipitaciones, sin
nevadas y heladas y bajo un moderado verano con temperaturas en 0 a 30 C., el mejor
suelo para su desarrollo corresponde a suelos limosos o arenosos salinos, esquistos,
graníticos o piedras. Sin embargo, crece bien en un amplio rango de suelos, desde suelos
pesados (como en Nueva Zelandia) o suelos arenosos profundos. (Herrera, 2003).
2.1.4.1. Medio Ecológico del Pinus radiata D. Don en el Ecuador
Vive en áreas de clima templado seco o semiseco, en laderas o planicies entre los 1800-
2000 metros de altitud (González, 2001).
El P. radiata crece mejor en suelos sueltos, profundos (por lo menos de 60 cm.), bien
drenados y ricos. Por lo tanto no se adaptan a suelos compactos, muy 5 arcillosos, mal
drenados y superficiales, pero si tolera los moderadamente pedregosos. (Herrera, 2003).
La deficiencia de algunos macro y micronutrientes (N, P, B y Cu) puede limitar seriamente
el crecimiento de esta especie. Hay factores limitantes y pueden ser nutricionales. En la
parte de la Sierra, especialmente en los distritos de Cañar, Azuay y Loja, el P. radiata a
menudo no se adapta bien. No se sabe si la causa es el suelo, clima o una combinación de
ambos (Herrera, 2003).
2.1.5. Requerimientos del Pinus radiata D. Don.
El crecimiento óptimo se presenta principalmente en suelos de textura franco arenosa a
franco limosa de una profundidad de 1.0 – 1.3 m o más. Se ve significativamente
restringido, en aquellos suelos con menos de 60 – 70 cm de profundidad, sea por causa de
material compacto subyacente o por presencia de napa freática. Junto a esto el pino tendrá
un mal crecimiento en suelos muy pedregosos, o de mal drenaje, y / o muy arcillosos sin
11
adecuada aeración. En este último caso se estima que más de 50% de arcilla en el suelo
superior, con más de 70% en horizontes inferiores, o aún porcentajes menores de esta
fracción, puede causar pérdidas significativas en suelos que presentan estructura y
densidad desfavorable. Igualmente, aquellos pantanosos o continuamente inundables no
son sitios apropiados para esta especie (Schlatter, 1977).
Las características químicas de un suelo también deben considerarse. Suelos salinos,
turbosos, muy ácidos, fuertemente podsolizados o muy pobres en reservas nutritivas,
causaran pérdidas o bien restricciones del crecimiento de los árboles (Schlatter, 1977).
2.1.6. Clima
Según Herrera (2003) las condiciones aproximadas para el crecimiento del P. radiata son:
Precipitación ............................................. 650 – 1600 mm.
Régimen de lluvias ................................... Invierno Uniforme
Estación Seca ............................................ Dos a tres meses
Temperatura……………………………. Media máxima del mes más cálido 20 a 30 C.
Media mínima del mes más frío: 2 a 12 C. Promedios: 11 - 18 C.
2.1.7. Nutrientes esenciales para los árboles.
Hay 16 elementos conocidos que son esenciales para el crecimiento de especies forestales.
Estos a su vez se dividen en macronutrientes y micronutrientes (Herrera, 2003).
Para mantener la productividad forestal es esencial conservar los nutrientes del suelo, los
cuales dependen de un balance positivo entre las entradas y salidas de estos nutrientes en el
sistema. El análisis nutricional permite cuantificar los nutrientes extraídos por los
diferentes tipos de actividades humanas o procesos naturales. El análisis foliar se puede
usar de dos maneras diferentes: para decidir qué nutrientes son deficientes en un rodal que
está creciendo poco, o para comprobar qué respuesta se puede esperar de la aplicación de
un fertilizante El análisis foliar puede suministrar información directa sobre el estado
12
nutricional de una masa forestal, pero sólo información indirecta sobre el contenido de
nutrientes del suelo (Eimil, Sánchez y Sánchez, 2012).
El estudio de los cambios en la concentración o el contenido foliar con la edad de las
acículas proporciona información de los procesos de retraslocación de nutrientes y también
de la edad más adecuada para muestrear y determinar el estado de nutrientes y la
productividad del sitio. Normalmente se analiza el follaje que crece en el año actual, se
prefiere debido a la gran correlación entre la concentración de nutrientes y la longitud del
brote, índice de sitio y disponibilidad de los nutrientes del suelo. Sin embargo, también se
sugiere que la edad de las acículas más adecuada para muestrear dependerá del nutriente
que se estudie. La atención se centró sobre todo en el estado de N de los árboles, y el
follaje actual es el indicador más sensible para esto. El follaje más viejo podría ser más
informativo para otros nutrientes y la comparación entre el follaje de diferentes edades
también puede ser informativo (Eimil, Sánchez y Sánchez, 2012).
Los elementos con funciones específicas y esenciales en el metabolismo de las plantas se
clasifican, según su concentración en la planta y conforme a sus requerimientos para el
adecuado crecimiento y reproducción, en dos grupos: Macro nutrientes y micronutrientes
(Kirkby y Romheld, 2008).
2.1.7.1. Macronutrientes.
Existen fertilizantes primarios (Nitrógeno, Fosforo y Potasio) y secundarios (Calcio y
Azufre).
2.1.7.1.1. Nitrógeno.
El nitrógeno es un constituyente esencial de todos los tejidos vegetales, ya que es un
mineral absorbido por las plantas en mayor cantidad porque es el componente principal de
las sustancias proteicas y desempeña un papel de máxima importancia en el desarrollo y
funcionamiento del protoplasma en las en las estructuras vegetales, y además en la
clorofila, los nucleótidos, fosfàtidas y alcaloides, así como en muchas enzimas, hormonas y
vitaminas. El nitrógeno hace a las plantas de color verde oscuro y más suculentas; también
hace que las células sean más grandes con paredes celulares delgadas. Además, fomenta el
13
desarrollo vegetativo e impulsa la formación del follaje de buena calidad facilitando la
producción de carbohidratos ayudando a la suculencia. La fertilización con nitrógeno
incrementa la capacidad de intercambio de cationes de la raíz de la planta y, por
consiguiente hace que sean más eficaces para la absorción de otros iones nutrientes (Alpi y
Tognoni, 1999).
Russell (1968) afirma que tan pronto el aporte de nitrógeno asciende en comparación con
el de otros nutrientes, las proteínas producidas en exceso permiten a las hojas de la planta
alcanzar un mayor tamaño, y con ello tener una mayor superficie asequible a los procesos
de fotosíntesis.
2.1.7.1.2. Fósforo.
El fosforo está disponible primariamente como anión monovalente o divalente de ácido
fosfórico (H3PO4) en solución del medio de crecimiento. La disponibilidad de este
elemento. El fosforo es parte de los nucleótidos-tanto de ADN como de ARN-, de las
membranas del ATP, el cual está involucrado en la fotosíntesis y el metabolismo de la
energía. Los síntomas de deficiencia incluyen clorosis de acículas jóvenes, mostrando una
decoloración violácea a medida que la situación empeora. Si la deficiencia continua
aumentando, el violeta se vuelve marrón, con necrosis de tejidos. Los niveles suficientes de
fosforo están alrededor del 10% del contenido de nitrógeno, o sea 0,2% a 0,3%; se observa
deficiencia por debajo de 0,1% (Buamscha et al., 2012).
2.1.7.1.3. Potasio.
El potasio es un elemento mineral sumamente importante, ya que incrementa la eficacia de
la hoja para elaborar azucares y almidón. Ayuda a mantener la permeabilidad de la célula,
ayuda al traslado de lugar de los carbohidratos y hace que el hierro sea más móvil en la
planta. Aumenta la resistencia de las plantas a las enfermedades. Es un activador de
muchas de las enzimas que activan los aminoácidos y la síntesis de las proteínas (Alpi y
Tognoni, 1999).
14
2.1.7.1.4. Magnesio.
El magnesio es absorbido como catión divalente (Mg2+). Es necesario que esté presente en
un tercio o la mitad de la cantidad del calcio. Es un componente de la molécula de
clorofila; está involucrado en la estabilización de los ribosomas y es un catalizador para
varias enzimas fundamentales, incluyendo dos que están involucradas en la fotosíntesis. El
magnesio es muy móvil y los síntomas de su deficiencia se ven primero en las acículas
maduras, como una clorosis de color amarillo brillante en la punta de las mismas. La
deficiencia severa puede ser necrosis del ápice de las acículas, con mortalidad ocasional de
yemas. Los niveles suficientes están alrededor de 0,10% y las deficiencias se evidencia por
debajo de 0,2% (Buamscha et al., 2012).
2.1.7.1.5. Azufre.
Alpi y Tognoni (1999) mencionan como el componente de algunos aminoacios proteicos
como la metionina y cisteína y, por lo tanto, presente en todos los centros activo de las
llamadas enzimas; forma parte también de muchas otras moléculas relevante en el
metabolismo celular, como de algunas vitaminas y las coenzima. En los vegetales se
encuentra en cantidad notable y, en algunos casos, se pueden encontrar en cantidades
iguales al fosforo asimilado o mayores. Se absorbe por las raíces como ion sulfato (SO4)
pero parece que también puede ser absorbido en pequeña cantidad por las hojas ion sulfito
(SO2) generado a veces por la actividad industrial.
2.1.7.1.6. Calcio.
Alpi y Tognoni (1999) mencionan que este elemento parece jugar un importante papel en
la formación de paredes celulares ligando las sustancias pépticas de la pared primaria;
además, parece que contribuye a las características de la permeabilidad de la membrana. A
veces el calcio absorbido por las plantas se utiliza para neutralizar, en forma
fisiológicamente inactiva, algunos ácidos orgánicos (por ejemplo ac. oxálico) que sin ello
podría ser toxico. La absorción del calcio por parte de las plántulas depende sobre todo la
capacidad de cambio catiónico se las raíces. Cuando es elevada se produce una absorción
excesiva de iones de Ca, lo que puede inhibir la absorción del Fe o del Mn.
15
2.1.7.2. Micronutrientes.
Para Gonzales (2001) la función de los elementos considerados como micronutritivos por
las cantidades que usan las plantas son hierro, zinc, cobre, boro, manganeso, molibdeno y
cloro. Enseguida se describen sus principales funciones.
2.1.7.2.1. Hierro.
El hierro es absorbido tanto en su forma ferrosa (Fe2+) como ferrica (Fe3+), siendo la forma
Fe2+ más soluble. Es parte de la catalasa y la peroxidasa, y es necesario para la síntesis de
clorofila.Tambien participa en la catálisis de muchas enzimas redox. La deficiencia de
hierro lleva a la perdida de clorofila y degeneración d ehierro de cloroplastos. El hierro es
inmóvil y las deficiencias se evidencian primero en las nuevas acículas. Las deficiencias
son especialmente probables en medios de crecimiento con pH alto (>7.5) o en condiciones
demasiado calidas en primavera. El nivel suficiente se encuentra entre 100 y 400mg/kg, y
las deficiencias ocurren debajo de 33mg/kg (Buamscha et al., 2012).
2.1.7.2.2. Zinc.
El zinc (Zn2+), como el cobre, es cofactor de varias enzimas peor también está involucrado
en el metabolismo del ácido indolacetico y probablemente en la síntesis de triptófano, un
precursor de la auxina. Los síntomas de deficiencia incluyen entrenudos acortados y
acículas pequeñas y cloróticas. Ocasionalmente se observa bronceado de ápices de
acículas. Niveles por encima de 15 mg/kg son suficientes, mientras que la deficiencia se
observa por debajo de 8 mg/kg (Buamscha et al., 2012).
Alpi y Tognoni (1999) indican que interviene en la síntesis de la auxinas y como tal puede
tener un papel en los procesos de crecimiento. Además forma parte de las moléculas y
activa importantes enzimas, con un mecanismo no conocido.
16
2.1.7.2.3. Cobre.
Alpi y Tognoni (1999) mencionan que es un constituyente esencial de algunas enzimas,
entre las que se encuentran algunas de la cadena respiratoria y de la cadena de transporta
de electrones de la fotosíntesis.
El cobre (Cu2+) es cofactor de varias ezimas oxidativas. Los síntomas de deficiencia
incluyen falta de crecimeitno y deformación de acículas jóvenes.las acículas exhiben
ápices quemados con bordes amarillentos. Acículas aperentemente saludables pueden
mostrar cierto espiralamiento. Los niveles suficientes están entre 2 y 5 mg/kg (Buamscha
et al., 2012).
2.1.7.2.4. Boro.
El boro se encuentra en la solución del suelo como ácido bórico (H3BO3), y participa en la
estructura de la pared celular, la división celular, la elogacion y la traslocacion. Los
síntomas de deficiencia incluyen raíces romas y entrenudos acortados, lo que da a las
plantas apariencia arbustiva o de rosetas. En casos severos, hay necrosis de tejidos
meristematicos, a veces precedido por marchitamiento o crecimiento anormal. Los niveles
suficientes están entre 10 y 40 mg/kg, y hay deficiencias por debajo de 6 mg/kg (Buamscha
et al., 2012).
2.1.7.2.5. Manganeso.
El manganeso (Mn2+) es cofactor de varias enzimas, especialmente aquellas involucrados
en la respiración. La deficiencia de manganeso puede agravarse por pH abajo y alto
contenido de materia organica, y es difícil de distinguir de la deficiencia de hierro y
mganesio. El nivel suficiente esta entre 50 y 200 mg/kg (Buamscha et al., 2012).
2.1.7.2.6. Molibdeno.
Alpi y Tognoni (1999) señalan que las plantas con carencia de molibdeno contiene un
exceso de nitratos, se supone que también este elemento sea el encargado de la reducción
17
de los nitratos en iones amonio. En las leguminosas, su carencia puede producir una
reducción de la fijación del nitrógeno atmosférico por parte de las bacterias simbiontes.
2.1.7.2.7. Cloro.
El cloro se encuentra en muchas soluciones, especialmente en el agua potable, y rara vez es
escaso. De hecho, las plantas absorben cloro en cantidades que exceden los requerimientos
mínimos. Participa en reacciones de la fotosíntesis, en la neutralidad eléctrica a través de
las membranas y la división celular. Los síntomas de deficiencias incluyen crecimiento
reducido, marchitamiento y clorosis, pero son raros. No se conoce el nivel óptimo de este
elemento (Buamscha et al., 2012).
2.2. Marco Referencial
2.2.7. Los fertilizantes.
La fertilización de plantaciones de Pinus radiata es una práctica muy extendida en los
principales países productores como Nueva Zelanda, Chile, Australia y Sudáfrica. La
experiencia que han acumulado demuestra que pueden lograrse aumentos importantes de
crecimiento que permiten acortar el turno manteniendo los mismos volúmenes en el
momento de la cosecha. Sin embargo, la experiencia también demuestra que es necesario
ajustar la fertilización a las demandas de la plantación y a las características de los
diferentes sitios. Esto por varias razones, en primer lugar las reservas de nutrientes pueden
cambiar mucho de una parcela a otra incluso cuando están muy próximas entre sí, lo que
resulta adecuado en un lugar puede no tener efecto en otra zona o incluso puede ser
perjudicial por provocar desórdenes nutritivos en la plantación que las hagan más
susceptibles al ataque de plagas y patógenos. En segundo lugar, la fertilización es una
inversión que hay que optimizar para mantener la mejor relación posible entre el coste y el
beneficio esperado (Martínez, 2017).
18
2.2.8. Vivero Forestal.
Los viveros forestales son sitios especialmente dedicados a la producción de plántulas de la
mejor calidad y al menor costo posible (Rojas, 2006).
2.2.8.2. Importancia de los viveros.
El vivero es el lugar donde se colocan las plántulas para que crezcan, se injerten y alcancen
un desarrollo adecuado y luego ser llevadas al lugar definitivo. La importancia del vivero,
igual que el semillero, es que son el fundamento de la futura plantación, un vivero sin
calidad, dará origen a producciones sin calidad (Irigoyen y Cruz, 2005).
2.2.8.3. Calidad de plantas en vivero.
Una planta con un buen crecimiento radicular es un buen predictor para el comportamiento
en el terreno, estas plantas con un crecimiento radicular significativo son aquellas que
tienen altas tasas de supervivencia, crecimiento en altura y diámetro, y los viveristas al
momento de sacar las plantas del envase le deben poner mayor énfasis en la pérdida de las
raíces (Alzugaray, Haase y Rose, 2004).
2.2.8.4. Temperatura en vivero.
La temperatura dentro del vivero juega un papel importante en el crecimiento de las
plántulas y las altas dosis de fertilizantes fueron asociadas con las bajas eficiencias. Una
infraestructura como invernadero puede resultar como una alternativa, mientras que en las
regiones cálidas se pueden producir plántulas más eficientes (más rentables, mejor control
de cultivo con riego, mayor eficiencia de fertilizantes, etc.), pero el crecimiento adecuado
también depende de los nutrientes aplicados de manera correcta (Del Campo, Hermoso,
Ceacero y Navarro, 2011).
19
2.2.8.5. Fertilización en vivero.
Dentro del vivero se pueden utilizar dos modelos de aportes de fertilizantes el
convencional y el exponencial, dentro de ellos se han encontrado diferencias morfológicas
y fisiológicas con relación a las dosis aplicadas y un alto contenido de nitrógeno en sus
tejidos (Carrasco, Peñuelas, Domínguez y Benito, 2004).
2.2.8.6. Calidad del agua en vivero.
Para Gutiérrez et al. (2015), la calidad del agua juega un rol importante en la producción
de especies forestales, tomando en cuenta su acidez, el objetivo del estudio realizado fue
estudiar la morfología y la concentración de iones y cationes en el tejido foliar a diferentes
niveles de pH de agua y las soluciones de Ferti-irrigación.
20
CAPÍTULO III
METODOLOGÍA DE LA INVESTIGACIÓN
21
COORDENADA DEL SITIO
DE ESTUDIO
Datos tomados con GPS
Datum: WGS 81
Coordenadas UTM
SIMBOLOGÍA
Coordenada
Vías
Ríos
División Parroquial
LOCALIZACIÓN:
Provincia: Pichincha
Ciudad: Quito
Parroquia: Pifo
Sector: Itulcachi
PROPIEDADES:
Mapa de ubicación de las unidades de
muestreo
UNIVERSIDAD TÉCNICA ESTATAL
DE QUEVEDO
FACULTAD DE CIENCIAS
AMBIENTALES
TITULO:
Efectos de tres concentraciones de
fertilizantes en el crecimiento
vegetativo de Pinus radiata D. Don,
en condiciones de vivero en el sector
de Itulcachi, parroquia Pifo,
provincia de Pichincha.
AUTOR:
Burgos Guerra José Andrés
3.1. Localización del sitio experimental.
La investigación se realizó en la Hacienda “Itulcachi” perteneciente a la empresa
NOVOPAN S.A., en el sector de Itulcachi, Parroquia Pifo, Provincia de Pichincha. Las
coordenadas geográficas son latitud 0o 17' 49,40'' S y longitud 78o 18' 43,00'' O.
Grafico 1. Ubicación de la hacienda “Itulcachi” donde fue realizada la investigación.
Punto X Y
1 799208 9967137
22
3.1.1. Características edafoclimáticas.
Las características edafoclimáticas de la zona de estudio se muestran a continuación:
Altitud 3.115 ms.n.m
Precipitación promedio anual 500-1000 mm
Temperatura promedio 6-12 °C
Heleofania media anual 1.000 hora luz
Zona de vida Bosque Húmedo Montano (bh-M)
Topografía del terreno Empinada
Textura del suelo Arena-limo-arcilla
FUENTE: CAPSERVS MEDIOS CIA. LTDA., 2015.
3.2. Tipo de investigación.
3.2.1. Diagnóstica.
El tipo de investigación utilizada en el trabajo es de tipo inductivo-deductivo porque se
basa en el registro de datos para poder analizar de mejor manera cuál de los tratamientos
tiene mejor resultado.
3.3. Métodos de investigación.
Se utilizaron los siguientes métodos:
3.3.1. Analítico.
Esta investigación permite realizar un análisis de un hecho u objeto en particular, para
conocer sus efectos y obtener los resultados mediante la observación y cálculos
matemáticos.
23
3.3.2. Inductivo.
Esta investigación es inductiva, porque para adquirir una conclusión se debe observar,
estudiar y experimentar los sucesos obtenidos en la fase de campo.
3.4. Fuentes de recopilación de información.
3.4.1. Fuentes primarias.
Las fuentes primarias de donde se obtuvo la información para la investigación fueron de
libros y artículos científicos.
3.4.2. Fuentes secundarias.
Las fuentes secundarias para adquirir la información fueron de tesis de grados, sitios web,
etc.
3.5. Diseño de la investigación.
3.5.1. Características del campo experimental.
El vivero donde se realizó la investigación está ubicado en la parroquia Pifo, sector
Itulcachi, provincia de Pichincha, a 3115 ms.n.m. El sustrato empleado para la siembra de
las plantas de Pinus radiata fue obtenido a partir de corteza de pino descompuesta. Las
semillas de pino fueron sometidas a un tratamiento pre germinativo que consistió en
sumergirlas en agua limpia durante 24 horas, luego mezclarlas con silicio micronizado
(Sílex Max 86%), y finalmente sembrarlas en contenedores plásticos de 96 espacios y cada
espacio contiene 83.25 cm3, conteniendo el sustrato antes mencionado. Por cada espacio se
sembró una semilla.
A los 45 días después de la siembra, y una vez germinadas las semillas se procedió a la
aplicación de los tratamientos en estudio.
24
3.5.2. La preparación del sustrato.
Para la preparación del sustrato que está compuesta de corteza de pino molida y
compostada, se aplicó bacterias descomponedoras, 3 Litros de melaza y 12 kg de urea por
cada metro cúbico, es tapado con un plástico transparente para que guarde una alta
temperatura, luego se realizan volteos del sustrato cada 15 días por 3 meses, después se
aplica un desinfectante de suelos, y se prosigue haciendo volteos hasta que el sustrato
llegue a una temperatura de 20oC, que aproximadamente ocurrirá cuando el proceso
cumpla 8 meses, tomando en cuenta que antes de su uso se le aplica un fertilizante llamado
Bioprot.
3.5.3. Tratamientos y diseño experimental.
El experimento estuvo constituido por tres tratamientos, distribuidos en un Diseño
Completo al Azar, donde se realizaron 3 repeticiones por cada tratamiento. Cada
tratamiento estuvo constituida por 2880 plantas, de las cuales se evaluó 210 plantas por
cada uno, también se analizó el porcentaje de sobrevivencia, el índice de vigor y el tamaño
de población y muestra. Los tratamientos estuvieron basados en la combinación de dosis de
fertilizantes. A continuación se detallan los tratamientos
Tratamiento 1 R1-R2-R3 (+25%)
Tratamiento 2 R1-R2-R3 (-25%)
Tratamiento 3 R1-R2-R3 (Control)
Cada tratamiento estuvo constituido por las siguientes dosis de fertilizantes edáficos y
foliares, tal como se muestra en la tabla en el cuadro 1.
Se realizó la fertilización cada 8 días a partir de la germinación de las semillas.
25
Cuadro 1. Dosis de insumos aplicados en los tratamientos en estudio.
Ingrediente Activo Dosis
Tratamiento 1 (T1) Tratamiento 2 (T2) Tratamiento 3 (T3)
Kristalon Inicial
(13-40-13)
15,63gr / 2,5 L de
agua
9,38gr / 2,5 L de
agua
12,5gr / 2,5 L de
agua
Kristalon Especial
(18-18-18)
15,63gr / 2,5 L de
agua
9,38gr / 2,5 L de
agua
12,5gr / 2,5 L de
agua
Kristalon
Producción (15-5-
30)
15,63gr / 2,5 L de
agua
9,38gr / 2,5 L de
agua
12,5gr / 2,5 L de
agua
Evergreen 25ml / 2,5 L de agua 15ml / 2,5 L de agua 20ml / 2,5 L de agua
Urea 354,38gr / 2880
plantas
212,63gr / 2880
plantas
283,5gr / 2880
plantas
NPK+MG (10-30-
10)
354,38gr / 2880
plantas
212,63gr / 2880
plantas
283,5gr / 2880
plantas
Yaramila Complex 354,38gr / 2880
plantas
212,63gr / 2880
plantas
283,5gr / 2880
plantas
DAP (18-46-00) 354,38gr / 2880
plantas
212,63gr / 2880
plantas
283,5gr / 2880
plantas
Blaukorn 354,38gr / 2880
plantas
212,63gr / 2880
plantas
283,5gr / 2880
plantas
Para la toma de todos los datos se lo realizó una muestra al 7,29% obteniendo un total de
70 plantas de estudio por bloque, teniendo una cantidad total de 630 plantas de estudio.
Los datos cuantitativos a nivel de vivero se analizaron empleando herramientas estadísticas
descriptivas: media, desviación estándar, error estándar, coeficiente de variación, etc.Para
establecer la existencia o no de diferencias estadísticas significativas entre tratamientos, los
datos se analizaron bajo el esquema del análisis de varianza (ANOVA) con un nivel de
significancia de 95% (P<0.05), previa comprobación de los supuestos de normalidad y
homocedasticidad de varianzas. Posteriormente se aplicó la prueba de Duncan, con un
26
nivel de significancia del 95% (P<0.05). Para el efecto se empleó paquete estadístico
SYTAT 11 versión para Windows.
3.6. Tratamiento de los datos.
3.6.1. Procedimiento.
La metodología usada por Camino (2012), fue mejorada para realizar esta investigación.
3.6.1.1. Análisis Nutricional.
Para el análisis nutricional se aplicó la prueba Duncan al 5% para poder determinar las
diferencias estadísticas que existan en cada uno de los tratamientos.
3.6.1.2. Variables a evaluar.
Los datos de la investigación se calcularon a partir de julio a octubre del 2019, generando
la siguiente información:
3.6.1.2.1. Altura de la planta (cm).
Se utilizó una regla graduada en cm, para realizar la medición, se la calculó desde la
superficie del suelo hasta el ápice de la planta. Se evaluaron a partir de los 45 días, es decir
cuando la semilla ya había germinado, esto se lo realizó cada 21 días.
3.6.1.2.2. Diámetro del tallo (cm).
El diámetro se lo midió a partir de los 45 días de haber sido sembrada la semilla, con un
calibrador a una altura de 2 cm sobre la base de la plántula, esto se lo realizó cada 21 días,
utilizando las mismas plántulas que se evaluaron en la variable altura.
3.6.1.2.3. Circunferencia del tallo.
Se calculó la circunferencia del tallo a través de la siguiente fórmula (Camino, 2012):
27
(1)
C= D * π
Donde:
C: Circunferencia del tallo
D: Diámetro del tallo
π: 3.1416
3.6.1.2.4. Diámetro de la copa.
El diámetro de la copa se la midió tomando en cuenta dos direcciones de norte a sur y de
este a oeste, obteniendo de esta manera un promedio, que ayudó a calcular el índice de
vigor. Para tomar esta variable se utilizó una regla graduada en cm.
3.6.1.2.5. Índice de vigor.
El índice de vigor se calculó con los datos tomados de la circunferencia del tallo, la altura
de la planta y el diámetro de la copa, para determinar el índice de vigor se utilizó la
fórmula aplicada en el Programa de Palma Africana de la Extensión Experimental de Santo
Domingo INIAP, definida por INEAC (1967) modificada por Álvarez (1994) y adaptada
para plántulas de pino en vivero, la fórmula es:
Dónde:
C: Circunferencia del tallo
H: Altura de la planta
L: Diámetro de la copa
������ �� ����� =
�2
√
4
�2
�2
+ 4
(2)
3.6.1.2.6. Porcentaje de sobrevivencia de las plántulas.
Se contaron el número total de las plántulas de cada uno de los tratamientos y se calculó el
porcentaje de sobrevivencia utilizando la fórmula aplicada en la tesis de Evaluación de
28
propagación de Morera (Morus indica var. Kanva) modificada por Chandi, (2008) y se
adaptó a las plántulas de pino en la etapa de vivero, la fórmula es:
(3)
��
������� �����
% �� =
�� ������� ���������
� 100
Dónde:
%Sv: Porcentaje de sobrevivencia de las plantas
No Plantas total: Número de plantas existentes en cada tratamiento al momento de la
evaluación
No Plantas sembradas: Número de plantas sembradas
3.6.1.3. Análisis económico.
Para realizar el análisis económico del proyecto se tomó en cuenta la relación costo -
beneficio de cada tratamiento, en la cual se tomaron en cuenta los costos fijos y variables:
Los costos fijos son aquellos que no sufren cambios en las actividades de un
proyecto, sino que permanecen invariables ante esos cambios, y se los considera
costos fijos a las herramientas y equipos.
Los costos variables son aquellos donde el total varía dependiendo la proporción
del volumen y el costo unitario permanece como son los insumos, materiales de
oficina y de campo.
3.6.2. Población y muestra.
3.6.2.1. Población.
La investigación consta de una población de 8640 plántulas dividiéndolo en 9 bloques
teniendo 960 plantas por cada repetición.
29
3.6.2.2. Muestra.
Para el tamaño de la muestra se utilizó la siguiente fórmula (Camino, 2012):
(4)
Donde:
N= 8640 plantas
σ= 0,5
Z= 1,96
e= 0,05
n= 630
El tamaño de la muestra da un total de 630 plántulas.
Donde:
n = el tamaño de la muestra.
N = tamaño de la población.
σ= Desviación estándar de la población que, generalmente cuando no se tiene su valor,
suele utilizarse un valor constante de 0,5.
Z = Valor obtenido mediante niveles de confianza. Es un valor constante que, si no se tiene
su valor, se lo toma en relación al 95% de confianza equivale a 1,96 (como más usual) o en
relación al 99% de confianza equivale 2,58, valor que queda a criterio del investigador.
e = Límite aceptable de error muestral que, generalmente cuando no se tiene su valor, suele
utilizarse un valor que varía entre el 1% (0,01) y 9% (0,09), valor que queda a criterio del
encuestador.
3.7. Recursos humanos y materiales.
3.7.1. De campo.
Contenedores de 96 tubetes
Sustrato de corteza de pino
30
Semillas de pino
Paletas de identificación
Receptor de GPS navegador
Bolígrafos
Botas
Mascarillas
Guantes
Libreta de apuntes
Regla graduada en centímetros
Calibrador
Palillos de diente
Bomba de mochila
Gramera
Vaso de medir (Insumos)
3.7.2. De oficina.
Hojas A4
Ordenador
Impresora
Lápiz
Pendrive
Cámara fotográfica
Bibliografía referente a fertilización de viveros de Pinus radiata D. Don.
3.7.3. Insumos.
Kristalon Inicial (13-40-13) (Fertilizante)
Kristalon Especial (18-18-18) (Fertilizante)
Kristalon Producción (15-5-30) (Fertilizante)
Evergreen (Fertilizante)
Urea
31
NPK+MG (10-30-10) (Fertilizante)
Yaramila Complex (Fertilizante)
DAP (18-46-00) (Fertilizante)
Blaukorn (Fertilizante)
Tachigaren (Fungicida)
Bravo 7020 (Fungicida)
Clorpilaq 48 (Insecticida)
Cantus WG (Fungicida)
3.7.4. Softwares.
Microsoft Word
Excel
ArcGis
SYTAT 11 versión para Windows
32
CAPÍTULO IV
RESULTADOS Y DISCUCIÓN
33
4.1. Resultados.
4.1.1. Altura de plantas (cm).
En cuanto a la variable altura no se detectaron diferencias estadísticas significativas a los
45 días (F=1.68; P=0.2630), 87 días (F=0.69; P=0.5353), 108 días (F= 0.52; P=0.6203),
129 días (F= 0.53; P=0.6113), mientras que a los 66 días (F=6.04; P=0.0365) si se
encontraron diferencia estadísticas significativas, donde se generó el mejor promedio
teniendo una altura de 5,34 cm perteneciente al T1 y teniendo los promedios más bajos con
5,21 cm del T3 y 5,29 cm del T2 (Cuadro 2).
Cuadro 2. Altura (cm) calculada en plantas de Pinus radiata D. Don. (Pino), en la etapa de vivero.
Valores que corresponden al promedio de crecimiento en altura de cada uno de los tratamientos a
los 45, 66, 87, 108 y 129 días de haber sido sembradas.
Altura Tratamientos
45 días 66 días* 87 días 108 días 129 días
1. Aumento de Dosis de fertilización en un 25% con
2,28 a
2,68 a
3,75 a
4,60 a
5,34 a
relación al control.
2. Disminución de Dosis de fertilización en un 25% con
2,14 a
2,51 b
3,63 a
4,55 a
5,29 a
relación al control.
3. Control 2,28 a 2,69 a 3,61 a 4,68 a 5,21 a
4.1.2. Diámetro de plantas (cm).
El ANOVA no mostró diferencias significativas en ninguno de los tratamientos a los 45
días (F=1.00; P=0.4219), 66 días (F=1.00; P=0.4219), 87 días (F=1.00; P=0.4219), 108
días (F=1.00; P=0.4219) y a los 129 días (F=0.33; P=0.7290), teniendo un promedio de
0,10 cm en cada uno de los tratamientos, tomando en cuenta que no hubo una respuesta
positiva en la aplicación de los fertilizantes para el crecimiento del diámetro (Cuadro 3).
34
Cuadro 3. Diámetro (cm) calculada en plantas de Pinus radiata D. Don. (Pino), en la etapa de
vivero. Valores que corresponden al promedio de crecimiento en diámetro de cada uno de los
tratamientos a los 45, 66, 87, 108 y 129 días de haber sido sembradas.
Diámetro Tratamientos
45 días 66 días 87 días 108 días 129 días
1. Aumento de Dosis de fertilización en un 25% con
0,10 a
0,10 a
0,10 a
0,10 a
0,10 a
relación al control.
2. Disminución de Dosis de fertilización en un 25% con
0,10 a
0,10 a
0,10 a
0,10 a
0,10 a
relación al control.
3. Control 0,10 a 0,10 a 0,10 a 0,10 a 0,10 a
4.1.3. Diámetro de copa (cm).
En el cuadro 4 se muestra el diámetro de copa, donde no existe una diferencia significativa
(F=1.52; P=0.2919) en ninguno de los tratamientos, teniendo un mayor promedio en el T2
con un diámetro de 1,66 cm, y el menor en el T1 con 1,43 cm.
Cuadro 4. Resultado del ANOVA donde muestra que no existió una diferencia significativa entre
los tratamientos, mostrando los promedios de diámetro de copa (cm) en plantas de Pinus radiata D.
Don. (Pino), en la etapa de vivero, calculadas a los 129 días de haber sido sembradas.
Tratamiento Diámetro de Copa
1. Aumento de Dosis de fertilización en un 25% con relación al control.
1,43 a
2. Disminución de Dosis de fertilización en un 25% con relación al control.
1,66 a
3. Control 1,51 a
4.1.4. Análisis del índice de vigor.
En el índice de vigor el ANOVA no mostró una diferencia estadística significativa
(F=1.52; P=0.8325) en los tratamientos aplicados en la investigación, teniendo un
promedio (cm3) en el T1 Y T3 un valor igual de 0,44 cm3, y teniendo el valor más bajo en
el T2 con un promedio de 0,42 cm3 (Cuadro 5).
35
Cuadro 5. Resultados del ANOVA mostrando que no existe nivel de significancia en los
tratamientos, para medir el efecto de la fertilización sobre el índice de vigor (cm3), calculado en
plantas de Pinus radiata D. Don. (Pino) de 129 días de haber sido sembradas, en la etapa de vivero.
Tratamiento Índice de Vigor
1. Aumento de Dosis de fertilización en un 25% con relación al control.
0,44 a
2. Disminución de Dosis de fertilización en un 25% con relación al control.
0,42 a
3. Control 0,44 a
4.1.5. Sobrevivencia de plántulas (%).
Para el análisis de la variable sobrevivencia se contó el número de plantas existentes en
cada tratamiento al finalizar la investigación, el ANOVA estableció diferencias
significativas (F=11.92; P=0.0081), en el T1 con un 35%, a diferencia del T2 que obtuvo
el mayor porcentaje de sobrevivencia con un 48,76% (Cuadro 6).
Cuadro 6. Resultados del ANOVA mostrando que existe una diferencia estadística significativa
entre los tratamientos. Porcentaje (%) de sobrevivencia calculada en cada uno de los tratamientos,
en plantas de Pinus radiata D. Don. (Pino) en la etapa de vivero, a los 129 días de haber sido
sembradas.
Tratamiento Sobrevivencia (%)
1. Aumento de Dosis de fertilización en un
25% con relación al control. 35,00 b
2. Disminución de Dosis de fertilización en
un 25% con relación al control. 48,76 a
3. Control 43,63 a
4.1.6. Análisis beneficio-costo.
En el cuadro 7 se observa el análisis económico realizado por tratamiento con el fin de
determinar el mejor Costo – Beneficio. Los costos de producción de cada tratamiento se
establecieron tomando en cuenta los costos fijos (Materiales y equipos, mano de obra,
semillas) y costos variables (fertilizantes) que se aplicaron durante el tiempo de la
investigación.
36
El T2 fue el tratamiento que presentó un mejor comportamiento económico con una menor
cantidad de inversión, generando una relación Costo – Beneficio positiva de 0,66 dólares
de ganancia por cada dólar invertido, y el T1 es el que requiere una mayor inversión y
recibe una ganancia de 0,52 dólares por cada dólar invertido. Cabe acotar que los tres
tratamientos generaron ganancias, pero esto varia debido a la mortalidad de plantas.
Cuadro 7. Análisis de Costo – Beneficio de los diferentes tratamientos del efecto de la fertilización
sobre el crecimiento vegetativo del Pinus radiata D. Don. (Pino), en la etapa de vivero.
TRATAMIENTOS
T1 T2 T3
COSTOS FIJOS
Materiales y equipos 40 40 40
Mano de obra 40 40 40
Semillas de pino 11,52 11,52 11,52
COSTOS VARIABLES
Kristalon inicial (13-40-13) 0,11 0,07 0,09
Kristalon especial (18-18-18) 0,05 0,03 0,04
Kristalon produccion (15-5-30) 0,16 0,1 0,13
Evergreen 2 1,2 1,6
Urea 0,74 0,45 0,6
NPK + MG (10-30-10) 0,35 0,21 0,28
Yaramila complex 0,37 0,22 0,29
DAP (18-46-00) 0,44 0,26 0,35
Blaukorn 0,22 0,13 0,18
COSTOS DE PROD. POR TRAT. 95,96 94,19 95,08
COSTOS DE PROD. POR PLANTA 0,0333 0,0327 0,0330
Total de plantas sembradas
2880
2880
2880
Total de plantas vivas 1008 1404 1256
Precio de planta de pino 0,2 0,2 0,2
BENEFICIO BRUTO ($) 201,6 280,8 251,2
BENEFICIO NETO ($) 105,64 186,61 156,12
RELACIÓN COSTO/BENEFICIO 0,52 0,66 0,62
37
4.2. Discusión.
En la presente investigación, se encontró diferencias estadísticas significativas a los 66
días, mientras que a los 129 días se generó el mejor promedio teniendo una altura de 5,34
centímetros, promedios más bajos con 5,21 cm y 5,29 cm en los otros tratamientos,
tomando en cuenta que estadísticamente en el resto de los datos tuvieron un
comportamiento similar; resultados que difieren con Mendoza (2004) quien en la
investigación “Fertilización en tres especies de pino bajo condiciones de invernadero”
obtuvo valores diferentes a los encontrados en esta investigación, con datos de 2,57 cm en
la etapa 1 (6 meses), 12,39 cm en la etapa 2 (11 meses) y 14,04 cm en la etapa 3 (12
meses) con una dosis de N20-P20-K20.
En la presente investigación no se encontró diferencias estadísticas significativas en
ninguno de los tratamientos, teniendo un promedio de 0,10 cm en cada uno de ellos,
tomando en cuenta que no hubo una respuesta positiva en la aplicación de los fertilizantes
para el crecimiento del diámetro; difiriendo con los resultados encontrados con Mendoza
(2004) quien en su estudio “Fertilización en tres especies de pino bajo condiciones de
invernadero” donde sí se encontró diferencias estadísticas significativas con mejores
resultados teniendo un promedio de 2,96 cm a los 180 días después de haber sido
establecida la siembra, con una dosis de N20-P20-K20.
En este sentido las plántulas de Pinus radiata D. Don. (Pino) en el índice de vigor no
mostró una diferencia estadística significativa en los tratamientos aplicados en la
investigación, teniendo un promedio (cm3) en el T1 y T3 un valor igual de 0,44 cm3, y
teniendo el valor más bajo en el T2 con un promedio de 0,42 cm3, resultados que difieren
con Camino (2012) que en su investigación “Efecto de la fertilización con NPK sobre el
crecimiento vegetativo del caucho (Hevea brasiliensis Willd Ex A. Juss.), en etapa de
vivero en la zona de Santo Domingo.” si existen diferencias estadísticas significativas para
la dosis de N a los 120 y 210 días, donde los tratamientos en los que se aplicò 0 gramos de
N/planta obtuvo los mayores promedios de índice de vigor con valores de 46,14 y 342,82
cm3 a los 120 y 210 días respectivamente.
38
En este sentido el análisis de la variable sobrevivencia se contó el número de plantas
existentes en cada tratamiento al finalizar la investigación, obteniendo diferencias
estadísticas significativas a los 129 días con un 35%, a diferencia del tratamiento que
obtuvo el mayor porcentaje de sobrevivencia con un 48,76%, resultados que concuerdan
con Camino (2012) en su investigación “Efecto de la fertilización con NPK sobre el
crecimiento vegetativo del caucho (Hevea brasiliensis Willd Ex A. Juss.), en etapa de
vivero en la zona de Santo Domingo.” en la cual si existieron diferencias estadísticas
significativas teniendo el porcentaje mayor con un 100% y un valor menor de 75%,
tomando en cuenta que en los tratamientos en donde se aplicó una baja cantidad de potasio
(K) obtuvieron el mayor porcentaje de sobrevivencia.
En el análisis Costo – Beneficio el Tratamiento 2 presentó el mejor comportamiento
económico con una menor cantidad de inversión, generando 0,66 dólares de ganancia por
cada dólar invertido, y el Tratamiento 1 es el que requiere una mayor inversión y recibe
una ganancia de 0,52 dólares por cada dólar invertido. Cabe acotar que los tres
tratamientos generaron ganancias, pero esto varia debido a la mortalidad de plantas,
difiriendo con Camino (2012) tomando en cuenta que en sus resultados muestra que el
tratamiento que presentó mejor comportamiento económico fue el T4 (0 g N, 15 g P y 0 g
de K), la relación de Costo - Beneficio es $ 2,20 lo que corresponde a 1,20 dólares de
ganancia por cada dólar invertido y T10 con (7 g N, 0 g P y 0 g K) la relación de
Costo/Beneficio es $1,93 lo que corresponde a 0,93 dólares de ganancia por cada dólar
invertido y el T27 (14 g N + 30 g P2O5 + 12 g K2O) es el tratamiento que demandó de
mayor inversión generando una relación Costo - Beneficio negativo de 0,95 dólares lo que
concluye que aplicar este tratamiento generaría pérdidas económicas.
39
CAPÍTULO V
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
40
5.1. Conclusiones.
En ninguna de las variables (diámetro y diámetro de copa) se encontró diferencias
estadísticas significativas en los tratamientos, pero en la variable altura al día 66 si se
muestra una diferencia estadística significativa con un promedio de 2,51 cm, mientras que
en los 45, 87, 108 y 129 días no muestran una diferencia estadística significativa.
En la variable índice de vigor no se muestra diferencias estadísticas significativas en
ninguno de los tratamientos, pero en la sobrevivencias de las plántulas si existe diferencias
estadística significativas con un valor de 35% perteneciente al Tratamiento 1, y quien
obtuvo el mayor porcentaje de sobrevivencia fue el Tratamiento 2 con 48,76% y el
Tratamiento 3 con un 43,63%.
Considerando el mayor porcentaje de sobrevivencia el tratamiento que presentó una mejor
relación Costo – Beneficio fue el Tratamiento 2 generando una ganancia de 0,66 dólares por
cada dólar invertido, mientras tanto el Tratamiento 1 fue el que requirió una mayor
inversión y genero una menor ganancia de 0,52 dólares por cada dólar invertido.
42
5.2. Recomendaciones.
Recomiendo no emplear la dosis alta de fertilización (+25% de la dosis del control) debido
que se generara problemas de fitotoxicidad, efecto que se ve reflejado con un 10% más de
plantas muertas a nivel de vivero en relación a los otros tratamientos.
Se recomienda realizar este experimento en plántulas de mayor edad en la etapa de vivero, y
darle un seguimiento en campo para observar su comportamiento.
Realizar la relación Costo – Beneficio para analizar el proyecto de inversión y su viabilidad.
CAPÍTULO VI
BIBLIOGRAFÍA
43
6.1. Bibliografía.
Alpi, A. y Tognoni, F. (1999). Cultivo en invernadero. 3ª. Edición, Ediciones
Mundi-Prensa, España. p 345.
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Ministerio de agricultura y Ganadería. 1ª. Edición. San Tecla, El Salvador. p. 16
Kirkby, E. y Romheld, V. (2008). Micronutrientes en la fisiología de las plantas:
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acuminata HBK, Sangre de drago Crotton sp y Pino Pinus radiata D. Don, en y sin
asocio con uvilla Physalis peruviana L. Tesis Ingeniería Forestal. Universidad
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rendimiento de los cultivos. Terra Latinoamericana, 17 (3): 247 – 255.
46
Vergara, L.; Ipinza, R.; Pérez, E. (1995) Manual de cruzamientos controlados para
Pinus radiata D. Don. 1ª. Edición. Editorial Marisa Cúneo Ediciones. Valdivia,
Chile.
47
CAPITULO VII
ANEXOS
48
7.1. Anexos
Anexo 1. Llenado de contenedores y siembra de plántulas de pino
Fotografías 1. Llenado de contenedores Fotografía 2. Siembra de plántulas de pino
Anexo 2. Establecimiento de los tratamientos en los bancos del vivero.
Fotografía 3. Tratamientos tapados con sarán para acelerar la germinación de las semillas
y cuidar de los pájaros.
49
Anexo 3. Toma de datos a los 45 días, diámetro (calibrador) y altura (regla graduada en cm).
Fotografía 4. Medición de diámetro. Fotografía 5. Medición de altura.
Anexo 4. Mortalidad de plántulas.
Fotografía 6. Presencia por damping off Fotografía 7. Mortalidad de las plántulas
50
Anexo 5. Análisis estadísticos de la variable altura a los 45 días.
Anexo 6. Análisis estadísticos de la variable altura a los 66 días.
Anexo 7. Análisis estadísticos de la variable altura a los 87 días.
51
Anexo 8. Análisis estadísticos de la variable altura a los 108 días.
Anexo 9. Análisis estadísticos de la variable altura a los 129 días.
Anexo 10. Análisis estadísticos de la variable diámetro a los 45 días.
52
Anexo 11 Análisis estadísticos de la variable diámetro a los 66 días.
Anexo 12. Análisis estadísticos de la variable diámetro a los 87 días.
53
Anexo 13. Análisis estadístico de la variable diámetro a los 108 días.
Anexo 14. Análisis estadístico de la variable diámetro a los 129 días.
54
Anexo 15. Análisis estadísticos de la variable diámetro de copa.
Anexo 16. Análisis estadísticos del índice de vigor.
