Curso GREFA

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Objetivo del Tema

Conocer las características de los pacientes, fármacos y métodos empleados en la Anestesia de Reptiles, Pequeños Mamíferos y Aves mas comunes en la fauna Ibérica

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Conceptos generales

• ANESTESIA

• ANALGESIA

• SEDACION

• INMOVILIZACION QUIMICA

• NEUROLEPTOANALGESIA

• EUTANASIA

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Anestesia en Reptiles

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Anestesia en reptiles.

• Quelonios – Galápagos leprosos

• Ofidos – Escalera

– Bastarda

– Natrix

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Anestesia en reptiles.

• Características fisiológicas particulares

• Poiquilotermia

• Corazón tricavitario, excepto cocodrilianos

• Sistema porta-renal

• Adaptaciones físicas específicas

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Sistema porta-renal

• Característico de la circulación sanguínea de reptiles y aves.

• Existencia de válvulas: • Son modificaciones de músculo liso.

• En la unión de venas iliacas externas con venas eferentes renales.

• Bajo control adrenérgico y colinérgico.

• Circulación sanguínea desde las extremidades posteriores a través del riñón o a circulación central.

• Se recomienda no usar fármacos nefrotóxicos o que se excretan por el riñón en la musculatura de las patas.

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Anatomía respiratoria • Glotis

• En la base de la lengua: intubación sencilla

• Quelonios: lengua es más gruesa que dificulta la intubación

• Cocodrilos: epiglotis desarrollada y disponen del pliegue gular que debe ser deprimido para permitir la intubación

• Tráquea

• Saurios y los ofidios: anillos

traqueales incompletos

• Cocodrilos y quelonios: anillos

completos

• Quelonios: traquea pequeña que

se bifurca al entrar en la cavidad

celómica.

Administración de sustancias

• Intramuscular

– en extremidades anteriores o posteriores.

– Ofidios, a lo largo de los paquetes musculares, preferentemente de los dorsales.

• Intravenosa

– Ofidios, vena ventral de la cola, o por punción intracardiaca

– Quelonios y saurios: venas yugular, dorsal de la cola, femoral y longitudinal del caparazón

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IM, extremidad posterior

IV, dorsal de la cola

IV, yugular IC IV, dorsal de la cola

Administración de

Fármacos

• Intraósea – En tortugas y lagartos, en

húmero y fémur, en tortugas además en puente del caparazón

• Intracelómica

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Inducción Anestésica

Fases de la inducción anestésica en reptiles:

• Excitación.

• Pérdida del reflejo de enderezamiento.

• Relajación muscular.

• Pérdida del reflejo de retirada.

• Reflejo de la membrana nictitante, en las especies que la tienen, se mantiene..

• Disminución de la frecuencia cardiaca, nunca por debajo del 80%.

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Inducción Anestésica e

Intubación

• Inducción – Con mascarilla con isofluorano, halotano y

sevofluorano

– Reptiles acuáticos y semiacuáticos son capaces de permanecer en apnea largos periodos de tiempo: se emplean sedantes inyectados

• Intubación – La glotis se situa en la base de la lengua.

– Dificultades: Abrir el pico de los quelonios,

– En tortugas y cocodrilos los anillos traqueales son completos

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Mantenimiento

• Anestésico de elección

– Isoflurano 1-2%

• Flujo de O2

– <5 kg, sistema abierto, 0,3-0,5 l/kg/min.

– >5kg , sistema con absorción de CO2, 2-4 l/min para inducir, y 1-2 l/min para mantener

• Ventilación

Frecuencia respiratoria normal 10-20 resp/min

En ventilación asistida: 2-6 resp/min, presión pico < 12 cm H2O

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Recuperación

• Según anestésico

– Isoflurano: 20-30 min para intervenciones de <1 hora.

– Anestésicos Inyectables: de horas a días

• Ventilación asistida

– Mantener hasta que el animal ventile regular y espontáneamente. Se puede reducir a 2 resp/min para aumentar el CO2, o ventilar con aire ambiental

• Soporte

– Mantener la temperatura y la fluidoterapia, para evitar retrasar la recuperación

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Protocolos Anestésicos

• Isoflurano Inducción y mantenimiento

• Propofol 5-10 mg/kg IV, IO + 0,25 mg/kg/min

• Ketamina + Butorfanol 10-30 mg/kg + 0,5-1,5 mg/kg IM para pequeñas intervenciones en quelonios

• Ketamina + diazepam 60-80mg/kg + 0.2-0.8 mg/kg IM para procedimientos que requieran relajación muscular

• Ketamina + Medetomidina 10 mg/kg + 0.1-0.3 mg/kg IM

• Tiletamina + Zolazepam 4-5 mg/kg SC, IM. Cirugía 30 min, recuperación en 1-12 h

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Anestesia en Pequeños

Mamíferos y Ungulados

Especies

– Lobo

– Zorro

– Gatos monteses

– Ginetas

– Hurón – Turón

– Tejón

– Comadrejas

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– Conejos

– Liebres

– Erizos

– Rumiantes salvajes

– Murcielagos

– Corzos

– Ciervos

– Gamos

Manejo

• Fundamentalmente depende del tamaño y agresividad

• Animales muy estresables

• El manejo puede resultar peligroso

• El estado general grave puede hacer a un mamífero grande muy manejable

• Jaulas de contención, contención física

– Resultan muy útiles para administración de fármacos y medicación vía parenteral (IM)

• Jaulas – Guantes

– Anestesia a distancia con dardos NARCOTIZANTES

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Fármacos

• Tranquilización / Inmovilización Química – Es fundamental para manejo y transporte de

carnívoros mas o menos agresivos

• Combinaciones de KETAMINA

– KETAMINA 5-20 mg/Kg

– + Xilacina 0,5 -2 mg/Kg

– + Medetomidina 0,05 – 0,01 mg/Kg

– + Midazolam 0,3 mg/Kg

– + Diacepam 0,1 mg/Kg

– DURAN DE 20 a 45 min

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Fármacos

• Inducción parenteral – Propofol

– Tiopental sódico

– Alfaxalona

• Inducción Inhalatoria – Administración de anestesico en cámara de

inducción

– Tras la perdida del reflejo de estación se continua con mascarilla

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Mantenimiento anestésico

• La anestesia inhalatoria presenta ventajas fundamentales – Control dinámico de la profundidad anestésica – Recuperación rápida en caso de complicaciones

• Necesitamos – Intubar – Maquina y circuito anestésico – Monitorizar

• Mantenimiento de la TEMPERATURA – Mantas eléctricas (Ojo) – Agua circulante – Aire caliente

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Monitorizar

• El control e integración de

– Parámetros circulatorios

– Cardiacos

– Respiratorios

– Tª

• Nos permite “ver” como está de “deprimido” el paciente y actuar en consecuencia

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Recuperación

• De anestesia “Parenteral” – Generalmente mas largas. Hay que esperar que el

paciente filtre y elimine los fármacos administrados

– Algunos tienen antagonistas • Atipamezol – Alfa-2agonistas adrenergicos

• De anestesia Inhalatoria – Es rápida. Pocos minutos despues de cerrar el

vaporizador, el animal ha expulsado el anestesico via respiratoria

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ANESTESIA EN UNGULADOS

SALVAJES.

• Especies : ciervos, corzos, gamos…

• Extremadamente sensibles al estrés.

• Difícil aproximarse a ellos.

• Cocean.

• Miopatía de captura.

• Fallo cardíaco.

ANESTESIA EN UNGULADOS

SALVAJES.

• MIOPATÍA DE CAPTURA. – Patofisiología,

• Distrofia muscular.

• Rabdomíolisis

• Enfermedad del músculo blanco.

• Aumenta el ac. Láctico

• Deplección del Ca y K intracelular.

• Daño tisular = mioglobina a torrente sanguíneo = fallo renal.

ANESTESIA EN UNGULADOS

SALVAJES.

• PREVENCIÓN DE LA MIOPATÍA DE CAPTURA.

• Evitar tiempos de captura prolongados.

• No sobredosificar si usamos opioides.

• Reducir el manejo al mínimo.

• Zona de recuperación tranquila y en penumbra.

• No repetir el manejo del animal en, al menos, 1 semana.

• No manejar hembras preñadas o lactantes.

• Aportar Selenio y complejo vit B.

ANESTESIA EN UNGULADOS

SALVAJES.

• La técnica de inmobilización mas frecuente es mediante dardos.

• Se usan drogas potentes y de acción rápida.

• Importante conocer el tiempo del que disponemos, cuando se trabaja en el campo.

ANESTESIA EN UNGULADOS

SALVAJES Farmacos Induccion(min) Duracion(min) Antagonistas

Opioides:

*Etorfina

*Fentanilo

*Carfentanil

2.0-12.0

3.0-5.0

2.0-10.0

360-480

60-120

360-600

Diprenorfina

Diprenorfina

Naltrexona

Ciclohexaminas

*Ketamina

*Zoletill®

2.0-5.0

1.5-4.0

45-120

180-300

Ninguno

Alpha-agonistas

*Xylacina

*Medetomidina

*Detomidina

10.0-15.0

2.0-8.0

2.0-10.0

120-240

120-240

120-360

Yohimbina

Atipamezol

Atipamezol

Fenotiacinas

*Acepromacina

10.0-20.0

240-480

Ninguno

Benzodiacepinas

*Diacepam

*Midazolan

*Zolazepam

1.0-2.0

1.0-2.0

(comb. con Tiletamina)

60-120

60-120

Flumazenil

Flumazenil

Flumazenil

Anestesia en Aves

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Fisiología Sensorial / Comportamental

• Ya cazadores o presas…

– La mayor parte de la información que reciben es VISUAL

• Eliminando su vista podemos controlar sin estresar

– El oído juega en un segundo plano

• En buena parte del manejo es fundamental reducir LA VISION y EVITAR EL RUIDO

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Manejo

• En lo posible suave y sin excitación

• Evitar autolesiones

– Manejo especial

– Paños envolventes

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Fisiología Cardiovascular

• Frecuencia Cardiaca – Entre 200-500 lpm. Colibríes 1000 lpm.

• Gasto Cardiaco – Mayor que en mamíferos y dependiente de la

frecuencia Cardiaca

• Presión Arterial – Control poco conocido.

– Presiones arteriales más altas, > 150 mmHg en algunas especies

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Anatomía Respiratoria

• Glotis

– Ausencia de epiglotis, cuerdas vocales, cartílago tiroides

• Tráquea

– Anillos cerrados de diámetro variable cráneo-caudal (hasta 1/3).

– Diferentes morfologías (dobles, enrollamientos, divertículos)

• En Anestesia: – Espacio muerto elevado (x 4,5 respecto a mamíferos)

– Emplear tubos endotraqueales sin balón y con tamaño acorde a la porción caudal. No deben alcanzar la siringe

– Divertículos traqueales: Colocar vendajes en el cuello.

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Sacos Aéreos

• Avasculares, No contribuyen al intercambio gaseoso.

• Termo regulan y humidifican el aire.

• Reducen y distribuyen el peso en el vuelo

• Huesos neumatizados

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Pulmón

Saco Aéreo Torácico Caudal

Saco Aéreo Clavicular

Saco Aéreo Torácico Craneal Saco Aéreo Abdominal

Fisiología Respiratoria

• Frecuencia Respiratoria muy variable

– Avestruces (7rpm) colibries (143 rpm)

• Volumen corriente ligeramente superior a los

mamíferos

• Intercambio gaseoso en parabronquios y capilares aéreos

• Modelo doble ciclo respiratorio

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Ciclo respiratorio en las Aves

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Fisiología Respiratoria

Inspiración y espiración son activas:

• No existe diafragma que separe cavidad abdominal

y torácica

• La musculatura respiratoria facilita el flujo de aire desde los sacos aéreos

• Existe un flujo continuo de gas a través de los capilares aéreos desde los sacos aéreos

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Implicaciones Anestésicas del

movimiento respiratorio

• Monitorización de la frecuencia respiratoria difícil

– Se observa el movimiento de la quilla o capnografía

• La posiciones en decúbito dorsal (supino) dificulta la ventilación:

– Pared abdominal no sigue al esternón.

– Vísceras abdominales bloquean ostium y comprimen sacos aéreos caudales.

– Disminución volumen corriente y ventilación pulmonar.

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Eficiencia Respiratoria

El intercambio gaseoso de las aves es muy eficiente, con una barrera de difusión muy delgada y extensa y con un intercambio continuo en los parabronquios y capilares alveolares

• Ello implica:

Posibles sobredosificaciones (grisú) Recuperaciones prolongadas por el efecto acumulativo en los sacos aéreos: el aire tarda más tiempo en renovarse. La hipoxia/apneas no son bien toleradas en aves al ser el metabolismo elevado

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Termorregulación

• Animales homeotermos

• Temperaturas varían entre 38-42ºC. Hipotermia <38ºC.

• Piel sin glándulas sudoríparas, eliminación calor por la erección de las plumas

• La anestesia, especialmente los agentes inhalatorios y la relajación muscular provocan grandes pérdidas de calor

EVITAR PÉRDIDAS y APLICAR CALOR 44

Vías de administración

Vía venosa

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v. cubital v. metatarsiana

Farmacología aplicada en aves

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Parasimpaticolíticos

• No obligatorio su uso rutinario

• Utilizar cuando se presente un animal con una historia previa de bradiarritmia

• Atropina: 0,02-0,08 mg/kg IM

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Ketamina

• Amplio margen de seguridad • Inducción rápida • Mantiene Frecuencia Cardiaca • Mantiene estabilidad ventilatoria

• Excitación en la recuperación • Gran variabilidad de respuestas

individuales

• Utilización: – Procedimientos cortos – Cirugía menor – Previo a anestesia general

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Ketamina + Xilacina

• Combinación común: 100-200 mg/kg (ket) + 20-40 mg/kg (xil.)

• Buena relajación muscular y analgesia para la mayoría de intervenciones.

• Inducción rápida y recuperación suave

• Por especies:

– Género Buteo responde muy mal.

– Falconiformes y psitácidas responden muy bien.

– Acuáticas y columbiformes presentan movimientos espontáneos incluso a dosis muy altas.

• Ketamina + Medetomidina: 100-200 mg/kg + 0,1-0,2 mg/kg: similar a la anterior

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Antagonización

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• Fármacos:

• Yohimbina

• (ANTAGONIL®)

• 0.2 mg/kg) IV (0.5 mg/kg) IM.

• Atipamezol

• (ANTISEDAN®)

• 5x dosis de medetomidina

Tiletamina-Zolacepam

– Inducción es rápida y suave

–Recuperación es muy prolongada y esta asociada a factores desfavorables como temblores, excitación, aleteo. • Podemos tener autolesiones

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Propofol

• Dosis: 20 mg/kg + 3mg/kg según demanda, IV

– Poco empleada en aves aunque con buenos resultados

– Gran incidencia de apneas:

• Depresión respiratoria aguda y apneas

documentadas en palomas (14 mg/kg).

• Utilizado en patos con pocas apneas.

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Analgesia

• Características Generales:

Información escasa y confusa

Distribución de los receptores:

• en cerebro de palomas: – kappa 76%,

– mu 14%

Difícil reconocimiento del dolor en aves.

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Analgesia

• Monitorización del dolor mediante la respuesta al estímulo nociceptivo en:

– Cabeza

– Cera del pico

– Articulaciones

– Cloaca

– Periostio

– Espacio Interdigital

– Almohadilla plantar

– Piel y vísceras

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Analgésicos

• Buprenorfina – 0,01-0,03 mg/kg IM, IV, SC – Seguro REDUCE LA la CAM

• Butorfanol

– 0,1-0,5 mg/kg, IM, IV, SC • Muy utilizado en psitácidas • Puede producir bradicardia, y

disminución de la ventilación

• Fentanilo: ¡ Sin acción analgésica !

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Anestésicos Locales y AINEs

• Anestésicos Locales

– Uso limitado en aves

– Tópicamente para tratar heridas: benzocaina y bupivacaina

– Toxicidad: adecuar las diluciones

• Bupivacaina 0,5% (5 mg/ml): 1 mg/kg

• Lidocaina 0,2% sin adrenalina (2 mg/ml): Diluir

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Anestésicos Locales y AINEs

• AINEs

– Ketoprofeno 5 mg/kg IM, en patos

– Meloxicam 0,2 mg/kg

– Carprofeno 1 mg/kg SC

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Anestesia Inhalatoria • Características Generales:

– Muy sensibles a las sobredosis

– Inducción y recuperación más breves

– Pueden producirse cambios bruscos de plano

– Muy sensibles a hipoxia e hipercapnia

– Decúbito dorsal interfiere ventilación

– Potencian hipotermia y deshidratación

– Huesos neumatizados fracturados

– complican la anestesia

– No se produce colapso pulmonar por cirugía torácica y abdominal

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Anestesia Inhalatoria

Isofluorano:

– Efectos similares a mamíferos (Hipotensión)

– La potencia es también similar (CAM)

– Mejor tolerado en aves que el halotano

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CAM en aves

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CAM para halotano, isoflurano y sevoflurano en aves

Halotano(%) Isoflurano (%) Sevoflurano (%)

Cacatúa - 1,44 -

Gallina 0,85 - 2,21

Pato 1,05 1,32 -

Grulla - 1,35 -

Perro 0,9 1.3 2,4

Mascarillas y Tubos

endotraqueales

Mascarillas

• Han de adaptarse al pico y sus variaciones anatómicas

• Empleadas en la inducción y mantenimiento de la anestesia

61 Tubo de sacos aéreos

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Ventilación Asistida

• Se suele emplear cuando la depresión respiratoria de los anestésicos inhalatorios es excesiva – La presión pico aplicada se inferior a 15 cm H2O

– Vigilar el movimiento de la pared abdominal y de la

quilla para ajustar

– Frecuencia Respiratoria: • Aves grandes: 8-25 resp/min • Aves pequeñas: 30-40 resp/min.

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Recuperación

• Oxigenación – Mantener oxigenado hasta que empiece a moverse, p.e.

la cabeza

• Extubación – Evitar aspiración de secreciones pero no retrasar

• Evitar hipotermia – Incubadora …

– Jaula acolchada, ambiente tranquilo, con calor

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Monitorización Plano anestésico

• Superficial: reflejos presentes, ausencia de movimientos

voluntarios

• Medio: reflejo corneal (3er párpado) y podal presentes aunque reducidos, parpebral ausente. Respiración lenta, regular y profunda

• Profundo: ausencia total de reflejos, Respiración lenta, irregular y superficial. Puede aparecer apnea

Signos vitales • Frecuencia cardiaca, ECG • Frecuencia respiratoria, capnografía • Pulsioximetría

Soporte • Mantener caliente • Minimizar sangrado

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Cuidados postanestésicos

• Envolver al ave con una toalla para prevenir traumatismos

• Analgesia:

– Vigilar signos de dolor

– Iniciar o mantener protocolos de analgesia postoperatoria

• Mantener fluidoterapia

• Mantener temperatura

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• Diagnósticas y Quirúrgicas

• Endoscopia de vías aéreas

(laringe, tráquea y siringe).

• Oftalmología.

• Cirugía y exploración de la

cabeza, cuello, buche, esófago y

vías aéreas.

• Obstrucción de vías aéreas:

semillas, granulomas fúngicos,

tumores, concreciones de células

epiteliales y mucus.

Anestesia por Sacos Aéreos

• Casi siempre requieren de Sedacion parenteral, o una

anestesia inhalatoria previa con mascarilla