TEMA 8

Selección, recolección ytransporte de muestras

para examen microbiológico

Tema 8. Selección, recolección y transporte de muestras para examenmicrobiológico.

1. Consideraciones generales para la selección y recogida de la muestra2. Identificación de la muestra3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras4. Volumen o tamaño de la muestra5. Transporte de la muestra6. Rechazo de las muestras

• Siempre que sea posible, las muestras deben tomarse antes de iniciar la administración de agentes antimicrobianos.

1. Consideraciones generales para la selección y recogida de la muestra

• El material debe ser tomado de los lugares donde sea más probable encontrar el microorganismo responsable de la infección con la menor contaminación externa posible.

• Debe tenerse en cuenta el estadío de la enfermedad en el que se recoge la muestra.

• Debe tomarse la muestra en cantidad suficiente para permitir un análisis completo.

1. Consideraciones generales para la selección y recogida de la muestra

• Si la muestra la toma el propio paciente (orina, heces, esputo), debe ser instruido para que lo haga de manera correcta.Orina─ Orina de primera hora de la mañana─ Lavado de la zona periuretral y perineal─ Orina de chorro medio, recipiente, volumen

Heces─ Recipiente adecuado─ Cantidad de muestra

1. Consideraciones generales para la selección y recogida de la muestra

Esputo─ Primera hora de la mañana─ Recipiente adecuado─ Enjuagar la boca (gárgaras)─ Expectoración profunda

o Fisioterapia respiratoria Drenaje postural Percusión torácica

o Uso de nebulizadores─ Volumen mínimo de muestra

• Las muestras deben colocarse en recipientes estériles para evitar riesgos al paciente o al personal que las transporte.

• Deben tomarse las medidas oportunas para que las muestras sean remitidas rápidamente al laboratorio.

Rotular correctamente el envase con la muestra

• Nombre del paciente

• Código de la muestra (código de barras,

número)

• Fecha y hora de la toma de muestra

• Tipo de muestra y pruebas solicitadas

• Indicar si el paciente está tomando antibióticos

• Concordancia con el volante de solicitud

• Otros datos de interés (viajes, etc.)

2. Identificación de la muestra

3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras

• Frascos de boca ancha (contenedores)

– Orina

– Heces

– Esputo

– Punta del catéter

– Biopsias de tejidos

• Hisopos o escobillones

o Material de los escobillones

– Mango

• Rígido (madera, plástico)

• Flexible (metal)

3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras

– Torunda

• Algodón

• Dacrón o rayón

• Alginato cálcico

3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras

o Hisopos con medio de transporte

– Stuart

– Amies

– Cary-blair

– Hanks

3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras

• Aguja y jeringa estériles

– Aguja y jeringa estériles más

frasco con líquido

o Sangre

o LCR

– Aguja y jeringa estériles más

catéter

o Aspiración translaríngea

3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras

• Otros

– Bolsa para recogida de orina

(recién nacidos)

– Papel adhesivo para recogida

de heces (parásitos)

– Endoscopia (broncoscopia)

3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras

• Orina (urocultivo convencional 10-20 mL)

• Heces (2-15 mL; muestra equivalente al tamaño de una nuez)

• Sangre (para hemocultivo, 10-20 mL; 1-5 mL niños)

• Líquido cefalorraquídeo (1-3 mL)

• Esputo

• Líquidos pleural/pericárdico (1 ml virus; 5-15 ml bacterias)

• Líquido ascítico (5-15 mL)

• Líquido articular (1 mL)

• Tejidos y huesos (biopsia)

4. Volumen o tamaño de la muestra

5. Transporte de la muestra

Objetivos del transporte

• Mantener la muestra a ser posible como en su estado original

• Que se produzca el mínimo deterioro

• Evitar condiciones adversas (calor, frío, desecación, cambios de presión, etc.)

Si el tiempo que va a transcurrirdesde la toma de muestras hastasu inoculación es muy grande,hay que utilizar un medio detransporte

El objetivo del medio de transportees prolongar la viabilidad de losmicroorganismos

• Importancia del transporte rápido

– Muestras de orina

– Mycobacterium tuberculosis en esputo

– Muestras de heces

Shigella, Salmonella, Yersinia

Caldos de enriquecimiento

5. Transporte de la muestra

• Tiempo

– Máximo 2 horas a temperatura ambiente dentro del propio hospital

• Temperatura

– Siembra inmediata: muestras con gonococos; LCR con presunción de meningitis.

– Temperatura ambiente: fragmentos de pelo, piel y uñas para aislamiento de hongos.

– Refrigeración: orina, 24 h; hisopos de garganta, 2-3 horas.

– Congelación: muestras de virus conservadas más de 24 horas; muestras de heces para investigar toxina de Clostridium difficile.

– Nunca refrigerar: hisopos de heridas para cultivo en anaerobiosis.

– Nunca congelar: muestra de sangre coagulada.

5. Transporte de la muestra

5. Transporte de la muestra

• Medios de transporte

– Para bacterias

• Medio de Stuart

• Medio de Amies

• Medio de Cary-Blair

– Específicos de gonococos

• Medios Transgrow

• Placas Jembec

– Para virus

• Medio de Hanks

Composición del medio de transporte Stuart

Cloruro sódico 3 gCloruro potásico 0,2 gFosfato disódico 1,15 gFosfato monopotásico 0,2 gTioglicolato sódico 1 gCloruro cálcico 10 gCloruro magnésico 10 gAgar 4 gAgua destilada 1 LpH:7,3

Placa Jembec Hisopo

• ¿Cuándo y dónde se realiza el rechazo de las muestras?

• Criterios generales para el rechazo de las muestras

– Identificación

– No se especifica el sitio anatómico/el análisis solicitado

– Transporte inadecuado

Temperatura inadecuada

Muestras abiertas/derramadas

Condiciones de anaerobiosis

Hisopos secos

• Criterios particulares para las muestras de orina

• Criterios particulares para las muestras de esputo

6. Rechazo de las muestras