Resultados de diagnóstico y confirmación de Culícidos. Chile, 2010 ...

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Instituto deSalud PúblicaMinisterio de Salud

Resultados de diagnóstico y confirmación de Culícidos.Chile, 2010-2016.

VIGILANCIA DE LABORATORIO

VOL. 6, NO.4, ABRIL 2016.

3Instituto de Salud Pública de Chile.

Resultados de diagnóstico y confirmación de Culícidos.Chile, 2010-2016*.

VIGILANCIA DE LABORATORIO

1. ANTECEDENTES

La familia Culicidae (mosquitos) merece particular atención en todo el mundo, dada la importancia médica y veterinaria de éstos como reservorios y vectores de enfermedades como: Malaria, Dengue, Fiebre Amarilla, Virus del Nilo Occidental, Zika, entre otras (1).

En el país, existen distintos ecosistemas dulceacuícolas que permiten el desarrollo de diferentes especies de culícidos, por ejemplo, zonas con temperaturas superiores a 20°C y alta humedad como Isla de Pascua, zonas con temperaturas medias altas como el extremo norte o bien en regiones con temperaturas estivales altas, como en el centro sur del país. Si a lo anterior se suman los posibles efectos del cambio climático global, asociado a otros factores como las migraciones poblacionales, el incremento constante en el tráfico aéreo, terrestre y marítimo, es posible la introducción o reintroducción y el establecimiento, en nuestro territorio, de especies de mosquitos exóticas (2).

En Chile continental, hubo poblaciones de Aedes aegypti cuyos últimos reportes datan de 1961. Hasta 1953, en Chile continental, la infestación domiciliaria iba desde el nivel del mar hasta 1.320 msnm en el oasis de Pica y desde Arica a Caldera alcanzando un máximo de 45,2% de infestación domiciliaria en Taltal. Hay reportes de casos de Dengue (aparentemente Dengue clásico) en Iquique en 1889.

Hasta 1999 no se habían detectado posibilidades de reaparición del vector y la enfermedad. Sin embargo, inesperadamente, ya que la principal preocupación era el norte de Chile, en el año 2000 se detectaron poblaciones de Ae. aegypti en Isla de Pascua. En el año 2002 se confirmó el primer caso autóctono de Dengue que podría haberse originado a partir de viajeros infectados, ya que en Tahití y Hawái circuló el virus en el año 2001 (3).

En relación al vector, el Ministerio de Salud a través del Programa de Vigilancia de Zoonosis y Vectores de importancia en Salud Pública mantiene vigilancia activa de culícidos en el país con el apoyo técnico del Instituto de Salud Pública de Chile (ISP). En este programa participan las Oficinas de Zoonosis de las Secretarías Regionales Ministeriales de Salud (SEREMI) entre las regiones de Arica y Parinacota y Metropolitana. Consiste en la utilización de ovitrampas, larvitrampas y la colecta directa de larvas y adultos, desde distintos ambientes, buscando la detección temprana del ingreso de Ae. aegypti al territorio continental. Las ovitrampas tienen por finalidad detectar la presencia de huevos del vector. Las larvitrampas buscan detectar estados inmaduros de culícidos.

El diseño más simple de una larvitrampa es una sección radial de un neumático lleno de líquido de heno, el cual actúa como atrayente. Las ovitrampas consisten en recipientes plásticos, de preferencia oscuros, dentro de las cuales se disponen trozos de madera de 2 x 10 cm. adosados a las paredes interiores del recipiente y líquido de heno, previamente preparado que sirve como atrayente. Estas trampas son utilizadas en programas de control, buscando atraer a las hembras grávidas de mosquitos para que éstas coloquen sus huevos adheridos a los trozos de madera (4).

La detección de estados inmaduros y adultos se realiza por medio de prospecciones de colecta en distintos

* Hasta el 18 de abril de 2016

Instituto de Salud Pública de Chile.


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ambientes susceptibles de ser colonizados por culícidos, como cementerios, humedales y afloramientos ocasionales de agua. Todo el material biológico recolectado como así también el material biológico capturado por las ovitrampas y larvitrampas, es estudiado y analizado en el Laboratorio de Entomología Médica del ISP. Hasta la fecha se ha detectado la presencia de huevos o estados inmaduros de Ae. aegypti en Isla de Pascua (5). Sin embargo, con fecha de 18 de abril de 2016 se confirmó una muestra de Aedes aegypti procedente de la ciudad de Arica.

2. MATERIALES Y MÉTODO

El material entomológico de culícidos, así como las capturas realizadas por las ovitrampas y larvitrampas, es recibido en el Laboratorio de Entomología Médica ISP para su revisión. Cada uno de los especímenes, en sus estados inmaduros y adulto, es estudiado bajo microscopio estereoscópico para analizar la morfología externa e identificar el material a nivel específico. Una vez identificado el material, se informa a la Oficina de Zoonosis de la Seremi de Salud que despachó los ejemplares.

Para efecto de análisis de los datos, se categorizaron los puntos de muestreo, según característica: aeropuertos, puertos, cementerios, complejos fronterizos, sector urbano, sector rural, terminal de buses e Isla de Pascua. En este último caso, la categoría responde al tipo de registro de los puntos.

Para Ae. aegypti, los puntos de muestreo corresponden a 42 sectores, los cuales dan cuenta de la distribución territorial al interior de la Isla de Pascua.

3. RESULTADOS DE LABORATORIO

En el marco del Programa Nacional de Vigilancia de Vectores, entre enero del año 2010 y el 18 de abril de 2016 el Laboratorio de Entomología Médica ISP, recibió y analizó un total de 2.188 muestras de vectores para su identificación de especie. De éstas, en el 91,7% (2.007/2.188) se identificó a lo menos un espécimen correspondiente a la familia Culicidae. El 8,3% (181/2.188) restante corresponde a la identificación de otras especies no incluidas en la vigilancia y que no tienen importancia para la Salud Pública.

En el 85,6% (1.717/2.007) de las muestras en las que se identificó a lo menos un culícido provienen de la Región de Valparaíso, de las cuales el 33% (567/1.717) corresponden a muestras enviadas desde Isla de Pascua. El 14,4% (290/2.007) restante de las confirmaciones, provienen de las regiones de Arica y Parinacota, Tarapacá, Atacama, Coquimbo, Metropolitana, O’Higgins y Biobío (Figura 1).



Según puntos de muestreo, el 46,1% (925/2.007) de las muestras con especímenes de culícidos fueron tomadas en cementerios, el 28,1% (564/2.007) provienen de la Isla de Pascua, el 9,6% (192/2.007) de sectores rurales o criaderos naturales y el 7,8% (156/2.007) corresponden a muestras tomadas en aeropuertos, complejos fronterizos, puertos, sectores urbanos y terminales de buses. El 8,5% (170/2.007) de las muestras no permite categorizar el punto de muestreo (Figura 2). En cuanto al estado de las muestras recibidas, el 98% (1.966/2.007) se recibió en estado de larva, 0,3% (6/2.007) en estado adulto y el 1,7% (35/2.007) no permite categorizar el estado.

En el 99,8% (2.003/2.007) de las muestras, con presencia de culícidos, se identificó una sola especie por muestra y en el 0,2% (4/2.007) se identificaron dos especies en la misma muestra. El total de especímenes para análisis es de 2.011.

El 42,4% (853/2.011) de los especímenes identificados corresponden a la especie Culex (Cux.) pipiens, 18,9% (381/2.011) Aedes aegypti, 10% (201/2.011) Culex (Cux.) apicinus, 10,3% (208/2.011) Culex (Cux.) sp. y el 18,3% (368/2.011) a otras especies encontradas en menor cantidad. Según distribución de las especies, Culex (Cux.) pipiens se encontró en 5 regiones del país, Culex (Cux.) apicinus en cuatro regiones, Aedes (Och.) albifasciatus en tres y el resto de las especies en dos y una región (Figura 3).



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Figura 3:Distribución de especies según región de procedencia de la muestra. Chile 2010-2016*.

*Hasta el 18/04/2016.



Culex (Cux.) pipiens

Se identificaron 853 especímenes de Culex (Cux.) pipiens entre enero del año 2010 y el 18 de abril del 2016, de los cuales, el 94% (802/853) procede de la Región de Valparaíso. El 4,1% (35/853) de Coquimbo, 1,1% (9/853) de Arica y Parinacota, el 0,6% (5/853) de Atacama y el 0,2% (2/853) del Biobío.

Según punto de muestreo, el 61,9% (528/853) proviene de cementerios, 9,4% (80/853) de sectores urbanos, 10,3% (88/853) de Isla de Pascua y el 3,6% (31/853) de otros puntos de muestreo, tales como: sectores rurales (1,9%), terminal de buses (1,1%), aeropuertos (0,5%) y puertos (0,2%). En el 14,8% (126/853) de los especímenes confirmados como Culex (Cux.) pipiens no fue posible categorizar el punto de muestreo (Figura 4).

Culex (Cux.) apicinus

Desde enero del año 2010 hasta el 18 de abril de 2016 se identificaron 201 especímenes de Culex (Cux.) apicinus. De los cuales, el 78,1% (157/201) corresponden a la Región de Valparaíso, 16,9% (34/201) de Tarapacá, 3,5% (7/201) de Coquimbo y 1,5% (3/201) de Arica y Parinacota.

Según punto de muestreo, el 48,8% (98/201) de los especímenes confirmados proviene de cementerios, el 41,3% (83/201) de sectores rurales y el 5,5% (11/201) de sectores urbanos. En el 4,5% (9/201) de los especímenes confirmados no fue posible categorizar el punto de muestreo (Figura 5).



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Culex (Cux.) dolosus

Se identificaron 160 especímenes de Culex (Cux.) dolosus entre enero del año 2010 y el 18 de abril del 2016, de los cuales, el 98,8% (158/160) proviene de la Región de Valparaíso y el 1,3% (2/160) del Biobío.

Según punto de muestreo, el 96,3% (154/160) de los especímenes confirmados proviene de cementerios, el 1,3% (2/160) de sectores urbanos, 0,6% (1/160) de sectores rurales y 0,6% (1/160) de un terminal de bus. En el 1,3% (2/160) de los especímenes confirmados no fue posible categorizar el punto de muestreo (Figura 6).

Culex (Cux.) quinquefasciatus

Se identificaron 80 especies de Culex (Cux.) quinquefasciatus entre enero del año 2010 y el 18 de abril del 2016. De los cuales, el 81,3% (65/80) proviene de la Región de Arica y Parinacota y el 18,8% (15/80) de Tarapacá.

Según punto de muestreo, el 80% (64/80) de los especímenes confirmados proviene de cementerios, el 10% (8/80) de sectores rurales, 8,8% (7/80) de complejos fronterizos y el 1,3% (1/80) de aeropuertos (Figura 8).



Anopheles (An.) pseudopunctipennis

Desde enero del año 2010 hasta el 18 de abril del 2016 se identificaron 81 especímenes de Anopheles (An.) pseudopunctipennis. De éstos, el 50,6% (41/81) proviene de la Región de Arica y Parinacota y el 49,4% (40/81) de Tarapacá.

Según punto de muestreo, el 79% (64/81) de los especímenes confirmados proviene de sectores rurales, el 6,2% (5/81) de cementerios, 2,5% (2/81) de sectores urbanos y 1,2% (1/81) de un complejo fronterizo. En el 11,1% (9/81) de los especímenes confirmados no fue posible categorizar el punto de muestreo (Figura 7).

Culex (Cux.) articularis, Culex (Cux.) acharistus y Aedes (Och.) albifasciatus

Desde enero del año 2010 hasta el 18 de abril de 2016, se identificaron 25 especímenes de Culex (Cux.) articularis, 10 de Culex (Cux.) acharistus y 12 de Aedes (Och.) albifasciatus. De los cuales, el 91,5% (43/47) proviene de la Región de Valparaíso, 6,4% (3/47) de O’Higgins y el 2,1% (1/47) de Tarapacá.

Según punto de muestreo, el 57,4% (27/47) de los especímenes confirmados proviene de cementerios, el 27,7% (13/47) de sectores urbanos, 8,5% (4/47) de sectores rurales y el 2,1% (1/47) de aeropuertos. En el 4,3% (2/47) de los especímenes confirmados no fue posible categorizar el punto de muestreo (Figura 9).



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Aedes aegypti

En el periodo estudiado, se recibieron e identificaron 381 especímenes de Aedes aegypti (100% de positividad). De los cuales, el 99,8% (380/381) proviene de la Isla de Pascua, sin embargo, con fecha 18 de abril del 2016, se confirma una muestra de Aedes aegypti procedente de un sector urbano de la Región de Arica y Parinacota (Figura 10).

Figura 10: Ejemplar de Aedes aegypti capturado en Arica. Chile 2016.

Fuente: Laboratorio de Entomología. Instituto de Salud Pública de ChileRef: Manual de Culícidos (Diptera: Culicidae) de la zona norte y centro de Chile, incluyendo Isla de Pascua [www.ispch.cl/sites/default/ManualMosquitosv_02.pdf]

En el caso de las muestras procedentes de la Isla de Pascua, 76,4% (291/381) de los especímenes confirmados como Aedes aegypti tiene identificación de sector y el 23,6% (90/381) restante no puede ser identificado. En el 85,7% (36/42) de los sectores de muestreo de la Isla de Pascua se identificó presencia del vector (Figura 11).



4. CONCLUSIONES

• El Laboratorio de Entomología Médica ISP recibió y analizó 2.188 muestras de vectores paraidentificación de especie. En el 91,7% (2.007/2.188) de éstos se identificó a lo menos un espécimen de la familia Culicidae.

• El85,6%(1.717/2.007)delasmuestrasenlasqueseidentificóalomenosunespécimendelafamiliaCulicidae provienen de la Región de Valparaíso, de éstas el 33% (567/1.717) corresponden a muestras de la Isla de Pascua.

• El46,1%(925/2.007)delasmuestrasconidentificacióndeculícidosprovienendecementeriosyel28,1% (564/2.007) de la Isla de Pascua.

• Seidentificaron2.011especímenesdeculícidos,el42,4%(853/2.011)correspondenaCulex (Cux.) pipiens y el 18,9% (381/2.011) a Aedes aegypti. En este último caso, el 99,8% (380/381) proviene de la Isla de Pascua, sin embargo, con fecha 18 de abril del 2016 se confirmó una muestra de Aedes aegypti en el extremo norte del país (ciudad de Arica), lo cual constituiría la reintroducción de esta especie en Chile continental después de más de 60 años de su erradicación por parte del trabajo liderado por el Dr. Amador Neghme.

• Los resultados expuestos indican la importancia de la vigilancia entomológica como una de lasestrategias de prevención y control de enfermedades vectoriales, siendo necesario mejorar el registro de los puntos de obtención de muestra.

• Losdatospresentadossolodancuentadeloshallazgosenlospuntosdemuestreo,sincorrespondera un estudio de la real distribución de las especies de culícidos en el país.

REFERENCIAS1. Laboratorio de Entomología Médica, Instituto de Salud Pública de Chile; Departamento de Salud

Ambiental, Ministerio de Salud. Manual de Culícidos (Diptera: Culicidae) de la Zona Norte y Centro de Chile, incluyendo isla de Pascua. Programa Nacional de Vigilancia de Vectores. 2012.

2. Fritz Mazzei A. Identificación de dípteros culícidos entre la I Región y Región Metropolitana de Chile, bajo el Programa de Vigilancia Entomológica para Aedes aegypti, años 2000-2003. 2005 [citado el 2016 Feb 26]; Disponible en: http://repositorio.uchile.cl/handle/2250/132081

3. Canals M, González C, Canals A, Figueroa D. Dinámica epidemiológica del dengue en Isla de Pascua. Rev Chil Infectología. 2012 Aug;29(4):388–94.

4. PAHO/WHO. Ovitrampas para el control del dengue con participación comunitaria. | Blog de Antonieta Rojas de Arias [Internet]. 2016 [citado el 2016 Feb 26]. Disponible en: http://www.paho.org/blogs/par/tematico/?p=353

5. Departamento de Asuntos Científicos, Instituto de Salud Pública de Chile. Boletín Laboratorio y Vigilancia al Día. Dengue en la región de las América y Chile. 2016 Feb 16 [citado el 2016 Feb 16];N° 2 / 13 de Enero de 2012. Disponible en: http://www.ispch.cl/sites/default/files/documento/2012/06/BOLETIN%202.pdf

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