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UNIVERSIDAD AUTÓNOMA

CHAPINGO 

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REGULADORES DE CRECIMIENTO

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REPORTE DE PRÀCTICAS

Alumnos:

Cabañas Diaz Alan

Castro Ramr!z "r!!#$%

M!n!s!s L&'!z Mauri(io

Porto Gar(a Al!)an#ro

Santia*o Martn!z +uan Mi*u!l

PRO"ESOR:

+os, M!r(!# M!)a Muñoz

Universidad Autónoma Chapingo, Texcoco edo. De México a 8 de diciembre de 2!" 

Intro#u((i&n%

El estudio de los reguladores de crecimiento comenzó cuando Julius von Sachs sugirió que enlas plantas se encontraban presentes sustancias específicas para la formación de órganos. Sinembargo la concentración de los mencionados compuestos era tan baja que recién en 1!"pudo ser identificado el #cido indolacético$ considerado durante alg%n tiempo la %nica hormonavegetal.

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Se entiende por hormonas vegetales aquellas substancias que son sintetizadas en undeterminado lugar de la planta & se translocan a otro$ donde act%an a mu& bajasconcentraciones$ regulando el crecimiento$ desarrollo o metabolismo del vegetal. El término'substancias reguladoras del crecimiento' es m#s general & abarca a las substancias tanto deorigen natural como sintetizado en laboratorio que determinan respuestas a nivel de

crecimiento$ metabolismo ó desarrollo en la planta.(as hormonas vegetales se clasifican en cinco grupos)  *u+inas  ,itocininas -iberelinas Etileno  *cido abcísico

 * medida que los reguladores de crecimiento fueron identificados comenzaron los estudiossobre sus efectos mucho antes de poder determinar sus concentraciones endógenas debido alimitaciones instrumentales actualmente superadas. Se encontró que los mismosdesencadenan respuestas en muchas partes del vegetal$ & que dichas respuesta varían con laespecie$ órgano que se estudie$ estado de desarrollo$ concentración e interacción hormonal &diversos factores ambientales. or estos motivos resulta riesgoso generalizar acerca de losefectos de estos reguladores sobre los procesos de crecimiento.En la actualidad se considera que e+iste un sistema de respuesta que hace que los reguladoresde crecimiento resulten activos & específicos.

El complejo hormona/receptor o receptor activado constitu&e el primer eslabón de la cadena de

transducción de se0ales$ esta respuesta primaria inicia una serie de cambios$ que integran unarespuesta compleja que inducen a la respuesta fisiológica.(a manera de acción de este sistema puede ser visualizado claramente en el siguienteesquema mediante el que se representa el modelo de transducción inicial en la membranaplasm#tica.

-%. E/!(to #! la au0ina !n Sau(! llor&n 1Salix babylonica) $ 

2lamo 1Populusspp).

Ob)!ti3o.bservar el efecto de las au+inas en estacas de Sauce llorón 2#a$ix bab%$onica& &

 

 3lamo 'opu$us spp.

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Mat!rial!s $ M,to#os%

En primer lugar se quitaron las hojas a las estacas$ se consideró de la parte mediapara abajo. 4espués se desinfectaron con una solución a base de hipoclorito desodio al 56 esto con la finalidad de quitar las impurezas que pudiera traer desde

campo.

Se procedió a realizar el tratamiento de 3cido indulbutirico & su respectivo testigo$colocando 5 estacas de Sauce llorón por tratamiento$ después de esto a las 7semanas se hicieron observaciones para ver los resultados.

ara los esquejes de la planta trepadora se seleccionaron aquellas que tenían !brotes desinfectando con hipoclorito de sodio al 76. (os tratamientos que seutilizaron fuero con 3cido 8aftalenacetico a 7"" ppm & 7/9$ 4 a 5" ppm ambas sedisolvieron en medio litro de agua. :inalmente se colocaron los esquejes en tubosde ensa&o separados por tratamiento.

RESULTADOS

Imagen 1 Estacas con callos

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4%. E/!(to #! ANA a'li(a#o (on lanolina !n !s5u!)!s #! 6ol!os 1Coleus

forskohlii)

Ob)!ti3o%

bservar los efectos de *8* en combinación con lanolina el en esquejes de;oleos 2Co$eus (ors)oh$ii&.

Mat!rial!s $ M,to#os%

Se eliminaron las hojas basales dejando solamente de 7 a tres hojas por tallo$ estopara evitar la muerte de la planta por una e+cesiva transpiración. 4espués secortaron los esquejes a < cm de longitud. ara poder diluirla con la lanolina esta secalentó & se dejó enfriar un rato$ &a estando en estado líquido se adicionaron !"mg de *na & se mezcló hasta buscar una uniformidad en la solución$ sin embargo

esto no fue posible. 4espués &a teniendo la mezcla se procedió a untarles en laparte basal del tallo para posteriormente plantarlo en sustrato.

RESULTADOS

En este caso se repitió la pr#ctica &a que como se mencionó anteriormente lalanolina agregada en la parte basal$ hizo un efecto negativo donde murieron todas$sin embargo al repetirla se agregó este en el tallo & se tuvieron efectos positivoscomo se ve en las im#genes anteriores.

Imagen 2. Koleos enraia!os !on!e se agreg" lanolina en el tallo.

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7%. Pr!'ara(i&n #!l m!#io MS

Ob)!ti3o.

,onocer las concentraciones que debe llevar de cada uno de los componentes del medio$ asícomo la metodología para poder elaborarlo.

,onocer la reacción del cultivo en base a la concentración de sales$ vitaminas & hormonas queconforman el medio.

Mat!rial!s $ M,to#os%

Se elaboró el medio de =S. * la mitad de su concentración original$complement#ndola con ".7 mg>l de *8* $ <6 de sacarosa & 9"" mg>l de caseínahidrolizada a un p? de 5.@$ El medio de cultivo se realizó en un matraz donde sepreparó !""ml$ esto se hizo agregando primero agua des ionizada &posteriormente se empezó a agregar las diferentes sales & vitaminas con los que

se contaba en el laboratorio donde se media con una probeta 5ml de cadavitamina 2Aiamina$ *cido 8icotínico$ -licina$ irido+ina & =&o/inositolB & 7.5 ml desales 28itrato$ Sulfato$ ?alógeno & :osfatoB & hormona & posteriormente se agitobien el matraz para mezclar bien las sales & vitaminas & posteriormente seagregaron lo que es el insólito que fueron 75 ml & 15 gr de az%car$ una vezagregado todos los elementos se agito bien el matraz & se midió el p? de lamezcla$ con a&uda de un plancha & un agitador se le agrego 8a? a la mezcla parasubir el p? a 5.@ & una vez alcanzado dicho ? se le agrego !.@ gr de agar &posteriormente se puso a calentar esto con el fin de que el agar se mezclara biencon la solución preparada & poder formar una solución viscosa que al enfriar biense forma como una gelatina favoreciendo la siembra del cultivo de interés.

Cna vez que el agar este completamente mezclado & la solución tenga un color completamente claro sin grumos se lleva al autoclave donde se procede aesterilizarlos a base de presión & vapor & una vez que salga del autoclave &a

tenemos listo nuestro medio de cultivo para empezar asembrar.

RESULTADOS

Ima*!n 7% M$o.inositol8 a*ar $ az9(ar 

Imagen #. Sales minerales y $itaminas

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%. Enraizami!nto #! !s5u!)!s #! (risant!mo a #i/!r!nt!s (on(!ntra(ion!s#! ra#i0 1;(i#o in#olbutiri(o<%

Ob)!ti3os.

aB identificar que concentración muestra mejores resultados de los productos radi+15""$ 9""" & 1"""".

bB ,onocer los métodos aplicados para la obtención de plantas mediante el unadecuado manejo de plantas madres.

cB ,onocer los requerimientos para la obtención de plantas a partir de plantasmadres.

cB Ddentificar los límites en los diferentes métodos.

dB caracterizar el proceso de los esquejes que lleva desde el corte de ellos hastasu enraizamiento.

Mat!rial!s $ M,to#os%

a) selecci"n !e es%ue&e

Imagen '. (e!ici"n y regulaci"n !el p !el me!io

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(as plantas madres deben estar en condiciones sanitarias & nutricionalesoptimizadas. (os esquejes obtenidos de plantas madres jóvenes enraízan mejor que los de plantas viejas & este fenómeno$ que recibe el nombre de factor de

 juventud$ se ha atribuido a características de tipo morfológico & metabólico.

El esqueje debe poseer condiciones sanitarias óptimas$ buena reserva de almidón& morfología vigorosa. -eneralmente debe proceder de material de %ltimabrotación &$ con frecuencia$ se obtienen mejores resultados con el materiale+traído de ramas laterales que con el procedente de las terminales.

(os esquejes se le deben eliminar la ma&or cantidad de hojas vigorosas &a queestas demandan agua & por lo tanto los riegos son constantes$ se puede crear unambiente factible para enfermedades.

b) Selecci"n !el sustrato.

Cn sustrato compuesto por @"6 de polvillo de coco peat moss$ m#s !"6 detezontle negro o bien se puede utilizar la mezcla de <56 de fibra de coco m#s el!56 de agrolita es e+celente para poner a enraizar los esquejes de crisantemo.En nuestro e+perimento se tomó un sustrato con @" 6 peat moss & un !" 6 deagrolita.

c) *plicaci"n !e ra!ix a !iferentes concentraciones.

 *l solo tener radi+ 1"$""" & necesitar @""" se procedió a buscar un material inerte2(ibre de hormonasB para poder dejar la dosis necesaria$ agregando @ gramos deenraizador & !" de captan 2fungicidaB$ logrando así tener @""" ppm de ingredienteactivo$ posteriormente se llevaron a refrigeración$ & a los dos días se colocaron enel sustrato para que estos enraizaran$ dejando un testigo por los tratamientos ennuestro caso fue el tratamiento !.

RESULTADOS

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CONCLUSIONES GENERALES

El enraizamiento de plantas es una pr#ctica$ en propagación que nos a&uda aobtener nuevas plantas a partir de otras partes de plantas$ en este caso puedeser pr#cticamente cualquier parte$ como raíz$ tallos$ hojas & flores como mediosde propagación.

Es un buen método para obtener muchas plantas en poco tiempo$ adem#s deque ofrece muchas ventajas al propagar de esta forma$ &a que e+isten diversosreguladores que nos a&udan a tener un mejor é+ito de enraizamiento$ los cualesen nuestro caso utilizamos) *D$ *8*$ 7/9/4$ medios de cultivo & #cidonaftalenacetico como reguladores de crecimiento.

Auvimos buenos resultaos con el medio de cultivo$ solo tuvimos problemas por contaminación por la poca e+periencia en el tema$ al igual que con la lanolina$no se obtuvieron los resultados esperados$ esto debido a que no diluimos bien la

 *8* con la lanolina$ & solo lo colocamos así sin diluir & adem#s de que lalanolina tapo los conductos del esqueje 2floema & +ilemaB por lo que las hojasde coleos no enraizaron.

En cuanto a los esquejes de plantas trepadoras en los cuales se utilizó *cido8aftalenacetico & 7/9$4 se tuvieron malos resultados por una alta concentraciónde a+inas$ hubo inhibición de raíces por lo cual es necesario tener en cuenta las

dosis 2ppmB a aplicar.

En cuanto a las estacas de sali+$ el tratamiento que se obtuvo un mejor enraizamiento fue con 7/9/4$ esto debido a que las au+inas aplicadasestimularon la aparición de raizar$ aunque esto no tuvo un afecto mu& visual$ &aque solo se observaron en unas cuantas estacas$ & las raíces que aparecieron

Imagen '. Enraiamiento !e las estacassin ho&as con ra!ix. Imagen + ,rasplante !e es%ue&es al sustrato.