Producción de Enzimas Fibrolíticas de Phanerochaete Chrysosporium y Fomes Sp. Cultivados en...
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III Congreso Internacional de Microbiología Pecuaria
IV Congreso Nacional y XIV Congreso Estudiantil de Microbiología Pecuaria
24 y 25 de Octubre de 2013
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PRODUCCIÓN DE ENZIMAS FIBROLÍTICAS DE Phanerochaete chrysosporium y Fomes sp.
CULTIVADOS EN RASTROJO DE MAÍZ
Carrillo-Díaz M.I.1, Alonso-Meneses T.L.2, Miranda-Romero L.A.3
1*Posgrado en Producción Animal, Universidad Autónoma Chapingo. 2 Ingeniería en Biotecnología,
Universidad Tecnológica de Tecamac. 3Posgrado en Producción Animal, Universidad Autónoma
Chapingo.
Resumen
La lignocelulosa (celulosa, hemicelulosa y lignina) es el principal componente de la pared celular de las
plantas, representa una fuente de carbono con potencial para solucionar los problemas de energía
actuales. Dentro de los diversos métodos que mejoran la hidrólisis de la celulosa se encuentran los
hongos ligninolíticos, puesto que degradan el material lignocelulósico a través de la producción de
enzimas extracelulares. El objetivo de este trabajo fue evaluar la producción de celulasas y xilanasas
de los hongos Phanerochaete chrysosporium y Fomes sp. cultivados por fermentación en estado sólido
en rastrojo de maíz con y si mazorca, con 20% de salvado de trigo como aditivo. El extracto crudo
enzimático (ECE) se analizó para medir la actividad enzimática de celulasas y xilanasas con el reactivo
DNS. Los dos hongos y los dos sustratos se evaluaron en un diseño completamente al azar 2x2 con
arreglo factorial con una comparación de medias con la prueba de Tukey con el programa estadístico
SAS 9.0. La mayor producción de celulasas y xilanasas se obtuvo con Phanerochaete chrysosporium.
En el caso de de celulasas, el mejor sustrato fue el rastrojo de maíz sin mazorca, presentando el mayor
pico de producción en el día 12. Phanerochaete chrysosporium es un hongo con un alto potencial para
degradación de materiales fibrosos. Los sustratos con alto contenido de celulosa, hemicelulosa y lignina
favorecen la producción de enzimas fúngicas que hidrolizan estos materiales.
Palabras Clave: Celulasas, Xilanasas, Hongos ligninolíticos.
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Introducción
Los residuos, desperdicios, desechos agrícolas y de la industria de alimentos constituyen una
proporción importante, ya que llegan a alcanzar más del 30% del total de la productividad agrícola
mundial (Ugwuanyi et al., 2009); estos materiales representan un gran potencial para solucionar los
problemas de nutrición animal si se implementan tecnologías adecuadas para el uso apropiado de
dichos desechos. En la actualidad existen productos comerciales obtenidos a partir de hongos que son
utilizados ampliamente para mejorar la digestibilidad de forrajes o granos (Beauchemin et al., 2004).
Entre los aditivos para aumentar la digestibilidad de los alimentos lignocelulósicos, las enzimas
exógenas fibrolíticas, al agregarse a estos materiales, pueden mejorar la utilización de los polisacáridos
de los forrajes (Pinos-Rodríguez et al., 2002). Los hongos de pudrición blanca han sido ampliamente
estudiados, ya que son capaces de producir enzimas hidrolíticas, como las celulasas, xilanasas y
lacasas; las cuales han sido probadas para su aplicación en la industria textil, del papel y en la
producción de alimentos y biocombustibles (Rodrigues et al., 2008). Se han utilizado diversas cepas de
hongos como Trichoderma reesei, Phanerochaete chrysosporium, Aspergillus humicola, Trametes
versicolor, Bjerkandera adusta, Pleurotus ostreatus y Fomes fomentarius (Pérez et al., 2002; Rodrigues
et al., 2008; Ovando y Waliszewski, 2005) para la obtención de extractos enzimáticos en la degradación
de materiales fibrosos. En diversas investigaciones realizadas con tratamientos enzimáticos sobre la
degradación de los materiales fibrosos, se ha observado un comportamiento favorable, ya que se
incrementa la digestibilidad de manera considerable (Colombatto et al., 2007). El objetivo de este trabajo
fue evaluar la actividad enzimática producida por los hongos Phanerochaete chrysosporium y Fomes
sp. cultivados en rastrojo de maíz con y sin mazorca.
Material y Métodos
Para el cultivo del hongo se utilizó caldo papa dextrosa (24 g L-1) y agar bacteriológico (15 g L-1), en
cajas Petri en las cuales se resembró el hongo para su crecimiento. Las cajas Petri con el hongo se
dejaron incubando a 35 °C por 10 días. Para la medición de la actividad enzimática de celulasas y
xilanasas, se obtuvo un cultivo por fermentación en estado sólido utilizando como sustrato rastrojo de
maíz con y sin mazorca, con 20% de salvado de trigo. La humedad de estos materiales fue ajustada al
80%. Los cultivos se prepararon en cajas Petri de vidrio conteniendo 14 g de sustrato. Estos materiales
se esterilizaron a 121°C por 40 minutos. A cada caja Petri se le añadieron 4 discos (10 mm de diámetro)
de micelio de cada hongo crecido en PDA y se incubaron a 35°C hasta su lectura. Las lecturas
enzimáticas se realizaron a los 0, 3, 6, 9, 12 y 15 días de incubación. Para obtener el extracto enzimático,
se traspasó el cultivo en estado sólido a matraces Erlenmeyer de 250 mL y se añadieron 70 mL de agua
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destilada a cada matraz, posteriormente se colocaron en un baño de hielo sobre una agitadora orbital y
se agitaron a 120 rpm por 30 minutos. El líquido fue centrifugado a 7,000 rpm en tubos cónicos de 15
mL. Posteriormente se tomaron 2 mL para colocarlos en una centrífuga refrigerada a 4°C a 10,000 rpm
por 15 minutos. El sobrenadante obtenido se utilizó para la medición de actividad enzimática,
denominado extracto crudo enzimático (ECE). Para la medición de celulasas y xilanasas se utilizó el
método descrito por Miller et al., (1960). Para celulasas se utilizó como sustrato una solución de
carboximetilcelulosa (Sigma-Aldrich) al 1%, disuelta en amortiguador de citrato de sodio (50 mM, pH
5.0). Para xilanasas, se utilizó como sustrato una solución de xilano de madera (Sigma-Aldrich) al 0.5%,
el cual fue disuelto en amortiguador de citrato de sodio (50 mM, pH 5.3). Para ambas enzimas, se midió
la absorbancia a una longitud de onda de 595 nm en un espectrofotómetro LAMBDA 35 PerkinElmer a
595 nm. El diseño experimental fue un completamente al azar con arreglo factorial 2x2x6 Se realizó un
análisis de varianza para comparar la actividad enzimática de los sustratos, utilizando la prueba de
Tukey con el procedimiento GLM para realizar la comparación de medias, con el paquete estadístico
SAS 9.
Resultados y Discusión
Para la producción de celulasas, hubo diferencias significativas respecto al hongo utilizado (p<0.01) ya
que Phanerochaete chrysosporium obtuvo los valores más altos. Además se observó que el sustrato
sin mazorca de maíz tuvo la mejor respuesta para la producción de esta enzima (p<0.01). El mejor día
para producción de enzima fue el día 12 (p<0.01) como se observa en la figura 1. Respecto a xilanasas,
también hubo diferencia para los hongos estudiados (p<0.05), ya que Phanerochaete chrysosporium
obtuvo los valores más altos. Para esta enzima no se presentaron diferencias entre los sustratos
utilizados.
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Figura 2. Producción de xilanasas de Phanerochaete chrysosporium y Fomes sp. Cultivados en rastrojo
de maíz.
Figura 1. Producción de celulasas de Phanerochaete chrysosporium y Fomes sp. Cultivados en
rastrojo de maíz.
.
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Los resultados de producción de celulasas y xilanasas concuerdan con otros autores, ya que P.
chrysosporium es uno de los más eficientes en degradar lignina de la madera, además de liberar varios
tipos de celulasas (Pérez et al., 2002), lo cual puede permitir que haya una mayor hidrólisis del complejo
lignocelulósico de los materiales fibrosos. Estudios similares realizados con este hongo cultivado en
rastrojo de maíz por fermentación en estado sólido, indican que la mayor hidrólisis de este material
fibroso se obtuvo en el día 9 (Zhang et al., 2012). Probablemente esta diferencia se deba a una mayor
cantidad de sustrato utilizada en el presente estudio.
Conclusiones
El hongo Phanerochaete chrysosporium puede ser utilizado para la producción de enzimas que
favorecen la degradación de los materiales lignocelulósicos. El rastrojo de maíz sin mazorca promueve
una producción de celulasas por los hongos ligninolíticos.
Literatura citada
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enzyme products for ruminants. Canadian Journal of Animal Science 84(1): 23-35.
Colombatto, D., F. L Mould., M. K. Bhat and E. Owen. 2007. Influence of exogenous fibrolytic enzyme
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of cellulose, hemicellulose and lignin: an overview. Int. Microbiol. (5): 53–63
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Miller, G. L., R. Blum, Glennon, W. E., Burton, A. L. 1960. Measurement of carboxymethylcellulase
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procesos extractivos. Universidad y ciencia, Universidad Juárez Autónoma de Tabasco.
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Pinos-Rodríguez J. M., S. González., G. Mendoza., J. C. García., L. Miranda., G. A. De La Cruz., y V.
De Lerma. 2005. Efecto de enzimas fibrolíticas exógenas en la degradación in vitro de ingredientes
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Technology (141): 326–338.
Ugwuanyi, J. O., B. McNeil,. and L. M. Harvey. 2009. Chapter 5 Production of Protein-Enriched Feed
Using Agro-Industrial Residues as Substrates Biotechnology for Agro-Industrial Residues
Utilization, Part II, 78-103.
Zhang J., X. Ren, W. Chen y J. Bao. 2012. Biological pretreatment of corn stover by solid state
fermentation of Phanerochaete chysosporium. Front. Chem. Sci. Eng. 6(2):146-151.