CAPÍTULO 1 Importancia de la biología celular y tisular y técnicas de estudio de células y tejidos

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IMPORTANCIA DE LA BIOLOGÍA

CELULAR Y TISULAR Y TÉCNICAS DE

ESTUDIO DE CÉLULAS Y TEJIDOS 1 CA

PÍT

ULO

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Figura 1-1. A. Obtención de la muestra por medio de escisión directa. B. La muestra se introduce en un frasco con fijador. C. Se coloca la muestra en una capsula para el procesamiento.

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Figura 1-1. D. El histoquinete es un aparato que realiza los pasos de deshidratación, aclaramiento y preinclusión de manera automatizada. E. El centro de inclusión es un aparato que tiene la función de fundir la parafina para la inclusión definitiva. F. La muestra se orienta y se agrega parafina para formar bloques.

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Figura 1-1. G. El micrótomo permite realizar los cortes histológicos. H. El bloque de tejido se ubica frente a una cuchilla para obtener cortes delgados de tejido. I. El baño de flotación se utiliza para extender los cortes de tejido y montarlos en las laminillas correspondientes.

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Figura 1-2. A. Fotomicrografía de un corte de glándula suprarrenal, se ven los núcleos de color morado (1), y citoplasma de color rosa (2). H y E. B. Fotomicrografía de un corte de piel, se observan los núcleos de color café oscuro (1), citoplasma de color rojo brillante (2) y las fibras de colágena en color azul (3). Tricrómico de Masson.

A B

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Figura 1-2. C. Fotomicrografía de un corte de arteria elástica, se observan fibras elásticas color rojo (flechas). Tinción con orceína. D. Fotomicrografía de un corte de hígado, sobresale la presencia de fibras reticulares de color oscuro (flechas). Impregnación argéntica.

C D

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Figura 1-2. E. Fotomicrografía de un corte de musculo estriado esquelético, se observan las estriaciones de color morado (flechas). Hematoxilina férrica. F. Fotomicrografía de un frotis de sangre, se observa un eosinófilo con gránulos color rojo (1), núcleo en color morado (2) además de eritrocitos (3). Tinción de Wright.

E F

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Figura 1-3. A. Fotomicrografía de un corte de riñón, se identifica la membrana basal en color magenta (flechas). PAS. B. Fotomicrografía de un corte de colon, se identifica el mucinógeno en las células caliciformes (flechas). Técnica de azul alciano y van Gieson.

A B

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Figura 1-3. C. Fotomicrografía de un corte de tejido adiposo, se observan gotas de lípidos en color rojo brillante (flechas). Rojo oleoso. D. Fotomicrografía de un extendido de peritoneo, se observan células cebadas con gránulos metacromáticos (flechas). Azul de toluidina.

C D

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Figura 1-3. E. Fotomicrografía de un corte de riñón, se observa la presencia de acumulaciones patológicas de amiloide de color pardo rojizo (flechas). Rojo Congo.

E

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Figura 1-4. Representación esquemática del procedimiento de inmunohistoquímica con el método indirecto.

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Figura 1-5. A. Fotomicrografía de células en cultivo en la que se pueden observar los filamentos de actina en color rojo (1), microtúbulos en verde (2) y el DNA en color azul (3). Inmunohistoquímica con fluorescencia por microscopia confocal láser. B. Fotomicrografía de un corte de amígdala palatina para identificar los filamentos de citoqueratina en color oscuro en las células epiteliales (1), núcleos en color azul (2). Inmunohistoquímica con diaminobencidina.

A B

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Figura 1-6. Representación esquemática del proceso para realizar microarreglos de tejidos, tomando una muestra definida de cada bloque que se desea analizar y se introduce en otro nuevo bloque de parafina para compararla con otras muestras en una misma laminilla.

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Figura 1-7. Esquema que muestra los tamanos relativos de diferentes entidades y los instrumentos que se emplean para su deteccion.

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Figura 1-8. A. Fotografía que muestra el microscopio fabricado por Zacarias Janssen. B. Fotografía del microscopio fabricado por Galileo Galilei. C. Fotografía del microscopio fabricado por Antonio Van Leeuwenhoek.

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Figura 1-8. D. Imagen de los dibujos de espermatozoides humanos realizados por Leeuwenhoek. E. Fotografía del microscopio fabricado por Benjamin Martin.

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Figura 1-9. Fotografía que muestra los componentes del microscopio óptico: base (1), brazo (2), platina (3), tubo del ocular (4), revolver (5), tornillo del condensador (6), tornillo macrométrico (7), tornillo micrométrico (8), lente del ocular (9), objetivos (10), condensador (11) y fuente de iluminación (12).

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Figura 1-10. A. Esquema que ilustra el funcionamiento del microscopio óptico. B. Fotografía de un microscopio electrónico de transmisión.

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Figura 1-10. C. Esquemas que ilustran el funcionamiento de los microscopios electrónico de transmisión y electrónico de barrido.

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Figura 1-11. A. Configuración esquemática del principio de iluminación del microscopio de campo oscuro (luz transmitida). B. Fotomicrografía de células epiteliales observadas en el microscopio de campo oscuro.

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Figura 1-12. Fotomicrografías de la superficie de una hoja que muestran diferencias de contraste entre los diversos tipos de iluminación. En la parte inferior se observa el tipo de filtro empleado. A. En el campo oscuro aun los detalles más finos son visibles. B. En la iluminación oblicua se obtiene contraste con relieve. C. En el campo claro el contraste es limitado.

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Figura 1-13. A. Fotomicrografía de un cultivo de células CHO (células de ovario de hámster chino). B. Fotomicrografía de un corte de riñón en la que se observa el sistema de conductos.

A B

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Figura 1-14. A. Fotomicrografía de cristales de testosterona. B. Fotomicrografía de tejido óseo compacto en la que se observan las osteonas.

A B

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Figura 1-14. C. Fotomicrografía de fibras musculares estriadas, se reconoce el patrón de bandas y estriaciones transversales.

C

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Figura 1-15. A. Micrografía de musculo estriado cardiaco donde se observan las células musculares (1), fibroblastos (2), y la conexina de las uniones intercelulares (3). B. Micrografía de retina, se observan los núcleos celulares azules (1), células gliales (2), y la conexina de las uniones intercelulares (3).

A B

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Figura 1-15. C. Micrografía de células en cultivo, se observan los microtúbulos (1), ADN (2) y los cinetocoros (3). D. Micrografía de hipocampo, se observan neuronas verdes (flechas). Microscopia confocal laser.

C D