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Los peces de aguas continentales

Métodos de estudio

1.1- Pesca eléctrica 1.2- Muestreo con tóxicos1.3- Uso de explosivos1.4- Técnicas de hidroacústica1.5- Uso de redes y trampas1.6- Palangres y buceo1.7- Capturaderos1.8- Encuestas de rendimiento de pesca y Guiado

1. Técnicas de muestreo y obtención de datos

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1. Técnicas de muestreo1.1- Pesca eléctrica1.1.1- Fundamentos (I)

• Dos tipos básicos de corriente eléctrica:

CONTÍNUA: flujo de electrones continuo y en un solo sentido, del cátodo (-) al ánodo (+). Es la más recomendable para la pesca eléctrica, ya que afecta al pez haciendo que nade hacia el ánodo. Normalmente 220V y 1-2.5A

ALTERNA: flujo alterno (ánodo y cátodo alternan su posición en los electrodos). Afecta al pez paralizándolo. Los daños sobre la vejiga natatoria y otros órganos pueden ser graves.

Ambas pueden ser modificadas para obtener otros tipos de corriente que tienen distintos efectos sobre los peces (para distintas especies, tamaños, hábitats,..).

La CA se presta a más cambios, pero para capturar peces se suelen utilizar tres tipos de corriente: CC Pulsátil, CC Rectificada y CCR de onda media.

• Cuando se sumergen dos electrodos en el agua se origina una densidad de corriente (DC) que crea un campo eléctrico esférico alrededor de cada uno en el que el voltaje disminuye progresivamente a medida que nos alejamos del electrodo.

• El cuerpo de los peces presenta una menor resistencia al paso de la corriente que el agua que lo rodea, por lo que, al encontrarse en un campo eléctrico, su cuerpo se polariza, ya que la parte más cercana al electrodo está sometida a mayor voltaje que la más alejada.

1.1.1- Fundamentos (II)

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• Respuesta a CA: los peces tienden a situarse de forma perpendicular a la corriente eléctrica para minimizar el gradiente de voltaje en su cuerpo. Tienden a presentar oscilotaxis (natación forzada sin dirección) y electrotétano y el pez se inmoviliza. • En un campo de CC, sufren galvanotaxis (natación forzada con orientación) y galvanonarcosis (relajación muscular), situándose y moviéndose hacia el ánodo.

1.1.2- Efecto sobre los peces (I)

• El ánodo atrae a los peces. Éstos se ven sometidos a un gradiente de voltaje en su cuerpo. El cátodo debe ser de gran tamaño, así que normalmente es una parrilla de metal que se coloca en contacto con el fondo para que todo él actúe como cátodo (el cieno suele tener más conductividad que el agua)

• Mayor efectividad en aguas de conductividad media (500-800 µS/cm).•Si la conductividad es baja (<50 µS/cm) el campo eléctrico puede ser insuficiente para capturar a los peces, ya que éste es mucho máspequeño debido a la alta resistividad del agua.•Con conductividades altas el agua tiene menos resistividad que el pez, por lo que la corriente tiende a fluir a su alrededor, pero el pez es atravesado por poco o ningún voltaje. Por eso la pesca eléctrica no es viable en aguas salobres o saladas.

• La diferencia de potencial entre la cabeza y la cola del pez necesaria para nade hacia el ánodo suele estar entre 1 y 4V.

1.1.2- Efecto sobre los peces (II)

• Para un mismo campo eléctrico, los peces grandes están sometidos a mayores diferencias de potencial que los pequeños, debido a que su cuerpo ocupa mayor espacio dentro del campo. Se capturan más fácilmente los grandes.

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1.1.2- Efecto sobre los peces (III)Si el campo es débil (bordes exteriores) pueden asustarse y alejarse.Si es muy intenso pueden resultar electrocutados.En la zona intermedia (zona de aturdimiento) hay variedad de respuestas:Cuando el potencial pasa de ciertos límites, el cuerpo de los peces entra en

vibración.A un potencial todavía más alto se produce la natación forzada hacia él

(Electrotaxis)Si el potencial sube todavía más, quedan en estado de inconsciencia

(Electronarcosis), acompañada de movimientos temblorosos. Además el pez gira presentando el vientre hacia arriba.

1.1.3- Equipo:

El equipo tiene tres componentes:Unidad de potencia: Generador o batería. Produce la carga eléctrica (voltaje).Transformador y Rectificador: El primero regula la intensidad de carga (amperaje) y el segundo convierte la corriente alterna en continua.

Electrodos: El cátodo suele ser una parrilla metálica, y el ánodo suele ser un aro situado en el extremo de una pértiga que cuenta con un pulsador para cerrar el circuito o no cuando éste se halle en el agua.

Generador portátil(de espalda)

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Se asume que la población estudiada es cerrada, por lo

que los tramos suelen acotarse con redes

1.1.4- El muestreo (I)

El generador portátil es más adecuado para pesca en aguas poco profundas y fácilmente vadeables.

Se suelen realizar un mínimo de tres pasadas.

1.1.4- El muestreo (II)

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• Mínimo tres personas: una pesca con el ánodo, otra recoge los peces con una sacadera y otra atiende al cable y recoge los peces de la sacadera. Aconsejable 4.• El personal debe ir convenientemente aislado (vadeadores y guantes de goma).

1.1.4- El muestreo (III)

1.1.4- El muestreo (IV)

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En lugares profundos (lagos, ríos no vadeables, embalses, etc…) se utilizan embarcaciones. Se puede llevar el cátodo en la barca y empujar los peces hacia el ánodo, donde se recogen con sacaderas.

1.1.4- El muestreo (V)

Finalmente los peces se identifican, pesan y miden

1.1.4- El muestreo (VI)

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1.1.5- Limitaciones del método• No es la panacea. • El esfuerzo de captura suele variar con las pasadas (motivos: desconocimiento del método, cansancio físico, desánimo al no aparecer peces, ...)• Se capturan más fácilmente los peces grandes que los pequeños seleccionamos clases de edad.• Algunos se esconden entre las plantas y no se recogen• Los individuos que acaban de reproducirse son más afectados, existen diferencias entre sexos y según la tasa metabólica• La sensibilidad varía con las especies• En aguas con conductividad baja el efecto es menor

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1.2- Muestreo con tóxicos1.2.1- Tóxicos empleados

Existen más de 30 sustancias tóxicas aplicables como piscicidas.Las más utilizadas son la rotenona y la antimicina.

ROTENONA*Extracto de plantas de la familia de las leguminosas.*Mata a los peces bloqueando el acceso de oxígeno al organismo.*Su toxicidad depende de la especie, tamaño del pez, Tª del agua, pH…*Pierde su toxicidad en varios días en condiciones naturales.*Los peces pueden reanimarse en una solución de azul de metileno.*Su toxicidad puede eliminarse con permanganato potásico.

ANTIMICINA*Antibiótico producido en cultivos de Streptomyces.*Mata al pez inhibiendo la respiración.*Su toxicidad también varía según la especie y las condiciones del agua.*Sus efectos también pueden eliminarse con permanganato potásico.

1.2.2- Procedimiento de muestreo:Uso en ensenadas o aguas someras y tranquilas. Problemático su uso en corrientes.

1.3- Uso de explosivosProvocan la muerte del pez por rotura de órganos internosUso poco frecuente.

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1.4- Técnicas de hidroacústica:

Uso de sonar o ecosonda: emite una señal acústica que se transmite por el agua y, cuando golpea un blanco (un pez, un banco, el fondo…) se refleja hacia la fuente de emisión. El receptor transforma la señal en una forma susceptible de exhibición.

1.5- Uso de redes y trampas:

Redes fijas (de enmalle, trasmallos)

- Utilizadas principalmente para captura de peces comerciales en grandes ríos y lagos.

- Gran diversidad de métodos existentes en Galicia.

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Redes y dragas de arrastreDe varios tamaños según vayan a ser manipuladas con o sin maquinaria

Redes de cerco:- Las de mayor tamaño son de uso complicado y solo utilizables en aguas abiertas en grandes lagos- las hay de unos pocos m2 para lanzar desde la orilla o desde barca

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Trasmallos

Tres paños: uno de malla fina con uno de malla ancha a cada ladoLínea de flotadoresLínea de plomos

Trampas y redes de aros

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Las redes de aros se anclan en zonas de corriente con la abertura aguas abajo y se ceban con queso, soja, hígados de pollo,…

Las diseñadas para lagos y embalsesse colocan perpendiculares a la orilla(tienen una red guía), y con la aberturahacia tierra.

Determinado tipo de datos (preferencia y uso de hábitat, alimentación, lugares de reproducción, comportamiento…) solo pueden obtenerse de forma fiable mediante observación directa. El buceo es entonces el método más recomendable.

1.6- Palangres y muestreo subacuático

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1.7- Capturaderos, estaciones de control y captura

Para peces migradores; sobre todo para capturar y marcar alevines en bajada o de adultos en subida

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ESTACIONES de CAPTURA y CONTROL de PECES FLUVIALES en Galicia

Estaciones de Ximonde y Liñares (Ulla)

Estación de Bora (Lérez)

Estación da Freixa (Tea-Miño)

Estación de Landrove (Landro)

Estación de Barriéde la Maza (Tambre)

Estación de Pé de Viña (Eo)

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Guiado de pesca

1.8- Encuestas de rendimiento de pesca y Guiado

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Guía de Procedencia de ReoExpedidor:________________________

Río:_____________________________

Localidade:_______________________

Circunferencia Máxima (cm) Circunferencia Máxima (cm)

CARACTERÍSTICAS DO REOCARACTERÍSTICAS DO REO

Cebo Cebo empregadoempregadoHora da Hora da súasúa pesca(2)pesca(2)

LonxitudeLonxitude en cm (1)en cm (1)Peso en gramosPeso en gramos

Nome do Pozo, Nome do Pozo, PostoPosto ououLugar onde se pescoLugar onde se pesco

Precinto NºPrecinto Nº

En_______________________,a _______ de _____________________de 200(1) Lonx. Furcal ata a bifurcación da cola(2) De 0 a 24 horasPor Favor : Tomar os datos con precisión e escribir con maiúsculas

Asdo: O Expedidor

Nome do Couto:__________________

ou da Zona Libre:_________________

Folla para o Pescadorou o Servicio Provincialou a Dirección Xeral

Pescador: Nome e dous Apelidos:_____________________________________ ____________________________Concello de Residencia:___________________

En_______________________,a _______ de _____________________de 200(1) Lonx. Furcal ata a bifurcación da cola(2) De 0 a 24 horasPor Favor : Tomar os datos con precisión e escribir con maiúsculas

Guía de Procedencia de Salmón

Expedidor:________________________

Río:_____________________________

Localidade:_______________________

Nome do Couto:__________________

ou da Zona Libre:_________________

Circunferencia Máxima (cm)Circunferencia Máxima (cm)

Nome de Pozo, Nome de Pozo, PostoPosto ouou Lugar Lugar

Cebo Cebo empregadoempregadoHora da Hora da súasúa pesca(2)pesca(2)

LonxitudeLonxitude en cm (1)en cm (1)

Peso en gramosPeso en gramos

Precinto Nº:Precinto Nº:CARACTERÍSTICAS DO SALMÓNCARACTERÍSTICAS DO SALMÓN

Pescador: Nome e dous Apelidos:_____________________________________ Concello de Residencia

Asdo: O Expedidor Folla para o Pescadorou o Servicio Provincialou a Dirección Xeral

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DATOS DO PESCADOR

Nome:________________________Idade:________________________Sexo: Home MullerProfesión:_____________________Concello de Residencia:__________Provincia:______________________Nº da Licencia:__________________Clase de Licencia:_______________Expedida en:___________________

DATOS DA CAPTURA

Data:________________________Hora:________________________Arte: Cana OutrosEspecificar cales: _______________Cebo:________________________Nylon nº:_______________________Pozo ou Posto :__________________Lugar de:______________________Coto de_______________________ou Zona Libre__________________Concello de__________________________________________________

FICHA DE CAPTURANº do PRECINTO ou de REFERENCIA

ESPECIE:__________________________ Fase Vital:________________________RÍO:_______________________________VACIA:___________

Persoa Informante

PESO:______________________________________gramos

LONXITUDE FURCAL:___________________________cm

CIRCUNFERENCIA MÁXIMA:_____________________cm

LONXITUDE MAXILAR SUPERIOR:________________cm

LONXITUDE ALETA ADIPOSA:____________________cm

ALTURA MÍNIMA:_______________________________cm

SEXO: FEMIA MACHO SEN IDENTIFICAR

DETERMINACIÓN DO SEXO:

Disección Caracteres Externos

ESCAMASNº de Guía

Capturado en:

Coto

Zona Libre

Estación de Captura

DATOS BIOMÉTRICOS

Data:_____________________

Especie:__________________

Río:______________________

Lugar_____________________

Visualización de ovas ou Esperma

¿Está prateado?: Sí Non

MOSTRAS OBTIDASALETA EN ALCOHOL PURO

SANGUE CABEZA CON MICROMARCAOUTRAS:_________________________________

ESCAMAS

¿TEN O PEIXE UNHA MARCA ANTERIOR?

Código Tatuaxe:

SI NON

FALTA ADIPOSA MICROMARCACAL:Nº e cor da Floy:____________

Código Microchip:__________ Outras:_______________

Marcas Novas aplicadas ao peixe:

Corte de adiposa

Código do Tatuaxe:_________

Nº e cor da Floy:____________

Codigo do Microchip:

Outras:

Observacións:____________________________________________________________________

(1) Longitud Furcal

Muestra

Escam

asLongitud A

diposa

(3) Longitud M

axilar S

uperior(2) C

ircunferencia Máxim

a (cm.)

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2.1- Edad y crecimiento2.1.1- Método de Petersen2.1.2- Análisis de escamas, otolitos y huesos operculares2.1.3- Seguimiento de ejemplares marcados

2.1.3.1- Marcado de ejemplares2.1.3.1.1- Métodos de marcado2.1.3.1.2- Ventajas y desventajas

2.1.3.2 Seguimiento de ejemplares mediante radiotelemetría2.2- Estudios de fecundidad: Métodos para su evaluación2.3- Estudios sobre alimentación

2.3.1- Observación en acuarios2.3.2- Análisis de contenidos estomacales: Obtención de muestras2.3.3- Buceo y cámaras

2. Investigación

2.1- Edad y crecimiento

2.1.1 Método de Petersen

Consiste en el análisis de la distribución de frecuencias de las longitudes en la muestra.Se representa gráficamente la distribución y, normalmente, se detectan una serie de modas que corresponden a las diferentes clases de edad (más reconocibles en las más jóvenes).

En las clases de edad más altas son preferibles los métodos explicados a continuación

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2.1.2- Análisis de escamas, otolitos y huesos opercularesSon estructuras en las que se pueden apreciar anillos de crecimiento

Etiquetado

Limpieza escamas KOH (10 %)

Eliminación potasa y secado Colocación escamas

Cubre

Determinación edad

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En regiones templadas con estaciones bien marcadas como es el caso de la Península Ibérica, la escama estará formada por la alternancia de bandas de crecimiento con circulus espaciadas (verano) y bandas de crecimiento con circulus apretados (invierno), de tal manera que se genera un bandeado que permite establecer la edad de los individuos, ya que las zonas anuales (annulus) están constituidas por la alternancia de bandas de crecimiento con circuli espaciados y circuliapretados.

Las marcas anuales de crecimiento (annulus) se forman entre los meses de febrero y abril

Escama de trucha clase de edad 2+

Las escamas de cicatrización o de corrección se evitan a la hora de hacer las preparaciones

Escama situada sobre la linea lateral

Escama de cicatrización de Salvelinus fontinalis

Escama de Salvelinus fontinaliscorrespondiente a la cohorte 1+

- Determinación edad

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Método de Petersen de análisis de las frecuencias de las longitudes de cada estación de muestreo

El método de Petersen consiste en representar gráficamente la distribución de las frecuencias de las longitudes, detectándose una serie de modas que corresponden a las diferentes clases de edad

Río Anllons

Río Lengüelle

Determinación de la edad mediante el estudio de las marcas de crecimiento del Opéculo

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Anillos de crecimiento en Otolitos

Proceso de extracción de otolitos

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2.2.3- Seguimiento de ejemplares marcados

Se sigue la evolución del peso y la talla.

Sirve para la elaboración de curvas de crecimiento

2.2.3.1- Marcado de ejemplares2.2.3.1.1- Métodos de marcadoCaracterísticas ideales de las

marcas:• Inalterables a lo largo de la vida

del animal• Bajo costo.• Rápida colocación en el campo.• No deben afectar al crecimiento,

mortalidad y capturabilidad por depredadores o técnicas de pesca

• Gran cantidad de información en la marca.

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2.2.3.1.1- Métodos de marcado (II). Colocación de marca oval para mandíbula.

2.2.3.1.1- Métodos de marcado (III): Marcas tipo Floy

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Marcas tipo Floy y

colocación

2.2.3.1.1- Métodos de marcado (IV)

2.2.3.1.1- Métodos de marcado (V) Alevín con Implante visible

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2.2.3.1.1- Métodos de marcado (VI)

Alevín con Implante

visible: elastómero

Luz normal

Luz ultravioleta

2.2.3.1.1- Métodos de marcado (VII)

Micromarcas nasales de alevinesy aparato de micromarcado

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2.2.3.1.1- Métodos de marcado (VIII)

Colocación de las micromarcas

2.2.3.1.1- Métodos de marcado (IX) Tatuajes

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2.2.3.1.1- Métodos de marcado (X)

2.2.3.1.2- Ventajas y desventajas de los métodos de marcado

mortalidadmortalidad

mortalidadmortalidad

mortalidad, mortalidad, infeccionesinfecciones

ningunoninguno

locomoción, locomoción, etología,etología,

crecimientocrecimiento

EfectosEfectos

Salmo, Salmo, SalvelinusSalvelinus, , IctalurusIctalurus, Alosa, , Alosa, EsoxEsox

TodosTodos

Salmo, Salmo, SalvelinusSalvelinus, , IctalurusIctalurus, , CyprinusCyprinus, ,

AnguillaAnguilla, , OnchorhynchusOnchorhynchus

PleuronectidosPleuronectidos, , SalvelinusSalvelinus

Salmo, Salmo, TilapiaTilapia, , PercaPerca, , LepomisLepomis, , MicropterusMicropterus, ,

IctalurusIctalurus

GénerosGéneros

muchosmuchosaltaaltaEtiquetas/grapasEtiquetas/grapas

CódigosCódigosDuraciónDuraciónTipoTipo

pocospocosbajabajaTatuajes:Tatuajes:tintatintafluorescentesfluorescentestetraciclinatetraciclina

pocospocosaltaaltaCriomarcadoCriomarcado

pocospocosbajabajaPerforación del Perforación del opérculoopérculo

pocospocosAlta/mediaAlta/mediaRegeneración en Regeneración en

juvenilesjuveniles

Corte de aletasCorte de aletas

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2.2.3.2 Seguimiento de ejemplares mediante radiotelemetría:

Se coloca un TRANSMISOR (con batería que dura un tiempo determinado) al ejemplar bien adosado o en el estómago (existen aparatos especialmente diseñados para ello y los peces los retienen desde varios días a semanas según la especie).

Las emisiones se reciben en un RECEPTOR que puede estar asociado a un ANALIZADOR DE PULSOS.

Permite conocer patrones de distribución, pautas migratorias…

2.3- Estudios de fecundidad: Métodos para su evaluación

Se captura una muestra de hembras con ovarios maduros pero antes de haber comenzado el desove.

Para cada una se anotan: LONGITUD, PESO, PESO DE LAS GÓNADAS (si se realiza disección) y EDAD (determinada a partir de escamas, otolitos…)

Tras la disección se cuenta el número de huevos por ovario (en fresco o en el laboratorio)

Si la madurez es completa, a veces es posible provocar artificialmente el desove (masaje ventral) sin matar el pez. Para conocer la eficiencia del método es necesario diseccionar algunos ejemplares para estimar el error cometido con el desove manual.

Generalmente no se cuentan todos los huevos, sino que se hacen submuestras.

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2.4- Estudios sobre alimentación

2.4.1- Observación en acuariosLos resultados deben ser contrastados

con datos obtenidos en el campo.

2.4.2- Análisis de contenidos estomacales: Obtención de muestras

• Se disecciona el ejemplar y se determina el grado de repleción del estómago. Posteriormente se extrae el contenido y se realizan preparaciones microscópicas. Por último se identifica el alimento (restos vegetales, macroinvertebrados…)

• En determinados casos es posible también la extracción de las muestras mediante bombas de estómago

2.4.3- Buceo y cámaras