MILDIUS - Universidad de Sevilla...Mildiu de la patata y del tomate Libera esporangios al aire seco...
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Downy mildew: PeronosporaceaeBlight: Phytophthora (dispersión aérea)Powdery mildew: Oidios
MILDIUS
• Etiología• Sintomatología y
diagnóstico• Ciclo biológico• Características
patogénicas y epidemilógicas
Mancha de aceiteManchas amarillas que se necrosan
Polvo de azúcar en envés
MILDIUde la
PATATAy del
TOMATE
PODREDUMBRE
HIELO
Esporangios
Esporangióforo
Phytohthora infestans
Alta humedad/Agua libreHR = 100%Temperaturas no elevadasTª óptima 16-22 ºCAbonadoRiego
SolanaceaePatataTomateBerenjena (plántula)M-H y Ornamentales
ResistenciaVerticalHorizontal
Fenología
AMBIENTE
PATÓGENO(POBLACIÓN DE AISLADOS)
PLANTA (CULTIVAR)Ciclos de
Patogénesis (6-7 d.)
Mildiu de la patata y del tomate
Libera esporangios al aire secoEsporangios ger. Directa e IndirectaTipo de apareamiento A1 y A2Patotipos (razas fisiológicas)Infección cruzada patata/tomate
Origen CentroaméricaEntrada en Europa 1840 Bélgica A1A2 Suiza 1984Distribución mundial
CULTIVO SIN SUELO –lana de roca-
Tomate
AMBIENTE
PATÓGENO(POBLACIÓN DE AISLADOS)
PLANTA (CULTIVAR)Ciclos de
Patogénesis (6-7 d.)
Podredumbre de raíz y cuello del tomate
(2003 Bélgica)
Phytophthora infestans
- Como una Phytophthora más -
A1
A2
Ciclo de patogénesis
SupervivenciaMultiplicación
Dispersión
Prepenetración
Penetración
Infección
Enfermedad
Distribución
Multiplicación
Prepenetración
Penetración
DispersiónCicloprimario
Ciclossecundarios
fuente de inóculo primario
inóculo secundario
micelio tuberculos•siembra•deshecho
formación esporangiosHR 100%
varios kmincluso tiempo seco
esporangios no turgentessolo germinan en agua libre >15h
germinación indirecta 12-15 ºCgerminación directa 15-24 ºC 18 ºC y 100% HR en 7-8 días lesión 6 cm2
85000 esporangios
100% HR alta95% HR media60% HR 30 m. nulaU.V.
Eliminación de las fuentes primarias de inóculo•tubérculos de siembra certificados•semillas de tomate tratadas y certificadas o plántulas sanas•eliminación de restos afectados del cultivo y malas hierbas huésped
Reducción de la humedad ambiente•vertilación de invernaderos•densidad de plantación adecuada•evitar riegos copiosos y el riego por aspersión
Control químico (periodos críticos, alternancia de m.a.)•contacto
•sulfato de cobre•DITIOCARBAMATOS (mancozeb, zineb)•TIOIMIDAS (captan, folpet) •diclofuanida, clortalonil
•sistemicos o penetrantes•ACILALANINAS (metalaxil, benalaxil, oxadixil, ofurance)•TIOCARBAMATOS (cimoxanilo)•fosetil-Al, etil-fosfito•dimetomorf•famoxadona
CONTROL
LOS OIDIOSLOS OIDIOS•• EtiologEtiologííaa•• SintomatologSintomatologíía a
y diagny diagnóósticostico•• Ciclo biolCiclo biolóógicogico•• CaracterCaracteríísticas sticas
patogpatogéénicas y nicas y epidemiolepidemiolóógicasgicas
•• Generalidades Generalidades sobre su controlsobre su control
Blumeria graminis
sin. Erysiphe graminis
Oidio
OIDIO
DE
LOS
CEREALES
Alta humedad/xerofitismo-agua libre inhibe lagerminación de conidios-Temperaturas no elevadasTª óptima 11-21 ºCLuz atenuadaexceso de N
Gramineas festucoidesimportante en:Trigo (duros)CebadaCenteno(Avena....)
Genes de resistencia
7 formae speciales: hordei, tritici, avenae, secalis, agropyri, bromi y poaeRazasadaptación preferenteno infección cruzada (excepto sp. muy próximas)Heterotálica
AMBIENTE
PATÓGENO(POBLACIÓN DE AISLADOS)
PLANTA (CULTIVAR)Ciclos de
Patogénesis
Oidio de los cerealesBlumeria graminis(sin. Erysiphe graminis)
Ciclo de patogénesis
SupervivenciaMultiplicación
Dispersión
Prepenetración
Penetración
Infección
Enfermedad
Distribución
Multiplicación
Prepenetración
Penetración
DispersiónCicloprimario
Ciclossecundarios
fuente de inóculo primario
inóculo secundario
puente verdecleistotecios restos no enterrados
vuelo de conidias-larga distancia-
ascosporas-corta distancia-
viento, tiempo semi-seco
humedad y viento
condiciones semi-secas
Tª optima 15-20 ºCHR 98-100%
inhibe agua libre
7-10 días
infecciones tempranasinicio final enero valle del Guadalquivir
se para tras las lluvias de marzo
Prepenetración—Penetración—Infección
germinación del conidio y formación del haustorio
relación diferencial gen-a-gentrigos duros más susceptibles
resistencia erosionable raza específicamapa de razas-análisis de virulencia (anual)
variación de las resistencia en el espacio y/o tiempoaumentar el nivel de resistencia raza no específica
CONTROL
mapa de razas-análisis de virulencia
Cultivares resistentes•ensayos de resistencia locales•mezcla de cultivares•romper el puente verde-distintos genes de resistencia en los cultivos de primavera y otoño-
Siembras tardías
Control químico (aplicación temprana –¿sin saber como irá el cultivo?-, alternancia de m.a.)•sistémicos o penetrantes
CONTROL
-los más utilizados en nuestra zona-triadimenol Bayfidan 25clortalonil Daconilclortalonil + metiltiofanato Talonil Fortebromuconazol Vectradiniconazol Sumiocho 12,5carbendazima + flutriazol Impact Rcarbendazima + fusilazol Punch CStebuconazol Folicur 25
Bibliografía recomendada
AGRIOS G.N., 1985. Fitopatología. Ed. Limusa, Mexico.
LLÁCER G., LÓPEZ M.M., TRAPERO A., BELLO A., 1996. Patología Vegetal. Tomos I y II. Ed. S.E.F. y PHYTOMA-España, Valencia.
ROBERTS D.A., BOOTHROYD C.W., 1978. Fundamentos de patología vegetal. Ed. Acribia, Zaragoza.
SMITH I.M., DUNEZ J., PHILLIPS D.H., LELLIOTT R.A., ARCHER S.A., 1992. Manual de enfermedades de las plantas. Ed. MundiPrensa, Madrid.
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