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DEPARTAMENTO DE MORFOLOGÍA ACADEMIA DE EMBRIOLOGÍA

EMBRIOLOGÍA COMPARADA DE LOS CORDADOS

LICENCIATURA EN BIOLOGÍA

1

CENTRO DE CIENCIAS BÁSICAS. DEPARTAMENTO DE MORFOLOGÍA

Manual de Prácticas

Manual de Prácticas Biología del Desarrollo

Licenciatura en Biología Profesores: Dra. Alma Lilián Guerrero Barrera Dr. Édgar Eduardo Hernández Cuéllar

Semestre

Nombre ________________________________________ Enero – Junio 2015




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REGLAMENTO GENERAL DEL LABORATORIOLOGÍA Y EMBRIOLO GÍA 1. Presentarse puntualmente a la sesión correspondiente. Se tendrá una tolerancia máxima de 10

minutos de retardo.

2. Para entrar o permanecer en el laboratorio se deberá portar siempre una bata blanca.

3. Traer el material de trabajo necesario (lápices de colores, sacapuntas, goma)

4. Traer el manual de prácticas engargolado y debidamente resuelto el cuestionario

correspondiente.

5. Estudiar con la debida anticipación los temas que se van a revisar en cada práctica.

6. Al inicio de la práctica cada mesa elaborará un vale que enliste el material que se le entrega

acompañado de una identificación oficial con fotografía.

7. Al término de la práctica, cada alumno deberá guardar correctamente su microscopio y limpiar su

área de trabajo y al regresar el material en buenas condiciones se le reembolsarán el vale y la

identificación. En caso de daño al material, aparatos o al inmueble del laboratorio, el (los)

alumno(s) responsable(s) deberán cubrir el costo de los desperfectos ocasionados por medio de

un recibo elaborado por el Técnico presente; luego, pasará (n) por un memorándum con la

Secretaria del Departamento, pagando finalmente en el Depto. de Cajas de la UAA. En caso de

no realizar dicho pago, se pedirá al Depto. de Control Escolar detenga el proceso de

Reinscripción del o los alumnos involucrados.

8. Enseguida mostrarán los dibujos realizados a los profesores e instructores para su revisión y

entregarán el reporte de acuerdo a los criterios indicados en su manual de laboratorio.

9. Comportarse de acuerdo a las normas de disciplina establecidas en la Ley orgánica y su estatuto

de la Universidad Autónoma de Aguascalientes, y reglamento del Centro.

10. Prohibido: Usar gorra, introducir y consumir líquidos y alimentos en los laboratorios, fumar y

utilizar lenguaje altisonante e irrespetuoso así como el hablar con teléfonos celulares.

11. En caso de no realizar la práctica en la fecha programada, o que el reporte sea rechazado, el

alumno deberá asistir en las horas de revisión de material para realizarla en forma individual;

para aceptar el reporte así realizado, éste deberá llevar el nombre y firma del instructor o del

técnico que le atendió, así como la fecha en la cual se llevó a cabo, y presentarlo al profesor

correspondiente en la sesión inmediata posterior.

Cd. Universitaria, Mayo de 2010.

Jefe del Departamento de Morfología Coord. Ac ademia de Histología Coord. Academia de E mbriología




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Formato de vale para préstamo de laminillas:

CENTRO DE CIENCIAS BÁSICAS DEPARTAMENTO DE MORFOLOGÍA

INSTRUCCIONES:

1. Al iniciar el laboratorio, cada estudiante se responsabilizará del uso del microscopio que le corresponda, de acuerdo al lugar que ocupe. Debe revisar sus condiciones durante todo el semestre y reportarlas al personal correspondiente (profesores y técnicos de laboratorio).

2. Corresponde un vale por equipo deben indicar el número de laminillas a utilizar, así como los datos correspondientes del alumno que se va a ser responsable por el material.

3. Para solicitar el material se deberá entregar la credencial de la universidad, en caso de no contar aun con ella, se necesitara una credencial oficial.

4. Al entregar el material al personal técnico, se regresara la identificación.

5. Se recomienda que cada semana un integrante diferente de cada equipo solicite el material histológico. Este material es muy importante para apoyar tu aprendizaje y es difícil de obtener, CUÍDALO.

VALE DE LABORATORIO Nombre del Alumno ID

Carrera Semestre

Laboratorio Fecha

Material

Cantidad

FIRMA DE RECIBIDO

CENTRO DE CIENCIAS BÁSICAS

DEPARTAMENTO DE: MORFOLOGÍA

Código: FO-120700-07 Revisión: 00 Emisión: 10/10/2008




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INDICE DE PRÁCTICAS.

No. NOMBRE DE LA PRACTICA PAG. FECHA 2015 PRESENTACIÓN DEL PROGRAMA 27 Enero 1 CICLO CELULAR (MITOSIS Y MEIOSIS) 5 10 Febrero 2 APARATO REPRODUCTOR MASCULINO I. 7 17 febrero 3 APARATO REPRODUCTOR MASCULINO II. 9 24 febrero 4 APARATO REPRODUCTOR FEMENINO I. 11 3 marzo 5 CICLO SEXUAL FEMENINO. 13 10 marzo 6 DESARROLLO EMBRIONARIO I. MORULA Y BLASTULA. 14 24 marzo 7 DESARROLLO EMBRIONARIO II. GASTRULA Y NEURULA. 20 1 º abril EXAMEN PARCIAL. 8 abril 8 MEMBRANASEXTRAEMBRIONARIAS. 24 24 abril 9 CARDIOVASCULAR. 27 5 mayo

9 Bis APARATO CIRCULATORIO II. 29 1 mayo 10 FARINGE. 30 12 mayo 11 ORGANOGENESIS II. APARATOS Y SISTEMAS. 32 19 mayo 12 ORGANOGENESIS III. SISTEMA NERVIOSO Y ORGANOS DE

LOS SENTIDOS. 35

26 mayo

EXAMEN FINAL. 2 junio Criterios de Evaluación. El examen práctico se realizara en dos partes, como se indica en el índice de prácticas. Ambos sumarán un total de 25% como marca el programa de la materia. Así mismo, es obligatorio aprobar el laboratorio para aprobar la materia de Biología del Desarrollo




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PRACTICA No 1. CICLO CELULAR

OBJETIVO: Identificar al microscopio óptico las características morfológicas que presentan las

células en interfase y en división por mitosis.

MATERIAL:

• Laminilla: raíz de cebolla, H-E • Laminilla de testículo humano, H-E • Video: Mitosis

DESARROLLO:

1. Observe el video y haga un breve resumen con los puntos más importantes de

su contenido

2. Observe la laminilla histológica de raíz de cebolla con el objetivo seco fuerte (40X). Elabore los esquemas que muestren a las células de la raíz de cebolla en las diferentes etapas de la mitosis: interfase, profase, metafase, anafase y telofase.

3. Observe la laminilla histológica de testículo humano con el objetivo seco fuerte

(40X), Elabore los esquemas que muestren a las células germinales en diferentes etapas de la mitosis o de la meiosis (profase I, metafase I, anafase I, telofase I, metafase II, anafase II o telofase II) según se puedan identificar.

RESUMEN DEL VIDEO:




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HOJA DE ESQUEMA DE LAS PREPARACIONES HISTOLÓGICAS

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA

ESTRUCTURA OBSERVADA _______________________________ AUMENTOS TOTALES

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA

ESTRUCTURA OBSERVADA _______________________________ AUMENTOS TOTALES




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PRACTICA No 2. APARATO REPRODUCTOR MASCULINO I.

1.- OBJETIVO: Identificar al M.O., la organización estructural del testículo fetal y adulto. 2.- MATERIAL: P.H. Testículo fetal. Testículo de adulto. 3.- DESARROLLO: Observar en el microscopio de acuerdo a las siguientes indicaciones y esquematizar

MATERIAL OBJETIVO OBSERVAR IDENTIFICAR

Testículo

Fetal.

40X

Cordones seminíferos

Tejido intersticial

Espermatogonias. Células de Sertoli. Células de Leydig.

Testículo Adulto.

40X

Tubos seminíferos Tejido intersticial

Epitelio germinativo. Células de Leydig. Túnica albugínea.

3.- REPORTE: Hoja de presentación y esquemas.

Identifique en el esquema las células que forman el túbulo seminífero.




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ESQUEMAS DE LAS OBSERVACIONES MICROSCÓPICAS.

LAMINILLA_________________

AUMENTO TOTAL___________

ESTRUCTURAS OBSERVADAS

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P.H._______________________



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PRACTICA No 3. APARATO REPRODUCTOR MASCULINO II.

1.- OBJETIVO: Identificar al M. O., las características de espermatozoides de diferentes mamíferos. 2.- MATERIAL: Frotis de: Semen humano. Semen de toro. Semen de rata. 3.- DESARROLLO: Observar en el microscopio de acuerdo a las siguientes indicaciones y esquematizar

LAMINILLA OBJETIVO OBSERVAR IDENTIFICAR

Frotis de semen

humano.

40X

Espermatozoide.

Cabeza. Acrosoma. Flagelo.

Frotis de semen de

toro.

40X

Espermatozoide.


Frotis de semen de

rata.

40X

Espermatozoide.


4.- REPORTE: Hoja de presentación y esquemas.

Identifique en el esquema las partes del espermatozoide humano.




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PRACTICA No 4. APARATO REPRODUCTOR FEMENINO I.

1.- OBJETIVO: Observar al M. O. La organización estructural del ovario de rata y del oviducto humano. 2.-MATERIAL: Laminilla de ovario de rata. Laminilla de oviducto humano. 3.- DESARROLLO: Observar en el microscopio de acuerdo a las siguientes indicaciones y esquematizar


Ovario de

rata.

10 X

Desarrollo folicular

en ovario.

Folículo preantral o joven. Folículo antral o maduro Cuerpo amarillo.

Oviducto.

40 X

Oviducto.

Pliegues de la mucosa tubaria con epitelio cilíndrico ciliado.

4.-REPORTE: Esquemas y cuadro con el eje hormonal Hipotálamo-Hipófisis –Ovario.




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PRACTICA No 5. CICLO SEXUAL FEMENINO.

1.- OBJETIVO: Observar al M. O., las características histológicas del endometrio progestacional, así como, las diferentes etapas del ciclo estral de rata. 2.- MATERIAL: Laminilla de endometrio. Laminillas del ciclo estral de rata. 3.-DESARROLLO: Observar en el microscopio de acuerdo a las siguientes indicaciones y esquematizar


Endometrio.

40X

Capa funcional del endometrio.

- Glándulas endometriales. - Tejido esponjoso.

Ciclo estral de

rata.

40X

Etapas del ciclo estral en

rata.

Proestro. Estro. Metaestro. Diestro.

REPORTE: Esquemas y un resumen relacionando el ciclo sexual femenino humano con el ciclo estral de rata.




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HIPOTÁLAMO

Identifique en el esquema:

a. Fase secretora. b. Adenohipófisis. c. FSH. d. Fase menstrual. e. LH. f. Estrógenos. g. Ovulación. h. Fase isquémica. i. Cuerpo amarillo. j. Folículos en desarrollo. k. Progestágenos. l. Cuerpo blanco. m. Fase proliferativa. n. GnRH.


LABORATORIO DE EMBRIOLOGÍA COMPARADA DE LOS CORDADOS


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PRACTICA No 6. DESARROLLO EMBRIONARIO I.

MORULA Y BLASTULA.

1.- DESARROLLO: Observar en el M. O. las características de las etapas tempranas del desarrollo, mórula y blástula. 2.- MATERIAL: Laminillas de: Mórula y blástula de peces. Blástula de anfibios. Blástula de aves. 3.- DESARROLLO: Observar en el microscopio de acuerdo a las siguientes indicaciones y esquematizar

LAMINILLA OBJETIVO OBSERVAR IDENTIFICAR Mórula y blástula

de peces.

10X

Mórula y blástula de pez.

Blastómeros. Zona pelúcida.

Blástula de

anfibios.

10X

Blástula de

anfibio.

Macrómeros. Micrómeros. Blastocele.

Blástula de ave.

10X

Blástula de ave.

Disco embrionario. Línea primitiva. Nódulo de Hensen.

4.-REPORTE: Hoja de presentación, esquemas y resumen que contenga las diferencias entre blástulas con tejidos accesorios y sin tejidos accesorios.




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PRACTICA No 7. DESARROLLO EMBRIONARIO II.

GASTRULA Y NEURULA. 1.- OBJETIVO: Observar al M. O. un corte transversal de embrión de pollo trilaminar

(gástrula) y un embrión de pollo y anfibio en bloque, en etapa de neurula. 2.-MATERIAL: Laminilla: Corte transversal de embrión de pollo. Neurula de anfibio en bloque. Neurula de pollo en bloque. 3.- DESARROLLO: Observar en el microscopio de acuerdo a las siguientes indicaciones y esquematizar

LAMINILLA OBJETIVO OBSERVAR IDENTIFICAR Corte transversal

de embrión de pollo.

40x

Gástrula de

pollo.

Surco neural. Somitas. Notocorda.

Neurula de anfibio

en bloque.

4x

Neurula.

Tubo neural. Vesículas ópticas.

Neurula de pollo en

bloque.

10x

Neurula.

Pliegues neurales.

Embrión de pollo en

bloque.

4x

Vesículas cerebrales y tubo neural

caudal.

Prosencéfalo, Mesencéfalo y Rombencéfalo. Tubo neural caudal.

4.-REPORTE: Hoja de presentación, esquemas y resumen donde explique las diferencias

de gastrulación y neurulación entre las blástulas esféricas y planas.




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Compare con su esquema del embrión de pollo en bloq ue e identifique en el esquema:

• Prosencéfalo. • Mesencéfalo. • Rombencéfalo. • Vesículas ópticas. • Neuroporo caudal. • Tubo neural caudal. • Somitas.




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PRACTICA No 8.

MEMBRANAS EXTRAEMBRIONARIAS.

1.- OBJETIVO. Identificar algunas membranas extraembrionarias como: saco vitelino, amnios y placenta.

2.-MATERIAL: Laminilla de placenta humana. Embriones de anfibio en bloque. Embriones y fetos humanos. 3.-DESARROLLO: Observar en el microscopio de acuerdo a las siguientes indicaciones y esquematizar

LAMINILLAS OBJETIVO OBSERVAR IDENTIFICAR Preparación de anfibio en bloque.

4x

Saco vitelino.

Saco vitelino.

Placenta humana.

40x

Vellosidades

coriales.

Trofoblasto, Mesénquima con células de Hoffbauer, Vasos coriales y Lagunas maternas.

Fetos humanos.

Amnios.

Bolsa Amniótica.

Observar el esquema de placenta: cara materna, cara fetal, cordón umbilical y saco corio-amniótico. 4.- RESUMEN: Hoja de presentación, esquemas y resumen de la importancia evolutiva de

las membranas extraembrionarias.




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P.H._______________________



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Identifique en los esquemas:

• Cordón umbilical. • Decidua basal. • Vasos coriales. • Corion frondoso. • Decidua capsular. • Cotiledones. • Cara fetal. • Decidua parietal. • Cara materna.




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PRACTICA No 9.

CARDIOVASCULAR.

1.- 0BJETIVO: Identificar al M.O., diferentes etapas en el desarrollo del tubo cardíaco. Identificar los circuitos circulatorios en el embrión y en el feto, y los cambios al nacimiento. 2.- MATERIAL: Preparación en bloque de embrión de pollo de 50- 55 hrs. Laminilla de corte sagital de embrión de cerdo. 3.- DESARROLLO: Observar en el microscopio de acuerdo a las siguientes indicaciones y esquematizar

LAMINILLA OBJETIVO OBSERVACION IDENTIFICACION

Embrión de pollo en bloque.

10X

Asa

bulboventricular.

Bulbus cordis. Ventrículo primitivo. Venas vitelinas.

Corte sagital de embrión de rata.

10X

Corazón.

Aurículas. Ventrículos. Tabique interauricular. Almohadillas endocardicas. Huevo de pollo (opcional).

Observar los modelos de desarrollo del corazón y es quemas de circulación embrionaria y fetal. 4.-REPORTE: Hoja de presentación y esquemas.




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P.H._______________________



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PRACTICA No 9 bis.

APARATO CIRCULATORIO II.

1.-OBJETIVO: Observar la circulación en embriones de pollo vivos. 2.- MATERIAL: Huevo de pollo fecundado. 3.- DESARROLLO:

a) Abrir cuidadosamente el huevo y sacar el disco embrionario con una espumadera. b) Colocar el embrión en una caja de petri con suero fisiológico tibio. c) Observar al microscopio el latido cardíaco y la circulación.

4.- REPORTE: Resumen en el que se describa la circulación mayor y menor. NOTA: La realización de esta práctica dependerá de la obtención de huevo fértil de granja




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PRACTICA No 10.

FARINGE.

OBJETIVO: Observar al M. O. un corte frontal de embrión de pollo identificando las estructuras de la faringe primitiva. Identificar en modelos de faringe primitiva: arcos, bolsas y surcos faríngeos, así como los primordios linguales. MATERIAL: Laminilla: Corte frontal de embrión de pollo. Modelos de faringe. DESARROLLO: Observar en el microscopio de acuerdo a las siguientes indicaciones y esquematizar


Corte frontal de embrión de

pollo.

10X

Faringe

primitiva.

Arcos faríngeos

lengua, cavidad oral y cavidad faríngea.

Embrión de pollo

en bloque. 4x Arcos

faríngeos. Arcos faríngeos.

Modelos de faringe.

Faringe primitiva.

Arcos, bolsas y surcos faríngeos.

Primordios linguales. 4.- REPORTE: Esquemas y cuadro sinóptico que contenga, primordios embrionarios de faringe y derivados de cada uno de ellos.




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P.H._______________________



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P.H._______________________



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PRACTICA No 11.

ORGANOGENESIS II. APARATOS Y SISTEMAS.

1.- OBJETIVO: Identificar algunos órganos en etapas embrionarias. 2.- MATERIAL: Laminilla: Corte sagital de embrión de cerdo. 3.- DESARROLLO: Observar en el microscopio de acuerdo a las siguientes indicaciones y esquematizar


Corte sagital de embrión de cerdo.

10X

Órganos embrionarios.

Lengua. Faringe. Corazón y sus cavidades. Hígado. Mesonefros. Columna vertebral.

Corte sagital de embrión de rata.

10x


Pulmón. Cavidad pleural. Corazón. Cavidad pericárdica. Hígado. Diafragma. Riñón. Glándula suprarrenal. Páncreas.

Cara 2 (rata 14d).

10x


Cartílago de Meckel. Diente en desarrollo. Lengua. Paladar. Fosas nasales.

4.- REPORTE: Esquemas y resumen en el que se describa brevemente, la etapa embrionaria en la que se inicia la organogénesis.




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P.H._______________________



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Compare el esquema con lo observado en la laminilla de cara 2 (rata).

Compare el esquema con lo observado en la laminill a del corte sagital de cerdo.




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PRACTICA No 12.

ORGANOGENESIS III. SISTEMA NERVIOSO Y ORGANOS DE LOS SENTIDOS.

1.- OBJETIVO: Identificar al M. O. las vesículas cerebrales primarias y secundarias, así como los primordios de ojo y oído. 2.- MATERIAL: Laminilla de corte sagital de embrión de pollo. Preparación en bloque de embrión de pollo de 40-50 hrs. 3.- DESARROLLO: Observar en el microscopio de acuerdo a las siguientes indicaciones y esquematizar


Corte sagital de embrión de

pollo.

10X

Vesículas cerebrales

Primarias y secundarias.

Primarias: Prosencéfalo, Mesencéfalo y Romboencéfalo. Secundarias: Telencéfalo, Diencéfalo, Mesencéfalo, Metencéfalo y Mielencéfalo.

Embrión de pollo en bloque.

10X

Primordio de ojo y oído.

Copa óptica, Cristalino y Vesícula ótica.

Corte transverso de embrión de

pollo.

10x

Ojo en desarrollo.

Párpados, Córnea, Cristalino y Retina.

4.- REPORTE: Esquemas y cuadro sinóptico señalando los derivados de las 5 vesículas cerebrales definitivas.




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P.H._______________________



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P.H._______________________



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Identifique en los siguientes esquemas cada una de las vesículas cerebrales.

Elaboró: M. en C. Guillermina Pallares Pallares M. en C. Guadalupe Cornejo Amador Dra. Alma Lilián Guerrero Barrera. Academia de Embriología.

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