Manual de Limpieza y Desinfección de Materiales e … · 2005. 6. 6. · 2.5. LAVADO MANUAL DEL...

Manual de

Limpieza y Desinfección de Materiales e Instrumental en

Quirófano

Nº 01/05

Nº de Versión / Modificación: 01/00

Fecha de Vigencia: 01/06/05

Normas & Procedimientos – Departamento de Información Hospitalaria

Número de Manual 01/05 Manual

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Fecha de Vigencia 01/06/05


Quirófano Código 189.MA.01

INDICE GENERAL INTRODUCCIÓN Objetivo Pag.3 Alcance Pag.3 Sectores Involucrados Pag.3 Definiciones Pag.3 DESARROLLO 1. Prelavado de Materiales Pag.4 1.1. Personal que lo realiza Pag.4 1.2. Lugar donde se realiza Pag.4 1.3. Bioseguridad Pag.4 1.4. Preparación de la solución utilizada Pag.4 1.5. Prelavado del material/instrumental Pag.5 2. Lavado Manual de Materiales Pag.6 2.1. Personal que lo realiza Pag.6 2.2. Lugar donde se realiza Pag.6 2.3. Bioseguridad Pag.6 2.4. Solución utilizada Pag.6 2.5. Lavado manual del material Pag.7 3. Lavado a Máquina de Cajas de Instrumental Pag.8 3.1. Personal que lo realiza Pag.8 3.2. Lugar donde se realiza Pag.9 3.3. Bioseguridad Pag.9 3.4. Preparación de la solución utilizada Pag.9 3.5. Lavado a máquina de cajas de instrumental Pag.10 4. Prelavado y Lavado de Artroscopios y Laparoscopios Pag.11 4.1. Personal que lo realiza Pag.11 4.2. Lugar donde se realiza Pag.11 4.3. Bioseguridad Pag.11

Reemplaza Aprobado por Revisor Normas y Procedimientos Página Nº Versión Nº Modific Fecha Firma Fecha Firma

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Reemplaza Revisor Aprobado por Normas y Procedimientos Página

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4.4. Preparación de la solución utilizada Pag.11 4.5. Prelavado y lavado de ópticas y cables de luz Pag.12 4.6. Prelavado de artroscopios y laparoscopios Pag.13 4.7. Lavado de artroscopios y laparoscopios Pag.13 5. Desinfección de Alto Nivel con Glutaraldehído al 2% Pag.14 5.1. Personal que lo realiza Pag.14 5.2. Lugar donde se realiza Pag.14 5.3. Bioseguridad Pag.15 5.4. Preparación de la solución utilizada Pag.15 5.5. Desinfección de alto nivel con Glutaraldehído al 2% Pag.15 6. Desinfección de Alto Nivel con Ortoftalaldehído al 0,55% Pag.16 6.1. Personal que lo realiza Pag.16 6.2. Lugar donde se realiza Pag.16 6.3. Bioseguridad Pag.16 6.4. Preparación de la solución utilizada Pag.17 6.5. Desinfección de alto nivel con Ortoftalaldehído al 0,55% Pag.17 7. Tratamiento de Materiales Potencialmente Contaminados con Priones Pag.18 7.1. Personal que lo realiza Pag.18 7.2. Lugar donde se realiza Pag.18 7.3. Bioseguridad Pag.18 7.4. Tratamiento de materiales potencialmente contaminados con priones Pag.18


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INTRODUCCIÓN Objetivo Reglamentar la operatoria para la correcta limpieza y desinfección de alto nivel de materiales e instrumental dentro del quirófano. Alcance El siguiente manual establece las pautas necesarias para poder realizar la correcta limpieza y desinfección de alto nivel de materiales e instrumental dentro del quirófano, contemplando la operatoria del prelavado de materiales, el lavado manual de los mismos, el lavado a máquina de cajas de instrumental, el prelavado y lavado de artroscopios y laparoscopios, la desinfección de alto nivel con glutaraldehído al 2%, la desinfección de alto nivel con ortoftalaldehído al 0,55%, y el tratamiento de materiales potencialmente contaminados con priones. Áreas Involucradas Dpto. de Cirugía, Comité de Infecciones, Esterilización, Quirófano Central, Quirófano de Ortopedia, Quirófano de UCA, Quirófano San Justo, Quirófano de Obstetricia, Quirófano Sector 6, Celit (Litotricia), Quirófano de Centro de la Mujer, Quirófano de Dermatología, y Consultorios de Cirugía (Donde se realicen Limpieza y Desinfección de Materiales e Instrumental). Definiciones Limpieza: Es la remoción de toda materia extraña. Ej: suciedad, materia orgánica de los objetos. Importante: La limpieza debe preceder los procesos de desinfección y esterilización. Esterilización: es el conjunto de operaciones destinadas a eliminar o matar todas las formas de los seres vivientes contenidos en un objeto o sustancia. Desinfección: es un proceso que elimina los microorganismos patógenos de los objetos inanimados con excepción de las esporas bacterianas. Decontaminación: es un proceso que remueve microorganismos patógenos de los objetos dejándolos seguros para su manipulación.


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DESARROLLO 1. Prelavado de Materiales 1.1. PERSONAL QUE LO REALIZA

Esta tarea debe ser realizada por el instrumentador, o por el enfermero circulante.

1.2. LUGAR DONDE SE REALIZA

El prelavado de materiales debe realizarse en el interior del quirófano, inmediatamente finalizada la cirugía.

Nota: Para material / instrumental que provenga de lugares externos a la institución, el proceso de prelavado, también deberá efectuarse antes del circuito de esterilización.

1.3. BIOSEGURIDAD

El personal que realice esta tarea debe estar provisto de camisolín con barrera, antiparras, barbijo y guantes domésticos gruesos (tipo Pirelli).

1.4. PREPARACION DE LA SOLUCION UTILIZADA

Con todos los detergentes enzimáticos homologados por el Hospital a utilizar, se deben respetar las indicaciones del fabricante para su dilución. Se deben tener en cuenta además, las siguientes consideraciones: • El agua debe tener una temperatura tibia. • Nunca se debe utilizar agua muy caliente en este paso. • No se deben utilizar bajo ningún concepto soluciones de antisépticos o desinfectantes

en reemplazo del detergente enzimático. • No se debe utilizar solución jabonosa de yodo povidona, clorexhidina, lavandina,

agua oxigenada o glutaraldehído para el prelavado del material.


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En la siguiente tabla se muestran, a modo de ejemplo, cómo se debe realizar la preparación de la solución, con tres marcas determinadas de detergente enzimático:

Marca de Detergente Enzimático

Agua en Batea (litros)

Detergente a utilizar (mililitros)

Para 1 LITRO 8 ML Para 4 LITROS 32 ML Para 6 LITROS 48 ML Para 8 LITROS 64 ML Para 10 LITROS 80 ML

DEB BACON AZUL (Preferentemente para Lavado

Manual) 1 PULSO CADA LITRO DE

AGUA Para 12 LITROS 96 ML

Para 1 LITRO 4 ML Para 4 LITROS 15 ML Para 6 LITROS 24 ML Para 8 LITROS 32 ML Para 10 LITROS 40 ML Para 12 LITROS 48 ML

HATAZU (RENALIFE) (Preferentemente para Lavado en

Máquina) 1 PULSO CADA 2 LTS DE

AGUA PARA MAQUINA 15 ML

DEB BACON VERDE (TETRAENZIMÁTICO)

1 PULSO CADA 2 LTS DE AGUA

Iguales Proporciones a HATAZU (RENALIFE)

1.5. PRELAVADO DEL MATERIAL/INSTRUMENTAL

El prelavado de materiales debe realizarse inmediatamente después de finalizada la intervención quirúrgica, respetando los siguientes pasos: • Se debe eliminar con compresa de gasa descartable la suciedad gruesa adherida al

material/instrumental. • Se debe desensamblar por completo el material/instrumental con más de una pieza. • Se deben retirar los restos de solución de Yodo-Povidona de los potes. • La batea con la solución de detergente enzimático recién preparada según las

especificaciones detalladas en el punto 1.4, se debe trasladar en carros hasta el quirófano, y sumergir inmediatamente en la misma el contenido íntegro de las cajas utilizadas.

• Se debe dejar en contacto durante un tiempo mínimo de 3 a 5 minutos.


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• La solución de detergente enzimático utilizada debe ser descartada una vez finalizado cada prelavado.

IMPORTANTE

Todo el material debe considerarse contaminado, provenga o no de pacientes con enfermedad infectocontagiosa declarada (ej: HIV, Hep.B). Por lo tanto se debe proceder con los mismos, de la forma descripta en este punto. 2. Lavado Manual de Materiales 2.1. PERSONAL QUE LO REALIZA

Esta tarea debe ser realizada por el instrumentador, por el enfermero circulante, o por el técnico de lavado.


El lavado de materiales debe realizarse en las piletas ubicadas en el Area de Lavado de los Quirófanos. En Quirófano Central, además, puede realizarse en el sector de pasillo interno.

2.3. BIOSEGURIDAD

Al igual que para el Prelavado, el personal que realice esta tarea debe estar provisto de camisolín con barrera, antiparras, barbijo y guantes domésticos gruesos (tipo Pirelli).

2.4. SOLUCION UTILIZADA

Se debe utilizar solución fresca de detergente enzimático. Con todos los detergentes enzimáticos homologados por el Hospital a utilizar, se deben respetar las indicaciones del fabricante para su dilución. Se deben respetar además las siguientes consideraciones: • El agua debe tener una temperatura tibia. • Nunca se debe utilizar agua muy caliente en este paso.


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• No se deben utilizar bajo ningún concepto soluciones de antisépticos o desinfectantes en reemplazo del detergente enzimático.

• No se debe utilizar solución jabonosa de yodo povidona, clorexhidina, lavandina, agua oxigenada o glutaraldehído para el prelavado del material.

En la siguiente tabla se muestran, a modo de ejemplo, cómo se debe realizar la preparación de la solución, con tres marcas determinadas de detergente enzimático:















2.5. LAVADO MANUAL DEL MATERIAL

El lavado de materiales debe realizarse inmediatamente después de finalizado el prelavado del mismo explicado en el punto 1. del presente Manual, respetando cada uno de los siguientes pasos:

• Lavado:

a. Se debe cepillar interna y externamente cada ítem con cepillo para lavado de manos quirúrgico o cepillo para lavado de materiales, bajo el nivel del agua siempre que sea posible, a fin de evitar salpicaduras, o bien bajo agua corriente de la canilla.


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b. Se debe trabajar con agua a una temperatura tibia. c. Los lúmenes plásticos y metálicos se deben jeringuear con la solución de detergente

enzimático a fin de remover eficientemente la suciedad. d. La caja contenedora debe lavarse también, a mano, utilizando la misma

solución de detergente enzimático. • Enjuagado:

a. Una vez finalizado el cepillado, se debe enjuagar bajo canilla con abundante agua corriente lo más caliente posible.

b. Deben enjuagarse los lúmenes con jeringa con agua corriente. • Secado:

a. Se debe escurrir y secar el material con paño limpio. b. Para facilitar el secado se puede agregar sobre los materiales solución de alcohol

70% (excepto en materiales de goma), dejando evaporar al aire, o bien utilizar aire comprimido filtrado.

c. Para tubuladuras y lúmenes se debe utilizar aire comprimido, ayudándose del agregado de alcohol 70% para facilitar la evaporación del agua.

Nota: El alcohol no interfiere con ninguno de los procedimientos de esterilización utilizados posteriormente (excepto en los materiales de goma). • Una vez finalizado el lavado:

a. Se deben descartar los cepillos para uñas descartables utilizados. b. En caso de haber utilizado cepillos de nylon o cerdas específicos para la limpieza

del material, se deben limpiar los mismos cuidadosamente con solución de detergente y dejar secar antes de un nuevo uso.

c. Se debe descartar la solución de detergente enzimático utilizada.

IMPORTANTE Todo el material debe considerarse contaminado, provenga o no de pacientes con enfermedad infectocontagiosa declarada (ej: HIV, Hep.B). Por lo tanto se debe proceder con los mismos, de la forma descripta en este punto.

3. Lavado a Máquina de Cajas de Instrumental 3.1. PERSONAL QUE LO REALIZA

Esta tarea debe ser realizada por el instrumentador o por el técnico de lavado.


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El lavado a máquina de Cajas de Instrumental debe realizarse en el Area de Lavado de los Quirófanos.

3.3. BIOSEGURIDAD



Con todos los detergentes enzimáticos homologados por el Hospital a utilizar, se deben respetar las indicaciones del fabricante para su dilución. En la siguiente tabla se muestran, a modo de ejemplo, cómo se debe realizar la preparación de la solución, con tres marcas determinadas de detergente enzimático:
















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Se deben respetar además las siguientes consideraciones: • El agua debe tener una temperatura tibia. • Nunca se debe utilizar agua muy caliente en este paso. • No se deben utilizar bajo ningún concepto soluciones de antisépticos o desinfectantes


agua oxigenada o glutaraldehído para el prelavado del material. 3.5. LAVADO A MAQUINA DE CAJAS DE INSTRUMENTAL

Una vez realizado el Prelavado del contenido de las Cajas de Instrumental debe realizarse el Lavado a Máquina del mismo, respetando los siguientes pasos:

• Se debe colocar el contenido completo de cada caja en las bandejas de la

máquina, independientemente de si se ha utilizado o no todo el instrumental. • Para ello se debe separar de la caja original cada una de las piezas, abriendo pinzas y

tijeras y desarmando el instrumental. Los objetos con concavidades, como potes, riñoneras, etc., se deben colocar sobre las bandejas de la máquina boca abajo (concavidad hacia abajo).

• Antes de accionar la máquina se debe verificar que la misma esté conectada a la línea eléctrica, que la canilla de agua esté abierta y que sea correcta la conexión al bidón de AMU 218.

• Se deben cargar 15 cc (quince) de detergente enzimático de baja espuma en el compartimiento para detergente.

• Una vez cargada la máquina se debe cerrar la puerta de la misma y se debe seleccionar uno de los siguientes programas:

a. Programa 2, ó ciclo corto. El tiempo total del ciclo es de 45 minutos. b. Programa 3, con una tijera ( 65°). El tiempo total del ciclo es de 74 minutos. c. Programas 4 ó 5, con dos o tres tijeras respectivamente ( 65°) y

( 70°). El tiempo total es de 85 y 94 minutos respectivamente.

• Una vez finalizado el ciclo, se debe abrir la máquina, retirar el material y volver la posición de la perilla a 0 (cero).

• Si por algún motivo el operador decidiera interrumpir el ciclo mientras la máquina está en funcionamiento, al cerrar de nuevo la máquina se debe dejar proseguir el proceso hasta el final. No se debe volver a cero en este caso la perilla, ya que quedaría jabón en la máquina sin desagotar. Si el accidente descripto ocurriera, se debe mantener apretado el botón START para que el equipo desagote el agua y finalice su actividad, momento en el que se enciende el botón END.


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• La caja contenedora debe lavarse también, a mano, en piletas del área de lavado, utilizando la misma solución de detergente enzimático.

IMPORTANTE

Todo el material debe considerarse contaminado, provenga o no de pacientes con enfermedad infectocontagiosa declarada (ej: HIV, Hep.B). Por lo tanto se debe proceder con los mismos, de la forma descripta en este punto. 4. Prelavado y Lavado de Artroscopios y Laparoscopios 4.1. PERSONAL QUE LO REALIZA

El prelavado de artroscopios y laparoscopios debe ser realizado por el instrumentador. El lavado de artroscopios y laparoscopios debe ser realizado por el instrumentador, por el auxiliar, o por el técnico de lavado.


El prelavado de artroscopios y laparoscopios debe realizarse en el interior del quirófano inmediatamente finalizada la cirugía. El lavado de artroscopios y laparoscopios debe realizarse en las piletas ubicadas en el Area de Lavado de los Quirófanos. En Quirófano Central, además, puede realizarse en el sector de pasillo interno.

4.3. BIOSEGURIDAD



Con todos los detergentes enzimáticos homologados por el Hospital a utilizar, se deben respetar las indicaciones del fabricante para su dilución. En la siguiente tabla se muestran, a modo de ejemplo, cómo se debe realizar la preparación de la solución, con tres marcas determinadas de detergente enzimático:


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Marca de Detergente

Enzimático Agua en Batea

(litros) Detergente a utilizar

(mililitros) Para 1 LITRO 8 ML

Para 4 LITROS 32 ML Para 6 LITROS 48 ML Para 8 LITROS 64 ML Para 10 LITROS 80 ML











Se deben respetar además las siguientes consideraciones: • El agua debe tener una temperatura tibia. • Nunca se debe utilizar agua muy caliente en este paso. • No se deben utilizar bajo ningún concepto soluciones de antisépticos o desinfectantes


agua oxigenada o glutaraldehído para el prelavado del material. 4.5. PRELAVADO Y LAVADO DE OPTICAS Y CABLES DE LUZ

El prelavado y lavado de las ópticas y cables de luz es conveniente efectuarlo separadamente del instrumental por tratarse de material delicado. Para ello se deben realizar los siguientes pasos:

• Se debe pasar solución de detergente enzimático por la superficie de las ópticas y

cables, utilizando un paño limpio descartable. • Se debe enjuagar con un paño limpio humedecido en agua o en alcohol 70%.


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• Los cables de fibra óptica se deben secar a mano utilizando un paño limpio descartable, con cuidado de no retorcer.

• Las ópticas se deben secar con compresa de gasa o tela limpia, utilizando la ayuda de alcohol 70%.

4.6. PRELAVADO DE ARTROSCOPIOS Y LAPAROSCOPIOS

El prelavado de Artroscopios y Laparoscopios debe realizarse inmediatamente después de finalizada la intervención quirúrgica, respetando los siguientes pasos:

• Se debe eliminar con paño descartable la suciedad gruesa adherida al material. (se

realiza en Quirófano) • Se debe desensamblar por completo el Artroscopio-Laparoscopio. • Colocar inmediatamente el instrumental en batea conteniendo solución de detergente

enzimático recién preparada en agua tibia corriente, según especificaciones detalladas en el punto 4.4.

• Dejar en contacto durante un tiempo de 3 a 5 minutos.

4.7. LAVADO DE ARTROSCOPIOS Y LAPAROSCOPIOS

El lavado de Artroscopios y Laparoscopios debe realizarse inmediatamente después de finalizado el prelavado del mismo explicado en el punto 4.6. del presente Manual, respetando cada uno de los siguientes pasos:

• Lavado:

a. Se debe cepillar interna y externamente con cepillo para lavado de manos quirúrgico de nylon o similar, bajo el chorro de agua corriente de la canilla.

b. Se debe trabajar con agua que no supere los 50° de temperatura (agua tibia). c. Los lúmenes se deben jeringuear con la solución de detergente enzimático a fin de

remover eficientemente la suciedad.

• Enjuagado: a. Una vez finalizado el cepillado, se debe enjuagar bajo canilla con abundante agua

corriente tibia. b. Deben enjuagarse los lúmenes con jeringa utilizando agua corriente.

• Secado:

a. Secar el material con paño limpio descartable.


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b. Para los lúmenes de las pinzas se debe utilizar aire comprimido filtrado, ayudándose del agregado de alcohol de 70% para facilitar la evaporación del agua.

Nota: El alcohol no interfiere con ninguno de los procedimientos de esterilización utilizados posteriormente.

• Una vez finalizado el lavado:

a. Se deben descartar los cepillos descartables utilizados. b. En caso de haber utilizado cepillos de nylon o cerdas específicos para la limpieza

del material, se deben limpiar los mismos cuidadosamente con solución de detergente y dejar secar antes de un nuevo uso.

c. Se debe descartar la solución de detergente enzimático utilizada. d. Se debe proceder a la desinfección de Laparoscopio y Artroscopio de acuerdo a lo

explicado en el punto 5. Desinfección de Alto Nivel con Glutaraldehído al 2%, del presente Manual.

e. Al final del día se deben enviar todos los Laparoscopios acondicionados para esterilización (vapor de agua-plasma de peróxido de hidrógeno) previo lavado de los mismos según lo indicado en el presente Manual.

IMPORTANTE Todo el material debe considerarse contaminado, provenga o no de pacientes con enfermedad infectocontagiosa declarada (ej: HIV, Hep.B). Por lo tanto se debe proceder con los mismos, de la forma descripta en este punto. 5. Desinfección de Alto Nivel con Glutaraldehído al 2% 5.1. PERSONAL QUE LO REALIZA

Esta tarea debe ser realizada por el instrumentador.


La desinfección de alto nivel con Glutaraldehído al 2 % debe realizarse en el quirófano. Se debe tomar la siguiente precaución: una vez finalizado el procedimiento de desinfección de alto nivel, se debe retirar inmediatamente la batea del quirófano y colocarla en un lugar seguro y libre de la circulación de las personas.


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5.3. BIOSEGURIDAD

El personal que realice esta tarea debe estar provisto de camisolín hidrorrepelente, antiparras, barbijo y doble par de guantes estériles.


• Se debe agregar al bidón original de glutaraldehído el contenido entero de activador,

cerrar el bidón con la tapa y agitar bien. • Se debe volcar la solución obtenida de glutaraldehído al 2 % en una cubeta plástica

con tapa suministrada por el proveedor, o en cualquier cubeta plástica opaca con tapa. • No se deben utilizar cubetas metálicas. • Se debe identificar la cubeta con la fecha de preparación de la solución.

5.5. DESINFECCION DE ALTO NIVEL CON GLUTARALDEHIDO AL 2 %

La desinfección de alto nivel con Glutaraldehído al 2 % debe realizarse luego de la limpieza y secado del material, y no debe en ninguna forma suplantar a la misma. Se debe utilizar exclusivamente sobre endoscopios cuando no sea posible su esterilización. Se deben respetar los siguientes pasos: • Se deben colocar los instrumentos lavados y secos, completamente desarmados, en la

solución de glutaraldehído al 2 % preparada en base a lo indicado en el punto 5.4. del presente Manual.

• Se debe dejar en inmersión durante un tiempo mínimo de 30 minutos. • Pasados los 30 minutos como mínimo, se debe trasladar el material desinfectado a la

batea estéril de enjuague que debe contener agua de irrigación estéril, sumergir completamente el material durante un tiempo mínimo de 1 minuto y enjuagar los lúmenes de los endoscopios con jeringa a presión con agua de irrigación estéril.

• Finalizada la inmersión se debe enjuagar toda la superficie del endoscopio por arrastre con agua de irrigación, utilizando para ello un volumen de 2 litros. En el caso de endoscopios flexibles, la cantidad de agua de irrigación estéril a pasar por los canales debe ser de 500 ml. En endoscopías gástricas y rectoscopías puede realizarse el enjuague con agua corriente controlada. Se debe evitar usar solución fisiológica estéril en el enjuague por la acción corrosiva de los iones cloruros sobre el metal de los instrumentos.


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• Se debe secar cuidadosamente con paño o compresa de gasa estéril y utilizar inmediatamente el material.

• La solución utilizada se debe conservar tapada por un máximo de 14 días. Cada tres días como mínimo se debe evaluar la concentración efectiva de la solución utilizando para ello las tiras reactivas suministradas por el proveedor del glutaraldehído. Debe descartarse la solución en caso de hallarse valores inferiores a 1,5 %, aunque no hayan transcurrido aún los 14 días de preparada.

• Todos los endoscopios que no puedan ser esterilizados por los métodos disponibles en la Institución deben ser sometidos a desinfección de alto nivel

IMPORTANTE Todo el material a desinfectar debe considerarse contaminado, provenga o no de pacientes con enfermedad infectocontagiosa declarada (ej: HIV, Hep.B). Por lo tanto se debe proceder con los mismos, de la forma descripta en este punto. 6. Desinfección de Alto Nivel con Ortoftalaldehído al 0,55% 6.1. PERSONAL QUE LO REALIZA

Esta tarea debe ser realizada por el instrumentador.


La desinfección de alto nivel con Ortoftalaldehído al 0,55 % debe realizarse en el quirófano. Se debe tomar la siguiente precaución: una vez finalizado el procedimiento de desinfección de alto nivel, se debe retirar inmediatamente la batea del quirófano y colocarla en un lugar seguro y libre de la circulación de las personas.

6.3. BIOSEGURIDAD

El personal que realice esta tarea debe estar provisto de camisolín descartable hidrorrepelente, antiparras, barbijo y doble par de guantes estériles.


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• Se debe verter la solución de ortoftalaldehído al 0,55 % en una cubeta plástica con tapa suministrada por el proveedor, o en cualquier cubeta plástica opaca con tapa.

• No se deben utilizar cubetas metálicas. • Se debe identificar la cubeta con la fecha de preparación de la solución.

6.5. DESINFECCION DE ALTO NIVEL CON ORTOFTALALDEHIDO AL 0,55 %

La desinfección de alto nivel con Ortoftalaldehído al 0,55 % debe realizarse luego de la limpieza y secado del material, y no debe en ninguna forma suplantar a la misma. Se debe utilizar exclusivamente sobre endoscopios cuando no sea posible su esterilización. Se deben respetar los siguientes pasos: • Se deben colocar los instrumentos lavados y secos, completamente desensamblados,

en la solución de ortoftalaldehído al 0,55 % preparada en base a lo indicado en el punto 6.4. del presente Manual.

• Se debe dejar en inmersión durante un tiempo mínimo de 12 minutos. • Pasados los 12 minutos como mínimo, se debe trasladar el material desinfectado a la

batea de enjuague que debe contener agua de irrigación estéril, sumergir completamente el material durante un tiempo mínimo de 1 minuto y enjuagar los lúmenes de los endoscopios con jeringa a presión con agua de irrigación estéril.

• Finalizada la inmersión se debe enjuagar toda la superficie del endoscopio por arrastre con agua de irrigación, utilizando para ello un volumen de 2 litros. En el caso de endoscopios flexibles, la cantidad de agua de irrigación estéril a pasar por los canales debe ser de 500 ml. En endoscopías gástricas y rectoscopías puede realizarse el enjuague con agua corriente controlada. Se debe evitar usar solución fisiológica estéril en el enjuague por la acción corrosiva de los iones cloruros sobre el metal de los instrumentos.

• Se debe secar cuidadosamente con paño o compresa de gasa estéril y utilizar inmediatamente el material.

• La solución utilizada se debe conservar tapada por un máximo de 14 días. Cada tres días como mínimo se debe evaluar la concentración efectiva de la solución utilizando para ello las tiras reactivas suministradas por el proveedor del ortoftalaldehído. Debe descartarse la solución en caso de hallarse valores inferiores a 0,4 %, aunque no hayan transcurrido aún los 14 días de preparada.

• Todos los endoscopios que no puedan ser esterilizados por los métodos disponibles en la Institución deben ser sometidos a desinfección de alto nivel.


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IMPORTANTE Todo el material a desinfectar debe considerarse contaminado, provenga o no de pacientes con enfermedad infectocontagiosa declarada (ej: HIV, Hep.B). Por lo tanto se debe proceder con los mismos, de la forma descripta en este punto. 7. Tratamiento de Materiales Potencialmente Contaminados con Priones 7.1. PERSONAL QUE LO REALIZA

Esta tarea debe ser realizada por el instrumentador, por el enfermero circulante o por el técnico de lavado.


El tratamiento de materiales potencialmente contaminados con priones, debe realizarse en las piletas ubicadas en el Area de Lavado de los Quirófanos, como así también en el Sector Esterilización.

7.3. BIOSEGURIDAD


7.4. TRATAMIENTO DE MATERIALES POTENCIALMENTE CONTAMINADOS

CON PRIONES

Para intervenciones en pacientes presuntivos o confirmados con infección por priones, se debe utilizar, siempre que sea posible, elementos descartables. De no ser posible, se debe proceder de la siguiente manera: • Finalizada la intervención, se debe lavar el material contaminado con idéntico

procedimiento que el empleado para todo el instrumental quirúrgico.


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• Se debe seguir lo indicado en el punto 1. Prelavado de Materiales del presente Manual.

• Se debe mantener húmedo el instrumental. No se debe secar. • A continuación se debe trasladar la batea tapada con el instrumental contaminado,

rotulado como ¨MATERIAL CONTAMINADO CON PRIONES¨, hasta el área de lavado de Quirófanos.

• Se debe comunicar al servicio de Esterilización. • El personal de Esterilización debe someter el material al siguiente procedimiento en el

área de lavado de Quirófanos: ♦ Inmersión en solución de NaOH 1 N por un tiempo mínimo de 1 hora.

• A continuación el personal de Esterilización debe escurrir el material sin secar y

trasladar el mismo en contenedor cerrado hasta Esterilización, donde se debe someter el material a tres ciclos consecutivos de esterilización en autoclave para inactivar priones. Condiciones de tratamiento:

CICLO TEXTILES = 1340 C 10 MINUTOS. Se debe descartar el líquido utilizado en el prelavado y en la desinfección química.

• El material retorna a Quirófano en contenedor cerrado para efectuar un lavado de rutina, tomando idénticas precauciones barrera y metodología que para cualquier material, de acuerdo a lo descripto en el punto 2. Lavado Manual de Materiales, del presente Manual.

• En Quirófano se debe empacar para su esterilización definitiva acorde con el proceso de rutina recomendado para ese material (estufa calor seco-vapor de agua, etc.).

• Se debe enviar el material a Esterilización para su esterilización definitiva.

IMPORTANTE Todo el material a debe considerarse contaminado, provenga o no de pacientes con enfermedad infectocontagiosa declarada (ej: HIV, Hep.B). Por lo tanto se debe proceder con los mismos, de la forma descripta en este punto.

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