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SILVICULTURA DE PLANTACIONES FORESTALES EN COLOMBIA

ARMANDO VASQUEZ VICTORIA

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SILVICULTURA DE PLANTACIONES FORESTALES EN COLOMBIA

ARMANDO VASQUEZ VICTORIA

UNIVERSIDAD DEL TOLIMA FACULTAD DE INGENIERÍA FORESTAL

IBAGUÉ – TOLIMA 2001

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INTRODUCCIÓN

La reforestación en Colombia ha tenido varios ciclos, los cuales han ido de una etapa inicial en los años 50’s, donde se reforestó con fines protectores y ornamentales como ocurrió en los acueductos de Bogotá, Medellín y Cali, donde se plantaron especies introducidas, que permitieron aproximaciones iniciales al proceso de producción industrial. En la década de los 60’s, Cartón de Colombia inicia los programas de reforestación industrial para abastecer las necesidades de su empresa, iniciando al mismo tiempo programas de investigación con pinos, cipreses y eucaliptos que han arrojado aportes importantes al desarrollo de este sector en el país. Con la creación del INDERENA en 1968 y CONIF en 1974 se comenzó por parte del gobierno nacional una fase de desarrollo e investigación forestal en la producción de semillas, material de viveros y plantaciones forestales. El Ministerio de Desarrollo Económico y el sector privado formularon en 1976 “El plan indicativo de pulpa, papel y cartón” que permitió que la reforestación industrial alcanzara las 1.100 ha. /año para abastecer la industria papelera. A comienzos de los años 80 y hasta 1986 se alcanzó el mayor auge de la reforestación en el país, con un promedio de 27.100 ha./año, debido a los incentivos tributarios y fiscales que fueron otorgados a esta actividad económica, pero desafortunadamente parte de estos recursos fueron desviados a otras actividades. En el período 1983 – 1985 la reforestación bajó a 9.600 ha./año, y de 1986 – 1988 a 4.800 ha./año. Esta caída en el área reforestada a finales de la década de los 80’s y comienzos de los 90’s coincide con la apertura económica y la liberación de los mercados, con estas nuevas políticas se eliminan los subsidios y los intereses de los créditos para esta inversión a largo plazo, se equiparan actividades como la agricultura, la industria y el comercio que son de mediano y corto plazo. Sin embargo, esta década permite importantes avances en la investigación y nuevas tecnologías en este campo. Producto de los análisis y diagnósticos realizados por parte de entidades como el IGAG, INDERENA, ICA, se han podido identificar en el país un total de 2.7 millones de hectáreas potencialmente reforestables, localizadas en diferentes zonas del territorio nacional, sin embargo a corto plazo sólo 1.1 millones de hectáreas se identifican como apropiadas para ampliar estas actividades ubicadas sobre todo en la zona andina: Antioquia, Cauca, Valle del Cauca, Viejo Caldas, Tolima, Santanderes y Llanos Orientales; que deberán ser la base para un auge del desarrollo forestal.

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Hasta ahora la superficie reforestada en Colombia según el ZIF (Establecimiento e Implantación de un Sistema de Información Estadístico Forestal), alcanza las 350.064 ha. de las cuales 204.305 ha se han realizado con fines de recuperación y protectores, y 145.759 ha. tienen fines industriales; dentro de estas últimas, las especies más utilizadas son: Pinus pátula con un área de 53.197 ha, Eucalyptus grandis con 15.265 ha., Pinus caribaea con 10.365 ha., Cupressus lusitánica con 9.982 ha., Gmelina arbórea con 5,083 ha., Tabebuia rosea con 3.988 ha. y Tectona grandis con 3.501 ha. Los desarrollos actuales de la silvicultura, las plantaciones forestales y la investigación apuntan hacia el mejoramiento genético de los árboles, con el fin de lograr mayores crecimientos, mejor calidad de la madera, resistencia a plagas y enfermedades y mayor adaptabilidad según la especie y su procedencia en las distintas zonas de reforestación. En ese marco general se ha querido con esta publicación responder a las necesidades de contar una herramienta documental que recoja y aporte los avances más importantes de las plantaciones forestales en Colombia. En él se identifican los procesos de selección de fuentes semilleros, la recolección, manejo y procesamiento de las semillas, el establecimiento y manejo de los viveros forestales, las técnicas de propagación asexual, manejo clonal e injertos; además de la selección y preparación de sitios para plantación, el establecimiento, manejo y protección de las cosechas forestales.

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CONTENIDO Pág. INTRODUCCIÓN CAPITULO I 19 1. SEMILLAS 20 1.1 FUENTES DE PRODUCCIÓN DE SEMILLAS 20 1.1.1 Selección de árboles semilleros. 21 1.1.1.1 Marcación de árboles semilleros: 22 1.1.1.2 Objeto de la elección 22 1.1.2 Rodales semilleros 23 1.1.3 Huertos semilleros 24 1.1.4 Ensayos de progenie 25 1.2 HÁBITOS DE FLORACIÓN Y FRUCTIFICACIÓN 26 1.3 FRUTO 28 1.3.1 Frutos verdaderos 29 1.3.2 Frutos pulposos o carnosos 29 1.3.3 Frutos secos 29 1.4 SEMILLA 30 1.4.1 Recolección, extracción y manejo de las semillas 30 1.4.2 Extracción, limpieza y cuidados de las semillas 33 1.4.3 Limpieza de las semillas 36 1.4.4 Almacenamiento de las semillas 41 1.4.4.1 Temperatura 41 1.4.4.2 Humedad 42 1.4.4.3 Envases 44 1.5 GERMINACIÓN 44 1.5.1 Agua 45 1.5.2 Aire 46 1.5.3 Temperatura 46 1.5.4 Luz 47 1.6 ANÁLISIS DE SEMILLAS FORESTALES 48 1.6.1.1 Toma de muestras 49 1.6.1.2. Toma de la muestra media 49 1.6.1.3. Cantidades mínimas de semillas para el análisis 52 1.6.2 Análisis de pureza 53 1.6.2.1 Semillas puras 53 1.6.2.2 Semillas de otras especies 53 1.6.2.3 Materias inertes 54 1.6.2.4 Otras materias inertes 54 1.6.2.5 Metodología 54 1.6.2.6 Cantidad de semilla necesaria para el análisis de pureza 55 1.6.3 Ensayo de Germinación 56 1.6.3.1.1 Condiciones para el ensayo de germinación 58

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1.6.3.1.2 Sustratos 59 1.6.3.1.3 Valoración de las plántulas 59 1.6.3.2 Métodos Indirectos (para porcentaje de germinación) 60 1.6.4 Determinación de la humedad 61 1.6.4.1 Método 63 1.6.4.2 Molido 63 1.6.4.3 Aparatos utilizados 64 1.6.5 Determinación del peso (peso de mil granos) 65 CAPÍTULO II 66 2. VIVERO 67 2.1 UBICACIÓN DEL SITIO ADECUADO 70 2.1.1 Área de distribución de los arbolitos. 70 2.1.2 Condiciones del suelo y fertilidad 71 2.1.3 Abastecimiento de agua 71 2.1.4 Topografía 72 2.1.5 Especies a propagar 72 2.2 DISEÑO Y CONSTRUCCIÓN DEL VIVERO 73 2.2.1 Elaboración de planos 73 2.2.2 Tamaño del vivero 73 2.3 TRAZADO Y DISTRIBUCIÓN 79 2.3.1 Fosa para composte o estiércol artificial 80 2.3.1.1 Pasos para construir la fosa y preparar el composte 82 2.3.2 Sección de germinación 82 2.3.2.1 Germinadores o semilleros 83 2.3.2.2 Cajas de germinación 84 2.3.2.3 Otros recipientes de germinación 84 2.3.3 Umbráculos o enramadas 88 2.3.4 Sistema de drenaje (zanjas y canales) 90 2.3.5 Sistemas de riego 91 2.3.5.1 Riego superficial 91 2.4 PREPARACIÓN DEL SITIO PARA EL VIVERO 94 2.5 DESINFECCIÓN DEL SUELO 95 2.5.1 Tratamientos a la semilla 95 2.5.2 Tratamientos al suelo (métodos físicos) 96 2.5.3 Tratamientos al suelo (métodos químicos) 96 2.6 SIEMBRA DE LAS SEMILLAS 97 2.6.1 La profundidad 101 2.6.2 La densidad 102 2.7 MÉTODO DE SIEMBRA 104 2.7.1 Recipientes para la siembra de la semilla 107 2.8 ÉPOCA DE SIEMBRA 108 2.9 CUIDADOS POSTERIORES A LA SIEMBRA DE LA SEMILLA 109 2.9.1 Riego 109 2.9.2 Control de plantas indeseables (malezas) 110 2.10 ENFERMEDADES QUE PRODUCEN PODREDUMBRE 111

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2.11 CONTROL DE ENFERMEDADES POR HONGOS 111 2.12 PROTECCIÓN CONTRA INSECTOS 118 2.13 NUTRICIÓN DE LAS PLÁNTULAS 118 2.14 TRANSPLANTE 125 2.15 ÉPOCA DE TRANSPLANTE Y TAMAÑO DE LAS PLÁNTULAS 125 2.16 CUIDADOS 126 CAPÍTULO III 129 3. PLANTACION FORESTAL 130 3.1 SISTEMA DE PRODUCCIÓN FORESTAL 130 3.2 SELECCIÓN DE ESPECIES FORESTALES 132 3.2.1 Propósito o finalidad de la plantación 134 3.2.1.1 Características de cada propósito 135 3.2.1.1.1 Propósitos industriales (combustibles) 135 3.2.1.1.2 Propósitos industriales (aserrío) 136 3.2.1.1.3 Propósitos industriales (pulpa y papel) 136 3.2.1.1.4 Protección ambiental 137 3.2.1.1.5 Plantaciones forestales con fines recreativos, paisajísmo, sombra,

refugio, alimentación de fauna y vida silvestre 138 3.2.2 El sitio y su clasificación 139 3.2.2.1 Clima 140 3.2.2.2 Balance de agua 141 3.2.2.3 Temperatura 143 3.2.2.4 Suelo 144 3.2.2.5 Profundidad del suelo 144 3.2.2.6 Estructura física 144 3.2.2.7 Fertilidad 145 3.2.2.8 Otros factores 145 3.2.2.9 Factores bióticos 145 3.2.2.10 Clasificación de los sitios 146 3.2.3 La plasticidad o adaptabilidad 149 3.2.3.1 Adaptabilidad de especies 151 3.2.3.1.1 Fase arboretum 152 3.2.3.1.2 Fase eliminatoria 152 3.2.3.1.3 Fase puesta a prueba 152 3.2.3.1.4 Fase de comprobación de especies 153 3.2.3.1.5 Fase piloto 153 3.3 TÉCNICAS SILVICULTURALES 155 3.3.1 Preparación del terreno 155 3.3.1.1 Las condiciones del terreno 156 3.3.1.2 Las especies a plantar 156 3.3.2 El sitio y las condiciones ecológicas 157 3.3.3 Métodos manuales 158 3.3.3.1 Estaciones cubiertas de gramíneas o arbustos 158 3.3.3.2 Estaciones con cubiertas de matorrales o árboles 159 3.3.3.3 Aclareo en fajas o líneas 160

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3.3.4 Mecanización y métodos mecanizados 160 3.3.4.1 Ventajas y desventajas para la preparación mecanizada 161 3.3.4.2 Eficiencia de costos 161 3.3.4.4 Oportunidad y calidad 161 3.3.4.5 El laboreo mecanizado previo a la plantación 162 3.3.4.6 Laboreo en fajas 163 3.3.4.7 Laboreo total 164 3.3.4.8 Arado de desmonte 164 3.3.4.9 Gradeo o rastrillada 165 3.3.4.10 Subsolado o desfonde 165 3.3.5 Métodos químicos 166 3.3.5.1 Los principales herbicidas utilizados en la silvicultura: 168 3.3.5.2 Ejemplos de prácticas comunes de preparación del terreno para la

disminución de malezas 170 3.3.6 Trazado de plantación 172 3.3.6.1 Espaciamiento inicial en relación al establecimiento de plantaciones 173 3.3.6.2 Consecuencias de espaciamientos amplios 176 3.3.7 Distribución de las plantaciones 178 3.3.8 Cálculo del número de plantas 180 3.4 MÉTODOS DE PLANTACIÓN 182 3.4.1 Plateo repicado 182 3.4.2 Época de plantación 188 3.5 MANTENIMIENTO DE LA PLANTACIÓN 189 3.5.1 Plantación de reposición 190 3.5.2 Control de malezas o deshierbe 192 3.5.3 Fertilización Forestal 196 3.5.3.1 Suministro de nutrientes 198 3.5.3.2 Pérdida de nutrientes 199 3.5.3.3 Nutrientes esenciales para los árboles 199 3.5.3.4 Balance de nutrientes 200 3.5.3.5 Ensayos con fertilizantes 201 3.5.3.6 Análisis foliar 201 3.5.3.8 Aplicación de fertilizantes 201 3.5.3.9 La nutrición de los árboles 203 3.5.3.10 Plantas mejoradoras del suelo 204 3.5.3.11 Fertilización 204 3.5.4 Control de insectos y patógenos 209 3.5.5 Poda 218 3.5.5.1 La copa y los nudos de la madera 218 3.5.5.2 Efectos de los árboles ramificados 218 3.5.5.3 Características de los nudos 218 3.5.5.4 Manejo para corregir la ramificación 220 3.5.5.5. Poda natural 222 3.5.5.6 Poda artificial 223 3.5.5.7 Iniciación de las podas 224 3.5.5.8 Intensidad de la poda 226

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3.5.5.9 Operación de la poda 231 3.5.6 Aclareos y raleos 232 3.5.6.1 Crecimiento de los rodales 232 3.5.6.2 Relación incremento total e “incremento comercial ” 233 3.5.6.3 Relación incremento total densidad (espesura) 234 3.5.6.4 Objetivos del clareo 234 3.5.6.5 El raleo orientado hacia el logro del óptimo económico 235 3.5.6.6 Definición y objetivo 236 3.5.6.7 Consideraciones generales sobre el raleo 238 3.5.6.8 El momento para el primer raleo 238 3.5.6.9 Métodos de raleo 239 3.5.6.9.1 Raleo por clases 239 3.5.6.9.2 Raleo sistemático, mecánico o linear 240 3.5.6.9.3 Raleo selectivo 241 3.5.6.9.4 Raleo por lo bajo 241 3.5.6.9.5 Raleo de copa (raleo por arriba) 242 3.5.6.9.6 Raleo numérico 242 3.5.6.9.7 Raleo con base al área basimétrica: Tamaño 244 3.5.6.9.8 Raleo basado en el índice de espacimiento relativo 245 3.5.6.9 Experiencias de raleo 249 3.5.7 Micorrizas 252 3.5.7.1 Tipos de micorrizas 253 CAPÍTULO IV 259 4. PROPAGACIÓN VEGETATIVA 260 4.1 PROPAGACIÓN VEGETATIVA EN ÁRBOLES FORESTALES 260 4.1.1 Definición. 260 4.1.2 Objetivos de la propagación vegetativa en el mejoramiento genético. 260 4.2 MÉTODOS DE PROPAGACIÓN VEGETATIVA 261 4.2.1 Definición y generalidades 261 4.2.2 Propagación vegetativa por medio de estacas 261 4.2.3 Importancia y ventajas de la propagación por estacas 262 4.2.4 Tipos de estacas 263 4.2.5 Estacas del tallo 264 4.2.5.1 Estacas de madera dura 264 4.2.5.2 Estacas de madera dura (especies de hojas pequeñas) 265 4.2.5.3 Estacas de madera semidura 266 4.2.5.4 Estacas de madera blanda 267 4.2.6 Las plantas como fuente de material para estacas 268 4.2.7 Setos 268 4.2.8 Las condiciones del medio para el enraizamiento 269 4.2.9 Condiciones climáticas 269 4.2.10 Tratamiento de las estaquillas con auxinas 269 4.3 INJERTOS 271 4.3.1 Factores que influyen en el injerto 272 4.3.2 Especies a injertar 272

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4.3.3 El estado fisiológico 272 4.3.4 Condiciones ambientales 272 4.3.5 Formación de la unión del injerto 273 4.3.6 Tipos de injertos 274 4.4 LA MICROPROPAGACIÓN 283 4.4.1 Árboles mejorados 285 BIBLIOGRAFIA 287

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LISTA DE TABLAS

Pág. Tabla No. 1. Resumen. Procesamiento de frutos y semillas de algunas

especies típicas 38

Tabla No. 2 Cantidad de semilla necesaria para el análisis de pureza 56 Tabla No. 3 Manejo de vivero para especies forestales según técnicas

de siembra y transplante 98

Tabla No. 4 Problemas fitosanitarios detectados en viveros forestales 113 Tabla No. 5 Principales Plagas forestales de viveros encontradas en

Colombia 119

Tabla No. 6 Los principales productos del bosque 139 Tabla No.7 Resumen del procedimiento de investigación para los

ensayos de adaptación de especies forestales 154

Tabla No. 8 Distancias utilizadas en plantaciones forestales, en los países tropicales

174

Tabla No. 9 Relación de nutrientes en la hojarasca y el humus debajo de una plantación de Pinus radiata de 16 años

196

Tabla No. 10. Suministro Relativo de nutrientes de cinco fuentes en una plantación de Pinus taeda de 20 años de edad

197

Tabla No. 11. Peso de la materia orgánica en la hojarasca debajo de plantaciones de cuatro especies de coníferas en el altiplano de Popayán*

198

Tabla No. 12 Dosis de fertilizantes en gramos/árbol recomendadas para las coníferas en el Valle y el Cauca al momento de la plantación

207

Tabla No. 13 Plagas forestales 210 Tabla No. 14 Problemas fitosanitarios en plantaciones 215 Tabla No. 15 Programas de Podas para Coníferas en el Trópico 230 Tabla No. 16. Podas en Plantaciones Forestales 230 Tabla No. 17 Regímenes de Clareo Africa del Sur

244

Tabla No. 18 Relación entre número de árboles por Ha. y el promedio de las distancias entre los árboles. (Suponiendo un espaciamiento triangular regular)

247

Tabla No. 19 Modelo de manejo silvicultural de plantaciones en Safi (Surafrica)

250

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LISTA DE FIGURAS

Pág. Figura No. 1 Árbol semillero de Gmelia Arbórea 22 Figura No. 2. Rodal Semillero de Pinus tecunumanii. Cartón de Colombia,

Popayán 24

Figura No. 3. Huerto semilliero de Cupressus lusitanica. Cartón de Colombia, Popayán

25

Figura No..4 Plan de Mejoramiento genético de Cipres (Cupressus lusitanica para dos generaciones

27

Figura No. 5. Factores que influyen en la floración de los árboles 28 Figura No. 6 Frutos de Bombacopsis quinata 29 Figura No. 7. Transporte de frutos de Gmelina arborea 30 Figura No. 8 Partes internas de la semilla de Tabebuia rosea. 31 Figura No. 9 Métodos de recolección 32 Figura No. 10 Equipo básico para la recolección de semillas 32 Figura No. 11 Equipo de extensión para recolectar semillas 33 Figura No. 12 Paseras para el secado de conos de Pinus patula. Cartón de

Colombia, Yumbo (Valle) 34

Figura No. 13 Secado y separación de conos de Pinus patula. Cartón de Colombia, Yumbo (Valle)

34

Figura No. 14 Biombo para desprender las alas de las semillas de Pinus patula 35

Figura No. 15 Procesamiento de frutos de Gmelina arborea en una despulpadora. Zambrano (Bolivar)

36

Figura No. 16 Limpieza de semillas con ventilador 39

Figura No. 17 Limpieza de semillas por ventilador. Cartón de Colombia, Yumbo (Valle)

40

Figura No. 18 Clasificación de semillas por un separador con corriente de aire. Cartón de Colombia, Yumbo (Valle)

40

Figura No. 19 Separación de semillas en la especie Bombacopsis quinata 40 Figura No. 20 Patio de secado de semillas de la especie Ceiba roja

(Bombacopsis quinata) 42

Figura No.21 Cuarto almacenamiento de semillas y recipientes plásticos utilizados

43

Figura No. 22 Principales factores que activan la germinación 45 Figura No. 23. Secuencia de la germinación y desarrollo del Calophyllum

mariae 47

Figura No. 24 Partidor de semillas para uniformizarlas. Laboratorio ICA, Ibagué 50 Figura No. 25 Partidor de semillas para la uniformización. Laboratorio ICA,

Ibagué 51

13

Pág. Figura No: 26 Sondas para toma de muestras de semillas 52 Figura No. 27 Lupa para separar semillas 55 Figura No. 28 Germinador 62 Figura No. 29 Germinadores tipo estufa 62 Figura No. 30 Germinador de semillas tipo estufa 62 Figura No. 31 Determinadores de humedad. Digital y eléctrico 64 Figura No. 32 Vivero temporal. Granja Las Brisas 68 Figura No. 33 Vivero forestal permanente, Restrepo (v), Cartón de Colombia 69

Figura No. 34 Vivero Forestal y sus respectivas construcciones 69 Figura No. 35 Vivero Forestal en Restrepo (Valle), Cartón de Colombia 70 Figura No. 36 Croquis de un Vivero Forestal 81 Figura No. 37 Bandejas de cubetas levantadas sobre el suelo. Vivero Restrepo

(Valle) 83

Figura No. 38 Manipulación de cubetas de germinación con Eucaliptos grandis. Vivero Restrepo(V)

85

Figura No. 39 Cubetas de germinación de varios tamaños 85 Figura No. 40 Cubetas de germinación con Bombacopsis quinata 85 Figura No. 41 Direccionamiento de las raíces en plántulas germinadas en

tubetes 86

Figura No. 42 Plántulas de Gmelina arbórea en Jiffy 86 Figura No. 43 Eucalytus grandis sembrado en Jiffy 87 Figura No. 44 Sistemas para: Germinación, Propagación y Enraizamiento 87 Figura No. 45 Comprimidos de Jiffy antes y después de la germinación 88 Figura No. 46 Enramada para el transplante de árboles. Granja Armero (U.T.) 89 Figura No. 47 Transplante de árboles Granja Armero (U.T.) 90 Figura No. 48 Sistema de riego por aspersión 93 Figura No. 49 Aspersor en funcionamiento en vivero de Zambrano, Bolivar.

(Pizano S.A). 93

Figura No. 50 Vivero forestal siembra de semilla y preparación de pseudoestacas

101

Figura No. 51 Trazado en líneas de un vivero forestal 106 Figura No. 52 Trazado en líneas de un vivero Forestal 106 Figura No. 53 Trazado sobre la era de germinación, para semillas de Ceiba 106 Figura No. 54 Siembra de semilla de Ceiba 106 Figura No. 55 Siembra de semillas en bolsas de polietileno 108 Figura No. 56 Manejo y cuidado posteriores para la siembra de las semillas 109 Figura No. 57 Disposición de los arbolitos en el semillero 128 Figura No. 58 Transplante de árboles de Eucalyptus grandis. Granja las Brisas 128 Figura No. 59 Representación gráfica de un ecosistema 131 Figura No. 60 Factores que se deben tener en cuenta para la selección de tres

especies forestales 133

Figura No. 61 Arboreto establecido en “Monterrey Forestal”. Para observar el comportamiento de 31 especies.

152

Figura No. 62 Ensayos de plantación forestal en la fase piloto, Granja Armero 153

14

– Guayabal Figura No. 63 Plantación con residuos vegetales del aprovechamiento forestal.

Cartón de Colombia 159

Figura No. 64 Desmonte de áreas cubiertas con bosques, utilizando buldozer y arado

162

Figura No. 65 Desmonte de tierras forestales con arado 162 Figura No. 66 Arado con bedón para preparación de líneas de plantación 163 Figura No. 67 Arado de un diente en preparación de terrenos 164 Figura No. 68 Preparación de tierras mediante arada de desmonte 164 Figura No. 69 Desmenusada del suelo, utilizando rastrillos 165 Figura No. 70 Arado con dientes para la preparación de tierras 166 Figura No. 71 Cincel de tres dientes para preparación parcial de tierra 166 Figura No. 72 Preparación de tierras, utilizando productos químicos 167 Figura No. 73 Trazado y distribución de las plantaciones forestales de

Bombacapsis quinata y Gmelia arborea en Zambrano (Bolivar) 172

Figura No. 74 Distribución de plantaciones forestales de Pinus oocarpo, Pinus patula en Restrepo (Valle)

173

Figura No. 75. Trazado de plantación en líneas 178 Figura No. 76 Hoyado y plantación 179 Figura No. 77 Plantación y trazado en líneas 179 Figura No. 78 Trazado de plantaciones en triángulo 180 Figura No. 79 Métodos de preparación del sitio con plateo repicado y

mecanización 183

Figura No. 80 Pasos para la plantación con pala 184 Figura No. 81 Secuencia de la plantación con pica 185 Figura No. 82 Pasos en la plantación de árboles con taladro mecánico 185 Figura No. 83 Métodos para plantación en bolsa y a raíz desnuda 186 Figura No. 84 Apertura de hoyos con taladro mecánico. Granja Armero –

Guayabal 187

Figura No. 85 Plantaciones correctas e incorrectas 188 Figura No. 86 Actividades para el mantenimiento de la plantación 190 Figura No. 87 Transporte de arbolitos en tractor 192

Figura No. 88 Transporte arbolitos en tractor con zorra 192 Figura No. 89 Rotaspeed para eliminación de vegetación superficial 195 Figura No. 90 Plantación y aplicación de fertilizantes en corona 202 Figura No. 91 Plantación de Pinus patula fertilizada antes de la cosecha 203 Figura No. 92 Espesura clara en plantaciones forestales 220 Figura No. 93 Espesura excesiva en plantaciones forestales 221 Figura No. 94 Espersura normal en plantaciones forestales 223 Figura No. 95 Poda natural en Ceiba pentandra. Granja de Armero 225 Figura No. 96 Plantación de Gmelina arborea recien podada. La maleza es

eliminada entre árboles pero no entre líneas 226

Figura No. 97 Primera poda en plantaciones de Gmelina arborea. Zambrano (Bolivar)

226

Figura No. 98 Segunda poda utilizando tijeretón en Pinus patula 227

15

Figura No. 99 Realización de la segunda poda en Pinus patula 227 Figura No. 100 Terminación de la poda en árboles de Pinus patula 228 Figura No. 101 Plantación de Pinus patula recientemente podada 228 Figura No. 102 Estado del nudo una vez podado 231 Figura No. 103 Diferentes cortadoras de ramas 232 Figura No. 104 Herramientas utilizadas en las podas 232 Figura No. 105 Volumen por hectárea (a) y volumen por árbol (b) con el aumento

del número de árboles por unidad de superficie. 233

Figura No. 106 Primer raleo en plantaciones de Gmelina arborea 239 Figura No. 107 Raleo Gmelina arborea. Zambrano (B). 241 Figura No. 108 Troceado de los árboles una vez efectuado el raleo en

plantaciones de Pinus patula 241

Figura No. 109 Raleo por lo bajo en plantaciones de Gmelina arborea 242 Figura No. 110 Estructura característica de los diferentes tipos de micorriza 254 Figura No. 111 Preparación de estacas de eucalipto en Restrepo, Valle. Cartón

de Colombia 262

Figura No. 112 Módulo de enraizamiento con riego por nebulización 263 Figura No. 113 Tratamiento de estaquillas con hormonas 266

Figura No. 114 Estacas de madera semidura. Bombacopsis quinata 266 Figura No. 115 Estacas de madera blanda, especie Gmelina arborea 267 Figura No. 116 Setos clonales para obtención de estaquillas 268

Figura No. 117 Estaquillas de Eucalyptus grandis tratados con hormonas 270 Figura No. 118 Arbolitos injertos Cordia alliodora 271 Figura No. 119 Unión de la zona del cambium para los injertos de Pinus patula. 273 Figura No. 120 Estructura de la corteza, la madera y la zona de cambium en la

unión de los injertos 273

Figura No. 121 Injerto de lengüeta 275 Figura No. 122 Injerto de copula 276 Figura No. 123 Injerto Hendidura 277 Figura No. 124 Injerto de cuña 278 Figura No. 125 Injerto de silla o soporte 279 Figura No. 126 Injerto lateral de tacón 280 Figura No. 127 Injerto Lateral de Lengüa 281 Figura No. 128 Injerto Lateral de cuña 282 Figura No. 129 Injerto de 4 superficies (Banana graft) 283 Figura No. 130 Micropropagación de Pinus patula 284 Figura No. 131 Plantaciones forestales de Eucalyptus grandis producidas por

micropropagación. Cartón de Colombia 285

16

LISTA DE GRÁFICOS

Pág. Gráfico No. 1 Climatograma y balance de agua 142 Gráfico No. 2 Indices de sitio relacionando la edad con el volumen

para Pinus kesiya 147

Gráfico No. 3 Indice de sitio. Relacionando la edad con la altura para Pinus kesiya

148

Gráfico No. 4 Indice de sitio relacionando la edad con el área basal para Pinus kesiya

149

Gráfico No. 5 Respuesta en crecimiento de especies de eucalipto a varias dosis de NPK (10-30-10) en cinco fincas

208

17

A: Mi compañera Patricia Mis Hijas: Ana Paola, Lina María

18

AGRADECIMIENTOS

� Universidad del Tolima, por el apoyo institucional que me brindó.

� Lina María, por su apoyo y constante colaboración.

� José A. Rojas, por su ayuda y apoyo en la realización del trabajo.

� Patricia, por su ayuda, colaboración y apoyo incondicional durante la

elaboración del presente trabajo.

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CAPÍTULO I

20

1. SEMILLAS

1.1 FUENTES DE PRODUCCIÓN DE SEMILLAS Para iniciar la recolección de semillas forestales es necesario escoger individuos que presenten características de interés deseables como son: forma, tamaño, volumen, distribución de la copa, forma y localización de las ramas; para cumplir los propósitos de la plantación. La apariencia externa de los individuos, está dada por su fenotipo, y es la primera guía del silvicultor para la recolección de la semilla; pero el fenotipo está basado en dos componentes: el genotipo y el ambiente, y cualquiera de los dos puede ser igual o de mayor importancia en la apariencia externa resultante. La utilización de árboles mejorados tiene como objetivo final, la producción de semilla mejorada en cantidades suficientes y con la mayor calidad genética posible. Las características que se tratan de mejorar en un buen fenotipo, incluyen la producción en volumen de madera para un uso específico y la resistencia a ciertas plagas y enfermedades. Esta se puede lograr mediante las siguientes alternativas:

� Selección de árboles de semilleros � Rodales semilleros � Huertos semilleros

� Ensayos de progenie

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1.1.1 Selección de árboles semilleros. El primer paso es seleccionar y señalar los árboles que producirán las cosechas de semillas, teniendo en cuenta los siguientes aspectos: • Tamaño del árbol: Deberán ser árboles dominantes es decir, que sobresalga la copa con relación a los árboles de su alrededor que sean de su misma especie, además deberán presentar un crecimiento rápido, con un volumen superior al promedio.

• Forma del fuste: Debe ser vigoroso, recto, cilíndrico, sin defectos en el tronco como: estrías, protuberancias, torceduras, ni huecos.

• Hábito de ramificación: La ramificación debe ser uniformemente distribuida con relación al fuste, es decir simétrica, las ramas serán pequeñas en relación con el tronco. En el punto de inserción las ramas saldrán horizontalmente o ligeramente ascendentes, con copas compactas, pequeñas y bien provistas de follaje, sin ramificación baja (autopoda).

• Plagas y enfermedades: No deben seleccionarse árboles en que se noten ataques de hongos o insectos, muchas veces aparecen manchas oscuras producidas por comejenes, ataques de fumagina, gomosis, lo mismo que perforaciones que hacen que estos árboles no deban seleccionarse.

• Producción de semillas: Es conveniente seleccionar árboles maduros que presenten señales de haber producido semilla en el pasado. La producción de semilla debe ser abundante.

• Calidad de la madera: Debe ser buena, si es posible especificar caracteres como: dimensiones de la fibra, longitud de traqueida, gravedad específica. (Ver figura No. 1)

22

El número y calidad relativa de los árboles señalados para semilla tiene importantes consecuencias sobre la mejora genética de la descendencia a obtener, son preferibles en este caso los rodales con buena proporción de árboles superiores. 1.1.1.1 Marcación de árboles semilleros: Escogidos los árboles se procede a marcarlos, con una banda de 10 cm. alrededor del tallo, con pintura roja o amarilla. Se les debe colocar un número que quede registrado en un formulario. 1.1.1.2 Objeto de la elección: La constitución de rodales o árboles para semilla responde a los siguientes objetivos: • Producir semilla de calidad mejorada, seleccionada, favoreciendo árboles vigorosos de fuste recto, sanos, capaces de producir madera de calidad.

Figura No.1 Árbol semillero de Gmelia Arbórea

23

• Concentrar la recolección en áreas pequeñas, sometidas a tratamientos especiales con el fin de regular y organizar más fácilmente la recolección de semilla.

• Mejorar la facultad y energía germinativa de la semilla recolectada. Una vez escogido un árbol padre hay que conservar los genes, el método más preciso para hacerlo es a través de la reproducción asexual donde el material genético del árbol padre se reproduce por clones. Este se puede realizar por:

a. Semillas

b. Injertos: Como en el caso de los Pinos y Cipreses. 1.1.2 Rodales semilleros: Si la cantidad de los árboles seleccionados es importante, se puede constituir un rodal semillero, éste puede ser localizado en masas naturales o en plantaciones. Esta selección se hace tomando en cuenta el desarrollo de la masa forestal (calidad de los individuos) y la superficie arbórea. Se define como áreas seleccionadas en rodales naturales o zonas de plantación, que presentan crecimiento y rendimiento muy aceptables, a las cuales se les ha eliminado todos los árboles indeseables, para dejar en pie los mejores individuos para la producción de semillas de origen geográfico y condición parental conocida. Los rodales semilleros son una etapa previa a la formación de huertos semilleros, en parte porque no se conoce con seguridad el potencial genético que porta dicho rodal, y porque dicho potencial, puede ser mejorado considerablemente y probado a través de otros procesos de mejoramiento más avanzado. La producción de semilla certificada requiere de un proceso de selección y prueba relativamente largo y, a veces muy costoso. Es por esto que usualmente se recurre a sistemas más sencillos y de efecto más rápido para imprimir cierto grado de mejoramiento a la calidad del material que se distribuye.

24

Uno de estos procesos es el establecimiento de rodales semilleros. En Colombia se han desarrollado para Pinus kesiya, P. oocarpa, Gmelina arborea, Eucalyptus camaldulensis, E. grandis, Bombacopsis quinata, E. Glóbulos, Cordia alliodora. (Ver figura No. 2)

1.1.3 Huertos semilleros: El huerto semillero es el medio más importante con que cuenta el genetista forestal para producir masivamente semillas para extensas plantaciones mejoradas, sobre la base de árboles seleccionados. Zobel y Tal (1958) definen “un huerto semillero como una plantación de árboles, mejorados genéticamente con aislamiento para reducir al máximo la polinización desde fuentes genéticamente inferiores y con un manejo intensivo para producir frecuentes y abundantes cosechas de fácil recolección”.

Figura No. 2. Rodal Semillero de Pinus tecunumanii. Cartón de Colombia, Popayán

25

Los huertos semilleros se pueden establecer por clones (injertos o estacas) o por plantas de semillas de árboles seleccionados con características deseadas. En Colombia se ha iniciado un programa de mejoramiento con árboles de Cupressus lusitanica y Pinus patula en 1973 que se establecieron en el departamento del Cauca, (Popayán) Pinus docarpa en Restrepo, Valle. Por parte de la empresa Cartón de Colombia, Monterrey Forestal Ltda., estableció huertos semilleros de Ceiba roja, Bombacopsis quinata en 1984 en Zambrano, Bolívar y melina Gmelina arborea. Inderena estableció un huertos semilleros de Cordia alliodora, Eucaliptos globulos. La técnica utilizada en Colombia para el establecimiento de huertos semilleros ha sido la propagación vegetativa de los mejores individuos seleccionados fenotípicamente los cuales se evalúan posteriormente mediante pruebas de progenie.

1.1.4 Ensayos de progenie: Los ensayos de progenie son importantes en

varias etapas de un programa de mejoramiento de árboles para la evaluación de

los árboles seleccionados. Es necesario probar la progenie de los árboles

Figura No. 3. Huerto semilliero de Cupressus lusitanica. Cartón de Colombia, Popayán

26

fenotípicos seleccionados con el fin de buscar los que si son genéticamente

superiores y eliminar los que no producen progenie buena.

Con el fin de determinar el valor de un árbol seleccionado se mide la progenie

ya que es más fácil deducir la composición genética del árbol a través de la

progenie que por el mismo árbol padre. Sin embargo, al evaluar el

comportamiento genético de la progenie por medidas que se hacen en el

campo, hay que tener en cuenta el efecto del medio ambiente. Debido a estos

factores no se puede evaluar un árbol padre basándonos en la medición de un

solo árbol de la progenie. (Ver figura No. 4).

1.2 HÁBITOS DE FLORACIÓN Y FRUCTIFICACIÓN

Es necesario conocer la edad y las condiciones que una planta necesita para

producir flores, frutos y por supuesto semillas.

En cuanto a la edad, ésta varía en cada especie así, por ejemplo: algunos

árboles de frutos con hueso, llegan a ser productores después de los 5 o 6 años,

el Pinus patula lo hace de 12 a 15 años, Pinus elliottii a los 15 o 20 años, Ochroma lagopus a los 2 años, los géneros Cedrela sp. a los 10 años, Quercus a los 20 años, Switenia macrophylla a los 15 años, Ceiba pentandra a los 3 o 4 años, la Araucaria Cuminghamii, produce semillas a los 20 años, la Sequoia gigantea, comienza a producir a los 125 años, Eucalyptus entre 5 y 15 años.

Las condiciones necesarias para la producción son: fotoperíodo, intensidad de

luz, humedad, temperatura, clima en general, factores fisiológicos, factores

genéticos, factores bioquímicos. (Ver figura No. 5)

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Semilla de Arboles seleccionados en

otros países

Plantaciones colombianas Maduras

Arboles seleccionados

Plantaciones experimentales en

Colombia

Cruces controladas ambos Padres conocidos

Banco de Clones Injertos de los seleccionados

Semillas de los seleccionados del

campo

Ensayos de progenie, polinización abierta

Ensayos de Progenie de polinización controlada

Evaluación de la Progenie a los ocho

años

Evaluación de la Progenie a los tres

años

Evaluación de la Progenie a los ochos años

Hacer Injertos a la Escala Comercial

Huerto Semillero Primera Generación

Plantaciones Mejoradas semilla de árboles seleccionados

Entresaca de los peores clones

Otra entresaca de los Peores Clones

Plantaciones Mejoradas Semilla de Arboles probados superiores

Huerto Semillero de 1.5 Generación

Plantaciones Mejoradas Semilla de Arboles

superiores con una base ampliada

Huerto Semillero Segunda Generación

Plantaciones Mejoradas semilla de Arboles con

Genealogía

Selecciones: Mejores Arboles de las Mejores

Familias

Arboles Seleccionados

Ensayos de Progente

Seleccionados: Mejores Arboles de las Mejores

Familias Injertos

Injertos

Injertos

Selección – Cría - Prueba

Huerto Comercial Año

1973

1977

1977

1982

1983

1988

1988

1988

1993

1996

2001

Figura No..4 Plan de Mejoramiento genético de Cipres (Cupressus lusitanica para dos generaciones Fuente: Cartón de Colombia, 1985

28

En el transcurso de la vida de los árboles cada especie exhibe patrones definidos de producción de flores y semillas. La edad en que se realiza varía marcadamente entre las especies, y de un año a otro, por ejemplo: en los climas de las zonas templadas, los árboles florecen sólo una vez al año. En el trópico, esto ocurre regularmente en muchas especies, pero en otras ocurre varias veces al año, por ejemplo el Tabebuia rosea florece y fructifica dos veces al año, el Cordia alliodora produce sucesivamente flores y semillas durante los meses de enero, febrero y marzo. En el bosque de guandal el machare Symphonia globulifera florece y fructifica todo el año. 1.3 FRUTO

Es el ovario que contiene la semilla después de la fecundación.

FLORACIÓN

Humedad Intensidad de luz

Fotoperíodo

Clima en general

Factores genéticos

Factores fisiológicos (nutrientes del suelo)

Temperatura

Figura No. 5. Factores que influyen en la floración de los árboles

29

Los frutos se pueden clasificar en:

1.3.1 Frutos verdaderos. Son aquellos donde la semilla se puede extraer

fácilmente, ya sea de la cápsula, legumbre y conos como por ejemplo:

Cedrela sp., Erythrina sp., Eucalyptus sp., Cupressus sp., Pinus sp.

1.3.2 Frutos pulposos o carnosos. Son aquellos que envuelven la

semilla con pulpa como las drupas, bayas, pomas y para separar la semilla se

requiere un proceso de maduración como por ejemplo: Familias Rubiaceas

(Genipa sp.), Lauraceas (Ocotea sp.), Anacardiaceae (Anacardium sp.), Myrtaceae (Myrtus sp,), Verbenaceae melina (Gmelina arbórea), Yuglandaceae (Juglans Neotropicals). (Ver Figura No. 7) 1.3.3 Frutos secos: Son aquellos donde la estructura del fruto se adhiere

a la semilla por brácteas que impiden su fácil separación. ej.: Quercus sp., Inga sp., Juglans neotropical, Cordia alliodora, Tectona grandis.

Figura No. 6 Frutos de Bombacopsis quinata

30

1.4 SEMILLA

Son los óvulos maduros que contienen un embrión, cuya cantidad considerable

de nutrientes las hace biológica y económicamente importantes, esos nutrientes

son: carbohidratos, proteínas, grasas, minerales, aceites. (Ver Figura No. 8)

1.4.1 Recolección, extracción y manejo de las semillas:

• La recolección de frutos varía con la especie, la cantidad de frutos, tamaño, forma y altura de los árboles.

• Cuando se trata de frutos pequeños, estos se recogen antes que caigan al

suelo, por la dificultad que presentan en su recolección.

• Los frutos que son diseminados por el viento o gravedad se pueden recoger

del suelo, teniendo en cuenta el árbol madre.

Frutos que dejan caer sus semillas mientras permanecen en el árbol, y que

tienen alas o brácteas para su dispersión. (Ver figuras No. 9, 10 y 11)

Figura No. 7. Transporte de frutos de Gmelina arborea

31

A – Vista ventral de la semilla B – Vista general del embrión C – Corte longitudinal medio (Transmediano, plano a ----------b, según figura A=)

Figura No. 8 Partes internas de la semilla de Tabebuia rosea.

TT/jear. Jul/89

32

Figura No. 9 Métodos de recolección

Figura No. 10 Equipo básico para la recolección de semillas

33

1.4.2 Extracción, limpieza y cuidados de las semillas: Extracción es la separación de las semillas de los frutos (cono, vaina, baya, drupa) o cualquier otra envoltura con el fin de evitar su descomposición, reducir el peso y volumen del material vegetal, lo mismo que facilitar su manejo, transporte y siembra. La extracción se clasifica en tres grupos: a. Árboles cuya semilla se extrae con facilidad de los frutos secos, ejemplo:

Pinus patula, E. camaldulensis, E. grandis, E. citriodora, Cupressus sp., Pinus sp., Eucalyptus sp., Gualanday jacaranda sp., Caoba switenia sp., Cedrela sp., Tabebuia sp., Acacias pseudoacacias sp., etc. que están contenidos en cápsulas, vainas o conos. En este grupo las semillas se separan de los frutos mediante secado, trilla, sacudida, ventilado o zarandeándolos con costales o angeos. La forma más simple de extracción es el secado, que consiste en extender los frutos en capas delgadas y al calor solar, en sitios donde haya libre circulación del aire, y bajo cobertizo en climas húmedos. (Ver figuras No. 12, 13 y 14)

Figura No. 11 Equipo de extensión para recolectar semillas

34

Figura No. 12 Paseras para el secado de conos de Pinus patula. Cartón de Colombia, Yumbo (Valle)

Figura No. 13 Secado y separación de conos de Pinus patula. Cartón de Colombia, Yumbo (Valle)

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Ciertas especies que no abren sus conos o cápsulas con facilidad se deben secar artificialmente en hornos. Este secado debe considerar temperaturas límites que fluctúan entre 37.8°C y 65.6°C, además el secado ayuda a la conservación de algunas semillas que requieren bajo porcentaje de humedad; balso (Ochroma lagopus) las semillas se encuentran en un capoc fibroso de donde se extraen a mano, o zarandeándolas en un cedazo.

b. Frutos secos con semillas rodeados por capas del fruto que están estrechamente adheridas tales como Roble (Quercus sp.), Nogal (Cordia sp.), Guamos (Inga sp.) , Urapan (Fraxinus), Teca (Tectona sp.). Para este grupo raramente se extraen las semillas del fruto ya que es innecesario o difícil, lo más recomendable en este caso es secarlas extendiéndolas y dejándolas expuestas al sol.

c. Semillas de frutos carnosos, como drupas, bayas, pomos, como es el caso de Caracoli (Anacardium sp.), Guayaba (Psidium sp.), Jagua (Genipa sp.), Dinde (Cholophora tinctorea), Melina (Gmelina arborea). Un alto porcentaje de especies forestales tienen frutos pulposos o carnosos, cuando estos son pequeños o medianamente pulposos se esparcen en lonas o zarandas, en capas de poco espesor. Pero la mayoría de los frutos pulposos o

Figura No. 14 Biombo para desprender las alas de las semillas de Pinus patula

36

carnosos se les debe extraer las semillas de la pulpa con prontitud, para lograr una mejor germinación, y evitar la descomposición -fermentación- y eliminar el exceso de peso. Esto se logra amasando los frutos con agua y dejándolos en vasijas durante una noche o hasta que los azúcares de la pulpa se fermenten para después aplastarlos y limpiarlos -maceración-. En otros casos se utilizan máquinas despulpadoras como es el caso de la melina Gmelina en Zambrano Bolívar. (Ver figura No. 15) Las semillas que contienen aceites o arilos no deben secarse al sol como por ejemplo: Cuangares (Virola sp.). (Ver Tabla No. 1) 1.4.3 Limpieza de las semillas: Extraída la semilla del fruto, es necesaria una limpieza posterior de alas, materia inerte, semillas arrugadas y semillas vacías. El tratamiento se aplica de acuerdo a las características de la semilla así: Cuando las semillas tienen alas que al sembrarse ocasionan pérdidas por el viento o daños por los pájaros, la eliminación de las alas se efectúa por

Figura No. 15 Procesamiento de frutos de Gmelina arborea en una despulpadora. Zambrano (Bolivar)

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frotamiento de las semillas en sacos de fique, que es un método seguro y económico, otras veces se utilizan cribas de diferentes tamaños de malla, que se colocan sobre una lona para recogerlas.

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Tabla No. 1. Resumen. Procesamiento de frutos y semillas de algunas especies típicas

ESPECIES TIPO DE

FRUTO SECADO FRUTOS TRATAMIENTO FRUTOS EXTRACCIÓN LIMPIEZA SECADO PREPARACIÓN

Tabebuia Rosea

Seco dehiscente Cajas bajo sombra Cajas ventilación Vitavax-300

Switenia macrophylla Seco dehiscente Sol en piso cemento Manual Cajas bajo sombra Vitavax-300

Anacardium excelsum Seco indehiscente Caja bajo sombra Clasificación manual Cajas sombra Vitavax-300

Cedrella odorata Seco dehiscente Lona piso cemento Cernir Cajas sombra Vitavax-300

Sterculia apetala Seco dehiscente Lona piso cemento Clasificación manual Cajas sombra Vitavax-300

Samanea saman Seco indehiscente Piso cemento Triturado Cernir Cajas sombras Vitavax-300

Caesalpinia abano Seco indehiscente Piso cemento Titurado Cernir Cajas sombra Vitavax-300

Gmelina arborea Carnoso Maceración albercas con agua Lavar con agua Caja sombra Vitavax-300

Gliricidia sepium Seco dehiscente Lona piso-cemento Cernir Cajas sombra Vitavax-300

Tabebuia chrysanta Seco dehiscente Cajas bajo sombra Sacudir Caja – ventilador Vitavax-300

Tectona grandis Seco indehiscente Piso cemento Golpear en sacos Cernir Vitavax-300

Cordia alliodora Seco indehiscente Caja bajo sombra Limpieza mental Manual Cajas sombra Vitavax-300

Enterol.bium cyclocarpum

Seco indehiscente Piso cemento Triturado Cernir Cajas sombra Vitavax-300

Swinglia glitinosa Carnoso Maceración alberca con agua Lavar con agua Telas plásticas sombra Vitavax-300

Terminalia carapa Seco indehiscente Caja bajo sombra Clasificación manual Vitavax-300

Hymenea courbaril Seco indehiscente Piso cemento Triturado Lavado con agua Cajas sombra Vitavax-300

Fuente: Convenio CONIF-Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural

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También la separación se puede hacer por aventamiento o sea exponer las semillas a corrientes de aire, expulsando las impurezas que son más ligeras, en tanto que las semillas más pesadas caen al piso. Recientemente se utilizan ventiladores o sopladores de semillas que consisten en una corriente de aire uniforme, que se expulsa hacia arriba a través de un tubo de diámetro conocido, el cual contiene dos trampas colocadas en la parte superior, que cumplen la función de atrapar el material ligero que se sopla hacia arriba, o se realizan con métodos de ventilación más rudimentarios como se observa en las figuras No. 16, 17, 18, 19). Cuando las semillas son muy pequeñas se pueden colocar en un juego de tamices de tela metálica y fina, donde quedan las impurezas depositadas. Hay otras especies de semillas pequeñas como por ejemplo: Eucalyptus viminalis, E. saligna, E. tereticornis, Alnus jorullensis, Casuarina equistifolia; cuya limpieza es difícil sino imposible de separar, porque las semillas e impurezas son muy pequeñas; finalmente existen especies cuyas semillas pueden separarse por flotación en agua en este caso las impurezas van a la superficie y las semillas al fondo.

Figura No. 16 Limpieza de semillas con ventilador

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Figura No. 17 Limpieza de semillas por ventilador. Cartón de Colombia, Yumbo (Valle)

Figura No. 18 Clasificación de semillas por un separador con corriente de aire. Cartón de Colombia, Yumbo (Valle)

Figura No. 19 Separación de semillas en la especie Bombacopsis quinata

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1.4.4 Almacenamiento de las semillas: Lo ideal con las semillas forestales sería sembrarlas inmediatamente después de su recolección, de su extracción y limpieza, imitando así el sistema natural (frescas). La habilidad que tienen las semillas para mantenerse viables bajo condiciones naturales, varía enormemente y por ello es necesario almacenarlas desde algunos meses hasta varios años. La finalidad del almacenamiento es: • Conservar las semillas para mantener un gran poder germinativo. • Proteger las semillas de daños causados por roedores, pájaros, insectos y enfermedades.

• Mantener reservas de semillas para las épocas de baja producción. Hay muchos factores que inciden en la longevidad de la semilla almacenada, y el conocimiento de los métodos de almacenamiento varía de unas especies a otras. En algunas especies es fácil como: Acacia santanderiana (Siacassia siamea), Samán (Pseudosamanea saman), Igua (Tena guachapele) en otras es más difícil como Sauce (Salix sp.), Caracoli (Anacardium sp.), Laurel (Ocotea sp.), Nogal (Cordia alliodora). Hay dos factores que se deben tener en cuenta para el almacenamiento de semillas:

a. Temperatura

b. Humedad En general para un alto porcentaje de semillas se recomiendan valores bajos de estos factores de almacenamiento, existiendo otras que se conservan mejor en temperaturas del ambiente y otras se afectan si se reduce el contenido de humedad: 1.4.4.1 Temperatura: Las semillas varían su sensibilidad a la temperatura, pero en términos generales se conservan mejor a temperaturas bajas que altas.

42

Hay dos consideraciones importantes: • Generalmente la temperatura cercana a los 0°C prolonga la vida de la semilla.

• No es conveniente las fluctuaciones de temperatura, lo óptimo es mantenerla constante.

Las semillas que pueden secarse hasta bajos contenidos de humedad se almacenan mejor a temperaturas por encima de los 0ºC ya que no existe la posibilidad de que se congelen. Por ejemplo: Pinus patula, P. elliottii, Eucalyptus grandis, Fraxinus sp., Cedrela sp., Bombacopsis quinata. Las semillas que contienen alto grado de humedad sobreviven mejor en temperaturas bajas que altas, por ejemplo: Salix sp., Cholophora sp., otras se conservan bien a temperatura ambiente, como: Siacassia sp., Tena guachapele (Igua). (Ver figura No. 20)

1.4.4.2 Humedad. La influencia en la conservación y almacenamiento de las semillas es mayor que la temperatura, y más difícil de controlar.

Figura No. 20 Patio de secado de semillas de la especie Ceiba roja (Bombacopsis quinata)

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Para muchas especies el secar la semilla hasta obtener un bajo grado de humedad es un factor que asegura una larga vida de almacenamiento. Cada especie parece tener un contenido higroscópico adecuado así:

Género Humedad % Eucalyptus 4-9 Pinus 4-8 Fraxinus 7-10 Okume 12-13 Juglans-Quercus 35

Cuando se alcanza un nivel de humedad está debe permanecer constante ya que las fluctuaciones son perjudiciales. Se conocen dos tipos de almacenamiento: a. Almacenamiento en seco

b. Almacenamiento en húmedo a. Almacenamiento seco y frío: Las especies resistentes al secamiento por debajo del 10% de humedad se pueden normalmente almacenar en períodos de 5 a 20 años. Si están en recipientes herméticos, ejemplo: Pinus sp., Eucalyptus sp. (Ver figura No. 21).

Figura No. 21 Cuarto almacenamiento de semillas y recipientes plásticos utilizados

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b. Almacenamiento frío y húmedo: Las semillas de algunas especies necesitan mantener un alto grado de humedad, entre su maduración y germinación. Generalmente estas semillas son grandes y pesadas y tan solo pueden almacenarse por un corto tiempo. Ejemplo: Araucaria sp., Quercus sp., Triplochiton scleroxilon, que pueden secarse hasta 20% de humedad.

1.4.4.3 Envases: La práctica ha demostrado la necesidad de conceder importancia a los envases para el almacenamiento, estos deben ser recipientes de plástico o bolsas de polietileno herméticos.

1.5 GERMINACIÓN Es la reanudación (activación) del crecimiento del embrión, que culmina cuando aparece la radícula al exterior de la cubierta seminal. Se dice que las semillas están maduras cuando caen de la planta progenitora. Pero no significa necesariamente que estén listas para germinar, la mayoría de las semillas normalmente tienen un período de descanso, antes de desarrollarse en nuevas plantas, la longitud del período de descanso varía de acuerdo con la especie y con las condiciones ambientales adecuadas. Así en los manglares (Rhizophora) no existe período de descanso y la semilla empieza a germinar cuando todavía está adherida a la placenta del ovario, alcanzando el hipocótilo hasta 30 cm. de longitud, antes de que el embrión caiga del árbol y se clave en el suelo inundado. Muchas semillas germinan tan pronto como existen condiciones para ello, otras deben sufrir cambios internos por un cierto período de tiempo antes que respondan a las condiciones ambientales que favorezcan la germinación, como es el caso de no maduración o de tegumentos duros o impermeables que no les permitan absorber humedad y aire.

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Condiciones necesarias para la germinación. Como se mencionó anteriormente la semilla inicia su germinación bajo ciertos factores internos como son el crecimiento y formación del embrión, los que se consideran básicos, sin embargo hay factores externos ambientales, que son condiciones indispensables para la germinación, como son: (Ver figura No. 22). • Agua • Aire • Calor - temperatura favorable. • Luz 1.5.1 Agua: Ninguna semilla puede germinar sino está en presencia de agua, las semillas por lo general tienen un contenido de agua relativamente bajo y los procesos fisiológicos para la germinación ocurren solo cuando la proporción de agua ha aumentado. El agua penetra a la semilla por un fenómeno llamado ¨imbibición¨ que produce al poco tiempo aumento del volumen (hinchazón). Se desatan una serie de cambios, el embrión respira rápidamente y empieza a crecer tomando el alimento que ha estado almacenando en la semilla (en las semillas con endosperma el embrión produce enzimas digestivos que migran al endosperma y lo descomponen), o en otro caso lo toman de los cotiledones, toda ésta actividad tiene como consecuencia el rompimiento de los tegumentos, con esto el embrión se libera y reasume su desarrollo.

GERMINACIÓN

Temperatura Adecuada

Gases (Oxígeno)

Cambios bioquímicos

Luz

Humedad

Figura No. 22 Principales factores que activan la germinación

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El primer órgano que emerge del embrión es la radícula, que sale a través del micrópilo y como es geotrópica positiva crece hacia abajo y produce la raíz primaria. El crecimiento de la raíz anterior al de otras partes del embrión permite a la planta fijarse en el suelo y absorber agua, para el transporte de los alimentos a los puntos de crecimiento. La porción superior del hipocótilo se arquea y aparece en forma de ¨u¨, para luego alargarse y estirarse hacia afuera empujando a los cotiledones, se esparce rápidamente formando las 2 primeras hojas verdaderas. A medida que se consume el alimento de los cotiledones, durante el rápido crecimiento inicial, estos se arrugan y caen al suelo, entonces el suministro de alimento se obtiene ahora de la fotosíntesis. En otros casos los cotiledones pueden ser más delgados y largos, ejerciendo funciones de fotosíntesis; como en la Tectona grandis, Ricinus comunis. En otro tipo de semillas como Quercus sp., Yuglans sp., y algunas Cesalpinaceae el hipocótilo no se alarga y no emerge del suelo. Cuando el primer entrenudo que está por encima del cotiledón se ha alargado sobre el nivel del suelo cesa este proceso y las hojas enrolladas de la planta se desarrollan rápidamente expandiéndose las primeras hojas del follaje. (Ver figura No. 23). 1.5.2 Aire: Las semillas de distintas especies tienen diversas exigencias de oxígeno de gran importancia para la germinación, de gran importancia ya que las semillas respiran rápidamente, y es necesario para llevar a cabo las reacciones químicas que transforman las reservas. Los fenómenos respiratorios se intensifican a medida que la plántula se desarrolla. La concentración de oxígeno en el suelo es afectado por la cantidad de agua presente (no germinan en suelos anegados o (encharcados), lo mismo que cuando se siembran muy profundas. 1.5.3 Temperatura: Presenta gran interés y constituye un factor capaz de influir en la germinación y crecimiento de las plantas, también actúa ecológicamente siendo en buena parte el factor de mayor importancia en la distribución de las plantas. Las semillas difieren en cuanto a las exigencias de temperatura y depende de las especies y del medio ambiente. Para cualquier

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especie existe un máximo y un mínimo, por encima o debajo del cual la germinación no ocurre. Para la mayoría de las plantas tropicales está se sitúa entre 20ºC y 30ºC, en las plantas alpinas y árticas éstas pueden germinar entre 0ºC y 10ºC. Después que la semilla germina y a medida que progresa la planta, las temperaturas máximas y mínimas necesarias para el crecimiento van cambiando, en éste intervalo de temperaturas habrá siempre una temperatura óptima. 1.5.4 Luz: El efecto de luz en la germinación difiere en las distintas especies, algunas lo requieren otras no. El efecto de luz pude variar de acuerdo con las condiciones ambientales y se dice que la cantidad exigida puede variar entre 20.000 luz y 100.000 luz.

Figura No. 23. Secuencia de la germinación y desarrollo del Calophyllum mariae

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La mayor importancia de la luz está relacionada con el papel en la fotosíntesis que es necesaria para fijar una cantidad diaria de CO2, que compense la pérdida respiratoria y que incluso llega a modificar su estructura lo que se denomina Etiolación o ahilamiento.

1.6 ANÁLISIS DE SEMILLAS FORESTALES Ensayos de Laboratorio: Las semillas se ensayan con diferentes fines, siendo el fundamental determinar el valor de cada lote o muestra para la plantación. Al ser la semilla un producto biológico, su comportamiento no puede pronosticarse con exactitud propia de las operaciones físicas o químicas. Los procedimientos adaptados para el análisis se deben estandarizar, al grado de que los resultados obtenidos en una muestra en un laboratorio, puedan ser repetidos dentro de tolerancias aceptables en otro laboratorio. Además, los métodos deben ser prácticos con el fin de precisar la uniformidad de los resultados y no de muestras que están limitadas por el equipo y la cantidad de trabajo. Las reglas internacionales para el análisis de semillas (ISTA), proporcionan métodos uniformes para la evaluación de la calidad en cualquier laboratorio. Se debe dar importancia en lograr información precisa y confiable. Los factores de calidad de las semillas comprenden: � Toma de muestras � Porcentaje de semillas puras � Porcentaje de germinación � Determinación de la identidad � Contenido de humedad � Determinación del peso de 1.000 semillas

49

1.6.1.1 Toma de muestras: La cantidad de semilla a analizar es pequeña comparada con el volumen total. La primera condición para obtener resultados uniformes y exactos de los análisis es tomar cuidadosamente las muestras, ya que por más exacto que se efectúe el análisis no puede indicar más que el valor de la muestra analizada. Se debe entonces buscar una muestra representativa de la media del lote. El muestreo sería fácil, si la semilla se pudiera mezclar en tal forma que quedara completamente uniforme, entonces se podría tomar una muestra para ensayo de un solo saco o lugar del lote. Un lote homogéneo sería una cantidad de semillas cuyas partes componentes son uniformes entre sí. 1.6.1.2. Toma de la muestra media: • Se toman cantidades de semillas más o menos iguales de cada uno de los sacos u otros envases que constituyen el lote, así como de diversas partes de cada una de ellas. Cuando el lote es por ejemplo de más de 30 sacos no se justifica tomar más de 30 muestras por el trabajo que esto significa.

• Para lotes pequeños de 3 sacos o menos se toman porciones de arriba, del medio y de abajo de cada uno de ellos.

• Cuando el lote esté en cajas u otros envases, la toma en este caso se hará con una sonda de 2 m. de largo que se introduce por lo menos en 7 sitios diferentes distribuidos en el lote.

• En el caso de semillas contenidas en sacos u otros recipientes la toma de muestra se hace a mano, sacando cantidades de semillas iguales de diferentes partes del saco o recipiente, (arriba - medio - fondo).

• Si las proporciones obtenidas de los diferentes sacos o parte de un lote son uniformes puede obtenerse una muestra media. Es difícil mezclar dichas porciones y la forma sería:

a. Se cogen varios recipientes (6 o más) de tamaño pequeño pero uniforme.

50

Se colocan al azar sobre una bandeja grande u hoja de papel. Cada porción de semilla se vierte lentamente con una cuchara adecuada sobre la hoja de papel o bandeja, distribuyéndola en los recipientes; y en la superficie que lo rodea. Las semillas que caen al azar en los recipientes se mezclan para formar la muestra media. b. Mezcla hecha a mano: La muestra bien mezclada se extiende sobre una bandeja de poco fondo o una cubeta en capas de poco espesor y uniforme. A continuación se procede a tomar de diferentes sitios (5 por lo menos) con una cuchara pequeña porciones de granos hasta obtener la cantidad necesaria.

c. El método de división -cuarteo- consiste en colocar una muestra en un pedazo de papel limpio o tela. Se mezcla con una espátula y se divide en cuartos, los cuartos opuestos se descartan hasta obtener la muestra.

d. El empleo de divisores mecánicos entre ellos el Boener es muy común. La muestra después de mezclada, se divide automáticamente varias veces hasta obtener la cantidad necesaria. (Ver figuras No. 24 y 25)

Figura No. 24 Partidor de semillas para uniformizarlas. Laboratorio ICA, Ibagué

51

e. Otro aparato muy utilizado para la toma de muestras es las sondas, que son de diferentes tamaños y formas, pero en general deberá estar diseñado de modo que recoja un volumen igual de semillas en cada sección por la que se haga pasar. Las sondas son un tubo hueco que tienen un extremo puntiagudo y está abierto en el otro lado. Este probador se inserta horizontalmente en el saco con la ranura hacia abajo, luego se voltea la ranura hacia arriba para que se llene, se saca la sonda y se deja que la semilla corra al recipiente de la muestra. (Ver figura No. 26)

Figura No. 25 Partidor de semillas para la uniformización. Laboratorio ICA, Ibagué

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1.6.1.3. Cantidades mínimas de semillas para el análisis:

• 50 gr. para: Alnus sp. - Casuarina sp. - Cinchona sp. - Eucalyptus vinimalis - E. camaldulensis - Weimania sp.

• 100 gr. para: Cupressus macrocarpa - C. sempervirens - Eucalyptus glóbulos - E. saligna - E. tereticornis - Ochroma logopus.

• 200 gr. para: Acacia melanoxylon - Jacaranda sp.- Pinus poderosa - P. radiata P. caribea - P. elliotii - P. patula - Acasia mollisima - Robinia pseudocacia - Acacia dealbata - E. citriodora - Grevillea robusta - Tabebuia sp.- Eucalyptus citriodora.

• 400 gr. para: Catalpa sp. - Cedrela sp. - Fraxinus sp. - Prosopis sp. - Schinus molle - Podocarpus sp., Decussocarpus sp., Gmelina arborea.

• 1000gr. para: Araucaria angustifolia - A. hunsteinii -. - Quercus humboltii - Bauhinia sp., Juglans neotropicals

Figura No: 26 Sondas para toma de muestras de semillas

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1.6.2 Análisis de pureza: El objeto del análisis de pureza es determinar: a. La composición de la muestra que se ensaya y por inferencia la composición

del lote de semilla. b. La identidad de las diversas clases de semillas y materias inertes que

constituyen la muestra. Para los fines de éste análisis se divide la muestra en tres partes: • Especie o tipo que se va a considerar como semilla pura • Semilla de otras especies • Materias inertes

1.6.2.1 Semillas puras: Se consideran todas las que corresponden a la especie que se desea analizar, incluyendo las semillas bien desarrolladas. Se tendrá en cuenta: a. Semilla de tamaño menor que lo normal, las semillas arrugadas o

imperfectamente desarrolladas. b. Pedazos de semillas rotas mayores que la mitad del tamaño c. Semillas enfermas sin estar destruidas 1.6.2.2 Semillas de otras especies: Se consideran semillas de otras especies todas las de los árboles que no correspondan a la especie analizada. En cuanto al grupo que conforma este sector son las mismas que se incluyen en el grupo de las puras.

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1.6.2.3 Materias inertes: Se entienden como materias inertes las partículas de semillas u otras materias estériles. Las partículas de semillas son: • Fragmento de semillas de medio grano o menores • Fragmento de alas ó alas adheridas.

1.6.2.4 Otras materias inertes: Tierra, arena, piedrecillas, fragmentos de cáscara, ramillas, escamas, pedazo de corteza, micelios. 1.6.2.5 Metodología:

a. Para determinar la pureza se toma la cantidad de semilla señalada en el cuadro y cuya cantidad depende de la especie.

b. Las muestra se divide en dos partes iguales para hacer análisis.

c. Cada submuestra se pesa aparte con aproximación de tres decimales, para después separar:

• semillas puras • semillas de otras especies • materia inerte Cada una de estas partes componentes se pesará hasta el mismo número decimal que la muestra y se determinará el porcentaje por peso de cada parte, cuya suma debe compararse con el peso de la muestra original.

100% xmuestrasemillaPeso

purasemillaPesoPUREZA

−−−−=

55

Cuando se han hecho dos análisis comparativos, los resultados deben ser el promedio en porcentaje, dando la suma porcentual de los demás componentes = 100. Para la separación de las semillas es necesario una serie de aparatos entre ellos: • Aparatos manuales: Mesa para limpieza (iluminada) Diafanascopios, lentes de diversos tamaños, de mano o de brazos móviles, además espátulas, pinzas. (Ver figura No. 27)

• Aparatos mecánicos: Sopladores de semillas, se efectúan por corrientes de aire, estos como se dijo se emplean para separar las semillas más pesadas de las materias ligeras (cáscaras, escamas). (Ver figuras No. 17 y 18).

1.6.2.6 Cantidad de semilla necesaria para el análisis de pureza. Esta se aproxima a distintos valores como puede verse en la siguiente tabla dependiendo de la especie y el tamaño de la semilla:

Figura No. 27 Lupa para separar semillas

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Tabla No. 2 Cantidad de semilla necesaria para el análisis de pureza

Especie Cantidad (gramos) - Salix sp. - Weimania sp.

1

- Alnus sp. - Eucalyptus camaldulensis

5

- Eucalyptus glóbulos - Cupresus sp.

10

- Acacia sp. - Pinus taeda - Catalpa sp. - Robinia sp.

25

- Pinus caribaea - Pinus elliotti - Pinus radiata

50

- Cedrela sp. - Fraxinus sp. - Gmelina arborea

100

- Yuglans neotropicals - Quercus sp

300

1.6.3 Ensayo de Germinación: El objeto del ensayo de germinación en el laboratorio es determinar el porcentaje de semillas puras de una muestra dada, capaces de producir gérmenes normales. En los laboratorios se define como germinación: el nacimiento y desarrollo de aquellas primeras partes esenciales derivadas del embrión que según la semilla de que se trate son indicativas de la capacidad de esta para producir plantas normales en condiciones favorables. No basta entonces con determinar el número de gérmenes obtenidos en el laboratorio de la muestra sino que se deben considerar como germinadas las semillas que han producido gérmenes normalmente desarrolladas sanas y vigorosas. Se distingue:

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a. Ensayos de germinación directos

b. Ensayos de germinación indirectos

A) Ensayos de germinación directa

Instrucciones generales: • Por lo general no es acertado efectuar los ensayos en las condiciones que prevalecen en el campo por la dificultad de duplicar los resultados. Por eso se han ideado métodos por medio de los cuales algunas o todas las condiciones externas se controlan.

• Además todo ensayo de germinación se hará con semillas puras tomadas del lote que se usó para análisis de pureza.

• La semilla pura debe mezclarse bien y luego se separan 400 semillas contadas sin escoger.

• Estas 400 semillas se ensayan tomándolas al azar en grupos de 100 y repartiéndolas uniformemente en el sustrato cuidando que queden lo suficientemente separadas.

• El promedio de germinación de todas las replicas representa, el resultado del ensayo siempre y cuando la diferencia entre la más alta y la más baja no exceda los límites.

10 % para semillas con promedio de germinación 90 % o menos 12 % para semillas con promedio de germinación de 80 - 89 % 15 % para semillas con promedio de germinación de 80 % o menos • Se hacen observaciones diarias retirando las semillas germinadas y anotándolas en formularios especiales elaborados para ello. El primero y último conteo se da en una gráfica elaborada para tal fin.

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• Algunas semillas no germinadas pero que parecen viables deberá anotarse el % (frescas y sanas). Se recomienda elaborar gráficos.

1.6.3.1.1 Condiciones para el ensayo de germinación: Como se dijo debe efectuarse en condiciones regulares y de conformidad con las reglas de la ¨ISTA¨. Salvo el grado de humedad de los sustratos, los demás factores vienen tabulados. a. Temperatura: En general se prescriben dos temperaturas alternadas para

casi todas las semillas forestales, esto hace necesario usar estufas o cámaras corrientes, o germinadores Jacobsen o Copenhague, empleando las temperaturas alternadas, se mantiene unas 16 horas a 20°C y 8 horas a 30°C, o las que dé el cuadro diseñado para éste fin.

b. Humedad: La cantidad de humedad depende de la naturaleza y

dimensiones del germinador utilizado. El sustrato siempre debe estar húmedo, pero que no encharque porque impediría la aireación de las semillas, el agua agregada al sustrato en lo posible será medida y nunca debe aparecer película alrededor de las semillas. Cuando se usan secantes o papel filtro, nunca debe aparecer agua en la superficie que se oprime con el dedo, la cantidad de agua agregada depende de las características de esta y del tamaño de la semilla pero en general es un 50 a 60% de su capacidad hídrica.

La humedad relativa debe mantenerse entre 90 y 95% cubriendo el lecho con tapas, campanas de vidrio o embudos. En el caso de neveras estas regulan las condiciones con tableros electrónicos. La humedad se proporciona por riego del medio donde se coloca la semilla, o mediante mechas sumergidas en recipientes con agua que se colocan debajo de las semillas y cuyo nivel se mantiene constante.

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1.6.3.1.2 Sustratos: La elección del medio de germinación depende de los aparatos que se emplean, de las especies de semillas, de las condiciones y experiencia que se tenga. Los medios pueden ser: papel secante, papel filtro, papel absorbente, toallas de papel dobladas; cuando el ensayo se hace entre dos papeles (BP). Es necesario que estos papeles estén libres de sustancias químicas o colorantes. Otros sustratos como arena, sal de sílice, tierra vegetal que deben ser en el caso de la arena más o menos uniforme y en el de la tierra vegetal arenosa para que no se apelmace teniendo en cuenta esterilizarse antes de usarse para eliminar hongos, bacterias, nemátodos u otras semillas extrañas. Otras veces se puede utilizar pocillos o recipientes de porcelana, polietileno, poliestireno, tierra cocida rodeadas de agua o sobre arena húmeda. Para especies de germinación larga, Pinus caribaea, P. elliotii, P. palustris Pinus, pinea, Quercus sp., Yuglans neotropicals sp., etc., se hacen germinar sobre arena. Papeles y toallas se usan para semillas pequeñas y rápidas: Eucalyptus sp., Casuarina sp., Alnus sp. 1.6.3.1.3 Valoración de las plántulas: Las siguientes indicaciones deben de servir de normas para la apreciación de los gérmenes obtenidos en las condiciones de laboratorio. a. Gérmenes normales: Todas las plántulas que en el ensayo se muestren

susceptibles de producir arbolitos • Plántulas sanas cuyas cotiledones y radiculas estén normalmente desarrolladas.

• Gérmenes sanos cuya radicula este normalmente desarrollada, pero en los cotiledones se presente ruptura o heridas en pequeñas proporciones.

b. Gérmenes anormales: Todas las plántulas que parezcan incapaces de producir

plantas normales en el ensayo.

60

• Gérmenes sanos pero al final del ensayo se observa escaso desarrollo debido a la falta de vigor, aunque sean capaces de producir raíces normales.

• Gérmenes rotos que comprende:

� Gérmenes con ambos cotiledones partidos

� Gérmenes con una parte de la radicula rota • Gérmenes cuyo hipocótilo o radícula estén rayadas, rotos o lesionados en tal forma que afecten los tejidos conductores.

• Gérmenes cuya radicula presenta estrangulación que afecte los tejidos conductores.

• Gérmenes atacados aunque sea parcialmente de podredumbre. • Gérmenes en los que al final de la germinación no se observe ningún desarrollo a pesar de que la semilla este desgarrada y los cotiledones no coloreados de verde.

• Gérmenes donde la gémula (plúmula) o la radícula son de apariencia débil o enfermiza.

• Gérmenes con graves anomalías (cotiledones o tallo hipocótilo enrollados sobre sí mismos y carentes de vitalidad).

B) Ensayos de Germinación Indirecto

1.6.3.2 Métodos Indirectos (para porcentaje de germinación): La más antigua es la prueba de corte que no ofrece garantía, se usa para semillas pequeñas (Eucalyptus, coníferas y frondosas) en este caso la semillas se cortan o aplastan con cuchillas, cortaplumas, observando el aspecto interior que presenta, esto da más o menos una idea del estado de viabilidad, siendo vanas las de embriones y endospermas secos, arrugados, poco desarrollados,

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infestadas, en mal estado (contenido acuoso o descolorido) con frecuencia rancias, y de mal olor. Las semillas buenas tienen olor agradable, almendra firme, color blanco,

amarillo, o verdoso según la especie.

Los ensayos bioquímicos se utilizan cuando la especie es de germinación lenta o

muy difícil, se usan pruebas de ¨Tetrazolio¨. Las semillas se parten de manera

que quede parte de la plúmula al aire, seguidamente se ponen en remojo

durante 24 horas, una vez remojadas se introducen en una solución de Tetrazolio al 0.5 - 1%, manteniéndolas en lugar oscuro a una temperatura de

30ºC y durante períodos de 3 a 4 horas según la especie. Pasando este período

se extraen y examinan los embriones, descartando como no viables las que

tengan partes sin teñir.

• Rayos X: El uso de rayos X pude arrojar datos sobre el desarrollo del

embrión y endosperma dificultándose descubrir alteraciones fisiológicas.

• Aparatos utilizados: Germinadores: Tienen como base la posibilidad de regular la temperatura, la humedad, iluminación entre otros germinadores

¨Jacobsen¨ aparato ¨Rodewal¨estufas de germinación, incubadoras. (Ver

Figuras No. 28, 29 y 30).

1.6.4 Determinación de la humedad: Aplicable a semillas con contenido de

humedad del 18 % o menos. La muestra cuando menos de 5 - 10 gr. para

semillas pequeñas, y 50 - 100 gramos para semillas grandes, debe enviarse al

laboratorio de ensayos de semillas en recipientes cerrados, impermeables al

aire, con el objeto de que no se produzca cambio en el contenido de humedad, durante el período comprendido entre la toma de la muestra y el ensayo. Las

muestras deben ensayarse tan pronto como sea posible ya que la humedad

puede variar como resultado de la respiración de la semilla.

62

Figura No. 28 Germinador

Figura No. 29 Germinadores tipo estufa

Figura No. 30 Germinador de semillas tipo estufa

63

1.6.4.1 Método: Para los fines de determinación de la humedad, la semilla se clasifica en uno de los grupos siguientes:

a. Semillas en las que el contenido de humedad debe determinarse al 130°C, Ejemplo: Alnus sp., Pinus sp., Eucalyptus sp.

b. Semillas para los cuales la humedad no puede determinarse a 130°C a causa

de que tienen componentes volátiles y que por tanto deben secarse a los 105°C. Ejemplo: Virola sp., Yuglans, Tectona.

c. Semillas para las cuales el sistema de 105ºC no es adecuado a causa de los

componentes extremadamente volátiles, deben ser ensayadas por sistemas tales como el método de destilación por Tolueno.

1.6.4.2 Molido: Cuando se van a secar las semillas grandes y con humedad mayor a 18% es necesario efectuar una molida o triturada antes de colocarlas en estufas. En este caso el secado se divide en dos etapas: a. Se hace un secado con temperatura relativamente baja; el contenido de

humedad hasta este momento se saca por diferencia de peso. b. En la etapa final el contenido de humedad se determina por métodos

corrientes (triturando o acabando de secar). El contenido de humedad final de la semilla saldrá de las pérdidas de humedad en las dos etapas de secado.

La trituración no es recomendable en semillas de alto contenido de aceite, resina, látex, por la dificultad en molerlas y también porque al oxidarse estas sustancias puede traer como resultado un aumento del peso y ser motivo de error. Es necesario tener en cuenta que al colocar las muestras en las bandejas o platos el depósito no debe dejarse destapado para evitar cambio en el contenido de humedad. Además la determinación de humedad debe hacerse por duplicado, permaneciendo en la estufa dos horas cuando se usa temperatura de 105°C que

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es la más recomendable para las semillas forestales. Después de pesar las muestras con exactitud de un miligramo o menos se coloca el material en la estufa, cuidando de que la temperatura prescrita esté graduada desde el momento en que se empieza a contar. Cuando la muestra haya permanecido el tiempo necesario, se saca del recipiente pasándola inmediatamente después de haberse enfriado por un desecador. El contenido de humedad se determinará por la fórmula: CH%= Contenido de Humedad en %

PH = Peso Húmedo 100% xPS

PSPHCH

−=

PS = Peso Seco 1.6.4.3 Aparatos utilizados: Estufa de libre ventilación, balanza determinadora de humedad (rayos infrarrojos) balanza con precisión de un miligramo. (Ver figura No. 31) El contenido de humedad se expresa siempre en porcentaje, basado en el peso original (peso de semilla más humedad en el momento de empezar el ensayo). Se debe anotar el método seguido.

Figura No. 31 Determinadores de humedad. Digital y eléctrico

65

1.6.5 Determinación del peso (peso de mil granos): Para el peso de 1.000 granos se cuentan sin escoger semillas puras sacadas de la muestra seca al aire. Se deben contar y pesar por separado en gramos: cuatro réplicas de 100 semillas cada una. Los resultados de todas las replicas deben promediarse para obtener el peso de 1.000 semillas.

Con la media obtenida X 1 + X 2 + X 3 + X 4 = X

si 100 semillas pesan Χ 1.000 semillas pesan ?

X = 1000

100

. x X Χ = 1000

100

. .

.

sem xX

sem

De esta manera se halla el peso de 1.000 semillas por la X de los pesos

obtenidos.

66

CAPÍTULO II

67

2. VIVERO Los viveros forestales, son lugares dedicados a la producción, multiplicación o micropropagación de plantas provenientes de semillas y material vegetativo, seleccionados de acuerdo con la calidad y vigor, para asegurar su establecimiento en el sitio definitivo. Esto con el fin de cumplir programas de repoblación de sitios erosionados, ornamentar calles, avenidas, parques, recuperar y hacer sostenible las cuencas hidrográficas, y producir cosechas para el abastecimiento de madera y otros productos forestales. Los viveros pueden estar destinados a: • La producción de plantas ornamentales (matas, arbustos, árboles). • Producción de árboles frutales. • Obtener plántulas destinadas a las plantaciones forestales protectoras o productivas.

• Producción de material por micropropagación. Tradicionalmente se han considerado dos tipos de viveros por su duración y ritmo de producción: a. Viveros temporales o transitorios

b. Viveros permanentes a. Viveros temporales o transitorios: Se utilizan por algunos años o meses y solamente para producir y abastecer las plántulas necesarias que se utilizan en proyectos de reforestación definidos, en sitios donde el acceso sea difícil. Una vez ejecutado el programa, se abandonan.

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Tienen la ventaja de que el material, se producirá en condiciones ambientales similares al área de plantación, reduciendo los peligros y pérdidas por adaptación, transporte y los mayores gastos que representa su movilización. (Ver figura No. 32)

b. Viveros permanentes: Donde se producen plantas continuamente y se establecen para planes regionales y nacionales de forestación o venta permanente de plantas o arbolitos. Aunque no existen diferencias fundamentales en el establecimiento, organización, administración y manejo de un vivero permanente y uno temporal; sin embargo los primeros deben constar de todos los elementos para la producción y crianza, su construcción es económica y se realiza con materiales como guadua, madera redonda, caña brava, etc. Los segundos necesitan estudios más completos y se realizan con materiales como ladrillo, hierro, cemento, tubería para la distribución de agua, casas para herramientas y vivienda para el viverista. (Ver figuras No. 33, 34 y 35). En cualquier vivero forestal la producción económica y eficiente depende de:

• Ubicación del sitio adecuado.

Figura No. 32 Vivero temporal. Granja Las Brisas

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• Adecuación económica y conveniente del terreno.

• Planificación y organización de las operaciones.

• Utilización de técnicas adecuadas para preparar el terreno, tratar y manejar las semillas, sembrar, transplantar, etc.

Figura No. 33 Vivero forestal permanente, Restrepo (v), Cartón de Colombia

Figura No. 34 Vivero Forestal y sus respectivas construcciones

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2.1 UBICACIÓN DEL SITIO ADECUADO En la localización del sitio para el vivero se debe tener en cuenta:

� Área de distribución de los arbolitos

� Condiciones del suelo y fertilidad

� Abastecimiento de agua.

� Topografía. � Especies a propagar.

� Clima y condiciones ecológicas

2.1.1 Área de distribución de los arbolitos: El lugar deberá ser de fácil acceso, con buenas vías de comunicación (carreteras, ferrocarril, vías navegables), preferencialmente central y cercano a los sitios de distribución y demanda del material, y que disponga de energía eléctrica, comunicación telefónica, lo que disminuye los riesgos y costos de transporte.

Figura No. 35 Vivero Forestal en Restrepo (Valle), Cartón de Colombia

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2.1.2 Condiciones del suelo y fertilidad: Un buen suelo produce posturas superiores. Normalmente las condiciones físicas son más importantes que las características químicas; un tipo o textura de suelo liviano (arenoso), profundo, mínimo 30-40 cm., sobre subsuelo permeable. Los suelos de texturas arcillosas carecen de porosidad y permeabilidad, son difíciles de trabajar y las plantas encuentran dificultades para desarrollar el sistema radicular, estos suelos se agrietan y desecan fácilmente durante el verano y en invierno se inundan dificultando la extracción de las posturas; aunque estos suelos se pueden mejorar con la adición de cal, yeso, arena, carbón y materia orgánica. Se deben evitar también suelos pedregosos y de poco espesor, sobre subsuelos impermeables; deben estar libres de cementaciones como “hard pan” o “clay pan” y de todo tipo de capas endurecidas (se consideran aptos los subsuelos arcillo arenosos, francos, franco limosos o franco arcillosos). La fertilidad natural es de menor importancia porque puede ser mejorada con abonos o fertilizantes cuya dosis depende del resultado del análisis químico de laboratorio. Los suelos deben ser neutros o ligeramente ácidos en ningún caso alcalinos, con pH entre 5.5 - 7.0, para especies de hoja ancha, en casos especiales cuando se va a sembrar coníferas (Pinus - Ciprés), el ph. no debe exceder de 4.5- 6.0 ya que esta acidez favorece el control de enfermedades fungosas y no inhibe el crecimiento de las plántulas. 2.1.3 Abastecimiento de agua: El objetivo del riego es mantener en la capa superficial suficiente humedad para que las plántulas crezcan lo indispensable. El agua en el vivero es un elemento primordial, y debe estar situada de tal manera que pueda obtenerse fácil y económicamente durante todo el año, aún en el verano, cuando las necesidades del agua son más críticas. Si esto no es posible deben existir lugares donde se pueda almacenar y distribuir.

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Las cantidades de agua necesaria dependen de: • Área o superficie del vivero. • Estructura y textura del suelo. • Exigencias de las especies. • De la intensidad y frecuencia de las lluvias. • El método de riego. La calidad del agua de riego es tan importante como la cantidad. Se realiza un análisis químico que permita conocer la calidad y así evitar que se transmitan características indeseables a los suelos (aguas duras). 2.1.4 Topografía: El terreno ideal para un vivero debe ser de relieve plano y limpio de piedras, con buen drenaje. Si el suelo es franco o contiene arcilla, es preferible una pequeña pendiente del 0.5%-2%, con el fin de facilitar la evacuación del exceso de agua; en terrenos con pendientes mayores al 5% que ofrecen peligro de erosión es recomendable construir terrazas o bancales (aunque se necesita mucha mano de obra), deben desecharse los sitios encharcables o de mal drenaje. 2.1.5 Especies a propagar: El clima de la zona debe coincidir lo más estrechamente posible con las exigencias de la(s) especie(s) a propagar. Se ha observado que se encuentran pocas dificultades en la producción de plántulas, si el vivero se sitúa en un lugar que satisfaga la mayoría de las condiciones climatológicas necesarias para desarrollar en forma óptima la especie o las especies a propagar. Algunas experiencias han mostrado que la ubicación del vivero a una altura un poco menor del área a reforestar es conveniente, ya que la temperatura más cálida acelera el crecimiento de muchas especies y el material es más vigoroso y tiende a ser menos susceptible a las enfermedades.

73

Antes de definir el sitio donde se establecerá el vivero será necesario estudiar cada uno de los puntos enunciados, es evidente la dificultad en encontrar sitios que reúnan todas las condiciones anteriormente señaladas. Pero siempre hay que seleccionar de la mejor forma posible la calidad del sitio donde se va a ubicar el vivero mediante el criterio y la buena decisión técnica.

2.2 DISEÑO Y CONSTRUCCIÓN DEL VIVERO

2.2.1 Elaboración de planos: Una vez localizado el sitio, se mide la superficie del terreno, se levanta y se dibuja un plano donde se diseña y distribuyen detalladamente las distintas áreas y partes constitutivas del mismo, a fin de que sean lo más funcionales posible. El diseño tiene relación con el tipo de producción, la disponibilidad de recursos, equipo y técnicas que se emplearán. 2.2.2 Tamaño del vivero: El área o superficie del vivero está determinado por: • La cantidad de plantas a producir por cosecha, teniendo en cuenta que se le debe agregar un 10% por posibles pérdidas.

• De las especies que se han de producir. • Del tamaño requerido para las plántulas que determinan el tiempo de permanencia en el vivero.

• De las técnicas de producción (tamaño y tipo de los envases, grado de mecanización o laboreo manual), etc.

Un vivero consta de camas de germinación o eras de germinación, que son los lugares donde se realiza este proceso. Eras de transplante o de crecimiento donde las plántulas completan su desarrollo o crecimiento. Áreas de movilización por donde se produce el tránsito y circulación a través de caminos

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principales y secundarios. Cobertizos para almacenamiento de herramientas, oficinas, tanques de almacenamiento de agua, fosa composte, etc. Para el cálculo del área se pueden utilizar dos formas que se ilustran con dos ejemplos: una de ellas es el cálculo del área de semilleros y el área de transplante, al que se le agrega un porcentaje que corresponde a la superficie que ocuparían las otras instalaciones, porcentaje que pueda fluctuar entre 25% y 50% de la superficie calculada para semilleros y transplante. • Ejemplo 1:

Se necesita un vivero para producir 100.000 plántulas de Cordia alliodora con permanencia de 6 meses en vivero para reforestar 80 ha. anuales (40 por semestre). Teniendo en cuenta que: • Cada plántula ocupará 25 cm2 en el semillero (400 plánt./m2) • El sitio del transplante será un umbráculo de 200 m2 (10 m x 20 m.) • Ramada para vivienda y guardar la herramienta 60 m.2 (10 m. x 6 m.) • Fosa para composte 20 m.2 (10 m. x 2 m.) • Tanque para almacenamiento de agua 4 m.2 Cálculo: área de semillero.

1 plántula 25 cm.2 ( 5 x 5 cm. ) en 1 m.2 = ./25

000.102

2

plantcm

cm = 400 plánt./ m2

22

275%)10(./.400.000.110

mmplant

plant =

75

Área semillero 275 m.2 Área transplante 200 m.2 Área de ramada 60 m.2 Área fosa composte 20 m.2 Área tanque de agua

Total: 2

2

.560.559.4

maprox

m

=

560 m.2 → al 60 % Χ 100 %

Χ = 560 100

60

x = 933.33 aprox. 1.000 m. 2

El 40 % restante es para (caminos principales, caminos secundarios, canales de riego y drenaje) • Ejemplo 2:

Se necesitan producir 100.000 plántulas de Pinus patula con permanencia de 6 meses en vivero y con transplante a raíz desnuda, conociendo la calidad de la semilla. En este caso se calcula el área del vivero para una especie en particular; el Pinus patula. Se conoce que: 1 m.2 de semillero sostiene 400 plántulas (5 x 5 cm.2) = 25 cm2 1 m.2 de bancal (transplante) sostiene 125 plántulas (10cm. x 8cm.) = 80 cm2

76

__Determinar área del vivero: • semillero • bancal (transplante) • otras

__Cantidad de semilla: sabiendo que la calidad de la semilla es:

• de pureza y 80% de germinación • margen de elección en semillero 10% • margen de elección en transplante 5 %

Con los datos anteriores averiguar la cantidad de semilla necesaria para el programa. La fórmula para la semilla es: X = n. PG x PP x S x s. X = Nº final de plántulas de 1 kg de semilla n = Nº de semillas por kg. PP = Porcentaje de Pureza PG = Porcentaje de Germinación S = % de selección en Semillero s = % de selección en transplante X = ? n = 50.000 semillas/kg. PP = 90% PG = 80% S = 90% s = 95%

77

ΧΧΧΧ = 50.000 x , 9 x , 8 x, 95 x , 9 = 30.780 ΧΧΧΧ = 30.780 plántulas produciría 1 kg. de semilla 1 kilo produce → 30.780 plántulas Χ 110.000 plántulas

ΧΧΧΧ = 1 110 000

30 780

kilox plant

plant kg

. .

. ./ . = 3.57 kilos aprox. 3.60 kilos

Con los valores anteriores se procede a encontrar el área de semillero, área de transplante y área total. a. Área de semillero:

AsXxnxPPxPGxS

D=

D = Densidad en semillero 400 plánt./m.2

22

6,291/.400

9.08.09.0./000.50.6.3m

mplant

xxxkgsemillasxkAs ==

As = 291.6 m.2 aprox. 292 m.2

78

b. Área de transplante:

AtXxnxPPxPGxs

d=

d= densidad en transplante 125 plánt./ m.2

22

96.984/.125

95.080.090.0./000.50.6.3m

mplant

xxxkgsemillasxkgAt ==

At = 984.96 aprox. 985 m.2 c. Área total: La suma de las dos áreas anteriores es el 60% del área del vivero, el otro 40 % esta representado por caminos, calles edificaciones, sistemas de riegos y drenajes, etc. (292 m.2 + 985 m.2) = 1277 m.2 1277 m.2 → 60 % Χ 100 %

22

128.2%60

%100277.1m

xmAreaTotal ==

Área Total Vivero = 2.128 m.2

79

2.3 TRAZADO Y DISTRIBUCIÓN Con base en un plano del terreno, se hace la distribución y localización, a escala, de cada una de las partes que constituyen un vivero, donde se establecen las dimensiones y la forma de cada sección, según el tipo y sistema de producción a utilizar. Este trazado y distribución depende de la topografía local y otras condiciones naturales. El terreno debe tener en lo posible forma rectangular o cuadrangular y dividirse en varios lotes o secciones de formas geométricas regulares (rectangulares o cuadradas).

� En general un vivero consta de cuatro partes principales:

� Fosa de composte oficinas y bodegas

� Germinadores, bancales o semilleros

� Umbráculo y módulos de enraizamiento

� Sistema de drenaje

� Sistema de riego

Una forma aconsejable de diseñar el vivero es dividir el área en parcelas cuadradas de 10 m .x 10 m.=100 m.2 que serán las unidades básicas permanentes, separadas por caminos principales que tengan 5.0-7.0 m. de ancho, para que pueda realizarse la movilización de vehículos dentro del vivero. Las unidades de 100 m.2 resultan prácticas para los cálculos y controles (cantidades de semilla a sembrar, número de plántulas por parcela, tratamientos a realizar, etc.).

80

Estas unidades permiten dividir cada bloque en siete eras o bancales de 1m. x 10 m.=10 m.2 con caminos de 0.5 m. entre eras. De esta manera se facilita el trabajo para sembrar, limpiar, picar, plantar y transportar el material; desde los caminos. Otra área se destina al umbráculo o cobertizo de sombra, que se utiliza para ubicar el material transplantado y su tamaño (10 m. x 10 m. o 10 m. x 20 m.), depende de la cantidad de arbolitos que se van a proteger en algunos casos se construyen además cobertizos o módulos de enraizamiento para la reproducción asexual. En otras zonas se establecerán la fosa de composte, zanjas de riego y drenaje; y los tanques para almacenamiento de agua. (Ver figura No. 36). 2.3.1 Fosa para composte o estiércol artificial: Composte es el producto resultante de la descomposición del estiércol, mezclado con desperdicios vegetales como malezas, tamo, hojas, aserrín y residuos de cosechas. “Hacer composte” es mezclar y colocar en pilas o montones, diversos materiales de desechos animales y vegetales, de tal manera que al descomponerse se conviertan en humus. Esta descomposición se realiza por la acción de organismos como, bacterias y hongos en presencia de buena aireación.

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Figura No. 36 Croquis de un Vivero Forestal. Area total 5.400 m2.; capacidad 300000 plántulas, (1) Cobertizo: Germinación y criaderos. (2) Umbraculo; (3) Administración. (4) Tanque de almacenamiento de agua: Area de semillero (16 m x 10 m); Area de trasplante: ...... (23.5 m x 10 m).

82

2.3.1.1 Pasos para construir la fosa y preparar el composte: El tamaño de la fosa puede ser variable, pero las medidas más indicadas son las siguientes: 9.0 m. de largo x 4.0 m. de ancho x 0.9 m. de profundidad, en una de las esquinas la más baja de la fosa, se abre una pequeña zanja, para que salga el agua y los demás líquidos sobrantes de los materiales en descomposición. El hueco construido se divide a lo largo en tres compartimientos, de 3 m. cada uno, que se señalarán con estacas (guadua, madera) en el centro del compartimiento se colocan guaduas, que se retirarán cuando se realice el llenado. Para el llenado se procede de la siguiente manera: Primero se llena la sección B dejando libre la sección A para que haya espacio de volteamiento en una etapa posterior; a continuación se llena la sección C, en cada compartimiento se depositan los materiales en el siguiente orden: Una capa de 15-20 cm. de residuos vegetales (ramas, cacota, hojas, tallos, pasto, paja, malezas, etc.). Otra capa de 5-10 cm. de estiércol de (gallinas, cerdos, caballos, bovinos, conejos, etc.). La siguiente capa de 1-3 cm. de cal o cenizas. Concluidas estas capas se remojan con agua y se continuará con el llenado en el mismo orden hasta que sobresalga unos 60 cm. de la fosa de tal manera que la altura total alcanza 1.50 cm. Terminado el llenado del compartimiento se retiran las guaduas para facilitar la aireación y se colocan en el siguiente compartimento, tres semanas después del llenado de la fosa se procede a voltear los compartimientos para acelerar la descomposición; operación que se repite y a los cinco meses estará listo el composte. Una fosa como esta produce unos 15.000 kg. de material. 2.3.2 Sección de germinación: Es la sección del vivero donde se realiza la producción de plántulas; o sea, que es la superficie del vivero donde se ejecutan directamente las siembras de las semillas para la obtención de las plántulas de las especies seleccionadas.

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Existen diferentes tipos de semilleros que se pueden agrupar de la siguiente manera:

� Eras de germinación, -semilleros-.

� Cajones de germinación.

� Tubetes, bandejas o cubetas de germinación.

2.3.2.1 Germinadores o semilleros: Los lugares donde se produce la germinación de las semillas se conoce como eras para la germinación, semilleros o germinadores. Las eras construidas pueden ser fijas o enfalcadas, provistas de marcos de madera, ladrillos, cemento (tanque), guadua, palma, o construidas en tierra apisonada - terraplén -; el enfalque evita el arrastre del suelo y semillas por el viento y el agua, facilitando el cuidado de las plántulas. (Ver figura No. 37) Los germinadores tienen una altura variable y pueden estar desde el nivel del suelo hasta unos 25 cm. y su longitud desde (10-15 m.), con un ancho de 1 m. En terrenos pendientes, las eras son diseñadas de acuerdo con la inclinación del terreno, mediante variaciones en los taludes para impedir la caída de la era y garantizar que esté nivelada.

Figura No. 37 Bandejas de cubetas levantadas sobre el suelo. Vivero Restrepo (Valle)

84

2.3.2.2 Cajas de germinación: Las cajas de germinación pueden ser de

concreto, ladrillo con cemento, madera o guadua. Estas tienen de 2.0 a 3.0 m.

de largo x 1.0 a 1.2 m. de ancho x 0.80 a 0.90 m. de altura, con el fin de facilitar el trabajo de los operarios.

En dichas cajas se coloca una capa de 45 a 60 cm. de piedra en bloque, a la

cual se le sobrepone, otra capa de 15 a 20 cm. de arena gruesa, y

posteriormente el sustrato compuesto por capas de arena fina, limo, carbón o

vermiculita con un espesor de 15 a 20 cm., donde se riega la semilla

Las cajas de madera son de poca profundidad y de 0.45 m. de largo, 0.30 m. de ancho y 0.10 m. de profundidad, en estas se deposita una capa de guijarros

finos, recubierta con arena fina lavada o tierra tamizada, estos dan buen

resultado si se mantienen con bajo nivel de humedad.

2.3.2.3 Otros recipientes de germinación: Existen otros recipientes de

germinación de uso reciente, como son:

Tubetes de poliuretano, que vienen en forma individual o en forma de bandejas o cubetas de 12, 24 y 40 cavidades o conos, los de 24 tienen unas dimensiones

de diámetro superior a 6.0 cm., de diámetro inferior 2.0 cm. y una profundidad

de 15.0 cm. Los semilleros de 40 conos tienen un diámetro superior a 4.0 cm.,

su diámetro inferior es de 1.7 cm. y una profundidad de 12.0 cm. Estos conos

poseen internamente varias aristas cuya función es direccionar la raíz en forma

natural, cuando la raíz sale de los conos ésta es podada por el viento y la luz, ya

que generalmente se colocan en una parte alta sin tener contacto con el suelo.

(Ver figuras No. 38, 39, 40, 41)

85

Figura No. 39 Cubetas de germinación de varios tamaños

Figura No. 40 Cubetas de germinación con Bombacopsis quinata

Figura No. 38 Manipulación de cubetas de germinación con Eucaliptos grandis. Vivero Restrepo(V)

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Vasos y bandejas para propagación, enraizamiento y germinación, son fabricados en poliestireno de color negro, que pueden ser individuales o en cubetas y bandejas que van desde 32 cavidades, con un área por cavidad de 34.8 cm2 hasta 406 cavidades con 2.3 cm.2 de área. (Ver figuras No. 42, 43 y 44).

Figura No. 42 Plántulas de Gmelina arbórea en Jiffy

Figura No. 41 Direccionamiento de las raíces en plántulas germinadas en tubetes

87

Cubetas de icopor, estos sistemas son reutilizables, lo que reduce los costos y hace más fácil su transporte. Otro conjunto de envases y germinadores son los

Figura No. 43 Eucalytus grandis sembrado en Jiffy

Figura No. 44 Sistemas para: Germinación, Propagación y Enraizamiento

88

biodegradables como el papercot y el fertilpot, que son macetas de celulosa -papel- individual o cubetas con o sin fertilizantes, que se plantan directamente con el arbolito y se convierten en elementos asimilables por ésta. Los Jiffy 7 son Pellets con pastas de turba molida que está contenida en pequeñas mallas que en contacto con el agua se expanden y absorben aproximadamente 7 veces su peso en agua. Las fibras de musgo esfágneo (Sphagum), se expanden al humedecerse, éste es la base de este comprimido, las semillas germinan en un medio musgoso consistente. Las raíces salen en forma natural de los lados del comprimido y son podadas por el aire en el semillero. (Ver figura No. 45). Los comprimidos Jiffy vienen en varios tamaños según el sistema de siembra. La siembra de la semilla se realiza después que los pellets están húmedos y expandidos, colocando la semilla en el centro de la parte superior, a los 2, 3, 4, 5, 6, 7 meses de sembrada, dependiendo del tamaño del Pellet, se llevan al campo para la plantación definitiva, pudiéndose transportar en bandejas, cajas o sacos como se observa en la foto. 2.3.3 Umbráculos o enramadas: Proporcionan la media sombra que necesitan algunas especies forestales en etapa de germinación para protegerlas contra la radiación solar, y la acción mecánica de la lluvia en el momento del transplante. Es necesario construir techumbres, enramadas o umbráculos, que

Figura No. 45 Comprimidos de Jiffy antes y después de la germinación

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brinden un medio de germinación con variaciones menos bruscas de humedad y temperatura, para evitar que la semilla quede al descubierto. Por otro lado, el transplante debe realizarse bajo sombra total y las plantitas recién repicadas deben conservarse por lo menos durante los primeros 10 o 20 días en estas condiciones, no solo para protegerlas de las condiciones climáticas, sino también para que la plantita reasuma sus funciones fisiológicas. Pasado el período mencionado anteriormente se le proporciona paulatinamente luz, hasta alcanzar el 100% que se consigue a pleno sol. Los techumbres se construyen de materiales como: guadua (esterilla), caña brava, hojas y tallos de palma, madera (listones y cercos), y saran (malla y polisombra); que pueden tener dimensiones variables, estas oscilan entre 2.0 y 2.50 m. de altura x 8.0 m. de ancho x 10.0 de largo de acuerdo con la capacidad o necesidad del vivero, que facilite la circulación de personas, y una o dos aguas con cierta inclinación, que permita el escurrimiento de aguas lluvias, pues cuando cae al interior en forma de chorro grueso continuo, produce pequeños huecos en las macetas, perjudicando a las plantitas cuando quedan las raíces al aire. (Ver figuras No. 46 y 47).

Figura No. 46 Enramada para el transplante de árboles. Granja Armero (U.T.)

90

2.3.4 Sistema de drenaje (zanjas y canales): Con el fin de evitar inundaciones y encharcamientos de los viveros, que causan pérdidas por ahogamiento de las plantitas en los semilleros o camas de transplante, especialmente en los terrenos con topografía plana, o con mal drenaje interno, se hace necesario construir drenajes superficiales o subterráneos, que puedan ser en tubería o zanjas revestidas con piedra, pasto o cemento. Uno de los sistemas empleados de drenaje es el de “espina de pescado” que consiste en un canal colector principal que corre por el centro del vivero en el sentido de la pendiente, a este colector caen a derecha e izquierda canales laterales en un ángulo de 45º. El sistema puede hacerse con tubería de barro perforado por la parte superior. Cuando se construyen canales a nivel de la superficie del suelo, estos se localizan lateralmente al lote, y es conveniente revestirlos de cemento, piedra o grama para evitar la erosión. El trazado de las zanjas de drenaje, depende de varios factores entre otros: • Forma y pendiente del terreno • Textura y composición del suelo • Cantidad de agua a evacuar • Clima

Figura No. 47 Transplante de árboles Granja Armero (U.T.)

91

2.3.5 Sistemas de riego: La irrigación en viveros forestales es indispensable, con excepción de las zonas típicamente pluviales. El sistema de riego debe ser objeto de una cuidadosa planificación. El diseño del sistema depende de: • La extensión del vivero • El clima -principalmente del régimen de lluvias- • La textura y estructura del suelo • Las exigencias de las especies (sistema radicular y área foliar) El abastecimiento de agua debe estar asegurado para todo el año, y especialmente para las épocas críticas (verano). La cantidad de agua usada para la producción de un cultivo se denomina “uso consuntivo” o “evapotraspiración” y es el agua transpirada por las hojas de las plantas y evaporada del suelo húmedo. Parte de las necesidades del uso consuntivo pueden satisfacerse con la lluvia caída durante la época vegetativa, o por las precipitaciones anteriores que quedan almacenadas en el suelo. La lluvia que se escurre superficialmente o que penetra por debajo del nivel de las raíces, no puede aprovecharse. “Lluvia efectiva”, es la que queda retenida en la zona radicular. La cantidad de agua necesaria para satisfacer la demanda de las plantas, que se debe agregar por riego, además de la lluvia efectiva, se denomina “uso consuntivo del agua aplicada”. 2.3.5.1 Riego superficial: Se realiza mediante la distribución del agua sobre la superficie, haciendo que el agua fluya sobre el suelo del vivero. Se debe disponer de algún medio para regular el agua de modo que penetre a los bancales a la altura adecuada del suelo, con el fin de suministrar a la planta el agua necesaria. Todos los métodos de riego superficial tienen en común ciertos principios básicos.

92

El riego debe establecerse en el terreno en su parte más alta para que el agua fluya hacia la más baja. Las áreas donde se aplica se dividen en unidades de tamaño y forma adecuada. Los sistemas de distribución pueden ser abiertos o por tuberías. El método de riego puede ser: a. Riego por compartimientos (sistema abierto)

b. Riego por goteo (sistema por tubería)

c. Riego por aspersión (sistema por tubería) a. Riego por compartimientos: Consiste en represar, superficialmente, el agua de los canales del sistema de riego, mediante malecones, lomos, terraplenes o diques, para que por desbordamiento circule por las calles de los semilleros y los humedezca, por capilaridad. De esta manera el riego puede controlarse porque los compartimientos se llenan hasta el nivel necesario. El agua puede ser retenida en ellos hasta que se infiltre en el suelo.

b. Riego por goteo: La aplicación de agua a través de tuberías con pequeños orificios se conoce como riego por goteo, estos orificios están calculados para una emisión de agua de un número determinado de litros por hora. El agua llega hasta los orificios a través de tuberías de plástico que por lo general se tienden sobre la superficie del suelo. El gasto se determina por el tamaño de los orificios y la presión. c. Riego por aspersión: Consiste en la distribución del agua sobre la superficie del suelo, mediante tuberías con molinetes o dispersores que por efecto de la presión del agua, la distribuyen automáticamente, en forma de gota fina y uniforme, que es la mejor imitación de la lluvia, facilitando la penetración del agua en el suelo, evitando que corra por la superficie y erosione o produzca encharcamiento, ya que la cantidad de agua se regula fácilmente, porque la velocidad de aspersión o aplicación requerida es regulable o determinable. (Ver Figuras No. 48 y 49)

93

Figura No. 48 Sistema de riego por aspersión

Figura No. 49 Aspersor en funcionamiento en vivero de Zambrano, Bolivar. (Pizano S.A).

94

2.4 PREPARACIÓN DEL SITIO PARA EL VIVERO Si el terreno seleccionado para la construcción del vivero, está ocupado por árboles, arbustos, gramíneas, lo más conveniente es efectuar una o más cosechas agrícolas. Las cosechas más aconsejables son abonos verdes como: crotalaria, kudzú, alfalfa, fríjol, soya, etc. Para que la preparación del sitio sea mejor se deben realizar las siguientes actividades: • Eliminación de árboles, arbustos, piedras, etc. Si es posible arrancándolos de raíz y quemándolos.

• El suelo se debe roturar o arar con tractor o azadonear a una profundidad de 20 a 30 cm., con el fin de airearlo, evitando traer el subsuelo a la superficie.

• Después se rastrilla una o dos veces con rastras de discos, para despedazar la vegetación, acelerar la descomposición de la materia orgánica y desintegrar los cespedones endurecidos del suelo

• Posteriormente se nivela el terreno convenientemente y se le da una ligera pendiente entre 1-2% que facilite el movimiento del agua de -lluvias, riegos y drenajes- sin que cause erosión.

La aireación, la retención del agua y la facilidad para el desarrollo radicular, son condiciones importantes en la preparación de las camas de germinación o transplante. Toda la vegetación se debe remover después de trabajar con pica, pala y rastrillos tratando de que la tierra quede bien suelta y mullida, utilizando un tamiz con malla de 2 a 3 cm. de diámetro o si es posible una máquina moledora de tierra, que después se apisona y nivela con un rodillo o tabla, de ésta manera se evitan los huecos; otras veces se prepara agregando 50% de tierra negra suelta y 50 % de arena, produciendo una mezcla 1:1 que favorece el desarrollo de las semillas, sobre todo las pequeñas.

95

Cuando se utiliza solamente arena es recomendable germinar semillas grandes, por la rápida pérdida de humedad. En suelos pesados (arcillosos) se puede mejorar la textura con cal, arena, yeso, humus, vermiculita u otros productos especiales para aumentar la porosidad. En aquellos suelos pobres en nutrientes se deben aplicar abonos, o fertilizantes, conforme a los resultados del análisis químico, teniendo en cuenta las exigencias de las especies. Por lo general son a veces más recomendables los fertilizantes orgánicos, porque no sólo aumentan las propiedades químicas sino las físicas.

2.5 DESINFECCIÓN DEL SUELO En el suelo coexisten numerosos organismos como insectos, patógenos, virus y bacterias, que cumplen papeles importantes en la actividad biológica y en la descomposición y asimilación de nutrientes. Sin embargo, algunos de estos organismos causan daños y ataques a las semillas o plántulas recién germinadas que pueden dar al traste con la producción de plántulas. La desinfección del suelo, es la acción de eliminar de este determinados gérmenes patógenos -parásitos animales y plantas indeseables de vida subterránea-. Los métodos más usados en esta actividad son: � Tratamientos a la semilla. � Tratamientos al suelo: físicos. � Tratamientos al suelo: químicos. 2.5.1 Tratamientos a la semilla: Para realizar estos tratamientos se emplean productos químicos como Arasan, que es un polvo seco, y que se aplica 0.5 a 1.0 gramo por kilo de semilla en forma homogénea y Vitavax 300, polvo seco, se aplica 0.5 a 1.0 gr. por kilo de semilla homogéneamente.

96

2.5.2 Tratamientos al suelo (métodos físicos): Los tratamientos al suelo se puedan realizar mediante:

• Calor: Desinfección con calor, utilizando agua caliente, -calor húmedo- o vapor de agua -calor seco-. Este método es aplicable sólo en pequeña escala por los costos, ya que se necesita una caldera transportable que suministre el vapor de agua a temperaturas altas, de 90°C a 10-0°C. Este se aplica en los primeros 10 cm. de suelo, durante 1 hora o con temperaturas entre 45°C y 50°C durante 10 horas, después de aplicado se cubre con sacos limpios durante 24 horas, y una vez frío se puede sembrar a los 3 o 4 días. Este tratamiento también actúa como un herbicida.

• Fuego: Consiste en hacer montones pequeños de restos orgánicos como trozos de madera, hojas, tallos y ramas, en diferentes sitios de la superficie de las eras, a las cuales se les prende fuego y a los 3 o 5 días después de realizada la quema se puede sembrar el semillero.

2.5.3 Tratamientos al suelo (métodos químicos): Estos tratamientos se pueden realizar mediante: • Formol: El procedimiento más utilizado es la desinfección del suelo con formol “formol dehído” que contiene (40% de formol) con gran poder desinfectante. Para esto se prepara una solución compuesta de 20 cc. de formol y 1 litro de agua para cada 1 m.2 de suelo, la cual riega uniformemente y como es un producto volátil, para que su aplicación resulte eficaz, se cubren las eras con poliétileno o periódico, para evitar la evaporación del formol; a los 4 o 5 días se destapa y se remueve el terreno con un rastrillo y a los 2 o 3 días se puede sembrar. Tiene el inconveniente que destruye todos los microorganismos del suelo, inclusive a los benéficos.

• Ditrapex: Líquido insoluble en agua, producto a base de hidrocarburos clorados, muy volátil, actúa sobre patógenos, nemátodos y malas hierbas, se utiliza el producto a razón de 30-60 c/c. por m.2 de suelo.

• Caldo de Bordelés: Se aplica en proporción de 2 a 5 litros por m.2 de suelo, una semana antes de la siembra. Este producto se prepara mezclando: 100

97

gr. de sulfato de cobre en 5 litros de agua con 100 gr. de cal viva en 5 litros de agua.

• Bromuro de Metilo: Gas, llamado (Dowfume) Fumigante muy usado, se aplica bajo una tela plástica a razón de 1 libra de gas por 10 m.2 de suelo. Es muy efectivo en el control del mal de semillero y tiene cualidades insecticidas y herbicidas.

• Vapam: Es un líquido compuesto por ditiocarbonato metil sódico. Se aplica en una proporción de 100 c/c. por 1.5 galón de agua o, 1 litro por 15 galones de agua por 10 m.2 de era, de tal manera que penetre el suelo. La siembra se puede realizar 2 semanas después de aplicado. Este producto es herbicída, nematicída, fungicída e insecticída.

• Basamid. Se humedece el sustrato y se agrega 5 g. de basamid por metro cuadrado. Se cubre con un plástico por 5 días y después se airea y remueva durante 2 días.

2.6 SIEMBRA DE LAS SEMILLAS Constituye la acción de distribuir las semillas y enterrarlas en las camas, en las mejores condiciones posibles. Esta acción incluye dos variables importantes: la profundidad y la densidad (Ver tabla No. 3). (Ver figura No. 50).

98

Tabla No. 3 Manejo de vivero para especies forestal es según técnicas de siembra y transplante .

ESPECIE PROFUNDIDAD SIEMBRA cm.

ALTURA TRANSPLANTE cm.

NECESIDAD SOMBRÍO DENSIDAD SIEMBRA

PLÁNTULA/ m2 ACONSEJADA

A. mearssil A. melanoxylon A. decurrens Alnus jorullensis Anacardium excelsium Cariniana pyriformis Cedrela sp. Cordia alliodora Cupressus sp. Gmelina arbórea Jacaranda copaia E. globulus E. camandulensis E. grandis

1 - 1.5

1 - 1.5

voleo superficial

superficial y ojalá horizontal la posición de

la semilla

cubierta una vez el diámetro

1.5 cm. con ala

voleo superficial

capa de 5 mm. al cm. de espesor

cubierta superficial

muy superficial

capa 2 veces su tamaño

superficial

8 - 10

8 - 10

5 - 10 _

fósforo con hojas cotiledonares

5 - 8

8 cm.

8 - 10

15 - 20

con 2 - 3 pares hojas cotiledonares

5 - 7

5 - 7

5 - 7

No No No Si

mientras germina a trasplante

Si Si No

germinación y transplante _ No Si Si Si

600 - 1.000

600 - 1.000

500 - 800

200

a 3 cm.

1.000

1.500

600 - 1.000 90

1.000 riego fino a 2 cm. de distancia voleo

1.500

1.500 - 1.600

1.500 - 1.600

99

ESPECIE PROFUNDIDAD SIEMBRA cm.

ALTURA TRANSPLANTE cm.

NECESIDAD SOMBRÍO DENSIDAD SIEMBRA

PLÁNTULA/ m2 ACONSEJADA

E. saligna E. tereticornis E. deglupta E. viminalis E. citriodora Pînus pátula Pinus caribaea Pinus oocarpa Pinus kesiya Pinus tenuifolia Pinus radiata Cariodendrum ofrinocense Juglans neotropical Ochroma lagopus Tabebuia rosae Tectona grandis Terminalia ivorensis

superficial superficial

hilera superficial

superficial

superficial

_

2 1 cm. 2 _ _ _ _

2 debe quedar tapada

ligeramente cubierta

muy superficial

superficial hasta 1 cm.

5 - 7

5 - 7

5 - 7

5 - 7 _

fósforo

fósforo

fósforo

fósforo

fósforo

fósforo _

una vez germinada 10

hasta 15 _

Si No No Si _ _ _ _ _ _ Si Si Si Si Si Si

_ _ _

1.500 - 1.600 _

600 - 6.000

600 - 6.000

600 - 6.000

600 - 6.000

600 - 6.000 _

300

con 1 cm. de separación

800

800 - 1.200 _

100

ESPECIE PROFUNDIDAD SIEMBRA cm.

ALTURA TRANSPLANTE cm.

NECESIDAD SOMBRÍO DENSIDAD SIEMBRA

PLÁNTULA/ m2 ACONSEJADA

Terminalia superva

_

superficial

superficial

con hojas cotiledonares

hojas cotiledonares

_

1.000 _

Tomado y adaptado de: TRUJILLO, E. 1992.

101

2.6.1 La profundidad: Para la germinación de las semillas se requiere la presencia en el suelo de aire, humedad, calor, etc. Por lo tanto las semillas no deben sembrarse profundas, para facilitar la salida de la plántula a la superficie del suelo. En muchos casos el éxito de la siembra depende de la profundidad en que se encuentre la semilla, porque si ésta se entierra excesivamente, no sólo se retarda la aparición del brote, sino que va a ocasionar su pérdida, debido a que debe vencer un volumen de suelo superior a sus fuerzas. Cada especie tiene exigencias en relación a las condiciones de germinación. Por eso para establecer la profundidad de siembra, algunos autores recomiendan que se debe sembrar la semilla, a una profundidad de 1 o 2 veces su diámetro, pero en semillas grandes resulta excesivo; por ejemplo en el Caryocar amigdalíferun, Nogal (Juglans neotropical), Roble (Quercus humbolti). En otros casos de semilla pequeña como Ensenillo (Weimania sp.), Eucalyptus sp., Alnus (Aliso sp.) etc. Al sembrarlas al doble de su diámetro quedan expuestas al sol y al aire que las resecan y a los pájaros que las consumen. La semilla se debe sembrar a una profundidad tal que, el riego no la destape, y gaste la menor cantidad de energía posible para salir a la superficie. (Ver tabla No. 3)

Figura No. 50 Vivero forestal siembra de semilla y preparación de pseudoestacas

102

2.6.2 La densidad: Es el número de plántulas que se pueden obtener por unidad de área. Generalmente se usa como unidad el metro cuadrado -m2 -, y está relacionada con el área vital que requiere cada plántula para su germinación y desarrollo normal. Los requerimientos de cada especie dependen de: • El tamaño de la semilla. • La forma general de los arbolitos. • El desarrollo radicular y aéreo. • El tiempo que permanecerán en el semillero. La cantidad de semilla necesaria se calcula por la siguiente fórmula:

GxNkgxX

m

NxDAm

Ckg %

22

=

C = Cantidad de semilla en kg.

A = Superficie en vivero en m2

G = Porcentaje de germinación expresado en decimales

N = Número de semillas en kg.

D = Densidad de siembra No. de plantas por m2

X = Factor de seguridad que varía por muchas razones: este varía entre 0.6 y 0.9 según la condición del vivero.

Ejemplo: Deseamos conocer la cantidad de semilla de Tachuelo (Xantoxylon Sp.), que necesitamos para 50 m2 de semilleros, si sabemos que: A = 50 m2 G = 0.90

103

N = 10.000 semillas/kg.

D = 200 plánt./ m2 C = 50 200

0 9 10 000 0 9

1

0 81

2 2m x plant m

x sem kg x

kg./

. . ./ . .

.

.=

X = 0.90 C = 1.234 kg. Se necesita distribuir 1.234 kg. de semilla en los 50 m2 de era. La cantidad de semilla requerida es muy variable y depende de varios factores: • cantidad requerida de plantas. • de las especies utilizadas. • pureza de las semillas. • porcentaje de germinación. • método de siembra. Otra fórmula para calcular la cantidad de semilla necesaria: C = cantidad de semilla en gr. D = densidad deseada por m.2

N = número de semillas por kg. CD

N

m

Nkg xP xG xF=

=2

. % %

P = pureza en tanto por 1. G = germinación en tanto por 1.

104

F = factores de seguridad que varían de 0.6 - 0.9 según la condición del vivero.

2.7 MÉTODO DE SIEMBRA Las semillas en la era de germinación pueden sembrarse así: a. Siembra al voleo.

b. Siembra en líneas -surcos o zanjas-.

c. Siembra a golpe.

a. Siembra al voleo: Las semillas se esparcen uniformemente sobre los bancales -eras-, procurando que la densidad de su distribución sea homogénea para toda la era . La semilla se esparce a mano si el operador tiene habilidad para distribuirla uniformemente; algunas veces se ha usado la mecanización con sembradoras. Cuando las semillas son pequeñas se utilizan latas perforadas o teteras con tapas de salero, para lograr la distribución, en éste caso se pueden mezclar con arena fina. Este método se utiliza para semillas pequeñas y livianas como: Eucalyptus Sp., quina (Cinchona Sp.), ensenillo (Weimania Sp.), Casuarina (Casuarina equisitifolia).

Las ventajas y desventajas de esta siembra son:

VENTAJAS DESVENTAJAS • Método rápido y económico. • Resulta difícil lograr una distribución

uniforme.

• Útil para las semillas pequeñas y

livianas.

• Se necesita mayor número de semillas..

• Resulta difícil una densidad uniforme.

105

b. Siembra en líneas: Es el método más utilizado ya que la semilla se distribuye uniformemente en cantidad y profundidad, lográndose así una germinación más pareja. En este método de siembra, la distancia a escoger varía según las especies, como es el caso de algunos Eucalyptus, Pinus, Cupresuss, Thuyas, Cedrelas, Casuarinos, Acacias, Tabebuyas donde se utilizan distancias de 5-10 centímetros dentro de las líneas y 10-15 centímetros entre las líneas. Estas líneas son generalmente transversales o longitudinales, que se trazan previamente con una regla, cuerda o tabla que se calibra para tal fin y en algunos casos se adaptan rodillos. (Ver figuras No. 51, 52, 53, 54).

Figura No. 51 Trazado en líneas de un vivero forestal

106

Figura No. 52 Trazado en líneas de un vivero Forestal

Figura No. 53 Trazado sobre la era de germinación, para semillas de Ceiba

Figura No. 54 Siembra de semilla de Ceiba

107

Si las plántulas salen directamente del almácigo al sitio definitivo de plantación, las distancias serán mayores. Las semillas se distribuyen uniformemente en las zanjillas a mano, o con tablas de madera que tienen ranuras equidistantes por donde se deslizan las semillas. En los lugares tecnificados se utilizan máquinas sembradoras o pequeños tractores que surcan y siembran a la vez. La siembra en surcos y líneas se utiliza para semillas de tamaño mediano o pequeño, como Pinus, Cedrela, Switenia, Tabebuia, etc. Este método logra una germinación más pareja y su manejo como limpias, fertilización y raleos se logra más fácilmente.

c. Siembra a golpe: Se abre para cada semilla un hueco individual, distanciado (10 cm.x 15 cm.), (10 cm.x 20 cm.), este sistema se utiliza para semillas grandes; con elevado poder germinativo. Semillas como las de Carapa qüianensis, Yuglans neotropical, Quercus humboltii, Caryodendrum orinocensis, Decussocarpus rospiglosii, Mora magitosperma, tienen como ventaja el que puedan sembrarse pocas por unidad de superficie y evitar el transplante. 2.7.1 Recipientes para la siembra de la semilla:

• Siembra en cajones: Consiste en sembrar las semillas en cajones de madera que tienen 40-50 cm. de lado y 10-13 cm. de profundidad, este tamaño nos permite unas 50 plántulas distanciadas a (5 cm.x 5 cm.), dichos cajones pesan entre 25 y 30 kilos. El piso deberá estar agujereado para facilitar el drenaje.

• Siembra en macetas: El método consiste en sembrar una o dos semillas, por envase o recipiente, -dependiendo de la calidad de la semilla-, se utilizan para ello bolsa plástica, tubetes de poliuretano, vasos y bandejas de germinación, “Jiffy Pot” Pellets, etc., que una vez producida la germinación se pueden ralear. Estos sistemas son ampliamente utilizados en la actualidad debido a que se obtienen plántulas en menor tiempo y a bajo costo, teniendo la ventaja que la plántula por desarrollarse en el recipiente definitivo no tiene el stress del

108

transplante, se recomienda para plantaciones en zonas secas y erosionadas. (Ver figura No. 55)

2.8 ÉPOCA DE SIEMBRA La siembra se debe practicar en el momento preciso, para que las plántulas, tengan el tamaño óptimo en la época de plantación, generalmente entre 25 y 30 cm., altura que alcanzan a los 6 y 9 meses dependiendo de la especie. El tiempo necesario para la permanencia del material, entre la siembra de la semilla y la plantación en el campo depende: a. de las características de la especie. b. del clima y la fertilidad del suelo. Si se trata de viveros de tamaño considerable, la siembra de la semilla debe ser escalonada para facilitar la programación de las actividades en el tiempo: Por ejemplo se debe sembrar ¼ parte de los semilleros por semana durante 1 mes, para así facilitar el transplante, de tal manera que no vaya a haber acumulación de material en el área del transplante por imposibilidad de su siembra.

Figura No. 55 Simbra de semillas en bolsas de polietileno

109

2.9 CUIDADOS POSTERIORES A LA SIEMBRA DE LA SEMILLA Son labores culturales aquellos cuidados que son indispensables para el buen desarrollo del material vegetal.

Comprende el período de vida desde la siembra de la semilla, hasta la obtención de arbolitos de buena calidad, listos para la plantación definitiva. 1 Son entre otras: Control de malezas y plantas competidoras, riegos, protección contra insectos patógenos, aves y otros animales, aplicación de abonos y fertilizantes. 2.9.1 Riego: Es de gran importancia, ya que la humedad es uno de los factores que desencadenan los procesos germinativos en la semilla, éste se debe aplicar en la etapa inicial hasta 3 y 4 veces al día, se disminuye en la medida en que las plántulas vayan creciendo hasta llegar a dos riegos por día uno en la mañana (hasta las 9 a.m.) y otro en la tarde (después de las 3 p.m.).

1 Tomado y modificado: Trujillo Navarrete E. Manejo de Semillas, Vivero y Plantación Inicial.

Eliminación de malezas

Riego

Producción vegetal

Protección contra insectos y patógenos

Fertilización

Figura No. 56 Manejo y cuidado posteriores para la siembra de las semillas

110

2.9.2 Control de plantas indeseables (malezas): La competencia de las plántulas causada por las malezas y vegetación indeseable, puede llegar a frenar su desarrollo, y si éste factor no es controlado puede llegar a causarle la muerte al competir por luz, humedad, nutrientes, etc. Existen 2 métodos de control: método manual y método químico. Método manual: Generalmente se realiza a mano, después de un riego moderado del vivero, se arrancan las malas hierbas, apenas aparecen. Esta operación se debe realizar una vez por semana, en las zonas húmedas y quincenalmente en las zonas más secas. Método químico: Como las labores de deshierbe requieren mucha mano de obra, se están utilizando herbicidas que son usualmente más baratos que los controles manuales. En la aplicación de herbicidas se debe tener en cuenta: • Las indicaciones de la fórmula • Las dosis • El tiempo de acción • Las condiciones de humedad • Los métodos de aplicación ya que estas sustancias son tóxicas Hay 4 clases de herbicidas para vivero:

a. Herbicida para antes de la preparación del terreno se utiliza para eliminar las semillas más profundas. Ej.: Glifosato y Paraquat.

b. Herbicida para antes de la siembra, elimina cualquier semilla que haya quedado el producto deberá volatizarse o volverse inactivo en el suelo, antes que germinen las semillas y no tener efectos residuales. Ej.: Paraquat.

111

c. Herbicida pre-emergente, aplicado entre la siembra y la germinación de la

semilla, no debe interferir con la germinación y, se debe controlar el

desarrollo de la plántula, la aplicación se puede efectuar hasta 3 días antes

de la germinación. El goal se aplica a razón de 0.25 cm3/m2 de era. Ej.:

Chlorthal, Propazine, Diphenamid.

d. Herbicida post-emergente, es un químico relativamente suave. Ej.:

Diphenamid.

2.10 ENFERMEDADES QUE PRODUCEN PODREDUMBRE

� Damping off o Salcocho: Esta es la enfermedad más importante en el

trópico en los viveros. Es frecuente en condiciones ambientales que

favorezcan su desarrollo tal como: exceso de humedad, siembras muy

densas, sombra excesiva, poca ventilación; ataca las plántulas recién

germinadas y las de mayor edad de cualquier especie (Latifoliadas o

Coníferas), las plántulas mueren debido a la pudrición del tejido cercano al

cuello de la raíz, causado por varias especies de hongos entre ellos:

Phytophtora, Pythium, Fusarium, Rhizoctonia, Penicillium.

La enfermedad aparece primero como un parche y después se esparce, llegando

a causar un 50% de mortandad, y aún en algunos casos el 80% de las

plántulas de Pinus Pátula, Pinus Merkusii en ataques severos.

Enmohecimiento: Esta es una enfermedad del follaje que ataca las plántulas de

cualquier tamaño, la favorecen las condiciones de humedad y temperatura baja.

Es causado por hongos como Botrytis y Penicillium, que pueden hacer mucho

daño a los Pinus y Eucaliptos.

2.11 CONTROL DE ENFERMEDADES POR HONGOS Algunas prácticas culturales pueden reducir los riesgos:

112

• Limpieza del vivero. Ningún lugar debe almacenar desperdicios por largos períodos, donde los hongos y semillas puedan desarrollarse.

• Cuarentena. Se efectúa para prevenir enfermedades en el suelo. Es de suma importancia en los viveros que siembran a raíz desnuda utilizando la tierra varias veces. (Ver tabla No. 4)

• Esterilización del suelo. Es el tratamiento que se aplica al suelo antes de la siembra para eliminar nemátodos, insectos, patógenos de hongos; también se eliminan muchas semillas de malezas.

• Riguroso control de los niveles de humedad, no excediéndose con el riego, teniendo en cuenta las condiciones físicas del suelo, la ventilación, el sombrío, el drenaje; en caso extremo se controla la enfermedad con fungicidas como: Cuprox, Benlate, Dithanem-45. En los siguientes cuadros se reseña las principales enfermedades encontradas en viveros forestales en Colombia.

113

Tabla No. 4 Problemas fitosanitarios detectados en viveros forestales

ESPECIE EDAD PARTE AFECTADA SÍNTOMAS AGENTE CAUSAL RECOMENDACIONES PARA PREVENCIÓN y/o CONTROL

Cupressus sp. Fraxinus chinensis Pinus patula E. globulus Pinus patula

2 meses 4 meses 7 meses 2 meses 1 mes 4 meses 5 meses 1 ½ años

Toda la plántula Hojas Hojas Toda la plántula Tallo y hojas Tallo y hojas Tallo y hojas Acículas

Necrosis de la raíz. Amarillamiento de agujas. Necrosis de cogollos y del sistema vascular. Estrangulamiento del tallo y enrojecimiento de agujas. Necrosis de las hojas y/o tallo. Puede ocasionar la muerte de toda la plántula. Enrojecimiento de hojas, muerte de toda la plántula

Phoma sp.

Fusarium sp.

Fusarium sp.

Fusarium sp.

Botrytis sp.

Botrytis sp.

• Tratar el suelo antes de la nueva siembra

con Terrazole, Vapam o Ditrapex. • Seleccionar la semilla y tratarla con Vitavax o Brassicol.

Botrytis cinerea: • Eliminar las plántulas que presenten síntomas avanzados de la enfermedad y ramificación de tallo.

• Tratar las plántulas con inicios de la enfermedad y las que estén alrededor del material afectado con aplicaciones alternas de fungicídas tales como benlate, Orthocide o dithane M-45.

• El material vegetal que se almacene debe tener buena aireación y baja acumulación de agua. Se debe revisar permanentemente y eliminar el material enfermo.

114

ESPECIE EDAD PARTE AFECTADA SÍNTOMAS AGENTE CAUSAL RECOMENDACIONES PARA PREVENCIÓN y/o CONTROL

Acasia mollísima Alnus jorullensis Pinus kesiya Quercus sp. E. tereticornis Tabebuia sp. Tectona grandis

5 meses 5 meses 5 meses 6 meses 1 ½ años 2 meses 3 meses 5 meses

Hojas Hojas Raíz Acícula Hojas Hojas Hojas y Yemas Hojas

Necrosis de hojas, presencia de un polvo blanco por el haz. Necrosis de hojas, presencia de un polvo blanco en la hoja. Necrosis de hojas. Secamiento de agujas Manchas amarillo ladrillo que se localizan en el ápice de las hojas. Mancha foliar. Roña. Deformación de hojas y yemas terminales. Manchas irregulares rodeadas por un borde rojizo, con estructuras

Oidium sp.

Oidium sp.

Oidium sp. Pestalotia sp. Pestalotia sp.

Pestalotia sp.

Sphaceloma Fawcetti

Cercospora sp.

Oidium sp.:

• Efectuar aplicaciones de oxocloruro de cobre cada 8 días en época lluviosa y cada 15 días en época seca. Agitar mientras se aplica.

Pestalotia sp.:

• Realizar aplicaciones de oxicloruro de cobre. Repítase la aplicación a intervalos de 1 ó 2 semanas.

Sphaceloma Fawcetti: • Plántulas que presentan síntomas avanzados de roña deben eliminarse.

• Las plántulas que presentan los síntomas iniciales de roña o las cercanas a las enfermas deben asperjarse periódicamente a intervalos de 8 días en época de lluviosa y de 15 días en época seca, con fungicidas como: Elosal, Difolatán u Orthocide.

Cercospora sp.:

• Eliminar y destruir las hojas

115

ESPECIE EDAD PARTE AFECTADA SÍNTOMAS AGENTE CAUSAL RECOMENDACIONES PARA PREVENCIÓN y/o CONTROL

Tectona grandis E. globulus E. viminalis E. cinerea E. globulus Alnus jorullensis

5 meses 1 año 5 meses 7 meses 4 meses

Hojas Tallo Tallo Tallo Tallo

reproductivas en el haz. Mancha angular, distribuida en la hoja. Estructuras reproductivas en el haz. Presencia de tumores en la base del tallo. Agalla de corona. Tumores en la parte baja del tallo. Agallas en la base del tallo. Tumores en la parte baja del tallo. Agalla de corona. Agallas en la base del tallo.

Phyllosticta sp.

Agrobacterium tumefaciens

afectadas. • Mantener una buena aireación dentro de

las plántulas por medio de un buen drenaje y distancias de siembra adecuadas.

• Realizar aplicaciones de fungicidas de acción preventiva, como productos a base de cobre (oxicloruro de cobre).

Phyllosticta sp.:

• Eliminar las plántulas que presenten estados avanzados de la enfermedad.

• Tratar las plántulas con inicios de la enfermedad y las que estén alrededor del material afectado con productos tales como: Orthocide o Dithane M-45.

Agrobacterium tumefaciens:

• El suelo donde se haya presentado agalla de corona debe ser cambiado; si esto no es posible, debe desinfectarse muy bien con bromuro de metilo o Ditrapex.

• La herramienta con la cual se efectúe la poda debe desinfectarse continuamente

con formol al 10%. • El agua de riego no debe mezclarse con plántulas contaminadas de Agrobacterium tumefaciens.

116

ESPECIE EDAD PARTE AFECTADA SÍNTOMAS AGENTE CAUSAL RECOMENDACIONES PARA PREVENCIÓN y/o CONTROL

Fraxinus chinensis Tabebuia rosea

7 meses 5 meses 5 meses 5 meses 6 meses 2 meses

Tallo Tallo Hojas Hojas Hojas Tallo

Enrojecimiento del ápice de las hojas superiores. Necrosis de la hoja y presencia de un polvo amarillo por el envés. Manchas concéntricas Antracnosis en la parte superior del tallo.

Deficiencia de fósforo

Roya

Deficiencia de Magnesio

• Colocar a la entrada del vivero un lavapatas que contenga formol.

• Seleccionar procedencias de eucalyptus resistentes a Agrobacterium tumefaciens.

• Si el ataque es muy severo, se debe efectuar rotación de cultivo con especies resistentes.

Tectona grandis Tabebuia sp. Cordia alliodora Tabebuia pentaphylla

3 meses 2 meses 2 meses

Toda la plántula Toda la plántula Toda la plántula

Pudrición de la raíz y posteriormente de toda la pseudoestaca. Agallas en la raíz. Disminución del crecimiento. Agallas en la raíz. Disminución del crecimiento. Agallas en la raíz. Disminución del crecimiento.

Botryodiplodia sp.

Meloidogyne sp. Helicotylenchus sp.

Meloidogyne sp. Aphelenchoides sp. Helicotylenchus sp.

Meloidogyne sp.

Aphelenchoides - Helicotylenchus - Tylenchus - Meloidogyne:

• El suelo se puede desinfectar con Ditrapex, bromuro de metilo o formol.

• Si se presenta un ataque fuerte de nemátodos se debe, preferiblemente, cambiar el suelo; si esto no es posible hay que desinfectar el suelo con bromuro de metilo, teniendo especial cuidado con la aplicación, pues de ésta depende la eficacia del producto.

• Si hay ataque de nemátodos en

117

ESPECIE EDAD PARTE AFECTADA SÍNTOMAS AGENTE CAUSAL RECOMENDACIONES PARA PREVENCIÓN y/o CONTROL

Tectona grandis Pseudosamanea guachapele Apeiba aspera Crotón

5 meses 5 meses 4 meses 6 meses

Hojas Ramas terminales y hojas Hojas Hojas

Manchas de tipo angular, distribuida irregularmente en toda la hoja. Estructuras reproductivas presentes en el haz. Mordeduras y deformaciones de las yemas apicales. Se observan de comedores del follaje. Mordeduras en las hojas.

Phyllosticta sp.

Lepidópteros y escamas

Lepidópteros

Lepidópteros

plántulas, se puede tratar con productos como: Nemacur, Mocap o Furadán.

Protium heptaphyllum

4 meses Toda la plántula Deformación y secamiento apical

Acaros y fitotoxicidad.

Tomado y adaptado: Determinación y Control de las principales enfermedados que afectan viveros y plantaciones forestales en

Colombia. INDERENA – MINAGRICULTURA. 1985

118

2.12 PROTECCIÓN CONTRA INSECTOS A menudo al insecto en estado larval es más dañino porque necesita alimentarse con hojas, retoños, raíces y con el tejido del tallo. En otros casos, los daños son causados por insectos en estado adulto, como es el caso de la hormiga arriera, hormiga bruja, marranita, termitas. Su control se realiza esterilizando el suelo y utilizando insecticidas, como: Dipterex, Aldrin, Dieldrin, que se pueden aplicar en etapas pre y post-emergente. Pero que es necesario evaluarlos por sus efectos ambientales. (Ver tabla No. 5).

2.13 NUTRICIÓN DE LAS PLÁNTULAS La producción continua de plántulas demanda importantes cantidades de nutrimentos, y tarde o temprano, se hace necesario una nutrición adicional. En Queensland, Australia, cada cosecha de Pinus elliottii extrae del suelo del vivero 119, 21, 104, 22 y 12 kg. x ha. de N., P., K., Ca., Mg., respectivamente éstas pérdidas deben remplazarse o de lo contrario la fertilidad del suelo disminuirá. El abono o fertilizante debe aplicarse antes de la siembra o cuando el lote ya está preparado o después de la germinación cuando la plántula está en su estado más tierno. El fertilizante aplicado antes de la siembra viene generalmente en polvo o granulado, pero una vez las semillas hayan germinado se aplica en forma foliar o diluido en agua.

119

Tabla No. 5 Principales Plagas forestales de vive ros encontradas en Colombia

FAMILIA ESPECIE HUÉSPED DAÑOS PERÍODO CONTROL

INSECTOS DEL FOLLAJE LEPIDÓPTERO GUSANO DEFOLIADOR DEL CIPRÉS

Glena bisulca Ringe, Glena megale Ringe

(Lepidoptera, Geometridae)

Ciprés Ocurre en el follaje al comer y trozar las ramas quedando en chamizas, y el árbol puede morir.

Larval Biológico por: Parásitos: • Mosca parásita (Euphorocera sp.) • Avispa parásita (Apanteles sp.) • Mosca parásita (Siphoniomyia sp.) • Avispa parásita (Melanichneumon sp.) • Hongo o moho blanco (Cordyceps sp.)

Predatores: • Hemíptero chupador (Chauliognathus heros Guering)

• Escarabajo predator (Pseudoxychila bipustulata)

• Chinche chupador (Apiomerus sp.) • Hormiga predatora (Oplomutilla sp.) • Avispa predatora (Parachartegus sp.)

LEPIDÓPTERO GUSANO MEDIDOR DEL CIPRÉS

Oxydia cerca a Trychiata (Lepidoptera, Geometridae)

Ciprés Lo hace consumiendo y trozando el follaje, ocasionando la

defoliación total y muerte del árbol.

Larval Biológico por: • Avispas (Parachartegus sp.) • Hongos (Cordyceps, Metarrhizum) • y Bacterias, mantienen la plaga en equilibrio.

LEPIDÓPTERO NUEVO MEDIDOR

sin determinar ¨geométrido o medidor¨

Ciprés Defoliación Larval _

LEPIDÓPTERO GUSANO ROJO PELUDO Lichnoptera gulo H.S

Ciprés y Pino

Trozando o comiendo las agujas del ciprés y del

Larval Biológico por: • Parásitos himenópteros (avispitas)

120

(Lepidoptera, Noctuidae) pino. Causa escozor al

tocarlos.

• Bacterias que descomponen las larvas

LEPIDÓPTERO GUSANO CANASTA Oiketicus spp. (Lepidoptera,

Psychidae)

Ciprés, Pino,

Eucalipto, Acacia.

Fabrican las canastas con ramitas y hojas, y se alimentan de ellas.

Larval Biológico por: Enemigos Naturales: • Avispitas del género Iphiaulax sp., al desarrollarsen al interior de la canasta lo matan.

• Al aumentarse de canastos la plantación se efectúa un control Manual. Se cortan las ramas con canastas, se entierran a 30 cm., se les echa cal y se tapan.

LEPIDÓPTERO GUSANO POLLO Megalopyge lanata Stall

(Lepidoptera, Megalopygidae)

Ciprés Es muy voraz y se alimenta del follaje del

ciprés.

Larval Biológico por: Ataque de parásitos a la larva, permitiéndole que empupe pero al final muere la pupa.

LEPIDÓPTERO GUSANO TIERRERO

Agrotis Ypsilon (Rottemb) (Lepidoptera, Noctuidae)

Ciprés y Pino en viveros

El gusano roe la base del tallo, trozando

totalmente las plantas o arboles pequeños en los

viveros.

Larval • Vigilancia constante del vivero • Aplicar insecticidas a las larvas con aplicaciones de:

Carbaryl (en dosis de 1.5 kilos de ingrediente activo por hectárea) o de Aldrin (medio kilogramo de ingrediente activo por hectárea) • La preparación adecuada de terrenos para semilleros ayuda a la destrucción mecánica de larvas y pupas.

LEPIDÓPTERO GUSANO ESPINOSO sin determinar (Lepidoptera,

Arctiidae)

Ciprés y Pino

Realizan el daño alimentandose del follaje.

Larval _

COLEÓPTERO VAQUITAS Compsus spp. (Coleptera,

Curculionidae)

Ciprés y Eucalipto

El ataque ocurre en árboles pequeños y en viveros por insectos.

Larvas, Insectos y Adultos

_

121

En estado de larva se alimenta en el suelo de raíces de diversas

plantas. COLEÓPTERO FALSAS VAQUITAS

sin determinar (Coleptera, Curculionidae)

Ciprés y Eucalipto

Se alimentan de raíces de diferentes plantas, sus ataques no son severos.

Larval _

COLEÓPTEROS CUCARRONCITOS DEL FOLLAJE Nodonota sp. (Coleptera,

Chysomelidae)

Ciprés Alimentandosen del follaje del ciprés, en

árboles pequeños recién plantados, se localizan sobre las ¨agujas¨ del

ciprés.

Adulto Con aplicaciones de Carbaryl en dosis de 400 gramos por 100 litros de agua

COLEÓPTERO CURCULIÓNIDOS DEL FOLLAJE sin determinar (Coleptera,

Curculionidae)

Ciprés y Pino

Daños de bastante consideración en el

ciprés, consumiendo el follaje, son los más abundantes entre los

curculiónidos.

Insecto, Adulto

_

HIMENÓPTERO HORMIGA ARRIERA Atta sp. (Hymenoptera, formicidae)

Ciprés Trozando el follaje, llevándolo al nido u

hormiguero en el suelo, alimentandose del hongo que cultiva en ellas.

Adulto _

HEMÍPTERO CHINCHE NEGRA DEL CIPRÉS Sephina formosa (Dallas) (Hemiptera, Coreidae)

Ciprés Tiene un pico encorvado hacia atrás y chupa la savia del follaje, lo cual ocasiona secamiento.

Ninfas y Adultos

_

HOMÓPTERO ESCAMA TORTUGA posiblemente Saissetia (Homoptera,

Coccidae)

Ciprés y pino

Hace el daño chupando la savia del follaje y ocasionando su secamiento.

Adulto _

HOMÓPTERO COCHINILLA HARINOSA Pseudococcus sp. (Homeoptera,

Pseudococcidae)

Ciprés Extraen los jugos del follaje y a la vez excretan

gran cantidad de

Ninfas y Adultos

_

122

sustancias melosas que favorecen el desarrollo de hongos, ocasionando estos una cubierta negra sobre el follaje, que interfiere con las

funciones normales de la planta.

ÁCAROS ÁCARO NEGRO Y ROJO DEL CIPRÉS sin determinar

Ciprés Chupando la savia del follaje y se localizan en las intersecciones de las ¨agujas¨ sin ocasionar daños de importancia económica a las plantaciones.

Arañitas Adultas diminutas

_

123

FAMILIA ESPECIE NUÉSPED DAÑOS PERÍODO CONTROL

INSECTOS DEL TRONCO Y RAMAS COLEÓPTERO BARRENADOR DEL CIPRÉS

Anchonus sp. (Coleoptera, Curculionidae) Ciprés La larva hace el daño

barrenando el tronco. Al hacer un corte longitudinal en el árbol afectado se observan las galerías que

hace el insecto. Los ataques se encuentran más frecuentemente en

plantaciones viejas, tocones, ramas abandonadas, y desechos forestales en rodales de ciprés.

También en plantaciones débiles, deficientes por falta de fertilidad del suelo y por ataques de enfermedades.

Larva y Adulto Se debe basar en medidas culturales como las siguientes:

• Siembras convenientemente espaciadas y en suelos apropiados.

• Prácticas silviculturales como aclareo, limpias, podas.

• Tala de los árboles a ras, sin dejar tocones.

• Remoción de los árboles grandes caídos que son foco de infestaciones.

• Corte y quema de los árboles atacados por la plaga.

COLEÓPTERO PASADORES DE LOS TRONCOS O PERFORADORES

Xyleborus spp. (Coleoptera, Scolytidae) Platypus rugulosus Chapuis (Colegotera,

Platypodiae)

Cativo, Árboles caídos

El ataque es secundario, cuando los árboles están

caídos, enfermos, presentan heridas en la corteza o se encuentran amontonados en el suelo para descortezar. El daño lo hacen al tronco y ramas El insecto perfora el tronco formando galerías en donde deposita los huevos.

Larvas y adultos

Revisar periódicamente las plantaciones, especialmente aquellas

mayores de 10 años • Eliminar los árboles caídos, enfermos o con heridas.

• Cortar los árboles afectados, a ras de suelo, sin dejar tocones.

• Evitar el amontonar por mucho tiempo los árboles que se cortan.

124

Los abonos y fertilizantes más utilizados son los siguientes: • Abonos de origen vegetal, tales como hojas, hierbas y abonos verdes como: Phaseolus, Crotalaria sp., Lupinus sp., Canavalia sp., Puerarias sp., Cajanus Sp., etc. (sembrados en el sitio y enterrados en la época de floración), son ricos especialmente en nitrógeno.

• Abonos de origen vegetal y animal, tal como el estiércol, el composte, la gallinaza, son ricos en nitrógeno y fósforo.

• Los fertilizantes químicos cuyas cantidades se aplican dependiendo del lugar y la composición del suelo.

Ej.: En el vivero rancho grande en Restrepo (Valle), de Smurfit Cartón de Colombia, se aplica N, P, K, en las plántulas de Pinus pátula, Pinus kesiya, Pinus oocarpa, Eucalyptus grandisK E. urograndis, E. Glóbulos. Monterrey Forestal aplica en vivero en el riego para las especies Gmelina arborea y Bombacopsis quinata 117 kg./ha. de sulfato de amonio. Cartón de Colombia aplica en el modulo de enraizamiento, fertilizante a razón de 1.5 gr./estaca de NPK (15-38-10), DAP (Fosfato de amonio) y Boro. En vivero a los 40 días se aplican micronutrientes 100 cm3 CRECIFOL, por bomba de agua y 100 gr. de Magnesio por bomba de agua. Para clones de Eucalyptus grandis en vivero se recomienda aplicar a las 3 semanas de siembra 450 gr. NPK (15:38:10) / 30 lts. de agua y cada DOS SEMANAS 450 GR. npk (15:38:10) / 30 lts. de agua y cada dos semanas 450 gr. NPK (15:38:10) / 30 lts. de agua. En SurAfrica adiciona fosfato mezclada con el agua, prácticamente doblaba la altura del Eucalyptus grandis después de seis semanas (Daniels 1.975) Los tratamientos post-germinación varían. Por Ej.: En Papua, Nueva Guinea, los fertilizantes que contienen todos los elementos esenciales son aplicados en el riego cada 15 días. En Aracruz Brasil, generalmente se aplica N., P., K.; 5 : 17: 13, en las plántulas de Eucalyptus grandis y Eucalyptus urophylla en dosis de 3 litros de concentración por 100 litros de agua, suficientes para 3.000 plántulas.

125

Es muy importante aplicar el fertilizante uniformemente de lo contrario quedan parches, que atrasan la programación del vivero y prolongan la permanencia de algunas plántulas.

2.14 TRANSPLANTE Transplante es la transferencia de las plantas pequeñas del semillero (era germinadora) a los recipientes individuales o camas de transplante. Se hace para dar mayor espaciamiento a las plantitas, mejorar el desarrollo aéreo y radicular y disminuir la competencia por la luz, agua y nutrientes. El transplante es una práctica corriente que se aplica a casi todas las especies como: Coníferas, Eucalyptus, Acacias, Leguminosas en general, lo que también facilita una primera selección del material con resultados de mayor fortaleza y desarrollo.

2.15 ÉPOCA DE TRANSPLANTE Y TAMAÑO DE LAS PLÁNTULAS Dicha práctica está relacionada con la edad y el tamaño que deben tener las plántulas para la realización de esta práctica. Esta depende de varios factores, los cuales son: • Época de siembra de la semilla • Rapidez de crecimiento de las especies. • Densidad de la siembra. • Condiciones meteorológicas. El transplante se realiza cuando las plantitas están pequeñas, en algunas especies antes de que alcancen las 7 semanas de edad, así por ejemplo algunas especies se repican cuando alcanzan 3 cm. de altura, los Eucalyptus, Casuarinas, se repican cuando alcanzan entre 5-10 cm. de altura que corresponde a 45-60 días después de iniciada la germinación.

126

Los géneros Pinus elliottii, P. hondurensis, P. taeda, se repican 3 - 4 meses después de la siembra, en las familias Mimosaceae, Papilonaceae, Cesalpinaceae, el repicado se realiza al aparecer las primeras hojas, una vez desplegados los cotiledones. En general resulta difícil dar normas fijas para muchas especies, pero se recomienda hacerlo cuando las plantitas no tienen el sistema radicular muy desarrollado, pero el tallo está lo suficientemente fuerte. El transplante debe realizarse en días nublados y frescos, en época húmeda lluviosa, evitando los días secos, calurosos o de mucho viento, ya que estos factores afectan las raicillas y los pelos radicales.

2.16 CUIDADOS a. Antes de la operación es necesario regar la tierra de los recipientes o eras para

evitar pérdidas por secamiento de las raíces. b. Evitar que las raíces durante la labor de transplante se expongan al viento o al

sol o sufran daños. c. Las plantitas deben permanecer sin sembrar el menor tiempo posible.

d. Una vez transplantadas las posturas se mantienen bajo sombra de 5 - 15 días. e. La plantita debe quedar en posición natural, después del transplante, cuello de

la raíz a nivel del suelo, sistema radicular no comprimido, ni doblado, pero en contacto íntimo con la tierra.

f. Se debe eliminar toda planta raquítica, enfermiza, dejando solo material sano /

el tamaño debe ser uniforme. Para el cumplimiento de los anteriores pasos, se extraen las plantitas con cuidado, y se colocan en manojos dentro de baldes, con agua barro, hojarasca, grama,

127

paja, se está utilizando últimamente tritón para proteger la copa y el almidón de yuca o la caolinita para las raíces. Para el transplante a (bancal o eras de transplante), se preparan las camas o eras de la misma manera que los semilleros, aunque con mayor profundidad de preparación, los tamaños de las eras serán similares a los semilleros. El espaciamiento de plantación en el transplante, depende de: • De las características de las especies, como son: extensión de la copa, sistema radicular, exigencias de la luz y nivel de competencia que resistan.

• Del tiempo que han de permanecer en el vivero, tamaño definitivo para la plantación.

Como norma se busca plantar lo más denso posible, para mayor rendimiento, sin embargo el espacio tiene que ser suficiente para permitir los cuidados posteriores y el desarrollo normal de las plántulas. Se han utilizado distancias de: 20 cm. x 15 cm. ; 20 cm. x 20 cm. ; 15 cm. x 15 cm. Cartón de Colombia está utilizando una densidad de 150 plántulas por m2 (30 cm. x 20 cm.), con estas distancias se están transplantando Eucalyptus globulos, E. camaldulensis, E. grandis, Pinus pátula, P. caribaea, P. Oocarpo, Pseudosamanea saman, Pseudosamanea guachapele, Tabebuia rosea, Cordia alliodora, etc. • Para el transplante (a recipientes individuales) los envases utilizados que son variados en su forma, tamaño y calidad se pueden agrupar en:

• Envases de barro cocido y barro prensado (Torrao paulista) • Macetas de material vegetal (fibra de banano) • Tubos de bambú, guadua • Envases de papel periódico, papel encerado

128

• Bolsas de polietileno Para el llenado de recipientes estos se disponen en hileras con una longitud de 10 m. y 1 m. de ancho con senderos de 50 cm. para facilitar el deshierbe, riego, control de insectos y patógenos. La labor de llenado se hace con tierra de buena calidad, zarandeada, si es arcillosa se debe agregar arena fina en proporción de 1 de arena por 3 de tierra. Después se procede a abrir un agujero en el centro de la bolsa con un punzón de madera, donde se colocará la plantita, ésta debe comprimirse con tierra a su alrededor, cuidando de que no quede doblada o torcida la raíz, después se debe regar con agua: es necesario señalar que los recipientes deben estar agujerados en el fondo, para facilitar el drenaje. (Ver figuras No. 57 y 58).

Figura No. 57 Disposición de los arbolitos en el semillero

Figura No. 58 Transplante de árboles de Eucalyptus grandis. Granja las Brisas

129

CAPÍTULO III

130

3. PLANTACIÓN FORESTAL

3.1 SISTEMA DE PRODUCCIÓN FORESTAL

Las plantaciones forestales como un sistema de producción tienen una base de

recursos, una base de productos y una base de deshechos. SÁNCHEZ, 1995. La

base de recursos está integrada por elementos como son: el suelo, la fauna, los

microorganismos, el clima, la vegetación y la flora que constituyen los

componentes principales del sistema; éstos una vez que han sido estudiados y

conocidos con alguna profundidad se ponen al servicio de la producción y

crecimiento del componente florístico y faunístico a través de los enlaces o correas

de transmisión, es decir la manera como interactúan los diferentes componentes,

conocer cuáles son sus relaciones, incluyendo la actividad del hombre que con la

energía y el trabajo que ingresa a través de la producción de plántulas, selección

de semillas, preparación de tierras, manejo silvicultural de las cosechas, permiten

activar la potencialidad de la base de recursos al servicio de la producción o base

de los productos que se obtienen, tales como la madera, extractivos de los árboles,

frutos, fibras, o servicios como la amenidad, el paisaje, la producción de oxígeno,

sombra. Como base de deshechos el sistema produce detritus, materia orgánica,

restos de animales, oxígeno, entre otros.

El sistema como tal se puede esquematizar de muchas formas, una de ellas es la

que se presenta en la figura No. 59.

131

Como todo sistema de la producción fosrestal tiene: • Objetivos

• Componentes

• Interacciones

• Organización

• Entradas

• Salidas

• Recursos

• Ambiente

Climatograma Suelos Tecnología

Mercados

Preparación

• Genotipo • Especie • Fenotipo

S U E L O S

O R G A N I S M O S

Agua Microclima

Objetivo

Plantación

Figura No. 59 Representación gráfica de un ecosistema

132

• Control

• Plantación: Evaluación - Corrección - Toma de decisión

• Tecnología:

� Preparación terreno

� Distancias plantación

� Podas

� Fertilización

� Control Hierbas

� Cosecha

� Raleos

3.2 SELECCIÓN DE ESPECIES FORESTALES Los procesos a considerar para la selección de especies forestales comprenden la evaluación de las características del sitio, los fines propuestos para la plantación, las especies forestales adecuadas. (Ver figura 60).

133

Etapas de selección de las especies forestales. Tomada la determinación, y una vez iniciado el proyecto de plantación, la decisión más importante que se debe tomar es ¿Qué especies plantar?, las especies seleccionadas deben cumplir con los objetivos para los que se plantarán, adaptarse a las condiciones del sitio donde se van a plantar, y además utilizar las técnicas silviculturales más adecuadas para el establecimiento, manejo y aprovechamiento de la cosecha forestal. Esta escogencia de la especie depende entonces de tres preguntas básicas:

� Cuál es el propósito de la plantación forestal ?

Factores Edáficos Profundidad Efectiva

Textura Drenaje Fertilidad

P.H.

Factores Climáticos Precipitación Temperatura

Altitud Formación Ecología

Meses secos

Características del Sitio

Técnicas de Establecimiento

Manejo y Conducción de las

cosechas

Fenotipo Genotipo Ambiente

Objetivos de la Plantación

Ordenación y Uso del Suelo Características y Plasticidad Ecológica de las especies aptas para la reforestación

Elección de las especies Forestales Adecuadas

Figura No. 60 Factores que se deben tener en cuenta para la selección de tres especies forestales

Tomado y adaptado de: GUY, P. CADENA, E., 1981.

134

� Qué crecería en los sitios disponibles ?

� Cuáles técnicas silviculturales se adecuan a la especie ? Las preguntas anteriores son las que siempre se plantea el silvicultor o reforestador para tomar una decisión final. Siempre se establece una plantación con el fin de cumplir ciertas necesidades, abastecimiento de madera para distintos usos; recuperar, proteger y conservar: zonas erosionadas, fuentes de agua, y cuencas hidrográficas; producir amenidad, oxígeno, armonía y belleza. Sin embargo muchas veces no esta claro la utilización final de la plantación o pueden ocurrir cambios en los propósitos iniciales, que pueden variar en el transcurso de la vida del cultivo, otras veces se utiliza con dos o más finalidades por ejemplo: fines protectores y productores. Se tratará entonces de analizar separadamente cada uno de los interrogantes. 3.2.1 Propósito o finalidad de la plantación: Las plantaciones o siembras se establecen para cuatro propósitos: • Usos industriales: Combustibles, madera de aserrío, pulpa, madera de triplex, tableros aglomerados, productos extractivos, alimentos, frutos.

• Protección medioambiental: Para recuperar y detener la erosión del suelo y evitar el lavado del mismo, estabilizar la superficie del suelo con barreras contra el agua y el viento. Protección de aguas y manantiales.

• La siembra de árboles para el paisajismo: Sombra, producción de oxígeno, refugio y alimentación para animales (frutos y nueces), conservación de germoplasma, mejoramiento de la calidad de vida.

135

3.2.1.1 Características de cada propósito

3.2.1.1.1 Propósitos industriales (combustibles):

• La producción es relativamente fácil, puesto que la necesidad es de volumen e interesa poco la calidad.

• Es una necesidad para los países tropicales por ser una fuente de energía importante y económica.

• La localización debe ser cercana a los mercados y con buenas vías de comunicación.

• Los costos de producción serán bajos ya que el precio en el mercado es bajo. • Las técnicas de producción deben ser simples y fáciles. • Se necesitan especies de rápido crecimiento que permitan obtener el producto en turnos de 4-10 años.

• Deben ser especies que tengan resistencia a condiciones adversas, zonas secas, suelos erosionados.

• Deben ser especies que tengan resistencia al ramoneo. • Sería recomendable obtener la madera como subproducto de la explotación del bosque.

Entre las especies que se pueden mencionar para este fin están: Erythrina poeppigiana, Gliricidia sepium, Inga sp., Guazuma ulmifolia, Alnus jorullensis, Mutingia calabura, Eucalyptus camaldulensis, E. grandis, Eucalyptus globulos, E. saligna, Acacia mollisima, Acacia decurrens, Calliandra callothyrus, leucaena leucocephala.

136

3.2.1.1.2 Propósitos industriales (aserrío):

Características:

• Es necesario producir árboles de gran tamaño, con trozas de buenas dimensiones.

• Las rotaciones son amplias con turnos de 20 - 50 años para obtener madera de calidad.

• Las inversiones son elevadas por los turnos. • Los tratamientos y manejo silvicultural son intensivos. • Se necesitan suelos de buena calidad y manejo intensivo. Algunas especies que se pueden mencionar: Caryniana pyriformes, Cordia alliodora, Carapa quianensis, Tabebuia pentaphylla, Juglans neotropical, Cedrela adorata, Cedrela montana, Calophyllum mariae, Prioria copaifera, Campnosperma panamensis, Apeiba aspera, Quercus humboltii, Decussocarpus rospiglosii, Switenia macrophylla, Tectona grandis, Podocarpus oleifolius, Pinus Pátula, Cupressus lusitanica, Pinus Oocarpa, Simphonia globulifera, Tabebuia rosea, Carapa quianensis, Aspidosperma dugandii, Anacardium excelsum, Bombacopsis quinata.

3.2.1.1.3 Propósitos industriales (pulpa y papel): Características: • Especies de fibra larga. • Rotaciones medias (8-10 años).

137

• Volúmenes de producción elevados con rendimientos altos. • Manejo silvicultural adecuado (podas, aclareos, fertilizantes). Algunas especies recomendables: Pinus pátula, Pinus caribaea, Pinus Oocarpa, P. tecunumani, Pinus radiata, Cupressus lusitanica, Eucalyptus grandis, E. glóbulos, E. saligna, Ceiba pentandra, Gmelina arbórea, Cassia siamea.

3.2.1.1.4 Protección ambiental: Características: a. Protección y estabilización de reservas hídricas. b. Control de erosión por el agua y el viento. c. Prevención de asentamientos, deslizamientos y recuperación de cárcavas. d. Mejoramiento de suelos y recuperación de la cubierta vegetal. Para estos fines se deben utilizar especies que tengan las siguientes características: • Es recomendable utilizar especies de raíz pivotante, con raíz extendida., copas amplias, ramas gruesas.

• Se deben utilizar especies de hojas caducas y en lo posible leguminosas por su capacidad de fijar nitrógeno.

• Especies adaptables a zonas secas y suelos erosionados. • Especies colonizadoras, resistentes al pastoreo y daños por el fuego. • Son más recomendables especies nativas adaptadas a la zona.

138

Ejemplo: Algunas especies como: Alnus jorullensis, Acacia melanoxylón, Prosopis juliflora, Leucaena leucocephala, Albizzia sp., Acacia decurrens, Tecoma stans, (chipero, amé) Calliandra sp., Casuarina equisitifolia, Salix humboldtiona, Pinus Kesiya, Pinus Oocarpo, Pinus caribaea, Eucalyptus camaldulensis, E. tereticornis, E. grandis, Zygia longifolia, Calliandra medellinensis. 3.2.1.1.5 Plantaciones forestales con fines recrea tivos, paisajísmo, sombra, refugio, alimentación de fauna y vida silvestre. Se deben buscar especies que tengan las siguientes características: • Especies de follaje con varios matices de color. • Árboles cuya forma, follaje, floración, fragancia, disposición de ramas, raíces sean equilibradas y armoniosas.

• Es muy importante tener en cuenta el desarrollo total; altura, raíces, copa, y la distribución de ramas.

• La adaptación ecológica es básica, ningún árbol o arbusto puede resultar hermoso sino está sano y adaptado a la zona.

Ejemplo de especies: Gualanday (Jacaranda copaia), Ocobo (Tabebuia rosea), Chicalá (Tabebuia crisanta, Guayacán garrapo (Guaiacum officinalis), Acacia roja (Delonix regia), Acacia santanderiana (Siacassia siamea), Lluvia de oro (Cassia spectabilis), Acacia robinia (Robinia pseudoacacia), Chiminango (Phitecellobium dulcis), Carbonero (Calliandra surinamensis), Tulipan africano (Spathodea campanulata), Pera de malaca (Zyziela malacensis), Igua (Tena guachapele), Cadmia (Ilang Ilang), Cámbulo (Erythrina fusca). Se puede concluir diciendo, que los árboles producen muchas alternativas de productos y servicios, como se observa en el siguiente cuadro:

139

Tabla No. 6 Los principales productos del bosque

Alimentos Medicinas Esencias Piensos

• hojas • semillas y nueces • raíces y tubérculos • carne de animales silvestres

• insectos • miel • hongos • frutas • savias y gomas • aceites y grasas

• medicamentos • remedios vegetales tradicionales

• tés y hierbas medicinales

• perfumes • cosméticos • hierbas • gomas • savias • resinas • jarabes

• hojas • arbustos • hierbas

Fertilizantes Combustibles Recreo Fibras • composte • nitrógeno y otros nutrientes

• madera • carbón

• parques • reservas de fauna y flora silvestre

• seda • rotén • yuta • bambú

Diversidad biológica Medio ambiente Productos madereros • cultivos alimentarios y especies silvestres conexas

• hierbas • plantas ornamentales • animales

• sombra • cortavientos • control de la erosión • filtro de toxinas • zonas de cría

• madera rolliza • madera para aserrío • postes y polines • pulpa para papel • etc.

3.2.2 El sitio y su clasificación: El sitio es una expresión de productividad de un lugar y está dado por factores: Climáticos:

• Temperatura ( promedio y extremas )

• Precipitación ( total y distribución durante el año )

• Luminosidad

• Vientos, heladas. Balance de agua

140

Edáficos y Geológicos:

• Profundidad efectiva.

• Textura, estructura.

• Permeabilidad ( porosidad y capacidad, infiltración de agua ).

• Presencia de segmentación tales como panes, costras, piedras, material parental.

• Presencia de sales.

• Materia orgánica.

• Microorganismos.

Factores Bióticos:

• Animales

• Macrofauna

• Microfauna

El sitio es un factor muy importante que influye en la escogencia de las especies; un árbol debe crecer bien en el lugar que se le planta. Gran parte de la silvicultura tiene que ver con la escogencia entre especies (variedades, procedencias) y el lugar de plantación. El problema no es sencillo, existen numerosas especies y gran variedad de sitios, sin embargo teniendo algunas características del medio ambiente (precipitación, temperatura, luminosidad, tipos de suelo, profundidad efectiva, organismos), se puede definir de una manera general el potencial del sitio y las condiciones naturales que demanda la especie, lo que permite tener una guía para comenzar, las condiciones que el sitio escogido deba cumplir. Esto es de gran importancia cuando se trata de especies exóticas. 3.2.2.1 Clima: Son de suma importancia dos componentes del clima a la hora de la selección de especies, la cantidad y distribución de las lluvias y las temperaturas extremas. Las variaciones en la cantidad anual de lluvia en las zonas tropicales,

141

van desde la mínima en las zonas desérticas hasta miles de milímetros en las regiones selváticas del Pacífico Colombiano. Es un factor determinante en la escogencia de especies, la cantidad de agua. Un ejemplo son las especies de tierras bajas húmedas como los (Mangles) Rhizophora sp., (Nato) Mora magitosperma, (Sajo) Canosperma panamensis, que crecen bien donde llueve casi todo el año con precipitaciones entre 4.000 y 12.000 mm. promedio anual y otras especies como (Trupillo) Prosopis juliflora, (Dividivi) Lividivia coriaria, crecen en condiciones de baja humedad 500 mm. al año. Otras especies tienen un rango natural de distribución muy amplia, pueden mostrar plasticidad para desarrollarse en zonas húmedas como también en zonas secas, un buen ejemplo es el Eucalyptus camaldulensis. Para la selección de una especie es importante tener en cuenta la cantidad de lluvia caída durante el año, pero además conocer la distribución de la misma con la severidad de la estación seca. Las especies que se desarrollan bien donde llueve la mayoría de los meses, no se desarrollan bien donde la estación seca es muy severa, así la precipitación sea igual. Usualmente el patrón para la cantidad de lluvia se clasifica de acuerdo al número de meses secos; un mes seco es el que tiene menos de 30 mm. de lluvia. Existe una correlación entre la cantidad total de lluvia y su distribución durante el año. Sin embargo muchas especies poseen patrones específicos, la Teca, Tectona grandis sobrevive en climas húmedos tropicales, pero se desarrolla mejor donde hay una estación seca de tres a cuatro meses. El Pinus patula sólo crece bien donde la precipitación anual está por encima de 1.000 mm. 3.2.2.2 Balance de agua: La variable humedad (lluvia), es tan solo una parte de la ecuación, ya que esta se evapora. El índice de evaporación de cualquier superficie: lagos, hojas de árboles, suelos, depende de la temperatura, humedad relativa, velocidad del viento; si la cantidad de evaporación que presenta el lugar conocida como evapotranspiración, combinada con la pérdida de agua debido a la respiración u otro factor; excede la cantidad de agua de lluvia o de agua en el suelo, desarrollará una deficiencia por agua (stress).

142

El trabajo de Thornthwate y H. Gaussen, muestra el estimado de los cambios de estación en este balance de aguas, factor útil para clasificar ecológicamente el clima. Así descrito este sirve para hacer la comparación entre el hábitat conocido de una especie con el sitio donde se va a realizar la plantación. Los climatogramas se construyen adaptando el método de H. Gaussen, o sea un sistema de coordenadas donde se dibuja en las abcisas los meses del año, en las coordenadas la precipitación pluvial (P) en mm., y la temperatura mensual media (T) en grados centígrados con la relación: 1P aprox. 2T

CL IMAT OG RA MA

0

50

100

150

200

250

E F M A M J J A S O N D E

MESE S

LLU

VIA

ME

NS

UA

L m

m.

Precipit.

Temper.

Se clasifica como seco (verano), un mes en el cual P es más pequeño que 2T,

Gráfico No. 1 Climatograma y balance de agua

143

(letra A en el diagrama), se clasifica como mes húmedo aquel cuando P se encuentra entre 2T y 4T, (letra B en los diagramas), se clasifica como mes muy húmedo, cuando P es superior a 4T (letra C en el diagrama). E = Enero S = Número de meses consecutivos (verano) D = Diciembre A = Número de meses secos al año PP = Precipitación promedio B = Número de meses húmedos en el año T = Temperatura °C C = Número de meses muy húmedos en el año. Los climatogramas muestran las analogías climáticas, entre las estaciones climáticas y permiten darnos cuenta de las semejanzas o diferencias substanciales entre dos climas, sobre todo en lo que a distribución de las lluvias se refiere; asunto básico en reforestación. Basándose en datos meteorológicos disponibles en Centroamérica y Australia por ejemplo: se pueden elaborar cuadros comparativos de los climas de ciertas regiones centroamericanas y Australianas, donde existen Eucalyptus y Pinus, autóctonos y de climas similares en regiones de Colombia donde existen áreas susceptibles de reforestación. Muchas zonas presentan climas casi idénticos al de las zonas de origen, otras regiones aunque pertenecen a la misma formación ecológica, acusan ciertas diferencias con los países mencionados, diferencias que podrían ser un impedimento para la aclimatación de Coníferas y Eucalyptus exóticos, en particular en lo que se refiere a la duración de la estación seca o verano. La discrepancia en la amplitud del verano es más importante y decisiva para la vegetación, que la diferencia en el total anual de precipitación pluvial. 3.2.2.3 Temperatura: La mayor influencia de la temperatura es la evotranspiración. Las temperaturas altas aceleran la evaporación y en algunos casos producen stress en la plantas, los cambios de temperatura durante el día y la noche son un factor que influye en muchas especies subtropicales. Para la selección de las especies se deben comparar las temperaturas entre los meses más fríos y los más cálidos, tanto en su hábitat natural como el lugar donde

144

van a ser plantadas; las diferencias entre la temperatura diurna y las heladas son factores que tienen importancia en la selección de las especies de acuerdo al sitio. 3.2.2.4 Suelo: Existe una gran variedad de suelos en los trópicos. Para las plantaciones forestales es más importante analizar las características y diferencias de los suelos donde se va a llevar a cabo la plantación que su clasificación. Las principales propiedades y características del suelo que influyen en la selección de especies forestales, sirve también para determinar el tipo de preparación de las tierras para la realización de la reforestación. Existe mucha relación entre la estructura física, la profundidad y la fertilidad del suelo. 3.2.2.5 Profundidad del suelo: Es muy importante la profundidad que alcancen las raíces. Los suelos de poca profundidad son un impedimento para el desarrollo del sistema radicular, esto puede deberse al afloramiento del material parental, presencia de capas arcillosas, segmentadas, que traen como consecuencia suelos encharcados en la época de lluvias y áridas en la estación seca, de esta manera el pobre crecimiento del sistema radicular inestabiliza el árbol, dificultando la resistencia a la sequía y ofrece poco volumen de suelo para la obtención de nutrientes. Los suelos de poca profundidad efectiva deben ser reforestados con especies resistentes a las sequías como por ejemplo: Pinus kesiya, Pinus caribaea, Lucaena leucocephala; para sitios pantanosos se deben plantar especies que toleren condiciones anaeróbicas del suelo, ejemplo: Erythrina fusca, Terminalia brasii, Eucalyptus robusta.

3.2.2.6 Estructura física: La estructura del suelo afecta la retención y circulación del agua, la aireación, la fertilidad (C.E.C), y la penetración de la raíces, los suelos varían entre arcillas duras y arena gruesa; las arcillas intermedias son usualmente más favorables para el crecimiento de los árboles; los suelos arenosos son a menudo infértiles y muy drenados, las especies utilizadas en este caso, corresponden a las que crecen en tierras bajas de la franja tropical, donde crecen especies como: Pinus caribaea. En contraste en suelos arcillosos que son más

145

fértiles frecuentemente tienen un drenaje más pobre que muchas veces se inundan o agrietan en verano, sin embargo los mejores suelos que se encuentran son arcillosos y con buen drenaje interno.

3.2.2.7 Fertilidad: Un suelo con buenos niveles de nutrientes no tiene tanta importancia en el campo forestal, como en el agrícola. Las demandas nutricionales de la mayoría de las especies forestales son moderadas aunque existen algunas diferencias, por ejemplo: Las Araucarias necesitan suelos más fertilizados que los Pinos especialmente Nitrógeno. De la misma manera la Teca (Tectona grandis) demanda más nutrientes que Gmelina arbórea. La fertilidad de los suelos influye en la escogencia de las especies. La deficiencia en nutrientes o la toxicidad afecta la selección. Problemas más conocidos en Africa y América del Sur son la deficiencia de Fósforo y Nitrógeno en la mayoría de los suelos tropicales, igual que la de Zinc en los Pinos en Australia. 3.2.2.8 Otros factores: Sitios sujetos a inundaciones. Muy pocas plantaciones toleran inundaciones prolongadas, una excepción es el Eucalyptus robusta y Erythrina fusca, que son importantes para plantar a la orilla de los ríos donde ocurren regularmente inundaciones. • Resistencia al fuego: A veces algunas especies se plantan para que actúen como barrera contra el fuego. Estas especies igualmente no tienen muchas ramas, producen poca hojarasca y son resistentes al daño producido por el fuego, ejemplo: Acacia auriculiformis y Eucalyptus, se han usado con este propósito.

• El crecimiento de vegetación que compite con el desarrollo de la especie forestal, por ejemplo: el Pinus caribaea, puede crecer en medio de la hierba más no con trepadoras, enredaderas y malezas herbáceas; en cambio muchos Eucalyptus como E. grandis, E. citriodora, sufren por la competencia de la hierba y pueden llegar a morir si el suelo ha sido mal preparado.

3.2.2.9 Factores bióticos: Existen especies espinosas en áreas secas resistentes al ramoneo de cabras y ganado vacuno, como por ejemplo: Tara espinosa, Prosopis juliflora (aromo), Vachellia farnesiana , Anacardium occidentalis (marañón).

146

Ciertos insectos como la hormiga arriera del género Atta sp., son limitantes para Eucalyptus, el barrenador Hypsyphilla grandella para las meliaces: Cedrela sp., Toona sp., Switenia macrophylla. Ciertas especies como Cassia siamea o algunos Pinos son resistentes a las áreas infestadas de termitas, en cambio los géneros Eucalyptus son más susceptibles a estos daños.

3.2.2.10 Clasificación de los sitios: Los sitios se clasifican de acuerdo con la altura total que alcanza un árbol a una cierta edad, y correlacionándolas para conformar el “Índice de Sitio”. Método empleado para su clasificación: a. Métodos directos b. Métodos indirectos

a. Métodos directos: Se mide uno o dos factores, relacionándolos; por ejemplo factores climáticos con los edáficos, este método es usado para clasificar sitios donde no hay vegetación:

b. Métodos indirectos: Relacionando la vegetación entre sí con otros factores del sitio. Las siguientes gráficas ilustran los métodos indirectos:

147

Relacionando la edad de la plantación con el volumen obtenido en m3/ha.

RENDIMIENTO POR INDICES DE SITIO DE LA EDAD FRENTE A EL

VOLÚMEN

0

50

100

150

200

250

300

2 4 6 8 10 12 14 16

EDAD

VOLÚMEN M3/ha

Ind. sitio 120

Ind. sitio 180

Ind. sitio 280

Gráfico No. 2 Indices de sitio relacionando la edad con el volumen para Pinus kesiya

148

Tomando como base la altura de los árboles dominantes existentes en parcelas escogidas al azar, midiendo la altura de los dominantes y

relacionándolos con la edad

RENDIMIENTO POR INDICES DE SITIO DE LA EDAD FRENTE A LA ALTURA

0

5

10

15

20

25

2 4 6 8 10 12 14 16

EDAD (Año)

ALTURA (m.)

Ind. sitio 14 Ind. sitio 19 Ind. sitio 24

Gráfico No. 3 Indice de sitio. Relacionando la edad con la altura para Pinus kesiya

149

Relacionando la edad con el área basal obtenida en m2/ha.

RENDIMIENTO POR INDICES DE SITIO DE LA EDAD FRENTE A EL ÁREA BASAL

0

10

20

30

40

50

60

2 4 6 8 10 12 14 16

EDAD (Años)

ÁREA BASAL (m2/ha)

Ind. sitio 40 Ind. sitio 46 Ind. sitio 54

3.2.3 La plasticidad o adaptabilidad: La plasticidad, adaptabilidad o aptitud de muchos géneros y especies forestales para acomodarse a condiciones y ambientes difíciles y distintos de los predominantes en su hábitat natural, es una cualidad muy importante en la elección de especies. Una vez identificada el área de distribución geográfica natural de una especie, deben estudiarse sus condiciones ecológicas, suelos, y los factores biológicos limitantes, y aquellos que permiten el desarrollo de rodales económicos vigorosos y sanos. Si se tiene el cuidado que concurran previamente determinadas condiciones de cultivo, su prendimiento y crecimiento serán rápidos aunque las condiciones sean diferentes del área de dispersión natural.

Gráfico No. 4 Indice de sitio relacionando la edad con el área basal para Pinus kesiya

150

Ya establecido un cultivo forestal, las mismas especies acabarán a menudo por aclimatarse definitivamente, aún en regiones distintas a las de su origen, y sus crecimientos no solo serán los mismos, sino incluso superiores. La adaptabilidad es muy útil para la repoblación forestal, en la medida en que simplifica la búsqueda de un medio igual al originario y plante la posibilidad de explorar nuevos sitios, especies, procedencias, variedades, etc. En las monografías se índica el comportamiento de las especies y géneros más utilizados en los que se refiere a cada uno de los factores ambientales. • Adaptabilidad o tolerancia edáfica • Adaptabilidad o tolerancia a diferentes temperaturas • Adaptabilidad o tolerancia a la humedad Los autores difieren grandemente en la clasificación sobre los grados de tolerancia de las especies a los sitios que están dados por el fenotipo que es una combinación de la información genética (genotipo) y del medio ambiente. En resumen la selección se podría hacer siguiendo los siguientes pasos: a. Recopilar la información • Finalidad o propósito de la plantación: necesidad de producir combustibles, madera de aserrío, propósitos ambientales.

Conocimiento de las especies potencialmente disponibles. Existe mucha literatura acerca de las diferentes especies, silvicultura, ecología; y los lugares apropiados para plantarlos, como también las experiencias en diferentes países. b. Resumen general sacado de conferencias, talleres, manuales de manejo, ej.: Streets (1962), Exotic Forest Trees in Bristish Commonweallth; Webb, Wood y Smith (1980).

151

c. Monografías, bibliografías y revisiones sobre una especie o género. Ejemplo: Eucalyptus for Planting FAO (1.970). Bibliografía sobre la Teca Marthor (1973), Monografías sobre el rápido desarrollo de especies tropicales para plantaciones hechas por UNIT of Tropical Silviculture en el Common Wealth Forestry Institute Oxford. d. Escogencia de especies para regiones bien definidas. Existen numerosos ejemplos: Prácticas de Plantación Forestal en Sabanas Africanas Laurie (1974). Prácticas de Plantación forestal en América Latina. Fuentes: para conseguir lo que se ha publicado sobre especies y silvicultura de una región remitirse a Commonwealth Forestry Bureau Base de datos: como el programa “Trees”. 3.2.3.1 Adaptabilidad de especies: La selección de especies para programas de reforestación exige observar el comportamiento de distintas especies de interés con el fin de seleccionar las mejores para los objetivos propuestos. Los ensayos de adaptabilidad de especies tienen como fin arrojar información sobre especies a plantar, sitios adecuados, medios de plantación y cuidados culturales para obtener los productos deseados. La adaptabilidad de especies consiste en colocar las especies a ensayar en un sitio con condiciones similares o parecidas a las de su lugar de origen, con manejo artificial para conocer su respuesta a esas condiciones, y mediante un proceso secuencial eliminar progresivamente aquellas especies que no resulten adecuadas a los fines. Estos ensayos parten de un número elevado de especies posibles colocadas en parcelas pequeñas, hasta obtener por selección un número de especies probables con una máxima capacidad de adaptabilidad a las condiciones del sitio y al manejo que se les ha dado. El proceso de selección contempla una serie de fases que son:

152

• Fase de arboretum • Fase eliminatoria • Fase puesta a prueba • Fase comprobación • Fase piloto

3.2.3.1.1 Fase arboretum: Es la fase más preliminar en la secuencia de adaptación de especies. Se utiliza para ensayar especies de uso potencial para la reforestación. Tiene valor científico y demostrativo y no conlleva diseño experimental. (Ver Figura No. 61). 3.2.3.1.2 Fase eliminatoria: Una vez seleccionadas las especies más apropiadas a las condiciones ecológicas del lugar, se establecen parcelas pequeñas de 25 a 36 árboles con suficientes replicaciones con el fin de observar las especies que mejor adaptabilidad presenten. En esta etapa se miden sobrevivencia y crecimiento. 3.2.3.1.3 Fase puesta a prueba: Las especies que mejor adaptabilidad presentaron en las etapas anteriores, se disponen en parcelas de mayor tamaño seleccionando aquellas que presenten mejor crecimiento en altura, diámetro, vigor, forma longitud de fibra, etc.

Figura No. 61. Arboreto establecido en “Monterrey Forestal”. Para observar el comportamiento de 31 especies.

153

3.2.3.1.4 Fase de comprobación de especies: Tiene por objeto verificar en condiciones normales de plantación o a una escala mayor, la superioridad de unas pocas especies, incluyendo el manejo silvicultural pertinente. 3.2.3.1.5 Fase piloto: Supone plantaciones a escala comercial donde además de las valoraciones anteriores se incluyen análisis de costos y todas las implicaciones del manejo. Cuando, por efecto del proceso secuencial anterior, se ha llegado al manejo de una o varias especies, como es el caso del Pino pátula en Colombia, estableciéndose en grandes superficies, se justifica iniciar ensayos de mejoramiento genético. El estudio de las procedencias de las especies forestales es realmente la extensión de los ensayos de especies a un nivel más detallado. La diferencia entre los dos conceptos es la de que en los ensayos de procedencia interesa es buscar si hay diferencias y que tan grandes son. Así, una de las funciones de los ensayos de procedencia es la de establecer si realmente existen diferencias entre varias poblaciones de una especie o no. (Ver figura No. 62). La tabla No. 7 resume el procedimiento de adaptación de especies:

Figura No. 62 Ensayos de plantación forestal en la fase piloto, Granja Armero - Guayabal

154

Tabla No. 7 RESUMEN DEL PROCEDIMIENTO DE INVESTIGACIÓN PARA LOS ENSAYOS DE ADAPTACIÓN DE

ESPECIES FORESTALES

FASES Nº ESPECIES

Nº ÁRBOLES / PARCELA

FORMA TAMAÑO PARCELA

DISTANCIA SIEMBRA

m2

INFORMACIÓN DATOS A TOMAR

DISEÑO PERIODICIDAD MEDIA

TOMA DE DATOS

Eliminación 20 - 40 4 - 25 64 m2 cuadrada

2 x 2 Prendimiento Crecimiento Altura

Forma inicial

B L O

Cada año en la misma época durante 5 años

Parcela central

Ensayo 5 - 10 4 - 125 196 - 484 rectangular

2.5 x 2.5 2 x 3

Crecimiento - Altura Diámetro -Propiedades físicas, mecánicas -

Tecnología

Q U E

Cada año Parcela central 7 x 7

Confirmatoria

1 - 3 1.500 - 2.000 3.000 m2

10.000 m2 rectangular

2 x 3 2.5 x 2.5

Incremento Diámetro - Área basal Volumen - Calidad de

sitio

S A L A

Cada año 4 - 5 años

Parcela central 6.000 8.000

Piloto 1 12.000 12.500

10.000 m2 50.000 m2 cuadrada rectangular

1.5 x 2 2 x 2

Costos Tratamiento Silvicultural

Relación Costos

Z A R

155

3.3 TÉCNICAS SILVICULTURALES

Establecimiento de la plantación: 3.3.1 Preparación del terreno: El establecimiento de una plantación es la formación de cultivos de árboles sanos y vigorosos, ya sea por plantación o siembra directa. Como cualquier otro cultivo es necesario preparar el terreno para obtener buenos resultados. Esta preparación es parte integral del establecimiento de una plantación, cuyo fin es asegurar una alta supervivencia y rápido crecimiento. El terreno debe prepararse de tal manera que ofrezca las mejores condiciones de crecimiento a las plantas, con miras a obtener la máxima producción a un costo bajo. Las plántulas deben encontrar las condiciones óptimas para su crecimiento inicial, sobre todo los primeros años que son críticos y decisivos para el buen desarrollo de la plantación. Esto se consigue mediante las siguientes actividades: a. Limpiar la estación de la vegetación existente, con el fin de reducir o eliminar la competencia que podría impedir el establecimiento adecuado de la plantación. b. Labrar el terreno:

• Para facilitar la plantación y su establecimiento y estimular el rápido desarrollo de las raíces.

• Reducir la cubierta de vegetación que compite por agua, luz y nutrimentos. • Reducir la erosión y facilitar el almacenamiento de agua, mediante

barreras físicas a la escorrentía.

156

• Eliminación de obstáculos físicos que detengan el crecimiento de los árboles, y dificultan las operaciones de deshierbe cuando se utiliza maquinaria.

• Establecer sistemas de drenajes en estaciones húmedas o anegados. El propósito principal es hacer lo máximo con el menor costo posible, la preparación del terreno a veces es la operación más costosa en la silvicultura. El grado de preparación del terreno depende de tres factores:

a. Las condiciones del terreno y su cubierta vegetal. b. De las especies a plantar c. Del sitio, las condiciones ecológicas y climáticas. 3.3.1.1 Las condiciones del terreno: En cuanto a la vegetación existente, esta puede estar cubierta de hierbas o gramíneas, arbustos o malezas, matorrales o árboles, etc., determinando el costo de la limpieza, así como las técnicas más adecuadas. 3.3.1.2 Las especies a plantar: Juegan un papel importante en la preparación del terreno ya que la habilidad de una especie para competir por luz, humedad y nutrientes determina en alguna medida el nivel de preparación. Así por ejemplo: • Ciertas especies como la mayoría de los Eucalyptus no compiten con la vegetación herbácea o gramíneas. Ejemplo: Eucalyptus grandis, E. glóbulos, E. citriodora, E. saligna, E. camaldulensis.

• Muchas especies de Pinus como Pinus pátula, Pinus caribaea, Cupressus lusitánica, toleran la competencia de hierbas o gramíneas, aunque se atrasen un poco.

• Las Araucarias no permiten competencia porque crecerán lentamente y se ponen cloróticas.

157

• Especies como Switenia macrophylla, Cordia alliodora, Cedrela odorata, C. montana se plantan para enriquecer bosques y no necesitan mucha preparación del terreno, solamente se deben controlar las poblaciones de enredaderas y

trepadoras que crecen bajo su sombra.

• Otras especies hay que plantarlas bajo vegetación arbórea para controlar ataques de insectos como por ejemplo Cedrela odorata, C. Mexicana, Switenia macrophylla, que son atacadas por el barrenador Hypsyphylla grandella.

• Otras especies que no resisten la plena exposición a la radiación solar como: Juglans neotropicals, Calophyllum mariae, Dyalianthera otoba, Podocarpus montanus, Decussocarpus oleifolius, Quercus humboltii.

3.3.2 El sitio y las condiciones ecológicas: Las condiciones del terreno en

cuanto a su topografía, pendientes, profundidad efectiva de los suelos, condiciones

climáticas y ecológicas; determinan las mejores formas para lograr el máximo

provecho del suelo, con el fin de obtener una alta supervivencia y una buena adaptación de los árboles plantados, rompiendo las barreras que impidan un buen

enraizamiento y optimizando la aireación y drenaje del terreno.

La cuestión radica en encontrar el nivel óptimo de rendimiento de un cultivo que

se refleje en un buen crecimiento sin excederse en costos.

La preparación de la estación se puede hacer por tres formas:

� Métodos manuales

� Métodos mecanizados

� Métodos químicos

158

3.3.3 Métodos manuales: La preparación de la estación con mano de obra y

herramientas manuales, es el sistema más antiguo y sigue siendo el método más

corriente que se utiliza en las circunstancias siguientes:

• Cuando la cubierta del terreno exige que la perturbación sea mínima antes de la plantación o la siembra.

• Cuando el terreno es muy pendiente, rocoso, húmedo, o por cualquier otra causa, que impida el funcionamiento de maquinaria.

• Cuando es necesario, desde el punto de vista social, emplear mano de obra.

3.3.3.1 Estaciones cubiertas de gramíneas o arbustos: Cuando la cubierta

del terreno está costituída por especies de gramíneas o de arbustos, la remoción

de la vegetación es sencilla.

Hay estaciones en que las circunstancias permiten la plantación directa con una mínima labranza del terreno, esto ocurre con algunos pinus centroamericanos

como por ejemplo: Pinus caribaea, Pinus kesiya y Pinus elliottii en medio de la hierba adulta e intacta, siempre que sus ápices se mantengan libres mediante

desbroce.

En zonas donde se ha cortado una plantación forestal a tala raza, se puede realizar

plantación directa sin preparación, donde los residuos vegetales, los nutrientes, y

la humedad son suficientes para la plantación, ejemplo: Smurfit Cartón de Colombia

(Ver figura No. 63)., a veces acompañada de quemas controladas, que es una práctica corriente en los países tropicales, pudiendo decirse que es el método más

antiguo para aclarar y puede resultar el más barato.

159

En la mayoría de las casos la competencia de gramíneas o herbáceas es una amenaza para las plantitas, sobre todo en zonas sujetas a temporada de sequía pronunciada, y donde el clima favorece el crecimiento de vegetación nativa. En estos casos es indispensable eliminar la vegetación antes de plantar, pero a veces resulta demasiado costoso el deshierbe total que puede alcanzar los 31 jornales por / ha. Por ello la práctica más corriente utilizada en Colombia se limita a parcelas relativamente pequeñas o fajas estrechas, llamados platos que pueden ser rectangulares o cuadrados con medidas entre 0.5 x 0.5 m., 0.8 x 0.8 m. ó 1.0 x 1.0 m. , 1.2 x 1.2 m. En las colinas estas parcelas se deben situar en las curvas a nivel, amontonando la vegetación en el borde inferior, como precaución para evitar la lixiviación. 3.3.3.2 Estaciones con cubiertas de matorrales o árboles: Es frecuente encontrar cubiertas de matorrales o árboles, que compiten con la plantación que se vaya a establecer, en este caso es necesario eliminar la vegetación arbórea y arbustiva con hacha y machete para árboles hasta 10 cm. de DAP, los de diámetro mayor se cortan con motosierra, esto puede requerir desde 15 jornales por ha.,

Figura No. 63 Plantación con residuos vegetales del aprovechamiento forestal. Cartón de Colombia

160

hasta 30 jornales. El material producto de los cortes se deja secar o podrir procediéndose a una quema controlada 6 a 8 semanas después.

3.3.3.3 Aclareo en fajas o líneas: Cuando las especies son esciófitas o tolerantes a la sombra, puede no ser necesaria la extracción de toda la vegetación forestal, como consecuencia se han desarrollado sistemas de aclareo parcial que se pueden llamar ¨aclareos en fajas o líneas”, mediante los cuales se despeja por completo la vegetación siguiendo líneas o bandas de 1.8 a 10 m. de ancho a intervalos fijos, este sistema se ha utilizado intensamente en los trópicos, bajo dos formas: a. Plantación de enriquecimiento, destinada a mejorar la cantidad de especies maderables valiosas. b. La plantación de conversión, destinada a sustitución de la vegetación existente por un bosque artificial nuevo. Este sistema se ha utilizado en plantaciones de Cedrela odorata, Switenia macrophylla, Calophyllum mariae, Quercus humboltii, Goupia glabra, Caryniana pyriformes, Terminalia superba, en las zonas húmedas tropicales y áreas premontanas. 3.3.4 Mecanización y métodos mecanizados: La mecanización en sentido estricto se refiere a la introducción de máquinas para suplementar la mano de obra empleada en la ejecución de ciertas operaciones especializadas. El principal objetivo de la mecanización en las plantaciones forestales es realizar ciertas operaciones de una manera eficaz y económica mediante el empleo de máquinas. Cuando se planifica la mecanización hay que considerar ciertos criterios básicos que se aplican en toda la vida de la plantación. • Seleccionar las máquinas y los accesorios para las plantaciones, que sean adecuadas para las operaciones en que se utilizan.

161

• Debe conseguirse el máximo uso efectivo de las máquinas, los lotes y áreas de reforestación deben ser grandes y evitar las áreas pequeñas y espaciadas.

• El espaciamiento de las plantaciones es un factor clave que afecta la producción forestal y la eficacia de los equipos, por ejemplo: espaciamiento menor de 2.8 m. rara vez facilita la utilización de tractores agrícolas.

• La mecanización es un proceso costoso, y el proyecto debe tener el alcance y la magnitud que justifiquen tales inversiones.

3.3.4.1 Ventajas y desventajas para la preparación mecanizada: Las principales razones para mecanizar en forma selectiva se refieren a: eficiencia en cuanto a costos, escala de la operación, oportunidad de la operación y calidad del trabajo.

3.3.4.2 Eficiencia de costos: En general el aclareo en gran escala del terreno puede hacerse con mayor eficiencia, mediante técnicas mecanizadas que con métodos manuales.

3.3.4.3 Escala: La escala de las operaciones está relacionada con la eficiencia, a mayor escala es necesario introducir maquinaria para lograr mayor eficiencia. 3.3.4.4 Oportunidad y calidad: La realización de plantaciones en gran escala, requieren operaciones con fechas fijas. Preparaciones tardías del terreno pueden ocasionar retrasos y problemas con las condiciones climáticas, si a esto le unimos la mejor calidad que se produce con la utilización de maquinaria en labores que resultan pesadas para el esfuerzo humano, la mecanización resultaría ventajosa, las limitaciones en la mecanización son entre otras: • No es posible mecanizar en terrenos difíciles donde por pendientes, barrancos o afloramientos rocosos impiden el uso de máquinas.

• El elevado costo inicial de la inversión y los costos de funcionamiento (repuestos, aceites, combustibles) hacen inalcanzable su incorporación.

• Se necesitan operarios y talleres especializados para estas labores.

162

3.3.4.5 El laboreo mecanizado previo a la plantación: El principal objetivo es extraer las raíces, troncos, y los restos leñosos en las estaciones seleccionadas, para hacer posible el laboreo del suelo antes y después de la plantación. (Ver figuras No. 64 y 65)

El aclareo y laboreo se traducen en dar condiciones a la estación, especialmente favorables para el bosque artificial creado, al eliminar o reducir la competencia de la vegetación y al aumentar la percolación, lo que puede reducir o eliminar la vegetación arbórea, por la competencia que produce en los arbolitos por luz y

Figura No. 64 Desmonte de áreas cubiertas con bosques, utilizando buldozer y arado

Figura No. 65 Desmonte de tierras forestales con arado

163

nutrimentos. El laboreo puede ser: parcial, como el laboreo en fajas y el arado en surcos, cincelado, total, como el arado completo, o arada y rastrillada, o suplementario, como el subsolado o laboreo profundo. 3.3.4.6 Laboreo en fajas: En ciertas condiciones del sitio, en terrenos ondulados y donde las especies a plantar sólo exigen un deshierbe localizado para permitir el crecimiento y desarrollo adecuado, puede ser suficiente el labrar únicamente una banda estrecha de (2–3 m de ancho), siguiendo la línea de plantación, que es suficiente para liberar los árboles de la competencia en el período inicial de crecimiento después de la plantación. Con frecuencia esto puede lograrse mediante el rastrillado con rastras especiales; el cincelado que con tres dientes prepara parcialmente las líneas de plantación, el arado con bedón el cual prepara las líneas de plantación. (Ver figuras No. 66 y 67) El laboreo en fajas, preparando solo una parte de la estación acompañado a veces de subsolado se ha utilizado en Colombia, en la represa del Neusa Cundinamarca en los proyectos de la CAR y el CHECUA, sobre todo tratando de conservar el suelo y el agua, evitando la erosión. En Malawi se ha utilizado en plantaciones de Pinus pátulas arada a 30 cm. de profundidad y subsolado siguiendo las curvas a nivel.

Figura No. 66 Arado con bedón para preparación de líneas de plantación

164

3.3.4.7 Laboreo total: El laboreo total de la estación es el sistema corriente en

la preparación mecanizada de los terrenos planos o ligeramente ondulados con período prolongado de sequía, se hace necesario el deshierbe para evitar la

competencia por humedad del suelo, por luz y nutrientes. El laboreo total incluye

dos operaciones:

a. Arado de desmonte y

b. Rastrillado o gradeo previo a la plantación.

3.3.4.8 Arado de desmonte: Es romper el suelo por primera vez y enterrar con

el arado todas las malezas y la vegetación. Esta labor se realiza cuando el suelo

esté húmedo, pero no encharcado, y a una profundidad de 30 cm. (Ver figura No.

68).

Figura No. 67 Arado de un diente en preparación de terrenos

Figura No. 68 Preparación de tierras mediante arada de desmonte

165

3.3.4.9 Gradeo o rastrillada: Es una labor que sigue al arado y se realiza antes de plantar. El objetivo es romper los terrenos y dar una inclinación lateral, nivelar la superficie del suelo, enterrar cualquier brote de malezas y mantener el terreno limpio. Un terreno libre de malezas, con el suelo desmenuzado y labrado por lo menos en 15 cm. facilita la plantación y el deshierbe posterior. (Ver figura No. 69)

3.3.4.10 Subsolado o desfonde: En suelos poco profundos que yacen sobre roca meteorizada, en suelos compactados o en aquellos que tienen capas duras o sementadas que limitan el desarrollo del sistema radicular, es frecuente que se pueda mejorar la infiltración del agua y la penetración de las raíces mediante el subsolado o el desfonde. La operación incluye el laboreo del suelo situado debajo de la superficie, sin invertirlo, ésta operación se realiza mediante púas de subsolado o arados de desfonde acoplados detrás de tractores de ruedas o de oruga. Los subsoladores pueden ser o de un solo diente o de dientes múltiples, con tractores y equipos apropiados es posible realizar el subsolado con profundidad de más de un metro, pero es normal a unos 60 a 70 cm. El subsolado se puede hacer después de un arado normal, y en tierras inclinadas, de hacerse siguiendo curvas de nivel. Hoy en día se utilizan equipos como el cincel para preparar únicamente la línea por donde se arrastra el equipo en preparaciones de mínima labranza. (Ver figuras No. 70 y 71).

Figura No. 69 Desmenusada del suelo, utilizando rastrillos

166

Hay una extensa variedad de tractores, buldozers y de aperos adecuados para el laboreo de las plantaciones; la elección principal está entre unidades de ruedas o de oruga. 3.3.5 Métodos químicos: El uso de productos químicos en la preparación del terreno es para eliminar hierbas, matorrales, árboles o tocones. En algunas condiciones, la aplicación de productos químicos es por sí sola una preparación adecuada de la estación, pero lo más frecuente es que los productos químicos se utilicen en combinación o como suplemento de otras técnicas como preparación manual o mecanizada. Por ejemplo: en áreas de pastizales puede matarse la

Figura No. 71 Cincel de tres dientes para preparación parcial de tierra

Figura No. 70 Arado con dientes para la preparación de tierras

167

vegetación mediante herbicidas, aunque también se utilizan para matar rebrotes o retoños. (Ver figura No. 72) Además de usarse para preparar los sitios, los productos químicos se utilizan también para controlar las malezas durante el establecimiento de la plantación. Para el deshierbe después de la plantación es importante aplicar los productos químicos de tal forma que se reduzca el peligro de hacerle daño a los árboles plantados. Los productos químicos utilizados se conocen como ¨arboricídas¨ ¨selvicídas¨ o destructores de arbustos, matorrales y otras plantas leñosas; pero el nombre más conocido es el de ¨herbicidas¨con el que se denomina a las sustancias químicas empleadas para eliminar plantas, herbáceas, arbustos o árboles. Los productos químicos utilizados se clasifican según la forma como actúan y son: • Los herbicidas de ¨contacto¨ queman y envenenan las partes de las plantas que entran en contacto con el producto químico.

• Los productos químicos de ¨translocación¨ son absorbidos por las raíces, por las hojas o por los tallos y circulan en la planta por el xilema y floema.

Figura No. 72 Preparación de tierras, utilizando productos químicos

168

• Los productos químicos de acción edáfica o de pre-emergencia son tóxicos en el suelo para las semillas en germinación.

• Los matamalezas ¨totales¨ como el clorato de sodio, matan toda la vegetación cuando se aplican al suelo. Este es un producto residual que queda en el suelo durante varios meses.

La eficacia de los herbicidas depende de numerosas variables como la época de aplicación, la especie y el tamaño de las plantas, la estructura del bosque, la humedad del suelo y las condiciones meteorológicas. Generalmente, las aplicaciones de herbicidas realizadas durante el período vegetativo producen mejores resultados. Los árboles de menos de un año son sensibles a los herbicidas, la aplicación de estos productos sin investigación previa y sin adelantar trabajos experimentales, pueden generar graves problemas en la población como ha quedado demostrado en muchos casos y además en los ecosistemas cuando afectan indiscriminadamente todas las especies vegetales, sobre todo en los nacimientos de agua y en el curso de los mismos, en las sementeras de producción alimentaria y en los animales. 3.3.5.1 Los principales herbicidas utilizados en la silvicultura: Herbicidas para controlar especies leñosas y herbáceas:

2, 4 , 5 - T (ácido 2, 4, 5 - Triclorofenoxiacético): Es un herbicida de traslocación que controla especies leñosas latifoliadas, se ha encontrado que las coníferas son resistentes durante la época de reposo vegetativo. Las especies leñosas latifoliadas son susceptibles al rociado foliar con 2 , 4 , 5 - T, pero varían su efecto de una especie a otra se ha encontrado que son muy sensibles los géneros, sálix, alnus, prunus, sambucus, etc. En Colombia el 2 , 4 , 5 - T, ha sido utilizado para la preparación de estaciones de reforestación y para controlar arbustos y árboles en potreros.

169

2 , 4 - D (ácido 2 , 4 - Diclorofenoxiacético): Es un herbicida de traslocación que ha resultado eficaz en la lucha contra la vegetación herbácea de frondosas. Se utiliza para el rociado foliar, las coníferas son sensibles al 2, 4 - D durante el período vegetativo. Cuando se ha mezclado 2 , 4 - D y el 2 , 4 , 5 - T, forman un líquido que rociado en la planta tiene doble finalidad, al controlar especies herbáceas y leñosas. Pero ecológicamente es cuestionable ya que constituye el “agente naranja”. Sulfato de Amonio (AMS o Amato): Es un producto cristalino y muy soluble, que mata especies leñosas, es usado en rebrotes de tocones o en los fustes de los arbustos y árboles. Se ha utilizado también colocar los cristales sobre el tocón recién cortado o en los anillos hechos en los árboles, por su poder residual es necesario esperar 3 meses después del tratamiento para realizar las actividades de plantación. Arseniato de Sodio: Es un producto, de gran toxicidad, que ha sido utilizado en muchos países tropicales para eliminar árboles de grandes dimensiones. El anillamiento y tratamiento con Arseniato de Sodio, ha sido la práctica corriente, pero dada su alta toxicidad para el hombre y los animales, está seriamente cuestionada. Picloram (4 - amino - 3 , 5 , 6 - Ácido Tricloropicalínico): El picloram, o tordon, es un herbicida de traslocación que se usa después de la brotación de las plantas leñosas, eliminación de los arbustos, este producto se utiliza en Colombia para la preparación de potreros y áreas de reforestación, lo mismo que taludes de carreteras. Triazinas: Actúan sobre los procesos fotosintéticos de las plantitas que brotan. Se aplican al suelo, donde son rápidamente absorbidas por el sistema radicular y transportados a las hojas, este grupo incluye la siamazina y atrazina. Clorato de Sodio: Es un herbicida “total” que se aplica al suelo para matar la vegetación perenne en caminos, trochas y cortafuegos, es un producto bastante residual, cuyo efecto pude durar 12 meses.

170

Herbicidas para el Control de Gramíneas: La presencia de gramíneas se constituye en el problema más serio en las plantaciones recién establecidas ya que a menudo retrasan el desarrollo de los arbolitos y aumentan los costos de mantenimiento. Dalapón (Dowpon): Es un herbicida de traslocación que afecta solamente las especies de hoja angosta (gramíneas), afectando especialmente a géneros como: Melinis minutiflora, Pennisetum clandestinum, Cyperus rotunduos, Hyparrenia ruffa, Agrostis sp., Panicum maximun; el producto se aplica rociado y se puede plantar después de 1 mes y/o mes y medio.

Paraguat (Gramoxone): Es un producto que actúa por traslocación, con una acción rápida contra gramíneas, hierbas anuales y casi todas las especies gramíneas. Este se degrada rápidamente al entrar en contacto con el suelo, facilitando la plantación inmediatamente después de aplicado. Es un producto muy venenoso. 3.3.5.2 Ejemplos de prácticas comunes de preparación del terreno para la disminución de malezas: a. Vegetación pequeña (Sourveld) en el bosque de Usutu en Zwaziland para

sembrar Pinus pátula, donde no es posible arar se demarca el área de plantación usando una pica de unos 80 cm. de ancho. La vegetación se mata con herbicida en una radio de 1.5 m. Generalmente se utiliza Glifosato aplicado en dosis muy bajas. Los árboles se siembran en hoyos pequeños abiertos en la mitad de la zona limpiada.

b. Terrenos cubiertos por ¨Missión grass¨ en Nabou, Fidji para la siembra de

Pinus caribaea. Es imposible la labor mecánica, y la única forma de limpiar el terreno es haciendo quemas al final del invierno en agosto, en el momento de la siembra se abren agujeros pequeños.

c. Terrenos dominados por Imperata cylindrica o Themeda australis en el valle de

Markham en Papua, Nueva Guinea, para la siembra de Pinus caribaea y P. kesiya, hasta donde sea posible se debe arar la tierra, se acaba con Themeda

171

australis pero a su vez estimula Imperata cylindrica, no se practica otra labor antes de la siembra aunque se puede arar a intervalos de 50 cm., a 1 m., donde hayan suelos húmedos y arcillosos.

d. Limpieza de un terreno abierto en el Congo para siembra de Eucalypto. Las

malezas y árboles se arrancan con tractor, los desechos se queman, los brotes de maleza se arrancan de nuevo con tractor, en los lugares arcillosos se ara con disco a 30 cm. y se subsola a 60 cm. a intervalos de 1.4 m., en ángulo recto a los surcos, para control de semillas se ara de 2 a 3 veces.

e. Brachystegia en Malawi para siembra de pinos y eucalyptos, todas las labores

se hacen manualmente, los árboles se arrancan, desmembran y se cortan a un tamaño manejable, los desechos se amontonan y se dejan secar para quemarlos en un día tranquilo.

• En Colombia departamentos del Cauca, Valle del Cauca la empresa Cartón de Colombia, preparan el terreno eliminando rastrojos y malezas con hacha y machete, aplican Roundup en una área de 1.2 x 1.2 m., donde posteriormente se hace el ¨repique¨ para la plantación.

• La misma empresa Cartón de Colombia cuando quedan residuos de la cosecha anterior y/o los rastrojos previamente cortados se amontonan, realizándose una quema del material combustible y se efectúa el plateo en un área de 0.8 x 0.8 m. a 1.0 x 1.0 m., donde se aplicará Roundup en una área de 1.2 x 1.2 m. que incluya el plato. En el centro del plato se hace un hoyo repicado 30 x 30 x 30 x 30 cm. para la plantación.

• Cuando el terreno se puede mecanizar (pendientes interiores al 20 %), se eliminan rastrojos y malezas con maquinaria agrícola, se procede a arar y a rastrillar (doble rastrillada), después de tres semanas cuando las malezas y pastos empiezan a rebrotar, se aplica Roundup en un plato de 1.2 x 1.2 m. En el caso de suelos muy compactados o con drenaje deficiente se deben subsolar, arar y rastrillar.

172

La empresa Monterrey Forestal en Zambrano Departamento de Bolívar, prepara los terrenos para la plantación forestal de Bombacopsis quinata y Gmelina arbórea, con dos pases de arado y luego subsolado a 30 cm. Para el control de malezas se aplicarán herbicidas pre-emergentes, como lazo y atrazina y como post-emergente Roundup. 3.3.6 Trazado de plantación: El trazado es una operación en la cual se reconocen y delimitan en el terreno los tramos, los cuarteles, los rodales, las carreteras, senderos y cortafuegos. Como el diseño del trazado es una operación considerada importante en la planificación, las principales áreas del proyecto son los caminos y carreteras, cortafuegos, la explanación, desagüe y afirmado de las carreteras y los cuarteles de reforestación. (Ver figuras No. 73 y 74) La superficie que se proyecta plantar cada año deberá estar lista para plantar antes de la fecha estimada para esta labor. Los tramos se trazarán y delimitarán mediante carreteras, caminos, senderos o cortafuegos. Todos los puntos y limites de intersección deben indicarse mediante postes o estacas claramente visibles, y más o menos permanentes. Las carreteras de acceso tienen que ser utilizables en verano e invierno para poder realizar el transporte de plantas, abonos, herramientas, mano de obra, que permita ejecutar la plantación y las operaciones complementarias, cuando las labores se ejecuten mecanizadamente, como el deshierbe, subsolado, debe dejarse espacio suficiente para que el tractor pueda maniobrar. Figura No. 73 Trazado y distribución de las

plantaciones forestales de Bombacapsis quinata y Gmelia arborea en Zambrano (Bolivar)

173

3.3.6.1 Espaciamiento inicial en relación al establecimiento de plantaciones: El espaciamiento es la manera como se van a distribuir los arbolitos en una plantación. El espaciamiento inicial influye considerablemente en varios aspectos del establecimiento de la plantación, así como también afecta las etapas posteriores de desarrollo de la masa. Se trata de darle a cada arbolito el espacio vital, para que pueda prender, crecer y desarrollarse sin que interfiera o compita con los árboles que le circundan. Cada especie demanda un espacio de crecimiento donde obtiene la luz, nutrimentos y agua necesarios para suplir sus necesidades vitales. Al elegir el espaciamiento más adecuado, se trata de dar a cada individuo suficiente espacio para conseguir el máximo crecimiento útil sin desperdicio de espacio. (Ver tabla No. 8) El empleo de espaciamiento amplio puede ofrecer ventajas económicas. Se reduce el número de plantas por hectárea con la consecuente reducción de costos, de plantones y plantación; se requiere menos trabajo de preparación del suelo, adicionalmente puede evitarse, parcial o totalmente, la necesidad de aclareos no comerciales; y se incrementa la facilidad de acceso para operaciones mecanizadas.

Figura No. 74 Distribución de plantaciones forestales de Pinus oocarpo, Pinus patula en Restrepo (Valle)

174

Tabla No. 8 Distancias utilizadas en plantaciones forestales, en los países tropicales

ESPECIE DISTANCIA EN METROS

EDAD DE LOS ARBOLITOS

NUMERO DE ARBOLES Ha.

TAMAÑO DE LOS ARBOLITOS

PAISES

Pinus spp. Pinus spp. Tectona grandis

2.75 x 2.75 m. 4 x 2 m.

2 x 2.5 m.

1.323 1.250 2.000

Costa de Marfil

Gmelina arbórea Tectona grandis

2.4 x 2.4 m. 2.4 x 2.4 m.

1.736 1.736

Liberia

Terminalia ivorensis Pinus spp. Gmelina arbórea

5 x 5 m. 6 x 6 m.

1.8 x 1.8 m. 1.4 x 1.4 m.

400 278

3.086 5.102

Nigeria

Pinus spp. Eucalyptus spp.

1.8 x 1.8 m. 2.0 x 2.5 m.

0.5 a 1.0 años 3.086 2.000

15 - 30 cm. 15 - 30 cm.

Rhodesia

Pinus spp Eucalyptus spp.

1.8 x 1.8 m. 2.0 x 2.5 m.

1.5 x 2.0 m.

1 o 2 años

1 año

3.086 2.000

3.333

80 - 100 cm. 30 - 50 cm.

Perú

Pinus pátula Pinus oocarpa Pinus kesiya Eucalyptus spp. (semilla) Eucalyptus spp. (clones)

3.0 x 3.0 m. 2.8 x 2.8 m.

3.0 x 3.0 m. 2.8 x 2.8 m.

2.9 x 2.9 m. 2.8 x 2.8 m.

2.8 x 2.8 m.

3.0 x 3.0 m.

1.111 1.276

1.111 1.276

1.190 1.276

1.276

1.111

20 - 30 cm.

Colombia Cartón de Colombia

Pinus caribaea 3.0 x 2.4 m. 1.389 Islas Fiji

175

ESPECIE DISTANCIA EN METROS

EDAD DE LOS ARBOLITOS

NUMERO DE ARBOLES Ha.

TAMAÑO DE LOS ARBOLITOS

PAISES

3.05 x 2.13 m. 1.538 Australia Eucalyptus grandis Pinus caribaea Gmelina arbórea

2.0 x 3.0 m. 4.0 x 2.25 m. 3.5 x 3.5 m.

1.667 1.111 816

Brazil Aracruz Jari Jari

Albizzia falcataria Pinus caribaea Eucalyptus deglupta

4.0 x 2.0 m. 4.0 x 3.0 m. 4.0 x 4.0 m.

1.250 833 625

Philipinas

Pinus caribaea 3.0 x 3.0 m. 10 a 12 meses 1.111 20 - 40 cm. Queesland (Australia)

Tectona grandis Eucalyptus tereticornis

3.0 x 2.7 m. 2.0 x 2.0 m. 4.0 x 2.0 m.

1.190 2.500 1.250

Tectona grandis Gmelina arbórea Triplochiton sileroxylon

2.1 x 2.7 m. 6.0 x 6.0 m. 7.0 x 3.0 m.

1.764 278 476

Costa de Marfil

Pinus pátula Pinus kesiya Cupressus lusitania Eucalyptus saligna

2.7 x 2.7 m. 2.7 x 2.7 m. 2.7 x 2.7 m. 2.0 x 2.0 m.

1.372 1.372 1.372 2.500

Zambia

Eucalyptus saligna

2.0 x 2.0 m.

2.500 Angóla (madera para pulpa)

Araucaria cuminghamii Eucalyptus deglupta

3.0 x 2.5 m. 4.5 x 4.5 m.

1.333 494

Papua (Nueva Guinea)

Pinus pátula 2.74 x 2.74 m. 1.332 Swazilandia

176

En el caso de espaciamientos cortos se produce el cierre temprano del dosel, supresión rápida de las ramas y mayor oportunidad para mejorar la cosecha por aclareos selectivos favoreciendo la producción de madera de alta calidad. Hay actualmente una tendencia hacia el uso de espaciamientos amplios en las plantaciones forestales. Esto se debe al aumento del costo de mano de obra y a la disminución de la rentabilidad de la venta de productos pequeños. No obstante los requerimientos silviculturales limitarán esta tendencia. 3.3.6.2 Consecuencias de espaciamientos amplios: Crecimiento y calidad de la madera con relación al espaciamiento. El impacto más evidente del espaciamiento en el crecimiento está relacionado con el árbol individual. La producción total de madera por unidad de área es menor en plantaciones espaciadas ampliamente, pero el crecimiento del árbol individual es estimulado, lo que es un argumento importante para evitar aclareos no comerciales. El crecimiento en altura es generalmente independiente de la densidad del rodal, mientras que el diámetro se incrementa con el espacimiento. Bartoldi y Decour (1971), Low y taylor (1967), Mello (1971), Rensi Coelho (1970), Wakely (1969), Walters y Schubert (1969), Ann Rep. Queensland (1979), Krinard (1971). Las ramas inferiores serán más pesadas y gruesas con espaciamientos amplios, lo que, conjuntamente con una forma de tallo más cónica, es considerado un efecto negativo de los espaciamientos más amplios en la calidad de la madera. No obstante la combinación de espaciamientos amplios y podas, puede ser una mejor alternativa que usar espaciamientos estrechos. Como un aspecto adicional debe mencionarse que las propiedades genéticas de los árboles tienen también una influencia sobre la calidad de la madera. Bennot (1969), Jack (1971), Mrácek (1971), Wardie (1967). Algunos factores que influyen en la elección de las distancias de plantación son los siguientes:

177

a. La tasa de crecimiento de la especie plantada. Se tiende a plantar las de crecimiento más lento en espaciamientos menores que las de crecimiento más rápido.

b. La forma de desarrollo de las especies plantadas. Algunas especies tienen

copas muy amplias y ramas gruesas que deben plantarse a distancias cortas para ayudar a formar un tallo principal, otras especies tienen autopoda y pueden plantarse a mayores distancias.

c. La utilización de espaciamientos menores, cierra más rápidamente la cubierta

de copas que traen como consecuencia disminución del número de deshierbes. Que sin embargo pueden aumentar los costos y dificultades al no poder utilizar maquinaria, que necesita espaciamientos mínimos de 2.8 m. entre hileras para maniobrar las máquinas.

d. La calidad de los suelos expresada en términos de la profundidad efectiva, la

disponibilidad de nutrientes y el contenido de humedad; determinan que cuando estos presentan suelos poco profundos, zonas áridas y baja disponibilidad de nutrientes; el espaciamiento será mayor, dejando más área para el desarrollo del sistema radicular.

e. Las técnicas de manejo silvicultural, si se quiere reducir el número de aclareos,

cuyos productos no son comerciales, se utiliza un espaciamiento mayor, de la misma manera que los Pinus y Eucalyptus de crecimiento rápido que demandan un espaciamiento mayor.

f. La finalidad de la plantación juega un papel importante en las distancias de

plantación, ya que si el objetivo de la plantación es producir madera para pulpa, leña o postes pequeños se utilizan distancias cortas, en plantaciones destinadas a madera de aserrío, chapas, tableros, las distancias serán mayores.

g. Al considerar los factores financieros estos representan mayores costos de

plantas, mano de obra, insumos, que tienden a aumentar cuando disminuyen

178

las distancias de plantación, mientras que los costos de los deshierbes aumentan cuando las distancias de plantación aumentan.

3.3.7 Distribución de las plantaciones: Hace referencia a la manera como se van a distribuir los árboles en una plantación, existen tres patrones de distribución y son: a. Distribución al cuadrado, que consiste en colocar los arbolitos a distancias

iguales entre líneas y dentro de las líneas, es decir se coloca cada plantita en el vértice de un cuadrado cuyo lado es igual a la distancia de plantación. Esta distribución es aconsejable en terrenos planos. (Ver figuras No. 75 y 76)

Figura No. 75. Trazado de plantación en líneas

179

b. Distribución rectangular, cuando la distancia entre líneas es mayor, que la distancia dentro de las líneas, este trazado se realiza con el fin de facilitar la circulación de maquinaria. (Ver figura No. 77)

Figura No. 77 Plantación y trazado en líneas

Figura No. 76 Hoyado y plantación

180

c. Distribución en triángulos (tresbolillos) consiste en disponer los árboles a manera de triángulos de lados iguales, cuyo lado es igual a la distancia de plantación. Es aconsejable para terrenos pendientes y donde es necesario conservar los suelos y facilitar la penetración y retención del agua. (Ver figura No. 78)

3.3.8 Cálculo del número de plantas: El número de plantas requeridas se calcula con la ayuda de la siguiente fórmula:

Dxd

AN =

N = Número de plantas necesarias para el programa. A = Área total a plantar.

Figura No. 78 Trazado de plantaciones en triángulo

181

D = Distancia entre las líneas. d = Distancia de plantas entre líneas. Ejemplo: Tenemos una área A = 100 ha. para reforestación, y la distancia entre líneas = 3 m. y la distancia dentro de las líneas = 3 m.

111.111./.33

.000.000'12

2

==plantmx

mN plántulas para siembra al cuadrado

En caso de plantación en triángulos (tresbolillos) En el ejemplo anterior, la distancia entre líneas se calcula con la siguiente fórmula:

)( 222 ACABBCdx

AN

−== AB 2= AC 2+CB 2

8.760.2360.2A

x

A

dx

AN === BC 2= AB 2 - AC 2

BC 2= 3 2 - (1.5) 2 B N = 128.205 plántulas BC = 75.6 BC = 2.60 A C

3

1.5

182

3.4 MÉTODOS DE PLANTACIÓN Se entiende por plantación, la colocación en un hueco de los arbolitos en el sitio definitivo; en las mejores condiciones posibles. Existen varios métodos de plantación que dependen de algunos factores como: a. Tamaño y edad de las plántulas b. El sistema de plantación (raíz desnuda o cespedón)

c. De las especies a plantar d. Topografía y condiciones del terreno e. Clima 3.4.1 Plateo repicado: Consiste en preparar un plato con azadón de 60 x 60 cm., o de 1.0 x 1.0 m. y hasta 1.2 x 1.2 m. en el centro del cual se repica una área de 20 x 20 x 20 cm., como quien va a hacer un hueco sin sacar la tierra, la empresa Cartón de Colombia realiza el repique de todo el plato limpiao, para facilitar una mejor aireación y meteorización del suelo. (Ver figura No. 79) La plantación que se realiza posteriormente, es la llamada plantación a “golpe” que consiste en hacer una ranura en el suelo del mismo tamaño de la raíz, con una pala o pica, abriéndola suficientemente para insertar las raíces de la planta y cerrarla con el pie o el tacón; una variante es la plantación con barra plantadora que es un punzón o barra que se introduce en el terreno para hacer una ranura dentro de la cual se inserta la planta y se afirma golpeando con la barra alrededor del arbolito y nivelando el suelo a la altura que tenía el cuello de la raíz en el vivero. Los procedimientos de plantación utilizando diferentes métodos se describen en los siguientes gráficos: (Ver figuras No. 80, 81, 82, 83).

183

Figura No. 79 Métodos de preparación del sitio con

plateo repicado y mecanización

184

Figura No. 80 Pasos para la plantación con pala

185

Figura No. 81 Secuencia de la plantación con pica

Figura No. 82 Pasos en la plantación de árboles con taladro mecánico

186

Estos métodos se utilizan con plántulas a raíz desnuda (sin cespedón o bola de tierra), con estaquillas sin raíces, con estacas. Las plantas de vivero con cepellón o bola de tierra solo pueden plantarse en hoyos. En este caso se abre un hueco en el suelo del mismo tamaño, o con frecuencia de dimensiones mayores que la bolsa o recipiente en que vienen las plántulas. Estos hoyos se suelen abrir con un barretón, palín o pala, con dimensiones de 30 x 30 x 30 cm. Los hoyos también pueden excavarse mediante perforadoras o barrenos de acción mecánica que se llevan a mano o montadas sobre tractor. (Ver figuras No. 84 y 82)

Figura No. 83 Métodos para plantación en bolsa y a raíz desnuda

187

Para la plantación propiamente dicha se procede así: • Se extrae la planta del recipiente o bien se raja o corta éste antes de plantar. • Para la extracción completa de las bolsas de polietileno, esta se raja y se desgarra el fondo, retirando la bolsa antes de plantar.

• El arbolito se coloca dentro del hueco llenándolo con el suelo húmedo que se afirma suavemente con las manos o el pie, con el fin de evitar que se formen espacios de aire en el terreno y para que el suelo esté en estrecho contacto con las raíces.

• El afirmado disminuye también el daño que pueda producirse por el viento que pueda sacudir la planta y perturbar las raíces durante el período entre la plantación y la consolidación del suelo.

• Cuando el material de plantación es muy alto corre el riesgo de sufrir daños por el viento, en este caso es necesario clavar estacas, como especie de tutores.

• Debe tenerse en cuenta una serie de cuidados en el momento de la plantación como:

Figura No. 84 Apertura de hoyos con taladro mecánico. Granja Armero - Guayabal

188

a. Las plántulas deben quedar colocadas al mismo nivel de profundidad que tenían en la bolsa o a lo sumo ligeramente mas elevado que la superficie del terreno.

b. En zonas áridas, las plantas deben quedar un poco enterradas a fin de poder

capturar agua cuando hay lluvias. c. Las plántulas deben colocarse de tal manera que el sistema radicualr quede en

posición normal. (Ver figura No. 85) 3.4.2 Época de plantación. La mejor época para plantar es aquella en la que el suelo esté mojado, cuando las condiciones atmosféricas son húmedas y los índices de evaporación son mínimas, que en el trópico coinciden con la época de lluvias. Deben evitarse los días secos, soleados y de mucho viento, ya que producen en el árbol el stress de la “evapotranspiración”, que es la principal causa de mortalidad, evitándose esto con las siguientes medidas:

a. Plantar los arbolitos cuando los niveles de humedad del suelo han saturado la capacidad de campo. Esto ocurre cuando han caído 100 mm. de lluvia y a comienzo de la estación lluviosa. En Zambia, la plantación comienza cuando está el suelo húmedo en una profundidad de 30 cm. Esta cantidad hay que

Figura No. 85 Plantaciones correctas e incorrectas

189

calcularla para cada localidad de plantación, y depende del tipo de suelo, de la altitud, de la probabilidad local de lluvia y de las especies de árboles que se estén plantando.

b. Plantar en días nublados y lluviosos. c. Plantar arbolitos bien balanceados que hayan sido regados antes de dejar el

vivero. d. Usar Stocoekosorb como gel hidratante en zonas áridas o secas. 3.5 MANTENIMIENTO DE LA PLANTACIÓN Los cuidados culturales son las actividades necesarias para crear unas condiciones favorables para la supervivencia de las plantas después de la plantación, y para estimular un crecimiento sano y vigoroso hasta que la plantación sea cosechada. En la mayoría de las estaciones de plantación, los cuidados culturales pretenden, sobre todo, evitar que las plantas sean dominadas o suprimidas por la competencia de la vegetación de malezas. Otros trabajos consisten en la fertilización y aplicación de micorrizas; control de insectos y patógenos. En otros casos es necesario aplicar las podas, aclareos y entresacas para mejorar la conformación del árbol y aumentar las tasas de crecimiento. Estos cuidados son entre otros los siguientes:

� Plantación de reposición

� Control de malezas

� Fertilización y aplicación de hidroabsorbentes

� Control de insectos y patógenos

� Podas

� Aclareos y raleos

� Micorrización

190

3.5.1 Plantación de reposición: No todas las plántulas sembradas sobreviven. Después de algunas semanas o meses de la plantación y dependiendo de la rapidez de crecimiento, se hace un censo de las plántulas que han muerto. En toda plantación debe aspirarse a no tener que hacer ninguna reposición, pero inevitablemente hay fallas debido a varios factores que determinan la supervivencia entre otras: • Las condiciones climáticas de sequía, después de la plantación.

MANEJO DE LA

PLANTACIÓN

Plantación de reposición

Manejo y control de insectos, patógenos,

micorrizas

Podas Aclareos Raleos

Control incendios

Control de vegetación (malezas)

Fertilización y aplicación de

hidroabsorventes

Figura No. 86 Actividades para el mantenimiento de la plantación

191

• Las condiciones de las plántulas utilizadas: raíz descubierta, stress durante el transporte, la rotura de las plántulas etc.

• Condiciones desfavorables de los suelos, principalmente exceso de agua y erosión.

• Presencia de insectos, hormiga arriera y termitas. • Presencia de malezas. • Daños producidos por pastoreo u otros animales etc. Es necesario adelantar un muestreo a fin de determinar si los árboles que quedan son suficientes para producir una cosecha satisfactoria. En una plantación de 1.111 árboles por hectárea si la mortalidad alcanza el 20%, esta se considera aceptable. Si el número de árboles plantados es menor entonces solo es aceptable un 10% de mortandad, y solamente un 5% en especies de 4 x 4 m. (625 árboles por ha.). En otros lugares como la Sabana Nigeriana, es deseable una supervivencia del 90% para Eucalyptus y Pinus plantados a 3 x 3 m., y cuando esta baja del 80% hay que hacer una evaluación. Las fallas graves, aunque a veces suelen atribuírse a condiciones climáticas excepcionales, se deben con frecuencia a errores de apreciación o técnicos durante el proceso de establecimiento, por ejemplo: La selección equivocada de la estación o de la especie, la preparación inadecuada del sitio, el uso de un material de plantación de mala calidad, una manipulación descuidada, el exceso de exposición a la intemperie durante el transporte, una plantación defectuosa, ataques de plagas o depredadores o bien un descuido en las operaciones de mantenimiento, cualquier fracaso requiere una investigación minuciosa para determinar las causas posibles de modo que pueda ponerse remedio en el futuro. (Ver figuras No. 87 y 88).

192

3.5.2 Control de malezas o deshierbe: Esta operación consiste en la eliminación o supresión de aquella vegetación indeseable que, si no se toman las medidas correspondientes, impediría el crecimiento de la plantación forestal y comprende:

Figura No. 87 Transporte de arbolitos en tractor

Figura No. 88 Transporte arbolitos en tractor con zorra

193

a. Control sobre gramíneas, malezas y arbustos desde el momento de la plantación que compitan directamente con las plántulas.

b. Operaciones de limpiezas y despeje del terreno. Ejemplo: Arrancar enredaderas, hierbas y árboles que no son necesarios. Las malezas se deben eliminar porque pueden causar daños a los arbolitos de varias maneras: • Compiten por la luz, humedad y nutrimentos. • Pueden debilitar y aún matar el árbol por su peso, sombra y hábitos de crecimiento.

• Causa daños al hombre por ser algunas especies espinosas y urticantes como por ejemplo: pringamoza, coronillo, zarza.

• Pueden albergar plagas y enfermedades. • La vegetación densa puede aumentar el riesgo de incendios. La frecuencia y duración con que debe hacerse el control de malezas depende de: a. El clima (lluvia, temperatura). b. Las especies (tasa de crecimiento). c. Técnicas silviculturales como: espaciamiento inicial, tamaño de las plantas. d. Las especies y densidades de las malezas. e. Fertilidad y disponibilidad de humedad del sitio.

194

• Métodos de deshierbe: El deshierbe mediante laboreo requiere generalmente que las malezas, con sus raíces, sean extraídas del suelo, dejándolas sobre la superficie o triturándolas y mezclándolas con el suelo. Además de eliminar las malezas tal laboreo puede aumentar la infiltración de la lluvia y reducir la evaporación del suelo, circunstancias que son importantes en zonas que tienen una estación seca prolongada.

Existen tres alternativas principales: control manual, control mecánico, y control químico: a. Control manual:

Es el más común para la contención y eliminación de malezas, se utilizan para este fin herramientas como machetes, hoces, azadones. Como el laboreo total a mano resulta costoso, por ejemplo: En Nigeria de 25 a 30 jornales/ha. En Colombia 15 a 20 jornales/ha. La operación se suele limitar al deshierbe en manchas o líneas, para el primer caso se limpia un plato de 1 a 2 m. de diámetro alrededor de los árboles; en el deshierbe en líneas se abre una faja alrededor de 1 m. de ancho, siguiendo la línea de plantación. b. Control mecánico: En ciertas áreas que tienen una estación seca marcada, se ha encontrado que el deshierbe en manchas o líneas es insuficiente para dar a la plantación la conveniente supervivencia o desarrollo, para tal fin se lleva a cabo un laboreo total mecanizado (rastrillar, revolver, arar y cortar), la maleza. Para usar maquinaria las líneas de plantación deben tener por lo menos 2.8 m. de ancho. Existe una amplia variedad de equipos mecanizados para el laboreo de deshierbe entre otros: • Guadañas.

195

• Tractores agrícolas con grados de discos inclinados, (rastrillos). • Tractores agrícolas con “rotavators”. (Ver figura No. 89) c. Control químico: El uso de productos químicos ha resultado un método eficaz para el control de malezas en plantaciones de coníferas, debido a que estos no afectan los árboles cuando son usados en las dosis correctas. Su aplicación en plantaciones de hoja ancha es más complicado ya que el producto químico que elimina una angiosperma de una maleza afecta también el arbolito. El éxito en la aplicación de herbicidas depende de cuatro factores: a. Seleccionar el producto que controla específicamente determinada maleza. b. Utilizar la dosis adecuada para un control efectivo. c. Entrenar a los trabajadores para su aplicación, preparación y manejo. d. Aplicar bajo óptimas condiciones climáticas. (Véase “Métodos químicos”:

páginas 153, 154, 155 y 156).

Figura No. 89 Rotaspeed para eliminación de vegetación superficial

196

3.5.3 Ferilización forestal: La característica del suelo forestal es el desarrollo de una capa de materia orgánica compuesta de follaje, ramas, y a veces árboles caídos. Cuando este material aportado por el bosque se descompone, muchos nutrientes son liberados y reciclados en los árboles de nuevo. La siguiente tabla ilustra con un ejemplo estos aportes:

Tabla No. 9 Relación de nutrientes en la hojarasca y el humus debajo de una plantación de Pinus radiata de 16 años.

Elemento Hojarasca Humus kg/ha. Relación Hoja/Humus

M.O (seca) 5.813 37.979 0.15 N 67 414 0.16

P 6 28 0.22

K 13 15 0.91

Ca 26 124 0.21

Mg 5 24 0.22

B 0.06 0.22 0.27

Zn 0.37 1.82 0.20

Cu 0.40 2.01 0.20

Mn 4.57 18.2 0.25 Fuente: Ballard y Will (1981) En un estudio realizado en Carolina del norte en una plantación de pinus taeda de 20 años de edad, se determinó que los árboles recibieron más de 98% de sus nutrientes directamente del humus y la hojarasca, que del suelo mineral. (Ver tabla No. 10)

197

Tabla No. 10. Suministro Relativo de nutrientes de cinco fuentes en una plantación de Pinus taeda de 20 años de edad

FUENTE %N

%P

%K

%Ca

Hojarasca y Humus 40 23 16 54

Precipitación 5 9 50 24

Lixiviación de la Copa 16 6 12 39

Traslado interno en el árbol 39 60 22 0

Suelo Mineral Total %100

0 %100

0 %100

0 %100

0

Fuente: Dr. RUSELL BALLARD, Weyerhaeuser Timber Co., Washington, D.C. Es decir, la especie que arroja la hojarasca más temprano en la vida de la plantación y en mayores cantidades es la especie que puede recuperar y estabilizar el suelo más pronto, este aspecto es de suma importancia en suelos marginados por la agricultura y especialmente para los suelos erosionados que ya no tienen esta capa de materia orgánica. Suele observarse que los pinos en general tienen una alta capacidad de formar esta hojarasca, aunque de lenta deposición. En el altiplano de Popayán se llevó a cabo un muestreo preliminar de la materia orgánica debajo de plantaciones de entre 9 y 12 años de las cuatro especies principales y se encontró que la deposición de hojarasca fue mucho mayor para Pinus kesiya que en las otras especies muestreadas (Ver Tabla No. 11). Esto significa que P. kesiya es más eficiente en extraer nutrientes del suelo al principio y que recicla los nutrientes más rápidamente. El hecho de que el ciprés funciona con endomicorriza al contrario de los pinos que forman asociaciones de ectomicorriza, puede explicar en parte su tasa más baja de reciclaje de materia orgánica y nutrientes.

198

Tabla No. 11. Peso de la materia orgánica en la ho jarasca debajo de plantaciones de cuatro especies de coníferas en el altiplano de Popayán*

ESPECIE MATERIA ORGÁNICA **

kg./ha.

Pinus Kesiya 3.352

Pinus pátula 2.090 Pinus oocarpa 1.888 Cupressus lusitanica 1.590 * Promedio de varias plantaciones de entre 9 y 12 de edad. ** Peso seco Fuente: Cartón dE Colombia, 1987 El reciclaje de nutrientes en plantaciones de eucaliptos ha sido poco estudiado pero en general arrojan la hojarasca con más alto contenido de nutrientes, especialmente las bases, que los pinos (Esparcia, 1980; Haag, 1980). Con una proporción más alta de bases se puede esperar que la mineralización de la hojarasca en rodales de eucalipto sea más rápida que en los de pinos. Los requerimientos nutricionales de los eucaliptos son máximos antes de los ocho años en el Brasil (Bellote et al.). A esa edad la proporción de nutrientes en la corteza del fuste es menor para el eucalipto (32%) que para el pino (48%) (Crane y Raison, 1980). Otros nutrientes utilizados provienen de la atmósfera, de la fijación biológica y también de la descomposición de la roca madre y otros materiales geológicos. Las pérdidas producidas son debidas a factores como la lixiviación, la escorrentia, la quema y la cosecha de madera. 3.5.3.1 Suministro de nutrientes. La cantidad de nutrientes que aporta la precipitación pluviométrica, varía según el sitio. Al evaluar numerosos estudios realizados por varios investigadores, Pritchett (1979), determinó que en promedio fueron suministrados al suelo los siguientes elementos y cantidades por la lluvia (kg./ha./año): N. 0.3, P. 3.2, K 8.0, Ca. 2.8 y Mg. 2.8.

199

Los microorganismos fijadores de nitrógeno de la atmósfera y que lo convierten en formas asimilables por los árboles, son los mecanismos más importantes para el aporte de este elemento al bosque. Los microorganismos tales como la bacteria Rhizobium y la Octinomiceta Frankia, forman relaciones simbióticas con los árboles. La descomposición de materiales rocosos de origen geológico es una fuente importante de nutrientes como el fósforo y el potasio intercambiable (Knight y Will, 1970). 3.5.3.2 Pérdida de nutrientes. Las pérdidas de nutrientes por efecto de la lixiviación no son significativos en términos generales (Pritchett, 1.979), por ejemplo: encontró en plantaciones de Pinus radiata en suelos volcánicos de Nueva Zelandia que las pérdidas ocasionadas por lixiviación fueron: (en kilogramos/ ha./año): Si (39), Na (12.5), Ca (12.5), Cl (5.6), K (4.2), Mg (1.6), P (0.01) y no hay pérdida de N. (Knight y Will, 1970). 3.5.3.3 Nutrientes esenciales para los árboles. Los árboles como cualquier otro cultivo necesitan de 16 elementos conocidos como esenciales para el crecimiento de árboles forestales; de estos tenemos los macronutrientes y son: Nitrógeno (N), Fósforo (P), Potasio (K), Calcio (Ca), Magnesio (Mg), Azufre (S). Los micronutrientes son: Hierro (Fe), Cobre (Cu), Cloro (Cl), Manganeso (Mn), Boro (B), Zinc (Zn) y Molibdeno (Mo). Además de estos elementos obtenidos del suelo, las plantas también necesitan 3 elementos que se originan en la atmósfera y son: Carbono (C), Hidrógeno (H) y Oxígeno (O). Son dos los factores que limitan el crecimiento de los árboles: las características genéticas y las condiciones del sitio en el cual crece. El componente genético se está trabajando bastante, mediante selección de árboles superiores, rodales semilleros, huertos semilleros, ensayos de procedencia, ensayos de progenie. El medio ambiente contempla factores climáticos como la temperatura, precipitación, propiedades de los suelos. Los forestales deben establecer las

200

especies en el clima existente; pero pueden modificar algunas propiedades de los suelos, en beneficio de los cultivos forestales. 3.5.3.4 Balance de nutrientes: El balance nutricional y la concentración son de importancia para el crecimiento de los árboles. El Nitrógeno (N), es el elemento más importante de la nutrición. Tomando como base un valor de 100 para el N. (Ingestad, 1.977, 1.979), determina la concentración óptima para otros macronutrientes considerando siete coníferas. Estos valores fueron: K, 54.3; P, 18.9; Mg, 5.4; Ca, 5.3. No se conocen valores similares para especies tropicales. Los elementos más deficientes en los suelos de la franja tropical son el Fósforo (P) y el Nitrógeno (N), y en suelos de zona andina y de sabanas se han encontrado el Boro (B) como un factor limitante. Se han encontrado varias causas de deficiencia nutricional entre otras: a. Suelos empobrecidos, ejemplo: arena, tierras de cultivo abandonadas. b. Deficiencias resultantes de factores como:

� Zonas de fuertes precipitaciones que lavan los nutrientes.

� Zonas Xerofíticas donde las deficiencias aparecen durante la sequía.

� La presencia de cal induce la clorósis.

� Efectos, debido a los distintos niveles de pH. El Fósforo se precipita en suelos altamente alcalinos.

c. Interacción con otros nutrientes. El nivel en que se encuentra un nutriente

afecta la disponibilidad de otro, ej.: N y P; y ; P y K , la aplicación de P puede causar una deficiencia de K.

201

d. Inadecuada dosis de nutrientes en suelos infértiles. e. Asociaciones pobres de micorrizas ectotrófas y endotrófas. f. Una gran competencia de malezas. El diagnóstico de las deficiencias nutricionales, se puede hacer por tres caminos, y son: 3.5.3.5 Ensayos con fertilizantes. Que son pruebas para observar los efectos de diferentes fertilizantes, solos o combinados, utilizados en el desarrollo de una especie y en un lugar determinado. 3.5.3.6 Análisis foliar. Es un análisis de la composición química de las agujas y hojas para determinar la concentración de nutrientes minerales. 3.5.3.7 Análisis del suelo. Debido a que el árbol toma la mayoría de nutrientes del suelo, se necesita un análisis químico de éste, para conocer la composición y desordenes nutricionales que existan. 3.5.3.8 Aplicación de fertilizantes. Las principales razones para aplicar fertilizantes son: a. Corregir deficiencias específicas de nutrientes o una falta generalizada de

fertilidad, que afectan la plantación y el desarrollo de los árboles. b. Para estimular el crecimiento, cualquier fertilizante debe acelerar el ritmo de

crecimiento de los árboles, aún en sitios donde el crecimiento es moderado. c. La fertilización en lugares donde no se ha cultivado anteriormente, la

fertilización en estos lugares puede ser favorable y aumentar la tasa de crecimiento.

Los avances logrados por la ciencia y la tecnología de la fertilización forestal han sido importantes. Las deficiencias de Fósforo y Nitrógeno de extensas zonas de

202

plantación han sido resueltas en lo fundamental, lo mismo que algunas deficiencias de elementos menores como el Boro. Pero falta aún mucho por investigar en las especies nativas Es importante la época de aplicación del fertilizante en la vida del árbol y puede ser: • En el momento de la plantación de los arbolitos, o poco tiempo después. (Ver figura No. 90).

• Aplicación años después de la plantación cuando ocurre el cierre de los copas y comienzan a aparecer las deficiencias.

• En etapas posteriores a la poda para aumentar la respuesta y estimular el crecimiento.

Figura No. 90 Plantación y aplicación de fertilizantes en corona

203

Antes de la corta final, tres o diez años antes para aumentar el crecimiento y mejorar la cosecha. (Ver Figura No. 91) 3.5.3.9 La nutrición de los árboles. Se ha dado gran importancia a la nutrición de los árboles, ya que además de la fertilización mineral existen otros métodos como son:

a. Restos vegetales: Utilización de los residuos vegetales, producto de la corta dejados en el sitio, por ejemplo: los troncos y el follaje. Estos aumentarán la materia orgánica y los nutrientes.

b. Materiales vegetales: El material vegetal se coloca alrededor del árbol para

suprimir las malezas, mejorar las condiciones de humedad del suelo y aumentar el contenido de materia orgánica, ejemplo: la utilización de matarratón (gliricida sepium), Acacia forrajera (Leucaena leucocephala) y Poró (Erythrina poeppigiana).

c. Estiércol y gallinaza: Especialmente el abono orgánica animal, como la

gallinaza que contiene elementos como: N = 17%, P = 8%.

Figura No. 91 Plantación de Pinus patula fertilizada antes de la cosecha

204

3.5.3.10 Plantas mejoradoras del suelo. Fijación de Nitrógeno y aporte del follaje. Las leguminosas tienen gran capacidad de fijar el nitrógeno de la atmósfera a través de la bacteria (Rhizobium spp.) presente en los nódulos de las raíces, y el aporte de nutrientes por el follaje, por ejemplo: Stylo (Stylosantes guyanensis), Kudzú (Pueraria phoseoloides), Centro (Centrosoma pubescens), Pega-pega (Desmodium uncianatum), Sitrato (Phoseolus stropurpurens), Soya (Glycine wightii), Crotalaria (Crotalaria apectabilis). Árboles que actúan como “Bombas de Nutrientes”. Algunas especies de árboles cuyas raíces pueden llegar a gran profundidad, ejemplo: Prosopis cineraria, Casuarina equisitifolia, cuyas raíces pueden llegar a 30 m., otras pueden extenderlos a los lados a 40 y 50 m. del árbol. Esta gran extensión del sistema radicular, permite traer a la superficie nutrimentos que se encuentran a grandes profundidades.

3.5.3.11 Fertilización. En términos generales las investigaciones con fertilizantes en el trópico son recientes. Los Eucalyptus spp. y Coníferas, han sido estudiados en Nueva Zelandia, Brasil, recientemente en Colombia, Sur África, Trinidad y Surinam, y los resultados obtenidos en los trabajos en plantaciones están aún en su fase evaluativa. Uno de los aspectos positivos de la fertilización es la disminución del turno de corta, como ocurre con los Eucalyptus spp. Las coníferas necesitan nutrientes para crecer y cuando no los consiguen en niveles adecuados, presentan problemas con su desarrollo. El Nitrógeno ocupa un lugar especial entre los elementos nutritivos, lo mismo que el Ca y Fe. La micorriza cumple una función primordial en el aporte de estos elementos, especialmente en las etapas iniciales. Las coníferas en general tienen requerimientos nutricionales diferentes que las latifoliados, y algunos autores como Van Goor (1963), y Bruning (1964), encontraron que las coníferas tienen marcados requerimientos por Potasio y Magnesio, aunque estos son menores que los de Nitrógeno y Fósforo, y que en definitiva las mejores respuestas se tienen en la combinación de los tres elementos N - P - K.

205

Especial énfasis hacen algunos autores, Wittich (1.958), Zotiel y Kennel (1.969), en el hecho de que la influencia que tiene la adición de nutrientes a los árboles tiene menos efecto sobre el crecimiento en altura que en diámetro, especialmente en el año en que se efectúa la aplicación. En términos de requerimientos de nutrientes, estos varían notoriamente con la edad. Para el caso de coníferas, Remezow et al (1963), encontró que el máximo requerimiento de nutrientes en un rodal, para la zona templada ocurre entre los 25 y 45 años de edad, -para la zona tropical equivaldría de 7 a 12 años- y que los nutrientes retornan al suelo en su mayor parte a los 30 y 60 años de edad; la mayor cantidad de elementos retenidos por planta ocurría entre los 15 y 30 años de edad, que comprende el período de crecimiento más rápido. Para el caso de crecimiento de las coníferas se puede considerar que la proporción de crecimiento en relación con la edad, es 4 veces superior en la zona tropical que en la zona templada. En un ensayo realizado con P. elliottii en la Florida (E.U), la aplicación de 45 kg.. de Nitrógeno por hectárea resultó en un aumento de 5.2 veces en la producción de madera y el contenido de N en los árboles, se aumentó de 100 kg./ha. a 560 kg./ha. (Pritchet, 1970). Ojo y Jackson (1973) y Kadeba (1978), observaron que en Nigeria los pinos respondían al Nitrógeno como sulfato de amonio -(NH) 50- más no a la úrea con (NH). Más aún, la úrea causó el 50% de mortalidad en las plántulas, el fosfato soluble es lo mejor para suelos con un ph alto y el fosfato mineral para los más ácidos. En Brasil “Campo Cerrado” Mello (1964), con plantaciones de Eucalyptus saligna, la aplicación de cal dolomita en dosis de 2 ton./ha. resultó positivo, a los 3 años de edad, la diferencia de producción entre parcelas abonadas y testigo era de 33 m.3/ha. En la misma zona aplicaciones de 53 kg./ha. de N, 172 kg./ha. de P2O5 y 25 kg./ha. de K2O., incrementaron la producción de madera en más del 80% y una reducción del 30% en el tiempo necesario para alcanzar la edad de corta.

206

Knudson Yahne y Correa (1.970), utilizó la combinación N-P-K en dosis de 60-80-20- gr/árbol que presentó un crecimiento en altura de 2.7 m. el primer año y 7.2 m. para el segundo año. La aplicación de cal en suelos pobres y ácidos ha tenido efecto positivo en los rendimientos en coníferas. El abonar y encalar el Pinus caribaea, en suelos con altos contenidos en aluminio e hidrógeno, se encontró una respuesta significativa en incremento de diámetro y altura. En Pinus radiata, se ha ensayado la aplicación de 8kg./ha. de Boro (disuelto en agua). Zotiel y Tshinkel (1971), trabajando con plantaciones de Cupressus spp., en Medellín Colombia, fertilizaron durante los primeros 22 meses del ensayo, y encontraron un incremento de 19 m3/ha. en las parcelas fertilizadas con N-P-K y Mg, comparada con 5.7 m3/ha. en las parcelas testigo, lo que significa un aumento en la producción de 33%. Van Lear, Saucer y Goebel (1973), trabajando con Pinus taeda en North Carolina, aplicaron dosis de fertilizantes de 78 kg./ha. de N, 39 kg./ha. de P y 39 kg./ha. de K, encontrándose incrementos de 0.6 a 1.6 m. en la altura y 23 a 30% en diámetro en comparación con los árboles testigos. La aplicación de P y K en forma conjunta ha dado buenos resultados en plantaciones forestales; (Guinadeau, Mauge y Dumas 1963), usaron 79 kg./ha. de úrea, 125 kg./ha. de P2O5 y 130 kg./ha. de K2O, en plantaciones de Pinus pinaster encontraron incrementos considerables en altura y diámetro comparadas con el testigo así: Para fósforo 54%, N y P 67%, P y K 69% y N-P-K 76%. Simoesetal (1970), en investigaciones realizadas con Pinus caribaea en Brasil, ensayaron diferentes niveles de fertilización, encontrando que la aplicación de 3 ton./ha. de cal dolomíta, 60 kg./ha. de nitrógeno, 100 kg./ha. de P205 y 20 ton./ha. de K2O, presentaron el primer año una diferencia con el testigo del 90% en altura (1.27 m. a 0.70 m.), y al segundo año de edad la aplicación de fósforo y cal dio resultados significativos.

207

Cannon (1.983) señala, que la empresa Cartón de Colombia utilizando fertilización con calfos en dosis de 45 gr./árbol, para las especies, Pinus oocarpa y Cupressus lusitanica, encontró resultados favorables; lo mismo ocurrió con la aplicación de borax. En otro estudio de la misma empresa, realizado en el departamento del Cauca, con las especies Pinus pátula y Cupressus lusitanica, éstas respondiéron positivamente a la aplicación combinada de Boro más Fósforo más Nitrógeno. La empresa Cartón de Colombia, estableció otro estudio de fertilización con Pinus pátula, en el departamento del Cauca y encontró, que la aplicación combinada de 75 gr. de N-P-K más 50 gr. de bórax, al cabo de 2 años aumentó en 48% el crecimiento en altura y como resultado de los trabajos mencionados se produjo la siguiente tabla:

Tabla No. 12 Dosis de fertilizantes en gramos/árb ol recomendadas para las coníferas en el Valle y el Cauca al momento de la p lantación

Suelo* P. oocarpa y P. pátula

10-30-10 Bórax P. kesiya 10-30-10 Bórax

C. lusitanica Calfos Bórax

Dystandept 50 10 50 5 100 5

Dystropept 50 15 50 10 - -

Inceptisol 50 5 50 5 - -

* El Dystandept se deriva de los depósitos de ceniza volcánica. Su profundidad es mayor de 1.5 m. El Dystropept se deriva de los depósitos de ceniza volcánica de poca profundidad. El Inceptisol es un suelo en el proceso de formación sobre la diabasa, expuesta por la erosión.

Fuente: Cartón de Colombia. Ensayos de Fertilización con Coníferas. En un estudio elaborado por la CVC, en el Valle del Cauca, al finalizar el primer año, el Pinus Oocarpa respondió favorablemente a la aplicación del Boro, y la combinación de bórax, úrea y superfosfato triple, produjo en un aumento del 70% en el crecimiento en altura del pino comparado con el testigo. La fertilización de Eucalyptus que ha tenido como base las especies Eucalyptus grandis y Eucalyptus glóbulos, se puede resumir así: Cartón de Colombia encontró que con una aplicación de 50 gramos de N-P-K (10-30-10) más 5 gramos de Bórax por árbol al momento de la plantación, el Eucalyptus grandis creció 5 veces más

208

rápido en volumen que sin la fertilización; además con los 5 gramos de Bórax había una reducción significativa en el secamiento descendente de los Eucalyptus. El resultado de varios ensayos con diferentes dosis de N-P-K (10-30-10), y bajo distintos métodos de colocación de fertilizantes mostró que la dosis casi óptima de N-P-K (10-30-10) es de 100 gramos, colocado 5 cm. debajo de la plántula que causó un aumento en el crecimiento en altura de más de tres veces con relación a los testigos. (Ver gráfico No. 5)

Gráfico No. 5 Respuesta en crecimiento de especies de eucalipto a varias dosis de NPK (10-30-10) en cinco fincas

209

En tres plantaciones con crecimiento estancado y con síntomas de deficiencias de Fósforo, los Eucalyptos de un año de edad que recibieron una segunda aplicación de 75 gramos de N-P-K (10-30-10) mostraron aumentos en la tasa de crecimiento en altura entre 82% y 105%. La empresa Monterrey Forestal aplica 400 kg./ha., de sulfato de amonio en las plantaciones forestales de Gmelina arborea, Sterculia apetala y Bombacopsis quinata, con excelentes resultados. 3.5.4 Control de insectos y patógenos. A menudo el insecto en estado larval es más dañino porque necesita alimentarse con hojas, retoños, raíces y con el tejido del tallo. En otros casos, los daños son causados por insectos en estado adulto, como es el caso de la hormiga arriera, hormiga bruja, marranita, termitas. Su control se realiza esterilizando el suelo y utilizando insecticidas, como: Dipterex, Aldrin, Dieldrin, que se pueden aplicar en etapas pre y post-emergente. Pero que es necesario evaluarlos por sus efectos ambientales. A continuación se presenta un listado de los principales insectos consideramos como plagas forestales encontradas en Colombia, así como también se detallan los principales patógenos considerados como problemas fitosanitarias. (Ver tablas No. 13 y 14).

210

Tabla No. 13 Plagas forestales

FAMILIA ESPECIE HUÉSPED DAÑOS PERÍODO CONTROL

INSECTOS DEL FOLLAJE LEPIDÓPTERO GUSANO DEFOLIADOR DEL CIPRÉS

Glena bisulca Ringe, Glena megale Ringe

(Lepidoptera, Geometridae)

Ciprés Ocurre en el follaje al comer y trozar las ramas quedando en chamizas, y el árbol puede

morir.

Larval Biológico por: Parásitos: • Mosca parásita (Euphorocera sp.) • Avispa parásita (Apanteles sp.) • Mosca parásita (Siphoniomyia sp.) • Avispa parásita (Melanichneumon sp.) • Hongo o moho blanco (Cordyceps sp.)

Predatores: • Hemíptero chupador (Chauliognathus heros Guering)

• Escarabajo predator (Pseudoxychila bipustulata)

• Chinche chupador (Apiomerus sp.) • Hormiga predatora (Oplomutilla sp.) • Avispa predatora (Parachartegus sp.)

LEPIDÓPTERO GUSANO MEDIDOR DEL CIPRÉS

Oxydia cerca a Trychiata (Lepidoptera, Geometridae)

Ciprés Lo hace consumiendo y trozando el follaje,

ocasionando la defoliación total y muerte del árbol.

Larval Biológico por: • Avispas (Parachartegus sp.) • Hongos (Cordyceps, Metarrhizum) • y Bacterias, mantienen la plaga en equilibrio.

LEPIDÓPTERO NUEVO MEDIDOR

sin determinar ¨geométrido o medidor¨

Ciprés Defoliación Larval _

LEPIDÓPTERO GUSANO ROJO PELUDO Ciprés y Trozando o comiendo las Larval Biológico por:

211

FAMILIA ESPECIE HUÉSPED DAÑOS PERÍODO CONTROL

INSECTOS DEL FOLLAJE Lichnoptera gulo H.S

(Lepidoptera, Noctuidae) Pino agujas del ciprés y del pino.

Causa escozor al tocarlos. • Parásitos himenópteros (avispitas) • Bacterias que descomponen las larvas

LEPIDÓPTERO GUSANO CANASTA Oiketicus spp. (Lepidoptera,

Psychidae)

Ciprés, Pino, Eucalipto, Acacia.

Fabrican las canastas con ramitas y hojas, y se alimentan de ellas.

Larval Biológico por: Enemigos Naturales: • Avispitas del género Iphiaulax sp., al desarrollarsen al interior de la canasta lo matan.

• Al aumentarse de canastos la plantación se efectúa un control Manual. Se cortan las ramas con canastas, se entierran a 30 cm., se les echa cal y se tapan.

LEPIDÓPTERO GUSANO POLLO Megalopyge lanata Stall

(Lepidoptera, Megalopygidae)

Ciprés Es muy voraz y se alimenta del follaje del ciprés.

Larval Biológico por: Ataque de parásitos a la larva, permitiéndole que empupe pero al final muere la pupa.

LEPIDÓPTERO GUSANO TIERRERO

Agrotis Ypsilon (Rottemb) (Lepidoptera, Noctuidae)

Ciprés y Pino en viveros

El gusano roe la base del tallo, trozando totalmente las plantas o arboles pequeños

en los viveros.

Larval • Vigilancia constante del vivero • Aplicar insecticidas a las larvas con aplicaciones de:

Carbaryl (en dosis de 1.5 kilos de ingrediente activo por hectárea) o de Aldrin (medio kilogramo de ingrediente activo por hectárea) • La preparación adecuada de terrenos para semilleros ayuda a la destrucción mecánica de larvas y pupas.

LEPIDÓPTERO GUSANO ESPINOSO sin determinar (Lepidoptera,

Arctiidae)

Ciprés y Pino

Realizan el daño alimentandose del follaje.

Larval _

212

FAMILIA ESPECIE HUÉSPED DAÑOS PERÍODO CONTROL

INSECTOS DEL FOLLAJE

COLEÓPTERO VAQUITAS Compsus spp. (Coleptera,

Curculionidae)

Ciprés y Eucalipto

El ataque ocurre en árboles pequeños y en viveros por

insectos. En estado de larva se

alimenta en el suelo de raíces de diversas plantas.

Larvas, Insectos y Adultos

_

COLEÓPTERO FALSAS VAQUITAS sin determinar (Coleptera,

Curculionidae)

Ciprés y Eucalipto

Se alimentan de raíces de diferentes plantas, sus ataques no son severos.

Larval _

COLEÓPTEROS CUCARRONCITOS DEL FOLLAJE Nodonota sp. (Coleptera,

Chysomelidae)

Ciprés Alimentandosen del follaje del ciprés, en árboles pequeños recién plantados, se localizan sobre las ¨agujas¨ del ciprés.

Adulto Con aplicaciones de Carbaryl en dosis de 400 gramos por 100 litros de agua

COLEÓPTERO CURCULIÓNIDOS DEL FOLLAJE sin determinar (Coleptera,

Curculionidae)

Ciprés y Pino

Daños de bastante consideración en el ciprés, consumiendo el follaje, son los más abundantes entre los

curculiónidos.

Insecto, Adulto

_

HIMENÓPTERO HORMIGA ARRIERA Atta sp. (Hymenoptera, formicidae)

Ciprés Trozando el follaje, llevándolo al nido u hormiguero en el suelo, alimentandose del hongo que cultiva en ellas.

Adulto _

HEMÍPTERO CHINCHE NEGRA DEL CIPRÉS Sephina formosa (Dallas) (Hemiptera, Coreidae)

Ciprés Tiene un pico encorvado hacia atrás y chupa la savia del follaje, lo cual ocasiona

secamiento.

Ninfas y Adultos

_

HOMÓPTERO ESCAMA TORTUGA posiblemente Saissetia (Homoptera,

Coccidae)

Ciprés y pino

Hace el daño chupando la savia del follaje y ocasionando

su secamiento.

Adulto _

213

FAMILIA ESPECIE HUÉSPED DAÑOS PERÍODO CONTROL

INSECTOS DEL FOLLAJE HOMÓPTERO COCHINILLA HARINOSA

Pseudococcus sp. (Homeoptera, Pseudococcidae)

Ciprés Extraen los jugos del follaje y a la vez excretan gran cantidad de sustancias melosas que favorecen el desarrollo de hongos, ocasionando estos una

cubierta negra sobre el follaje, que interfiere con las

funciones normales de la planta.

Ninfas y Adultos

_

ÁCAROS ÁCARO NEGRO Y ROJO DEL CIPRÉS Sin determinar

Ciprés Chupando la savia del follaje y se localizan en las

intersecciones de las ¨agujas¨ sin ocasionar daños de

importancia económica a las plantaciones.

Arañitas Adultas diminutas

_

FAMILIA ESPECIE NUÉSPED DAÑOS PERÍODO CONTROL

INSECTOS DEL TRONCO Y RAMAS COLEÓPTERO BARRENADOR DEL CIPRÉS

Anchonus sp. (Coleoptera, Curculionidae)

Ciprés La larva hace el daño barrenando el tronco. Al

hacer un corte longitudinal en el árbol afectado se observan las galerías que hace el

insecto. Los ataques se encuentran más frecuentemente en

plantaciones viejas, tocones,

Larva y Adulto

Se debe basar en medidas culturales como las siguientes:

• Siembras convenientemente espaciadas y en suelos apropiados.

• Prácticas silviculturales como aclareo, limpias, podas.

• Tala de los árboles a ras, sin dejar tocones.

• Remoción de los árboles grandes

214

FAMILIA ESPECIE NUÉSPED DAÑOS PERÍODO CONTROL

INSECTOS DEL TRONCO Y RAMAS ramas abandonadas, y desechos forestales en rodales de ciprés.

También en plantaciones débiles, deficientes por falta de fertilidad del suelo y por ataques de enfermedades.

caídos que son foco de infestaciones.

• Corte y quema de los árboles atacados por la plaga.

COLEÓPTERO PASADORES DE LOS TRONCOS O PERFORADORES

Xyleborus spp. (Coleoptera, Scolytidae)

Platypus rugulosus Chapuis (Colegotera, Platypodiae)

Cativo, Árboles caídos

El ataque es secundario, cuando los árboles están

caídos, enfermos, presentan heridas en la corteza o se encuentran amontonados en el suelo para descortezar. El daño lo hacen al tronco y ramas El insecto perfora el tronco formando galerías en donde deposita los huevos.

Larvas y adultos

Revisar periódicamente las plantaciones, especialmente aquellas

mayores de 10 años • Eliminar los árboles caídos, enfermos o con heridas.

• Cortar los árboles afectados, a ras de suelo, sin dejar tocones.

• Evitar el amontonar por mucho tiempo los árboles que se cortan.

Fuente: Adaptado de: - Hochmut, R; Valdes, E; Mellado, B; Hernández, H; Labado, A. Guía para la determinación de plagas y enfermedades forestales.

- Lara, Lucrecio. Control de defoliadores del pino y ciprés. CONIF – FAO – INDERENA - Bustillo, Alex; Lara, Lucrecio. Plagas Forestales. ICA – INDERENA. - Pinzón, Olga. Guía de insectos dañinos en plantaciones forestales. CONIF - MINAMBIENTE

215

Tabla No. 14 Problemas fitosanitarios en plantacio nes

ESPECIE SÍNTOMAS AGENTE CAUSAL RECOMENDACIONES PREVENCIÓN y/o CONTROL Eucalyptus globulus Eucalyptus tereticornis Eucalyptus globulus Eucalyptus saligna Tabebuia pentaphylla

Coniothyrium sp.

Coniothyrium sp.

Botryodiplodia sp.

Botryodiplodia sp.

Phomopsis sp., en interacción con

Tylenchorrinchus sp.

CONIOTHYRIUM SP.

• Eliminar los árboles que presentan un estado avanzado de la enfermedad.

• Podar las ramas secas. • Raspar los chancros del tallo y ramas donde se inicie la enfermedad; las heridas se deben tratar con caldo bordelés, o con una solución de Benlate al 3%.

BOTRYODIPLODIA SP.

• Eliminar las pseudoestacas que presentan síntomas de pudrición avanzada.

• Eliminar tocones, raíces y madera en descomposición del sitio de la plantación.

• Resembrar en hoyos diferentes a los sitios donde se encuentran las plantas afectadas.

• Aplicar en cada hoyo 120 grs. de cal. • Las pseudoestacas deben tratarse previamente por inmersión de las raíces en una mezcla de 5 gramos de Orthocide por litro y 1 gramo de Benlate por litro.

• Al aparecer las primeras hojas se deben asperjar con una mezcla de Orthocide, 2 gramos por litro, y 0.5 grs, por litro de Benlate.

• La herramienta que se utiliza en la preparación de la pseudoestaca debe desinfectarse con formol al 5%.

• Profundizar y afirmar bien la tierra al plantar la pseudoestaca. • El corte de la pseudoestaca debe efectuarse con herramienta lo suficientemente afilada, para evitar que se forman fisuras y desprendimiento de la corteza.

TYLENCHORRINCHUS SP., en interacción con PHOMOPSIS SP.

216

ESPECIE SÍNTOMAS AGENTE CAUSAL RECOMENDACIONES PREVENCIÓN y/o CONTROL Eucalyptus globulus Eucalyptus citriodora Eucalytus tereticornis y Eucalyptus alba. Pinus patula Cupressus sp.

Pinus radiata Pinus patula

Phomopsis sp.

Coriolopsis fulvocinerea

Poliporus sp.

Poria sp.

Dothistroma pini

• Eliminar los árboles que presenten síntomas de enfermedad. • Revisar continuamente el material del vivero con el fin de detectar la presencia del hongo y del nemátodo, que se localizan en las partes más profundas de las raicillas y en poblaciones altas pueden ocasionar problemas severos.

• El suelo del vivero debe, si es posible, cambiarse o tratarse con bromuro de metilo, Vapam o Ditrapex.

• El replante tiene que efectuarse en un hueco diferente y si la siembra es a raíz desnuda, ésta debe sumergirse antes en una mezcla de Orthocide y Benlate o caldo bordelés.

CORIOLOPSIS FULVOCINEREA

• • Eliminar los árboles que presenten síntomas muy avanzados de la enfermedad.

• En árboles con síntomas iniciales, raspar los chancros, y realizar aplicaciones en las heridas con Benlate u oxicloruro de cobre en mezcla con pintura.

POLYPORUS SP. Y PORIA SP.

• Destruir los tocones que presenten estado avanzado de pudrición.

• En los tocones donde se observen síntomas iniciales de pudrición en la superficie, se debe emparejar el corte y asperjar la superficie con una mezcla de Orthocide y Benlate.

• Eliminar los focos de madera en descomposición. • Realizar aclareos de los árboles suprimidos para contrarrestar el ataque del hongo.

DOTHISTROMA PINI

• Eliminar los árboles que presentan un estado avanzado de la enfermedad.

217

ESPECIE SÍNTOMAS AGENTE CAUSAL RECOMENDACIONES PREVENCIÓN y/o CONTROL

Eucalyptus globulus Eucalyptus globulus Pinus radiata Pinus radiata

Pinus sp. Tabebuia pentaphylla

Diaporthe cubensis

Agrobacterium tumefaciens

Diplodia sp. Macrophoma sp.

Fomes sp.

Meloidogyne sp.

• Podar las ramas enfermas de los árboles con menos del 50% del ataque del patógeno, especialmente aquellas afectadas que se entrelazan con las ramas de los otros árboles; en estas zonas la humedad es más alta, la aireación es menor y se crean las condiciones ideales para el desarrollo del hongo.

• Todo el material enfermo que se elimine, se debe destruir inmediatamente para evitar la diseminación del patógeno.

• 0Los árboles enfermos y los que estén alrededor se deben asperjar con productos a base de cobre, como el oxicloruro de cobre y el óxido cuproso.

Fuente: Adaptado de: - Orozco, Cielo. Determinación y control de las principales enfermedades que afectan viveros y plantaciones forestales. MINAGRICULTRUA – INDERENA.

- Garzón, Carlos. Patología Forestal. UNIVERSIDAD DEL TOLIMA.

218

3.5.5 Poda 3.5.5.1 La copa y los nudos de la madera. Muchas especies forestales presentan excesiva formación de ramas, que provienen de las características morfológicas y genéticas propias de las especies y además de las condiciones climáticas y ecológicas del medio donde se desarrollan. El exceso de ramas y nudos influyen en la utilidad y valor de la madera, porque la desmejora haciéndola, perder la lisura, limpieza y facilidades de trabajabilidad. 3.5.5.2 Efectos de los árboles ramificados. El equilibrio entre el sistema aéreo y el subterráneo del árbol puede romperse por causa de la desproporción entre ambos, ya sea por exceso de formación del sistema aéreo respecto al radicular o bien por defecto, y en ambos casos las funciones de fotosíntesis, respiración y evapotranspiración, reflejan su acción en la forma y estructura interna de los árboles. El exceso de ramas repercute directamente en la calidad de la madera y produce efectos como: • La madera presenta excesiva cantidad de nudos. • La forma del tronco es de inferior calidad. • Las dimensiones de los árboles producidos y el volumen de madera son menores. 3.5.5.3 Características de los nudos: a. Los nudos se manifiestan por su dureza y porque concentran materias

resinosas, cuya presencia es un factor negativo para obtener madera lisa y celulosa de buena calidad.

219

b. La excesiva cantidad de ramas desmejora la forma de los fustes, ya que la forma de los troncos y su crecimiento en altura están influidos directamente por las características de la copa y la distribución de las ramas.

Cuando los árboles presentan ramificación hasta la base del tronco y no son podados a tiempo, las sustancias orgánicas elaboradas por la clorofila, se distribuyen a lo largo del fuste, concentrándose en mayor proporción en la parte baja del mismo, determinando una forma del tronco que tiende a ser cónica. En cambio cuando los árboles son podados a tiempo en la parte baja del fuste, entonces la sustancia orgánica elaborada desciende desde la parte alta de la copa, depositándose en esta parte del árbol dándole una forma cilíndrica. c. La influencia que tiene la producción de material vegetal (ramas, hojas, flores)

que aportan al suelo a través de la poda natural -autopoda- o poda artificial, cantidades de materia orgánica, que una vez seca y muerta se incorporan al suelo son una fuente importante de nutrimentos.

La importancia de la poda depende de los objetivos de la plantación, en algunos casos como la producción de: • Combustible, • Pulpa y tableros aglomerados de partículas, • Madera para guacales o embalajes • Plantaciones de protección y conservación como refugios, control de erosión, cercas, conservación de agua.

Las ramas bajas son en estos casos una ventaja. En otros casos la utilización de madera para: • Enchape, madera terciada

220

• Madera para construcción donde es necesaria la dureza • Postes para energía y telefonía que se necesitan lisos, para manipularlos y que no tengan agujeros o astillas para prevenir la entrada de hongos o termitas, demandan madera limpia y libre de nudos. 3.5.5.4 Manejo para corregir la ramificación: El primer aspecto que se puede manejar es la densidad de plantación, este es un factor determinante que influye en la espesura del vuelo, pueden existir tres tipos de vuelo: espesura clara, en que la proyección de las copas no cubren más que parte del suelo, quedando el resto de la superficie desperdiciada para la producción maderera, como se ve en la figura No. 92. La espesura excesiva, opuesta a la anterior, en que las copas de los árboles contiguas se estorban mutuamente y entrecruzan sus ramas. (Ver figura No. 93).

Figura No. 92 Espesura clara en plantaciones forestales

221

La espesura normal de contacto tangencial de las copas, se encuentra equilibrada y el espacio disponible para cada árbol permite el desarrollo aéreo y subterráneo de la ramificación logrando, mantener un equilibrio con el medio ambiente. Sin embargo como ésta no permanece estática, sino que se encuentra en continuo cambio y movimiento, lo que hoy está en espesura normal en corto tiempo pasa a espesura excesiva. (Ver figura No. 94)

Figura No. 94 Espersura normal en plantaciones forestales

Figura No. 93 Espesura excesiva en plantaciones forestales

222

Cuando la masa está excesivamente densa, se puede llevar a la espesura normal eliminando parte de los árboles enfermos o suprimidos y si no los hay, los árboles dominados o deformes, mediante esta práctica se puede conservar la masa en su espesura normal durante toda la vida, a la vez que hay una selección permanente y cuidadosa dejando en pie los mejores árboles. El manejo de la densidad ayuda en la eliminación de nudos gruesos, cuando la masa arbórea se cría en espesura clara, las ramas se abren en dirección horizontal, y al extenderse forman un brazo de palanca, en el punto de apoyo con el fuste, que desarrolla un buen grosor para resistir el peso de las ramas. Pero cuando la masa se cría en espesura cerradas las ramas no se extienden horizontalmente por impedírselo los árboles cercanos, estas se extienden hacia arriba y son más delgadas. 3.5.5.5. Poda natural: Cuando el dosel de copas se presenta en forma continua con espesura normal, esta detiene los rayos de luz, absorbe una parte y refleja el resto. Las ramas de la parte inferior permanecen con poca luz, desaparece la clorofila de las hojas o acículas y estas caen, lo mismo que las ramas, pasando a formar una capa de humus sobre el suelo mineral. El tiempo que las ramas muertas permanecen en el tronco varía de acuerdo a la especie. En algunas especies estas ramas se caen rápidamente -poda natural- y en otras permanecen por varios años, por ejemplo: Cupressus lusitanica, Pinus patula, Pinus radiata, Tena guachapele, Samanea saman tienen ramas muy persistentes y se debe hacer poda para lograr madera libre de nudos, mientras que especies como: Terminalia superba, Terminalia catapa, Eucalyptus globulos, Eucalyptus camandulensis, Eucaliptus saligna, Cordia alliodora, Ceiba pentandra son buenos podadores naturales y ocasionalmente necesitan una poda artificial. (Ver figura No. 95).

223

Pinus caribaea, Tabebuia rosea, Siacassia siamea son intermedios y tiene ramas que persisten 2 a 3 años después de muertas. 3.5.5.6 Poda artificial: La poda natural esta relacionada de alguna manera con la densidad de plantación, favoreciendo la formación de troncos rectos, de buena forma, limpios de nudos gruesos, pero esto no lo hace todo, si bien la densidad alta provoca la caída de las hojas y acículas y muerte de las ramas bajas, en la mayoría de los casos las ramas permanecen adheridas al tronco durante varios años, siendo necesario la poda artificial. La poda es un tratamiento cultural que consiste en suprimir las ramas inferiores, las ramas que por su vigor, grosor, altura, rectitud y ubicación (ramas inferiores), pueden competir con el desarrollo del tallo central, restándole fuerza o produciendo bifurcaciones o nudos vivos o muertos; con la poda se busca obtener tallos únicos, derechos, bien formados, sin nudos. Las ventajas de podar son: • Obtener madera limpia de nudos y de buena calidad -mayor valor comercial- • Facilitar la movilización dentro del bosque, para las labores silviculturales -raleos

Figura No. 95 Poda natural en Ceiba pentandra.

Granja de Armero

224

y aprovechamiento- • Eliminar el peligro de incendios (verano) • Estimula el crecimiento de ramas jóvenes. • Pueden producir algún beneficio económico. Desventajas de podar: • Aumenta los costos de plantación • Solo se justifica en la producción de madera de alta calidad -mayor valor- • Generalmente el producto de la poda no es utilizable. • Puede aumentar el peligro de ataques de insectos y patógenos. Las técnicas de poda varían de acuerdo: • Con la especie. • Edad del árbol. • La finalidad de la plantación. • La intensidad de manejo silvicultural. 3.5.5.7 Iniciación de las podas: No hay acuerdos en cuando comenzar la poda, algunos como (Echeverría, 1971, Zobel 1983), recomiendan no realizar esta práctica cuando las plantitas están en su primer período, ya que éstas necesitan valerse de sus ramas y copa para realizar sus funciones fisiológicas, que son muy intensas en los primeros años, y llegan a recomendar que solo se realice la primera poda cuando las copas formen una cubierta continua.

225

Señalan que la poda de árboles jóvenes es contraproducente y más cuando se realiza muy alta, ya que: a. Debilita la yema líder y el árbol se tuerce fácilmente. b. Disminuye el proceso fotosintético. c. Implica un interés de capital invertido más tiempo. Esto corresponde a edades entre 3 o 4 años como en el Pinus patula, Tectona grandis, Pinus radiata. En cambio en otros casos se recomienda iniciar la poda tempranamente o cuando los árboles tienen una altura entre 2 y 4 metros (Evans 1984), y cuando se quiere dejar un solo tallo para mejorar la forma del árbol, en especies como: Cupressus lusitanica, Fraxinus chinensis, Gmelina arborea, Pinus patula, que se están podando en edades entre 1 y 2 años. (Figuras No. 96 y 97).

Figura No. 96 Plantación de Gmelina arborea recien

podada. La maleza es eliminada entre árboles pero no entre líneas

226

Uno de los principales objetivos es mantener el conjunto de nudos tan pequeños como sea posible, entre más rápido comience más pequeño serán, y el conjunto de nudos se puede disminuir, éstos quedarán muy cerrados o estrechos y las cicatrices curaran rápidamente, pero existen limites de cuando empezar la primera poda, se realizará cuando las copas formen una cubierta continua y la espesura sea normal. 3.5.5.8 Intensidad de la poda. Otro criterio a tener en cuenta es la relativa a la parte del tronco que debe ser podado. Existen dos ideas relativas a la poda. Las unas creen que la poda es dañina para el árbol y se oponen a su realización. Otros podan exageradamente, extirpan bárbaramente las ramas y dejan solo en el verficilio terminal un ligero penacho reduciendo el área fotosintética en la copa de los árboles que reduce el crecimiento. Existe consenso que la poda severa de la copa viva reduce el crecimiento. Lange et al (1987) mostraron que la poda más fuerte la primera poda eliminó el 50% de la copa viva a los 3 años de edad, seguida de 3 podas posteriores, redujo el

Figura No. 97 Primera poda en plantaciones de Gmelina arborea. Zambrano (Bolivar)

227

incremento medio anual (m3/ha.) en un 20% para Pinus radiata, comparado con podas más ligeras (35% de la copa viva), seguido de 3 podas posteriores. Luek off (1949) encontró que la poda del 50% de la copa viva de Pinus patula a los cuatro (4) años de edad, redujo en un 20% el incremento en volumen, en comparación con los testigos no podados. Allard (1969) observó después de una poda severa (eliminación del 75% de la copa viva) una reducción del incremento en altura. (Ver figuras No. 98, 99, 100, 101 )

Figura No. 99 Realización de la segunda poda en Pinus patula

Figura No. 98 Segunda poda utilizando tijeretón en Pinus patula

228

Figura No. 100 Terminación de la poda en árboles de Pinus patula

Figura No. 101 Plantación de Pinus patula recientemente podada

229

En Colombia Urrego (1988) observó reducción en altura, DAP, volumen (m3/ha por año) después de una poda más severa de Pinus patula, Masato shi y Vélez (1991) encontraron en un ensayo de poda, para Pinus patula a la edad de 3 años y medio, que la poda severa (70% de la copa viva) el volumen por hectárea fue un 40% menor que con el tratamiento de poda ligera (30% de la copa viva) Aún podando el 20% de la copa viva en Pinus patula puede deprimir el aumento en diámetro comparado con los árboles que no son podados, mientras que las intensidades por encima del 60% deprimen el crecimiento en diámetro y afectan también el crecimiento el altura. (Marshall y Foot 1.969; Karani 1978). Para la caoba (Switenia macrophylla - Vincen 1972), encontró que podando la mitad de la altura no se afecta el crecimiento, mientras que con los Eucalyptus el podar más del 25% de la copa viva se consideraba como una poda severa. (Wri 1972).

Smurfit Cartón de Colombia poda las especies de Pinus kesiya, Pinus oocarpa, Pinus patula y Pinus Tecunumenii, cuando el 60% de los árboles alcanza un DAP de 8 cm., o cuando la altura media de los árboles llega a los 5.5 metros. La edad de la poda fluctúa entre 3 y 4 años, eliminando las ramas hasta un 50% de la altura de los árboles. Monterrey Forestal Ltda., poda las especies Gmelina arborea y Bombacopsis quinata, hasta la mitad de la altura realizando la primera poda cuando alcanza 3 m. de altura, la segunda cuando alcanzan 5 m. de altura, podando hasta los 3-5 m., y la última hasta los 6 m. de altura cuando el árbol tiene 9 m. de altura total. A continuación se presentan algunos programas de podas en las zonas tropicales.

230

Tabla 15 Programas de Podas para Coníferas en el T rópico

ESPECIE CONÍFERAS EN GENERAL PINUS CARIBAEA PINUS RADIATA PINUS PATULA País Fuente

Trópicos

EVANS (1.982)+

África del Sur

LUCKHOFF (1.964)

Nueva Zelandia COZZO (1.976)

África del Sur

THE SOUTH AFRICAN INSTITUTE OF FORESTRY (1.983)

altura superior m.

altura de poda m.

número de árboles a podar / ha.

altura superior m.

altura de poda m.

número de árboles a podar / ha.

altura superior m.

altura de poda m.

número de árboles a podar / ha.

altura superior m.

altura de poda m.

número de árboles a podar / ha.

1. poda 2. poda 3. poda 4. poda 5. poda

6,0 9,0 12,0 15,0

2,5 5,0 7,5 10,0

ningún dato

6,0 9,0 12,0

2,0 4,5 6,6

todos 300 150

6 - 7 12 21

2,4

5,4 - 6,0 10,0

675

450 - 475 80 - 100

3,5 6,0 9,0 12,0 16,01

1,5 3,0 5,0 7,0 10,51

todos todos todos todos todos1

1 Sólo para producción de madera para chapas Tabla 16. Podas en Plantaciones Forestales

PINUS EUCALYPTUS PODAS

EDAD

3 años 5 años 7 años 9 años 12 años

n / ha.

1.330 1.330 750 750 325

ALTURA

1.0 m. 2.5 m. 4.5 m. 6.7 m. 11.0 m.

Se podan hasta 6,7 m. durante los primeros 3 años.

231

3.5.5.9 Operación de la poda: Tamaño. Esta labor es una tarea técnica que necesita alguna experiencia para ser ejecutada y se basa en cortar las ramas inferiores lo más cerca posible al tronco, sin desgarrar la corteza para evitar el ataque de hongos e insectos. El corte a ras de la corteza del tronco, permite que el cambium forme rápidamente los tejidos protectores de la herida, y que esta cicatrice bien (Ver figura No. 102). El corte debe dejar una superficie lisa, sin espolones o trozos salientes de ramas, porque además de formarse en el tronco un nudo penetrante en cuña, estorba la cicatrización de la herida. La primera poda corta las ramas delgadas, para lo que se puede emplear tijeras podadoras, o cuando hay obreros expertos se puede podar con machete, o sierras curvas. Si las ramas son más gruesas hay que emplear sierras curvas o serruchos podadores que se consiguen en el comercio; y debe realizarse la poda en dos cortes en sentido opuesto. Si las ramas de los árboles están por encima de los 2.5 m. de altura, estas se deben podar con sierras podadoras que se han adaptado a una vara o cuña para ser accionada desde el suelo, en otros casos

Figura No. 102 Estado del nudo una vez podado

232

se usan escaleras para trepar a los árboles, recientemente esta labor se realiza con motosierras pequeñas y/o tijeretón. (Ver figuras No. 103, 104)

3.5.6 Aclareos y raleos 3.5.6.1 Crecimiento de los rodales: Cuando los árboles de una plantación crecen, cada individuo demanda mayor espacio de crecimiento. Se debe permitir que la copa del árbol se expanda individualmente, para de esta manera alimentar el fuste, el cual es cada vez más largo y de mayor diámetro, la cantidad de alimento que puede producir es proporcional al tamaño de la copa. La tasa de crecimiento del diámetro y por supuesto del área basal será determinada por el espacio de crecimiento de que dispone cada árbol. Los árboles compiten por espacio para las raíces y la copa. Si algunos árboles son removidos, los otros pueden extender su sistema radicular y aéreo consiguiendo así una mayor cantidad de agua y sales minerales. Para que la utilización del espacio para las raíces y copas sea la más eficiente posible, es necesario que los árboles estén distribuidos uniformemente sobre la superficie (Singh 1968). Como consecuencia de la competencia, hay una estrecha relación entre el volumen por unidad de superficie, el volumen por

Figura No. 104 Herramientas utilizadas en las podas

Figura No. 103 Diferentes cortadoras de ramas

233

árbol y la densidad del vuelo, los procesos biológicos determinan que con una densidad mayor hay un volumen menor por árbol y con una densidad menor hay un volumen mayor por árbol (Schulz 1968). 3.5.6.2 Relación incremento total e “incremento comercial ”: El valor del incremento es muy diferente según la proporción de este que corresponda a árboles comerciales, puede haber un incremento total elevado en un gran número de árboles pequeños de poco valor; o un incremento igual o menor pero concentrado en un número menor de árboles de mayor tamaño, como consecuencia, una mayor proporción de individuos de mayor valor comercial; por lo tanto, el aumento o incremento de valor consiste en la combinación de cantidad - calidad (tamaño), siendo este factor, el más importante para la economía del manejo. El valor por unidad de volumen aumenta con: a. El tamaño del árbol b. La calidad de la madera (grado de nudosidad, etc.), (Baker, et. al. 1950).

Aislado Espaciamiento amplio

Espaciamiento adecuado

Espesura excesiva

Volum

en /H

a

Aislado Espaciamiento amplio

Espaciamiento adecuado

Espesura excesiva

Volum

en /A

rbol

Número por hectárea

Número por hectárea

Figura No. 105 Volumen por hectárea (a) y volumen por árbol (b) con el aumento del número de árboles por unidad de superficie.

Fuente: tomado de Daniel, Helmns y Backer, 1984

a)

b)

234

3.5.6.3 Relación incremento total densidad (espesura): La teoría de Moller señalada por Hiley (1959), plantea que “dentro de ciertos límites amplios (de espesura), el incremento de volumen no está influenciado por la espesura” esto quiere decir, que excluyendo extremos de espesura (vuelo muy ralo o espesura excesiva) el incremento total de volumen no varía mucho con diferentes niveles de espesura, lo que significa que con mayor espesura o densidad, el incremento se agrega a un mayor número de árboles, cada uno de los cuales tiene un tamaño menor; con menor espesura, el mismo incremento de volumen está concentrado en menor número de árboles, cada uno de mayor tamaño. El hecho de que el incremento total de volumen (o de área basal), no varía con la espesura (dentro de los límites señalados) se debe a que el menor número de árboles (menor espesura) es compensado con un mayor incremento por árbol. Si se acepta la teoría de Moller, se puede decir que dentro de límites razonables, de espesura, el incremento de área basal o volumen está en función de la calidad de sitio. 3.5.6.4 Objetivos del clareo: Competencia: La base ecológica del clareo

La competencia que conduce a la eliminación de individuos en el bosque, causa una disminución del crecimiento. La proporción varía inversamente según el grado de dominancia alcanzado por cada individuo (posición de la copa). Los árboles dominantes sufren menos que los suprimidos, que finalmente son eliminados, la diferencia de las copas en las diversas clases (dominante, codominante, intermedio y suprimido) es el resultado de la competencia. En la naturaleza, el objetivo es producir un número máximo de árboles resistentes, aptos y de mayor longevidad, para competir con el resto (Singh, 1968). El clareo se basa en el proceso natural de la vida de la masa, en relación con la disminución progresiva del número de árboles por unidad de superficie, como consecuencia de la competencia por la luz, humedad y sustancias nutritivas del suelo (Fors y Reyes 1947), (Schulz y Rodríguez 1.966), señalan que el clareo tiene la finalidad de manipular la competencia entre los árboles y destacan que la competencia es el factor ecológico más importante para el silvicultor en cada fase del cultivo forestal. El silvicultor hace uso del raleo para evitar las

235

consecuencias de la competencia excesiva y la permanencia (en el vuelo) de individuos de mala forma (Fors y Reyes, 1947). El proceso de selección mediante la eliminación por competencia es largo, y durante su transcurso el crecimiento de todos los árboles es afectado. La producción económica en plantaciones, bajo manejo intensivo exige la producción de árboles económicos que necesitan el mínimo de tiempo y espacio para su desarrollo, además que sean de forma, tamaño y calidad deseable. Estos árboles económicos, pueden ser diferentes a aquellos que “seleccionaría” la naturaleza. Por lo tanto es necesario guiar el desarrollo del vuelo y la selección de árboles, mediante intervenciones artificiales, ej.: el clareo. 3.5.6.5 El raleo orientado hacia el logro del óptimo económico. La finalidad del raleo es concentrar la producción (el incremento) en los árboles que constituirán la cosecha final, o los que serán aprovechada en raleos comerciales en cortas intermedias. (Vincent, 1.968) (Schulz, 1.968), señalan, que mediante los raleos el silvicultor puede “vertir el potencial productivo del sitio hacia los árboles de mayor valor comercial y evitar su disipación en individuos indeseables de menor valor”. Según (Hiley 1959), los cálculos realizados en experimentos sobre competencia por agua y sales minerales, han arrojado que para la producción más económica de madera, los árboles deben estar espaciados más ampliamente que lo de costumbre; es decir espaciamiento inicial más amplio y raleos más fuertes. El concepto de craib (señalado por Hiley 1959) es de que cuando se produce madera en plantaciones, los costos de producción están muy influenciados por el espaciamiento (espesura) el cual depende de: • El espaciamiento inicial • Clareos o raleos Estos factores influyen en los métodos de raleo, utilizando el raleo adecuado puede reducir los costos de producción de dos maneras: • Mediante la reducción de la duración del turno • Mediante la producción de material de mayor tamaño (Hiley, 1.959)

236

Schulz (1968), también señala que el raleo debe estar orientado hacia la producción más económica, en base a los dos factores mencionados. Se destaca que la meta principal es la de producir el valor máximo por unidad de superficie, según Craib (1947), el espaciamiento amplio y clareo fuerte, tienden a duplicar el valor de la cosecha final, debido al mayor diámetro alcanzado, mayor longitud del fuste y mayor rendimiento de madera libre de nudos; finalmente Hiley (1959), destaca que para cada especie y para cada calidad de estación debe haber un régimen óptimo de raleo (que incluye espaciamiento inicial), el cual permitirá que los árboles crezcan de manera que se logre producir la madera en la forma más económica posible. Vincent (1970). 3.5.6.6 Definición y objetivo. El raleo o entresaca son cortas que reducen artificialmente el número de árboles que crecen en un rodal. Generalmente se efectúa varias veces en la vida del rodal comenzando a los pocos años del cerramiento del dosel. Según Singh (1968), el raleo consiste en el mantenimiento (retención) de la clase deseable de árbol (aspecto cualitativo), y del número apropiado de éstos por unidad de superficie en diferentes etapas del desarrollo mediante la eliminación del resto.

Aspecto cuantitativo El raleo se efectúa por diferentes razones: • Reducir el número de árboles en un rodal de tal manera que los que queden en pie tengan mayor espacio de crecimiento, para el desarrollo de la copa y raíz, que traerá como consecuencia el aumento del diámetro.

• Suprimir los árboles muertos o “moribundos”, los enfermos o cualquier otro árbol que sea fuente de infección.

• Eliminar los árboles de forma indeseable y de ramas torcidas o bifurcadas, con el propósito que el futuro aumento se concentre solo en los mejores árboles.

• Favorecer los árboles más vigorosos y de buena forma que serán los que costituyan la cosecha final.

237

• Generar algunos ingresos económicos con el producto del raleo. El raleo se realiza también con otros fines, como aumentar la entrada de luz en los programas Silvopastoriles y Agroforestales. Cuando se realiza el raleo en un rodal se reduce el número de árboles compitiendo por luz, agua, suelos y nutrimentos. Es así como después del raleo aumenta la luz y aire por debajo del dosel y consecuentemente reaparece la vegetación herbácea, aumenta el número de brotes chupones en las raíces de los árboles, también puede aumentar el agua disponible y el suelo volverse más húmedo, debido a que hay menos demanda de agua y menos retención del follaje. La disminución de la competencia entre árboles tiene tres efectos principales: • Disminuye la mortalidad natural, después del raleo los árboles suprimidos que todavía quedan vivos están en capacidad de continuar su crecimiento principalmente por una mayor entrada de luz.

• Las copas se vuelven más amplias en los árboles que quedan en el rodal, las ramas inferiores que antes estaban sombreadas reciben más luz y permanecen vivas por más tiempo, trayendo como consecuencia unas copas más amplias. En un estudio en el bosque de Usutu en Swaziland, con la especie Pinus pátula plantada a 2.74 m. en parcelas no raleadas, tenían una copa viva que abarcaba el 29% del fuste, mientras un lote adyacente donde todas las hileras fueron raleadas a los nueve años de edad, la copa viva abarcaba un 40% del fuste. Esta proporción del volumen del fuste en relación con las ramas vivas es a lo que se denomina radio de la copa viva.

• Expansión de la copa: El aumento en el espacio de crecimiento alrededor del árbol después del raleo, induce un activo crecimiento de los brotes, follaje y raíces. La copa se amplía ocupando el espacio libre dejado en el dosel por los árboles apeados. Hunt (1969) compara los efectos del raleo en un lote de Pinus strobus de 22 años de edad y encontró que después de 5 años el peso total de las agujas aumentó tres veces en los árboles que fueron raleados en comparación con los que no lo fueron. Los efectos de las consideraciones anteriores dan como resultado una gran área fotosintética para cada árbol, aumentando de esta forma su crecimiento.

238

3.5.6.7 Consideraciones generales sobre el raleo. El problema del raleo consiste en determinar tres aspectos relacionados entre sí: 1. Cuándo comenzar el Raleo? o sea el momento del primer raleo. 2. Cuántos árboles sacar? Qué proporción de árboles serán removidos en el primer raleo?

3. Con qué frecuencia se lleva a cabo el raleo - ciclo de raleo. 3.5.6.8 El momento para el primer raleo. El primer raleo ha sido descrito como el más importante en el manejo de la operación silvicultural, ya que así se define a la larga el curso y la flexibilidad de las siguientes operaciones y el tamaño de los fustes que será posible producir (Lewis, Keeves y Leech 1.976). Silviculturalmente el momento para cualquier raleo se juzga observando la forma de contacto de las copas o mejor observando el radio de la copa viva. Se debe realizar antes que el radio de la copa se reduzca de 30-40% y para los pinos de 40-50%. El primer raleo en plantaciones forestales tropicales se hace a menudo 2 a 4 años después del cerramiento del dosel. Por lo general un crecimiento muy rápido permite que se haga el primer raleo más temprano y se repite prontamente, mientras que un espaciamiento inicial amplio y un raleo fuerte tiene el efecto contrario. El momento exacto para el raleo es llevado a cabo por programación; en Zambia se usa la altura del lote con la especie Pinus kesiya (Allan y Endeon, 1966) y en Jari (Brasil), los lotes de Gmelina arborea son raleados cuando el radio de la copa viva es de 33% o cuando el incremento anual en el área basal cae por debajo del promedio del incremento anual (Aria coe, 1979). (Ver figura No. 106)

239

Los puntos 2 y 3 del numeral 3.5.6.7, guardan relación con lo que se denomina la intensidad de raleo. Definiendo la intensidad de raleo como el porcentaje de madera a extraer del máximo incremento en el volumen anual de un lote. Para una especie y sitio en particular, la intensidad de los raleos efectuados puede ser tomado como el volumen de madera removida por hectárea en un año. En la práctica el área basal por hectárea se utiliza frecuentemente porque es más fácil de medir. 3.5.6.9 Métodos de raleo: El raleo no solo se hace en diferentes intensidades sino de diferentes formas. Es necesario especificar el raleo en términos cuantitativos y cualitativos. El aspecto cuantitativo consiste en la especificación del número de árboles o metros cuadrados de área basimétrica que debe dejarse a determinadas edades (en términos numéricos). El aspecto cualitativo específica qué clase de árboles deben dejarse en la masa forestal. Consideraciones sobre estos dos aspectos: 3.5.6.9.1 Raleo por clases. El raleo por clases (grande thinning) es el método tradicional de raleo. Está relacionado en lo fundamental con el aspecto cualitativo del raleo, los árboles a conservar en la masa forestal para el futuro aprovechamiento y los árboles a eliminar. Estos se seleccionan principalmente

Figura No. 106 Primer raleo en plantaciones

de Gmelina arborea

240

con base a la posición de las copas, aunque también se toma en cuenta la forma del fuste. Se usan las clases dominantes, codominantes, intermedios y suprimidos; mediante esta diferenciación la cual es causada por la competencia, el silvicultor puede seleccionar los árboles más convenientes para la producción. El raleo tiene que anticipar la competencia que conducen a la diferenciación marcada de las copas en categorías de dominantes intermedias y suprimidas. En este caso las plantaciones para producción económica de madera, la masa forestal debe estar compuesta de dos clases de árboles: dominantes y codominantes, para mantener un alto grado de dominancia después del período de crecimiento inicial. La intensidad y tipo de raleo con base a clases de copa se específica en términos de las clases que deben eliminarse, por ejemplo: en el raleo por lo bajo -Método Alemán- se eliminan las clases inferiores empezando con los suprimidos, luego los intermedios, etc. La intensidad se fija mediante la prescripción de las clases a eliminarse. En el raleo por lo alto -Método Francés o High Thinning- se eliminan árboles en las clases superiores dominantes y codominantes. Este tipo de raleo afecta en forma más directa la espesura del vuelo y por lo tanto influye en mayor grado sobre el desarrollo del vuelo porque elimina los árboles que quedan en pie, además produce material de mayor tamaño, que puede tener valor comercial. El raleo por lo bajo tiene un efecto menor sobre el desarrollo del vuelo porque elimina los árboles que menos intervienen en la competencia con los demás. El raleo con base a clases -Grade Thinning- se define principalmente en términos cualitativos y generalmente falla en el aspecto cuantitativo. No es suficiente prescribir la eliminación de los suprimidos e intermedios, sino que hay que especificar en términos cuantitativos qué debe eliminarse y qué debe mantenerse de la masa forestal. La cuantificación del raleo en las plantaciones para la producción forestal es de importancia. 3.5.6.9.2 Raleo sistemático, mecánico o linear. Los árboles son raleados de acuerdo a un procedimiento sistemático en el cual la calidad de cada árbol por separado no es tomada en cuenta, ejemplo: la remoción de cada séptima hilera de árboles como lo hace Cartón de Colombia, en este raleo solo varía la intensidad, la forma más común es en línea o hilera. El peso del raleo varía de acuerdo a la proporción de las hileras removidas.

241

3.5.6.9.3 Raleo selectivo. Los árboles son raleados o dejados de acuerdo al juicio de la persona que los está seleccionando. Hay dos métodos para determinar qué árboles se ralean: • Raleo por lo bajo o • Raleo de copa

3.5.6.9.4 Raleo por lo bajo. Es la forma más común de raleo selectivo. Remueve principalmente los árboles del dosel más bajo, ejemplo: los más pequeños y menos vigorosos y se realiza acelerando los procesos naturales de selección en la plantación. En el raleo por lo bajo donde son removidos los árboles más pequeños y menos vigorosos, es necesario tener un criterio de selección basado en el vigor. La cosecha final queda con los árboles que han crecido más rápido que el resto y con una buena forma. (Ver figuras No. 107, 108 y 109)

Figura No. 107 Raleo Gmelina arborea. Zambrano (B).

Figura No. 108 Troceado de los árboles una vez efectuado el raleo en plantaciones de Pinus patula

242

3.5.6.9.5 Raleo de copa (raleo por arriba). Comprende la remoción de árboles dominantes y codominantes. Generalmente se selecciona un número determinado de los árboles que constituirán la cosecha final y el raleo se realiza con el fin de favorecer el desarrollo de la copa. El raleo de la copa tiene dos categorías de árboles: aquellos que se favorecen con el raleo y los restantes. Si se efectúa a través de toda la rotación la continua remosión de muchos de los árboles más vigorosos puede aumentar la pérdida total, (Johnson, et al 1967). 3.5.6.9.6 Raleo numérico. Es importante la determinación cuantitativa del raleo en relación con la economía de la producción en las plantaciones. El raleo numérico tiene la finalidad de prescribir el número de árboles que debe quedar en diferentes etapas del desarrollo de la masa forestal de la plantación, de esta manera la espesura se expresa en términos de número de árboles (o espaciamiento según tabla de Hart, o Área Basimétrica). Hay dos métodos principales de expresar la etapa de desarrollo de la plantación: edad y tamaño medio (diámetro del árbol medio, diámetro promedio, etc.): En el raleo numérico con base a edad se especifíca el número de árboles que deben quedar para cada una de las diversas edades de la plantación. Ejemplo de un régimen de raleo:

Figura No. 109 Raleo por lo bajo en plantaciones de Gmelina arborea

243

Edad (años) Número de Árboles del Vuelo Principal

0 1.400 (Nº / ha.) 6 800 10 600 14 450 20 350 28 250 35 0 (fin del turno)

Para cada especie (variedad, raza) y para cada calidad de sitio es necesario especificar el régimen de raleo ya que el comportamiento de la masa forestal depende de la interacción entre la especie y el medio ambiente. El fenotipo. Al fijar el número de árboles se fija, el diámetro medio, y el área basimétrica. Para cierto tipo de bosque, Singh (1968), recomienda que el régimen de raleo se especifique en términos del número de árboles y el diámetro medio. En este tipo de raleo el aspecto cuantitativo está bien especificado. El aspecto cualitativo (cuáles árboles deben quedar) queda a criterio del silvicultor, las especificaciones del número de árboles supone una distribución uniforme de los mismos sobre la superficie, con un espaciamiento medio relativamente uniforme. Por lo tanto, uno de lo principales criterios para la selección de árboles a eliminarse o mantenerse en la masa forestal, es la distribución. Por supuesto, es necesario seleccionar también con base a la forma del fuste y el desarrollo del árbol. En África del Sur, el manejo de las plantaciones tiene un enfoque económico, se usa el clareo numérico. Hay especificaciones para cada especie en diferentes calidades de sitio. (Ver tabla No. 17 )

244

Tabla No. 17 Regímenes de Clareo Africa del Sur Edad Número de árboles por Ha. - Vuelo principal P. Insignis * ** I II III I II III I II III 0 1300 1300 1300 1300 740 740 740 740 6 - 520 - 740 440 - 420 - 8 - - 740 - - 440 - 300 10 820 12 - - 490 - - - - - 14 - - - 470 - - - - 15 540 300 18 - 370 320 - - - - - 20 370 - - - 300 - 300 - 25 310 270 - 320 - 210 - - 30 0 - 0 - 210 - 210 150 40 - 0 - 0 - 0 - - 50 - - - - 0 - 0 - 60 - - - - - - - 0

I, II, III Calidades de sitio 1300, 520, etc., número de árboles por Ha. (Tomado de Hiley 11 p. 47) * P. patula, caribaea, montezumae, pinaster ** P. longifolia, palustris, canariensis

3.5.6.9.7 Raleo con base al área basimétrica: Tamaño. El área basimétrica es un factor valioso para la prescripción del raleo siempre y cuando se especifique también el número de árboles o el diámetro medio, ya que con una determinada área basimétrica puede haber un número elevado de árboles pequeños (delgados), o un número menor de árboles de mayor diámetro. El área basimétrica es importante dada la estrecha correlación con el volumen. El incremento de área basimétrica es un buen índice del incremento de volúmen. Generalmente el área basimétrica se usa como un -control- en el régimen de raleo y no para prescribir el régimen de raleo. Es decir, que el régimen de clases no se especifica en términos de que a una cierta edad debe quedar una determinada área basimétrica, si no que se usa como criterio para mantener la ocupación o espesura (stocking) dentro de ciertos límites. El régimen se fija mediante, por ejemplo, la especificación del número de árboles que debe quedar a diferentes edades. Se usa el área basimétrica para expresar la espesura de la masa forestal y para hacer modificaciones según la necesidad con el fin de mantener la espesura dentro de los límites deseados para obtener el óptimo rendimiento.

245

En Queesland, Australia, se usa el área basimétrica como control en los raleos, las especificaciones del régimen de raleo se expresa en términos de raleo numérico. Se usa el área basimétrica para especificar el nivel de espesura mínima que permita el máximo incremento. El área basimétrica limitante se define como el área basimétrica mínima que rinda el máximo incremento. El margen de área basimétrica dentro del cual se produce el máximo incremento es amplio, como se observa en la siguiente tabla.

Área Basimétrica m2/ha. Incremento en % del Área Basimétrica

22.96 92% 25.26 96% 27.55 99% 29.85 100% 32.14 100% 34.44 100% 36.74 99.5%

Sobre un margen amplio de área basimétrica, se logra el máximo incremento, los límites son 25 y 37 m2 / ha, sobre el recorrido basimétrico desde 22.96 m2 / ha., hasta 36.74 m2 / ha., no varía mucho el incremento máximo en menor número de árboles, manteniendo el área cerca del límite inferior. En Quensland se mantiene la espesura cerca del área basal limitante hasta que quedan solamente los árboles de la cosecha final. Como por ejemplo: Pinus elliotti produce 200 árboles por ha. de aproximadamente 50 cm. DAP en el menor tiempo posible. Es necesario determinar el área basimétrica limitante para cada especie y determinar como varía según la edad y la calidad de sitio. 3.5.6.9.8 Raleo basado en el índice de espacimiento relativo. La esencia del método de Hart consiste en relacionar el distanciamiento entre los árboles de un rodal, con altura alcanzada por ellos. Esto facilita aplicar el método a vuelos de diferentes edades y en distintas calidades de sitio, por ser la altura función de esas variables. Para el caso Hart, desarrolló el concepto denominado “Indice de espaciamiento Relativo” (S%), que es el valor relativo que expresa en porcentaje de la altura de los árboles más elevados (Am), la distancia (D) entre los árboles, suponiendo que éstos se disponen sobre el terreno en forma de triángulos regulares, cuya fórmula es:

246

100% xAm

DS =

De acuerdo a lo anterior D se calcula por la fórmula que se vio anteriormente o en su lugar puede emplearse las tablas elaboradas por Hart en las que da para cada distanciamiento la correspondiente densidad por hectárea. (Ver tabla No. 18) La altura mayor Am, a su vez se establece promediando los 100 árboles más altos por ha. El régimen de clareo puede especificarse en base al índice de espaciamiento relativo (5%). En este caso se especifican las limitantes entre las cuales hay que mantener el 5% para cada etapa del desarrollo de la plantación. Ejemplo de especificaciones:

Etapa de Desarrollo (edades) Límites del S% 4 - 8 25 - 35 % 9 - 15 20 - 27 % 16 - 25 17 - 24 % 26 - 35 14 - 18 %

247

Tabla No. 18 Relación entre número de arboles por Ha. y el promedio de las distancias entre los arboles. (Suponiendo un espac iamiento triangular regular)

0 1 2 3 4 5 6 7 8 9

0.8 18042 17600 17173 16762 16364 15982 15613 15256 14911 14758 0.9 14256 11944 13643 13351 13068 12794 12530 12272 12023 11781 1.0 11547 11321 11103 10883 10672 10469 10273 10085 9903 9720 1.1 9543 9373 9208 9042 8882 8728 8579 8435 8295 8155 1.2 8019 7887 7760 7632 7508 7388 7271 7159 7049 6939 1.3 6833 6729 6629 6527 6429 6334 6242 6152 6065 5977 1.4 5891 5808 5728 5646 5568 5491 5416 5343 5273 5201 1.5 5132 5065 4999 4933 4868 4805 4744 4684 4626 4568 1.6 4511 4455 4401 4346 4293 4241 4190 4140 4092 4043 1.7 3995 3949 3904 3858 3813 3770 3727 3686 3645 3604 1.8 3564 3525 3486 3448 3410 3373 3337 3302 3267 3233 1.9 3199 3165 3133 3100 3068 3036 3005 2975 2946 2916 2.0 2887 2858 2830 2802 2774 2747 2721 2695 2669 2644 2.1 2618 2594 2569 2545 2521 2498 2475 2472 2430 2408 2.2 2386 2364 2343 2322 2201 2281 2261 2241 221 2201 2.3 2183 2164 2145 2127 2109 2091 2073 2056 2039 2022 2.4 2005 1988 1972 1955 1939 1923 1908 1893 1878 1862 2.5 1848 1833 1818 1804 1790 1776 1762 1748 1735 1721 2.6 1708 1695 1682 1969 1657 1664 1632 1620 1608 1596 2.7 1584 1572 1561 1549 1538 1527 1516 1505 1494 1483 2.8 1473 1462 1452 1442 1432 1422 1412 1402 1392 1383 2.9 1373 1364 1354 1345 1336 1327 1318 1309 1300 1292 3.0 1283 1275 1266 1258 1249 1241 1233 1225 1217 1209 3.1 1202 1194 1186 1179 1171 1164 1156 1148 1142 1134 3.2 1128 1121 1114 1107 1100 1093 1086 1080 1073 1067 3.3 1060 1054 1048 1041 1035 1029 1023 1016 1011 1005 3.4 999 993 987 982 976 970 965 959 954 958 3.5 943 937 932 927 922 916 911 906 901 896 3.6 891 886 881 876 871 867 862 857 853 848 3.7 843 839 834 830 825 821 817 813 808 804 3.8 800 795 791 787 783 779 775 771 767 763 3.9 159 755 751 748 744 740 736 733 729 725 4.0 722 718 715 711 708 704 701 697 694 690 4.1 687 684 680 677 674 671 667 664 661 658 4.2 655 652 648 645 642 639 636 633 630 627 4.3 625 622 619 616 613 610 607 605 602 599 4.4 596 594 691 589 586 583 581 578 575 573 4.5 570 568 565 563 560 558 555 553 550 548 4.6 546 543 541 539 536 534 532 529 527 525 4.7 523 521 518 516 514 512 510 508 505 503 4.8 501 499 497 495 493 491 489 487 485 483 4.9 481 479 477 475 473 471 469 467 466 464 5.0 462 460 458 456 455 453 451 449 447 446 5.1 444 442 440 439 437 435 434 432 430 429 5.2 427 425 424 422 421 419 417 416 414 413 5.3 411 409 403 406 405 403 402 400 399 397

248

5.4 396 395 393 392 390 389 387 386 385 383 5.5 382 380 379 378 376 375 374 372 371 370 5.6 368 367 366 364 363 362 360 359 358 357 5.7 355 354 353 352 350 349 348 347 346 344 5.8 343 342 341 340 339 337 336 335 334 333 5.9 332 331 330 328 327 326 325 324 323 322 6.0 321 320 319 318 317 315 314 313 312 311 6.1 310 309 308 307 306 305 304 303 302 301 6.2 300 299 298 298 297 296 295 294 293 392 6.3 291 290 289 288 287 286 286 285 284 283 6.4 282 281 280 279 278 273 277 276 275 274 6.5 273 272 272 271 270 269 268 268 267 266 6.6 265 264 263 263 262 261 260 259 259 258 6.7 257 256 256 255 254 253 258 252 251 250 6.8 250 249 248 248 247 246 245 245 244 243 6.9 243 242 241 240 240 239 236 237 237 236 7.0 236 235 234 234 233 232 232 231 230 230 7.1 229 228 228 227 227 226 226 225 224 223 7.2 223 222 222 221 220 220 219 218 218 217 7.3 217 216 216 215 214 214 213 213 212 211 7.4 211 210 210 209 209 208 207 207 206 206 7.5 205 205 204 204 203 203 202 202 201 200 7.6 200 199 199 198 198 197 197 196 196 195 7.7 195 194 194 193 193 192 192 191 191 190 7.8 190 189 189 188 188 187 187 186 186 185 7.9 185 185 184 184 183 183 182 182 181 181 8.0 180 180 180 179 179 178 178 177 177 176 8.1 176 176 175 175 174 174 173 173 173 172 8.2 172 171 171 170 170 170 169 169 168 168 8.3 168 167 167 166 166 166 165 165 164 164 8.4 164 163 163 162 162 162 161 161 161 160 8.5 160 159 159 159 158 158 158 157 157 156 8.6 156 156 155 155 155 154 154 154 153 153 8.7 153 152 152 152 151 151 150 150 150 149 8.8 149 149 148 148 148 147 147 147 146 146 8.9 146 145 145 145 144 144 144 144 143 143 9.0 143 142 142 142 141 141 141 140 140 140 9.1 139 139 139 139 138 138 138 137 137 137 9.2 136 136 136 136 135 135 135 134 134 134 9.3 134 133 133 133 132 132 132 132 131 131 9.4 131 130 130 130 130 129 129 129 128 128 9.5 128 128 127 127 127 127 126 126 126 126 9.6 125 125 125 125 124 124 124 123 123 123 9.7 123 122 122 122 122 121 121 121 121 120 9.8 120 120 120 119 119 119 119 119 118 118 9.9 118 118 117 117 117 117 116 116 116 116 10.0 115 115 115 115 115 114 114 114 114 113 10.1 113 113 113 112 112 112 112 112 111 111 10.2 111 111 111 110 110 110 110 110 109 109 10.3 109 109 108 108 108 108 108 107 107 107 10.4 107 107 106 106 106 106 106 105 105 105

249

10.5 105 105 104 104 104 104 104 103 103 103 10.6 103 103 102 102 102 102 102 101 101 101 10.7 101 101 100 100 100 100 100 100 99 99 10.8 99 99 99 98 98 98 98 98 98 97 10.9 97 97 97 97 96 96 96 96 96 96

Ejemplo: En un rodal con densidad N1 = 2100 árboles / ha. (D = 2.35 m.) tiene una altura mayor Am = 12.5 m., lo que da como resultado un:

1005.12

35.2% xS =

S%= 18.8 Si se quiere llevar el S% a 20, se procede así:

100% xAm

DS = .5.2

1005.1220

100%

mxxAmS

D == = 2.5 m

En la tabla de Hart se vé que a D = 2,5 m. corresponde N2 = 1.815 árboles. Por consiguiente, el número de árboles a extraer N3 será: N3 = N1 - N2 = 2.100 - 1.815 = 285 árboles / ha. Es evidente que la aplicación de ésta técnica exige cierta elasticidad y corresponde a quién lo ejecuta, distribuir los árboles a extraer en toda la superficie del terreno tratando de que quede balanceado. 3.5.6.9 Experiencias de raleo: La mayor experiencia de raleos se ha efectuado por Craib 1.947 en Sur África entre los años treinta y cuarenta, en varias especies de Pinus Subtropicales como: Pinus elliottii, P. patula, P. taeda. (Ver tabla No. 19) El cuadro siguiente representa los regímenes de clareo numérico correspondiente a diferentes especies y calidades de sitio utilizados en África del Sur (Tomado de Hiley 1959).

250

Tabla No. 19 Modelo de manejo silvicultural de pla ntaciones en Safi (Surafrica)

PINUS EUCALYPTUS Prácticas silviculturales Se emplean plántulas de semillas seleccionadas cosechadas de especímenes “plus” y de huertos clonales: Altura de las plántulas 15.0 – 30.0 cm.

Se plantan plántulas de 15.0 – 30.0 cm de altura

Distancia de plantación 2.5 x 3 m Distancia de plantación 2.5 x 3.0 m

(A) Plantación de rodales

PODAS PODAS Edad n/ha Altura Se podan hasta 6.7 m durante los primeros 3 años

3 años 1330 1.0 m 5 años 1330 2.5 m 7 años 750 4.5 m 9 años 750 6.7 m 12 años 325 11.0 m ENTRESACAS

ENTRESACAS Edad n/ha Usos Edad n/ha Usos Desde --------Hasta Desde Hasta 4 años 1330 --------- 750 Postes para minas 8 años 1330 ----------------- 750 Pulpa 7 años 750 ----------

500 Postes para minas y teléfonos

13 años 760 ----------------- 500 Pulpa, pequeñas trozas para aserrío

10 años 500 ---------- 325

Postes para minas, teléfonos y líneas de transmisión

18 años 500 ------------------ 325 Idem 12-21 años 500 Tala rasa Postes para minas, teléfonos, líneas de transmisión, trozas para aserrar

22 años 325 ------------------ 225 Pulpa y trozas de aserrío, trozas para chapas

(B) Fajas Cortafuego. No se podan ni se entresaca. Se talan a los 8 años. Usos: madera para minas, postes para minas y líneas de transmisión.

Restablecimiento con semillas seleccionadas La regeneración de las plantaciones se efectúa bien por semillas o por rebrote de cepa.

PRODUCTOS DE LA PLANTACIÓN

Madera para pulpa, para papel periódico, Kraft y papeles finos

Postes para minas

Madera de construcción, postes para minas, líneas telefónicas y de transmisión.

Trozas para aserrar Trozas para aserrar Trozas para producir chapas

PRODUCTOS ADICIONALES Energía eléctrica de los residuos; semillas de pino y de eucaliptos para el mercado local y de exportación; plantas de vivero; hongos; miel de abejas Para las especies Pinus pinaster, P. patula, P. caribaea, P. montezumae, P. Longifolia, P. palustris, P. canariensis.

251

En Surinam usando un índice de espesura llamado Índice de espaciamiento relativo S%. Se ha adaptado un espaciamiento S% que se mantiene entre 20 y 30%. La empresa SAFI, de Sur África ha adaptado un modelo de manejo de plantaciones donde se destaca la práctica de podas y entresacas, las cuales son el producto de importantes investigaciones. La empresa Monditimber en Sabie Provincia de Transvaal y Natal, en África del Sur, realiza el manejo de rodales forestales con las especies de mayor plantación y son: Pinus patula, P. taeda, P. elliottii y Eucalyptus grandis. La plantación hasta el presente ha sido dirigida hacia la producción de madera para aserrío con el siguiente turno para pino:

Plantación 0 años 1.100 árb./ha. 3x3 m. Entresaca 8 años 650 árb./ha. Entresaca 11 años 400 árb./ha. Entresaca 15 años 325 árb./ha.

Corte 30 años -

Se realizan podas a 2, 4, 7 y 9 metros en los pinos. En Africa del este, Papua Nueva Guinea y Australia se efectúa un sistema de raleo sistemático que incluye elementos de selección y se aplica de la siguiente forma: a. Antes del primer raleo de escogen 400 árboles de buena calidad por hectárea. b. Al seleccionar los árboles para el primer raleo, se marcan tres árboles para remover de cada grupo de siete. Se efectúa una de las formas de raleo por clase y se marcan los árboles para su remosión siguiendo este orden de prioridad: • Árboles enfermos o malformados • Dominante o codominantes pobres que compitan con los seleccionados • Árboles con yemas líderes dobles o múltiples

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• Cualquier otro árbol que compita con los escogidos c. El segundo raleo remueve todos los árboles que quedaron y no estaban seleccionados d. En el tercer y cuarto raleo se eliminan los árboles pobres más seleccionados con base en el raleo desde abajo En Colombia en investigaciones realizadas por Cartón de Colombia, se recomienda plantar inicialmente entre 1.100 árboles/ha. y 1.600 árboles/ha. y realizan un programa así: Inicial Edad 7 Edad 12 Edad 15 - 17 Nº/ha. Entresacar Dejar en pie Entresacar Dejar en pie Final turno 1.600 480 1.120 560 560 560 1.100 275 825 275 550 550 En plantaciones maduras el área basal que queda después de una entresaca debe variar entre 18 y 21 m. cuadrados por hectárea para obtener un rendimiento máximo en volumen y peso verde. Monterrey Foresrtal Ltda. en Zambrano Bolívar, aplica entresacas para Bombacopsis quinata y Gmelina arborea así:

Plantación inicial 1.100 árb/ha.

Cosecha 300 árb/ha.

Bombacopsis quinata 3 años 50% 9 años 50% Gmelina arborea 3 años 50% -

3.5.7 Micorrizas: Se conoce como Micorrizas a la asociación mutualista entre algunos hongos del suelo y la raíz de la mayoría de las plantas. En ella el micelio del hongo infecta la corteza radical a modo de endofito y proyecta sus hifas tanto al interior como al exterior de la raíz. (Guerrero, E. 1996). Siquiera & Franco (1988) definen las Micorrizas como “Simbiosis endofíticas, biotróficas y mutualistas, prevalentes en la mayoría de las plantas nativas y cultivadas; caracterizadas por el contacto íntimo y una perfecta integración morfológica entre el hongo y la planta, para la regulación funcional e intercambio de metabolitos con beneficios mutuos”.

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Se considera la micorriza como la infección fungica más extendida en el reino vegetal y los hongos micorrizógenos contribuyen de manera sustancial a la biomasa del suelo. (Guerrero, E. 1996). La importancia de esta simbiosis en el desarrollo de las plantas se entiende al tener en cuenta que la raíz es el puente entre la planta y el suelo y que, a su vez, el micelio fúngico, al constituirse en una extensión de las raicillas, explora mucho mayor volumen de suelo que la raíz sola. Las hifas del hongo conectan el interior de la corteza radical con el suelo adyacente, comportándose en forma análoga a los pelos radicales, las hifas son, sin embargo, más largas y delgadas que éstas y por lo tanto pueden alcanzar un mayor volumen de micrositios edáficos, lo cual explica la gran capacidad de captación de nutrientes de una planta con micorriza; a la importancia de las micorrizas como factor de nutrición de las plantas se ha agregado otros beneficios como resistencia al estrés por agua, resistencia a ciertos patógenos radicales y tolerancia a metales pesados. Las plantas presentan diferentes grados de dependencia frente a las micorrizas, algunas son micotróficas obligadas y, por lo tanto se ven afectadas por la ausencia de esta asociación, las micorrizas facultativas, no necesariamente exigen micorrizas.

3.5.7.1 Tipos de micorrizas. Las micorrizas han sido clasificadas en tres categorías básicas: a) Ectomicorrizas, b) Endomicorrizas y una categoría intermedia y c) Ectendomicorrizas. (Ver figura No. 110)

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Las Ectomicorrizas están presentes en pocas especies vegetales hospederas, unas 2.000, donde predominan las gimnospermas y algunas angiospermas. Ocurren en el 3% de las fanerógamas y tiene baja frecuencia en los trópicos, las plantas que forman ectomicorrizas son especies arbóreas en su mayoría nativas de regiones templadas, algunas de estas plantas como las Myrtaceae, Caesalpinaceae, Sapindaceae, Dipterocarpaceae, Pinaceae, Fagaceae y Rosaceae son de ocurrencia generalizada en los trópicos y muchas de ellas pueden formar también endomicorrizas. Las ectomicorrizas forman un manto mícelial externo sobre las raíces de las plantas. La importancia práctica de la ectomicorriza se centra básicamente en su manejo en bosques y en plantaciones forestales ectoctróficas. Su distribución natural abarca principalmente bosques de latitudes y altitudes intermedias, es una simbiosis asociada a bosques de baja diversidad y, por lo tanto, a especies arbóreas que crecen en la naturaleza en rodales puros. Su presencia en el trópico se restringe a los bosques de Robles (fagaceae) en las zonas alto andinas, y a ecosistemas selváticos de zonas de bajura, donde cohabita con micorrizas arbusculares. En estos últimos ecosistemas está

Figura No. 110 Estructura característica de los diferentes tipos de micorriza

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asociada con árboles de las familias Cesalpinaceae y Dipterocarpaceae. Especies de gran importancia en la producción forestal como Pinus spp y Eucalyptus spp., forman asociaciones ectómicorricicas con un alto grado de dependencia entre los simbiantes, siendo estas las especies forestales más utilizadas en reforestación en los países tropicales. Las principales familias botánicas asociadas a estas micorrizas son: de las Gimnospermas (Pinaceae, Cupresaceae) y de las angiospermas (Fagaceae, Myrtaceae, Betalaceae, Rosaceae, Tiliaceae). Los hongos ectomicorricicos están clasificados entre los asco y basidiomicetos, con hongos de variados hábitos saprofitos y parásitos. • Endomicorrizas arbusculares Mas del 90% de las especies vegetales existentes en el planeta están micorrizadas cuando crecen en condiciones naturales, y de éstas en un 95% de los casos, la asociación corresponde a micorrizas de tipo arbuscular, en contraste con las ectomicorrizas donde la diversidad de los hospederos es escasa. Las endomicorrizas son relativamente escasas, 150 especies conocidas y el número de hospederos muy diversos. Se calcula que el 97% de las plantas vasculares, unas 300.000 especies están asociadas a las endomicorrizas arbusculares (M.A). En los trópicos las endomicorrizas ocurre en el 97% de las plantas fanerógamas, donde se incluye las especies forestales, agrícolas, etc. En la evolución de las micorrizas parece ser que las ectomicorrizas se establecieron en las zonas templadas, por la abundante presencia en estas áreas, mientras que las micorrizas arbusculares (Ma) se han desarrollado en los trópicos asociados a la alta diversidad de especies vegetales incluyendo las arbóreas. Los hongos asociados en endomicorrizas arbusculares (Ma) se agrupan en la clase Zygomycetes, orden Glomales distribuidas en tres familias: Glomaceae, Acanlosporaceae y Gigasporaceae y seis géneros: Glonus, Sclerocystis, Acaulospora, Entrophospora, Gigaspora y Scute Uospora (Schenck & Pérez, 1988; Morton, 1990; Norton & Benny, 1990). • Micorrizas en la diversidad Biológica Los hongos representan uno de los grupos más diversos de organimos vivos, son más de 47.000 especies conocidas (McNeely et al, 1990), se puede deducir la existencia de una gran riqueza de hongos no conocidas.

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La micorriza es un factor biológico de mucho interés en la estructura y funcionamiento de los suelos, e incide en las características ecológicas, productivas y de composición en las comunidades naturales, cultivos agrícolas y plantaciones forestales. Se ha estimado que 5.000 especies de asco y basidiomicetes son hongos formadores de ectomicorrizas (Malloch et al, 1980) y más de 150 especies de Zigomicetes del orden Glomales establecen micorriza arbuscular (Schenk & Pérez, 1988; Woker, 1992; Gianinazzi & Schuepp, 1994). Es posible la existencia de una cierta especificidad ecológica entre hongos y comunidades vegetales, producto de un proceso coevolutivo. Tal especificidad se manifiesta a través de la relación entre la composición florística de una comunidad vegetal y la composición de la comunidad de hongos micorrizógenos. Una y otra parecen afectarse y regularse mutuamente, lo cual tiene implicaciones en la estructura de los ecosistemas y los procesos de sucesión vegetal (Janos, 1980; Jonson et al, 1992), además los factores del suelo tienen tanta importancia como la composición florísticas, en el control de la composición de una comunidad de hongos micorrizógenos (McGonigle & Filter, 1990; Jonsony et al, 1992) lo que indica la existencia de una compleja interacción hongo – suelo – planta determinante de la estructura de una comunidad vegetal. Incluso algunos llegan a señalar que los hongos micorrizógenos, tienden a seguir una distribución geográfica determinada por la latitud y la altitud sobre el nivel del mar. Read (1991), señala que las micorrizas de tipo ericoide predomina en suelos de humos mor de latitudes y altitudes altas; la ectomicorriza predomina en ecosistemas forestales donde hay acumulación superficial de mantillo orgánica en latitudes y altitudes intermedias; y las micorrizas arbuscular domina en comunidades vegetales herbáceas y árboles que caen en suelos minerales o bajas latitudes. • Manejo de hongos Micorrizógenos El aprovechamiento y manejo de las micorrizas, ya sea por inoculación o manejo cultural, forma parte de las tecnologías y desarrollo de las prácticas agronómicas y silviculturales actualmente en uso, los hongos micorrizógenos se utilizan como fertilizantes biológicos que mejoran los cultivos y plantaciones en el trópico. Según Sieverding y Barea (1991), los objetivos que persigue el uso práctico del hongo MVA en sistemas de producción vegetal son:

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a) Hacer un uso más eficiente del fósforo del suelo y de los fertilizantes fosfóricos.

b) Optimizar la productividad de los suelos y cultivos con niveas bajos de isumos.

c) Hacer posible y rentable la producción vegetal en condiciones adversas. d) Ayudar a establecer cultivos en suelos erosionados o degradados.

Aunque en la mayor parte de los casos, el suelo contiene propágulos micorrizógenos nativos, la inoculación es recomendable en la medida que se introduzcan cepas eficientes y competitivas. Los beneficios esperados de la inoculación sobre el desarrollo de las plantas son: incremento en la productividad vegetal, tolerancia a estrés hídrico y a patógenos del suelo, y una mejor adaptación al transplante de vivero a campo cuando se trata de árboles forestales y frutales. Los sistemas convencionales para la producción de inóculo de hongos MA están limitados por el carácter de simbiontes obligados que tienen estos organismos, lo cual restringe su cultivo puro. Esto obliga a realizar co-cultivo hongo – planta hospedera para multiplicar los propágalos del hongo. Según el tipo de Propágulo, los inóculos pueden estar basados en: a) esporas, b) raicillas infectadas, c) suelo micorricico (suelo + esporas + raicillas infectadas). Las esporas tienen la ventaja de que representan una fuente pura y aséptica de inóculo; sin embargo, su producción a gran escala es técnicamente difícil, las raicillas infectadas son un material de baja superviciencia. El inóculo basado en suelo es el sistema de más amplio uso, en la producción comercial y de uso en el campo. Métodos de inoculación de hongos ectomicorrícicos, la inoculación de hongos ectomicorrizógenos es una tecnología que interesa en las prácticas silviculturales, si se tiene en cuenta que esta ocurre en ciertas grupos de árboles forestales. Los hongos ectomicorricicos han sido introducidos en suelos no micorrícios a través de diferentes sistemas de inoculación (Cannon, 1984; Alvarado, 1993).

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• Inoculación natural La inoculación natural se facilita cuando el vivero se ubica cerca de plantaciones forestales, beneficiándose de las esporas que producen los cuerpos fructíferos que emergen cerca de los árboles.

• Suelo y Humus

Es el método más convincente empleado para el desarrollo de la micorriza por su fácil obtención y manipulación, pero presenta desventajas como: a) el riesgo de incorporación de otros organismos que puedan ser patógenos para la planta, b) la incertidumbre de que el ináculo contenga la especie de hongo deseable para la planta, c) la dificultad de establecer el volumen de suelo requerido para lograr la infección.

• Raíces y plántulas micorrizadas

La siembra de plántulas micorrizadas en semilleros proporciona un efectivo sistema de inoculación, las plántulas abundantemente micorrizales se colocan a intervalos de uno a dos metros en los semilleros y de esta forma la simbiosis se establece en las plántulas (Mikola, 1970, Marx & Kennedy, 1982; Rifle & Maronek, 1982).

• Esporóforos y esporas

La utilización de esporas como inóculo ha tenido mayor aceptación por su fácil aplicación; puede ser adicionadas al sistema de riego, distribuidas como fertilizante, o aplicadas como cubierta de siembra. • Inóculo micelial

El inóculo micelial ha sido recomendado como el método de inoculación biológico más sano (Mikola, 1973; Trappe, 1977; Cordell et al, 1987), permite seleccionar el hongo más apropiado teniendo en cuenta la especie vegetal y las condiciones ecológicas.

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CAPÍTULO IV

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4. PROPAGACIÓN VEGETATIVA

4.1 PROPAGACIÓN VEGETATIVA EN ÁRBOLES FORESTALES

4.1.1 Definición. Por propagación vegetativa, se entiende la reproducción asexual de plantas a partir de partes de raíz, tallo, hojas o ramas originando plantas genéticamente iguales a la planta original. Bajo el término técnico “Propagación Vegetativa”, se entiende la producción asexual de individuos porque indica una multiplicación de material vegetal no por fusión de gametos y producción de semillas, sino por división -mitosis-, crecimiento y diferenciación de tejidos somáticos. El material resultante de la propagación vegetativa es genéticamente idéntico a la planta original. Esta y los miembros nacidos de ella por propagación vegetativa se definen como Clon, la planta original como Ortet, y los miembros del Clon nacido del Ortet como Ramets. (Koening y Melchior 1978). Reproducir los árboles de modo asexual significa, básicamente clonar la descendencia a partir de un solo progenitor, con la ventaja de que todas sus cualidades son conocidas de antemano y serán transmitidas íntegramente. El injerto, la propagación vegetativa y la micropropagación son algunas de las técnicas empleadas para este fin. 4.1.2 Objetivos de la propagación vegetativa en el mejoramiento genético. En el fitomejoramiento de los árboles forestales los objetivos de la propagación vegetativa son los siguientes: • Establecimiento de colecciones de clones, con el fin de lograr la conservación de recursos genéticos forestales o con el objeto de realizar investigaciones, como por ejemplo: la realización de cruzamientos dirigidos los cuales se efectúan más fácilmente en tales bancos que en el bosque natural.

• Establecimiento de huertos semilleros, que manejados técnicamente produzcan abundantes y frecuentes cosechas de frutos.

• Para la obtención de material vegetativo utilizado en la comparación de ensayos de campo y en el abastecimiento de programas de reforestación.

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• La obtención de material vegetativo en cantidades suficientes, para abastecer los módulos de enraizamiento, y así producir a corto plazo plantas genéticamente mejoradas.

• Jardines clonales para obtención de yemas juveniles.

4.2 MÉTODOS DE PROPAGACIÓN VEGETATIVA 4.2.1 Definición y generalidades. Se distingue la propagación

autovegetativa y la heterovegetativa, considerando si la planta nueva consta solo de tejidos de la planta original o de una combinación de varios genotipos. En la propagación autovegetativa una parte del Ortet puede reproducir las partes que faltan, como hojas, brotes o raíces. Estas partes originarias del tallo a propagar se definen como estacas. Si la parte del tallo a propagar se mantiene unida con el Ortet durante un cierto período, se habla de un acodo. En los últimos años se ha logrado reproducir muchas especies con base a ciertos tejidos o células denominados micropropagación. La propagación vegetativa por injerto se utiliza cuando la propagación por estacas no da resultado satisfactorio. Al contrario de las estacas en la mayoría de las especies, existe la ventaja de que los injertos mantienen una fase fisiológica madura y comienzan a florecer y fructificar en poco tiempo. Propagación vegetativa, mediante estacas o esquejes, consiste en cortar tallos en crecimiento y plantarlos para que echen raíces. 4.2.2 Propagación vegetativa por medio de estacas. En la propagación por estaca una sección del tallo, raíz u hoja se corta de la planta madre y se induce a formar raíces y brotes por medio de la manipulación química, mecánica y/o ambiental. En la mayoría de los casos, la nueva planta resultante es un clon idéntico a la planta madre. Propagación vegetativa mediante estacas o esquejes, consiste en cortar tallos en crecimiento y plantarlos para que desarrollen raíces, la parte del árbol padre que se extrae con fines de propagación, se denomina estaca. La parte más utilizada son las estacas provenientes del tallo, principalmente de ramas. La estaca es una porción de la planta, usada para reproducir asexualmente una determinada especie. Se considera reproducida una estaca, cuando posterior a

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su plantación, se presenta brotación de hojas y emisión de raíces. (Ver figura No. 111).

4.2.3 Importancia y ventajas de la propagación por estacas. Generalmente la propagación vegetativa es más costosa (por unidad “propagada”) que la sexual (semillas). Los costos de producción en la propagación de plantas que permanecen de color verde con hojas, o parte de las hojas, requieren de techos de vidrio o módulos de enraizamiento en polietileno, calefacción y sistemas de humedad. En algunas especies la superioridad de los clones justifica la alta inversión en recursos que debe hacerse para acceder a esta tecnología. Para las especies que puedan fácilmente ser propagadas por estacas este método tiene ventajas. La mayoría de las plantas pueden reproducirse en un espacio limitado a partir de unas pocas plantas madres. Esto es mucho más económico (comparado con otros métodos asexuales) rápido y simple, y no requiere de una técnica especial, como los injertos, los brotes o la micropropagación. En el campo forestal, la propagación por estacas ha venido siendo utilizada durante años y es común para la producción comercial de “Cryptomeria” (Cryptomeria japonica), “poplar” (Populus spp.), “sauce” (Salix spp.), “chinese fir” (Cuminghania lanceolata), “eucalyptus” (Eucalyptus sp), “pino radiata” (Pinus radiata), “nacedero” (Trichantera gigantea) “matarratón” (Gliricidia sepium), “poro” (Erythrina poeppigiana).

Figura No. 111 Preparación de estacas de

eucalipto en Restrepo, Valle. Cartón de Colombia

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4.2.4 Tipos de estacas. Las estacas se sacan de las partes vegetativas de las plantas como: tallos, y pueden ser de madera dura, madera semidura, madera blanda. Muchas plantas se propagan por diferentes tipos de estacas con buenos resultados. El mejor tipo depende de las circunstancias individuales, el método más económico y el más fácil. Para las especies maderables perennes de fácil enraizamiento se utiliza a menudo estacas del tronco debido a su simplicidad y bajo costo. Para las especies herbáceas o partes de material herbáceo más tierno, o para las que son más difíciles de propagar, se recurre a métodos más costosos y de tecnologías más completas para el enraizamiento de este tipo de material. En los viveros con invernadero o módulos de enraizamiento, una cantidad de especies de fácil como de difícil enraizamiento, se propagan por medios donde el agua se aplica por rocío, nebulización o vapor. (Ver figura No. 112) Al seleccionar material para estacas es importante escoger árboles libres de enfermedades, vigorosos, bien formados, y de características superiores a las demás de la especie. Con este tipo de propagación se obtienen segmentos de tallos o de brotes con yemas terminales, con la idea de que bajo condiciones adecuadas puede emitir raíces espontáneamente y producir nuevas plantas.

Figura No. 112 Módulo de enraizamiento con riego por nebulización

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El tipo de madera, la tasa de crecimiento, la edad y la época del año en que son cortadas, son algunos de los factores importantes para el enraizamiento satisfactorio de las plantas. 4.2.5 Estacas del tallo. Se pueden dividir en tres grupos de acuerdo a la naturaleza de la madera: • Madera dura • Madera semidura • Madera flexible y herbáceas.

4.2.5.1 Estacas de madera dura. Son efectuadas en madera dura y firme, después que las hojas han caído. El uso de estacas de madera dura es uno de los métodos más económico y fácil en la propagación vegetativa. Estas estacas son fáciles de preparar y como no se pudren fácilmente pueden enviarse a largas distancias si es necesario, tampoco requieren de equipos especiales para su enraizamiento. Las estacas de madera dura se preparan a finales del verano y principios del invierno usualmente previo a la época de crecimiento, y deben contener una buena cantidad de carbohidratos almacenados para nutrir las raíces que se están desarrollando, así como a los brotes, hasta que la planta nueva pueda nutrirse por sí misma. Se desechan los brotes más pequeños que usualmente son bajos en carbohidratos, almacenados. La parte central y basal de la rama generalmente produce las mejores estacas aunque hay excepciones. Las estacas de madera dura varían en longitud y diámetro y se establece unas dimensiones proporcionales entre el diámetro y la longitud de la siguiente manera:

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Diámetro de la Estaquilla Longitud de la Estaquilla 1 cm. 10 cm. 2 cm. 20 cm. 3 cm. 20-30 cm. 4 cm. 30-40 cm. 5 cm. 40-50 cm. 6 cm. 50-60 cm. . . . . . .

Por lo menos dos nudos con yemas se incluyen en la estaca: El corte basal generalmente por debajo de un nudo y el corte superior entre 1.3 a 2.5 cm. por encima de éste. Las estacas de madera dura se secan fácilmente por lo tanto es importante no airearlas durante su manipulación y almacenamiento, algunas veces se puede sumergir el ápice en cera, almidón o látex. Estos productos ayudan a disminuir el secamiento y facilitan orientar la posición en la cama de germinación. El diámetro de las estacas varía desde 0.6 a 6 cm. dependiendo de la especie como lo muestra el cuadro anterior.

4.2.5.2 Estacas de madera dura (especies de hojas pequeñas): Estas estacas deben establecerse bajo condiciones de humedad relativa alta, para evitar un excesivo secamiento, que se produce por los largos períodos de tiempo que duran desarrollando raíces éstas especies. En particular géneros como Chamaecyparis, Thuyas, pinus, pertenecen a éste grupo; existiendo una gran variación en las especies del género Pinus. Generalmente estas especies enraizan en un invernadero, o módulo de enraizamiento, donde se logra una buena penetración de luz y con una humedad de rocío o nebulización suave. La temperatura debe estar entre 24ºC y 26.5ºC. Si las estacas se sumergen en un fungicida y se les agrega “IBA” hormonas que mejoran el enraizamiento se logran buenos resultados. Los mejores sustratos para el enraizamiento son la arena, carbón mineral molido, cascarilla de arroz. (Ver figura No. 113)

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4.2.5.3 Estacas de madera semidura: Estas son especies de hoja ancha, las estacas se cortan con una longitud entre 7.5 a 15 cm. de largo, dejando las hojas superiores, que se cortan a la mitad para que se reduzca la pérdida de agua por transpiración y ocupen menor espacio en la cama de germinación. (Ver figura No. 114) Las estacas se deben recoger en horas de la mañana cuando el clima es fresco y las hojas y tallos están turgentes. Estas se colocan en un recipiente o caja de icopor con el fin de conservar la humedad alta, o también se colocan en bolsas de polietileno.

Figura No. 113 Tratamiento de estaquillas con hormonas

Figura No. 114 Estacas de madera semidura. Bombacopsis quinata

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4.2.5.4 Estacas de madera blanda: La madera blanda se produce durante el período de crecimiento (floración). Para especies difíciles de enraizar, las estacas de madera blanda son la mejor vía para la reproducción por clones. Las estacas de madera blanda generalmente enraizan más rápida y fácilmente que las demás, pero necesitan condiciones ambientales adecuadas, un equipo de nebulización o rocío y temperaturas entre 23ºC y 27ºC que se puede subir hasta los 32ºC, estas estacas producen raíces entre las 2 y 4 semanas en la mayoría de los casos y es benéfico tratarlas con auxinas. El material vegetal se obtiene de las ramas laterales que se cortan con longitud entre 7.5 a 12.5 cm., que contengan por lo menos dos nudos o más. El corte basal se hace debajo de un nudo. Las hojas de la parte inferior de la estaca se cortan dejando solo las superiores, las hojas grandes se pueden recortar para disminuir la superficie de transpiración. Las estacas de madera blanda se estresan fácilmente por lo tanto es importante recoger el material temprano en la mañana, se deben almacenar en frío y turgentes todo el tiempo. (Ver figura No. 115).

Figura No. 115 Estacas de madera blanda, especie Gmelina arborea

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4.2.6 Las plantas como fuente de material para estacas: En la reproducción por estacas la fuente del material es muy importante, las plantas deben ser: • Debidamente identificadas. • Sin enfermedades ni insectos. • En un estado fisiológico apto para que las estacas enraícen. • Varias pueden ser las fuentes por obtener el material para estacas:

• De árboles que crecen en el campo, en los parques o cerca de las viviendas.

• Árboles que han sido podados en los viveros, teniendo el cuidado de hacerlo en la época adecuada, para que se produzca el enraizamiento.

• De árboles padres seleccionados. 4.2.7 Setos. Para mantener un potencial de enraizamiento alto es mucho más fácil utilizar técnicas como hacer setos vivos, la severidad de la poda para mantener la forma de seto está determinada generalmente por la facilidad con la que se pueden sacar las estacas de la planta madre. Ejemplo: En Colombia se están utilizando los géneros Eucalyptus y Pinus para setos. Eucalyptus grandis, Pinus patula, Pinus maximinoi, Bombacopsis quinata. (Ver figura No. 116)

Figura No. 116 Setos clonales para obtención de estaquillas

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4.2.8 Las condiciones del medio para el enraizamiento. Un medio apropiado para la reproducción de estacas depende de la especie, el tipo de estaca, el sistema de reproducción (Eje.: nebulización o riego), y el costo. El medio de enraizamiento tiene cuatro funciones: • Mantener la estaca en su lugar durante el período de enraizamiento. • Proveer de humedad a la estaca • Permitir la penetración e intercambio de aire hacia la base de la estaca. • Crear un ambiente de penumbra reduciendo la penetración de la luz a la base de la estaca.

El medio de propagación incluye un componente orgánico: turba, musgo es fagníneo, corteza de árboles. El componente mineral es utilizado para aumentar la proporción de poros llenos con aire y el drenaje, entre estos tenemos: vermiculita, pizarra esparcida, arena gruesa, carbón mineral molido, piedra pómez; la mayoría de los sustratos, usan una combinación de elementos orgánicos y minerales. En general un medio de reproducción debe proveer suficiente porosidad para permitir una buena aireación y debe tener una alta capacidad de retener agua estando bien drenado y libre de patógenos.

4.2.9 Condiciones climáticas: Dentro de las condiciones climáticas, algunos factores tienen gran importancia, y son la humedad relativa, el agua del sustrato o medio de germinación y la temperatura. La humedad relativa es importante mantenerla elevada, para minimizar la transpiración y evaporación, que se produce en las estaquillas cortadas, ésta debe mantenerse cerca al punto de saturación, por ejemplo 80%, que se consigue mediante riego por aspersión muy fina o nebulización. La temperatura para la propagación asexual, debe mantenerse en las camas de germinación entre 18ºC y 25ºC. 4.2.10 Tratamiento de las estaquillas con auxinas: La mayor parte de las estaquillas pueden ser tratadas con auxinas reguladoras del crecimiento como:

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Ácido Indolbutyrico (IBA) y Naptalenacético (NAA), la Giberalina y la knetina, son importantes sustancias que estimula la producción de raíces en las estaquillas: dosis de:

100 mgr. / litro de Agua de (IBA) 200 mgr. / litro de Agua de (NAA) (Ver figura No. 117)

Son suficientes para lograr la brotación. La propagación por estacas se realiza teniendo en cuenta las siguientes recomendaciones: • Elegir los árboles seleccionados de acuerdo a las características de altura, diámetro, volumen, vigor, forma, etc.

• Cortar y recoger las estacas, preferiblemente de la parte alta del árbol, donde están más activas las yemas.

• Establecer unas dimensiones proporcionales entre el diámetro y la longitud.

• Transportar en costales, baldes, empaques de papel, neveras de icopor, protegiéndolas de la insolación y en la misma posición que tenían en el árbol, para no invertirlas, si el transporte dura varios días se deben proteger con parafina, látex, almidón de yuca o caolín.

Figura No. 117 Estaquillas de Eucalyptus grandis tratados con hormonas

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• Preparación del sustrato o cama de germinación en una mezcla de 50% de suelo y 50% de arena, carbón molido, vermiculita.

• Las camas de germinación, bandejas o recipientes deben tener huecos, de

una dimensión proporcional al tamaño de las estacas 12 a

13 de su

longitud. Las distancias entre las estacas serán de 25 cm. x 15 cm. • Las hormonas se preparan previamente en una solución, en que se sumerge la parte que va quedar enterrada.

• Plantadas las estacas hay que regar abundante y permanentemente, manteniendo una humedad relativa alta.

• En algunos casos se utilizan módulos de enraizamiento o viveros con polisombra, donde se regula la humedad relativa, el riego y la temperatura.

• Cuidados posteriores, de control de patógenos, insectos y fertilización.

4.3 INJERTOS El injerto consiste en unir artificialmente una parte de una planta deseable, que se quiere propagar, con otra que le servirá de sostén de tal forma que la primera pueda continuar su crecimiento y desarrollo normales sobre la segunda. Las dos unidas, forman una nueva biología, que consta de la parte subterránea aportada por la planta sobre la cual se injerta, denominada patrón o portainjerto y las áreas que provienen de la parte que se injertó sobre la primera, llamada púa o injerto. (Trujillo, E.). (Ver figura No. 118) Figura No. 118 Arbolitos injertos Cordia alliodora

272

4.3.1 Factores que influyen en el injerto. Existen varios factores que influyen en la propagación por injertos: la especie, condiciones inherentes al injerto y al patrón, y las condiciones ambientales. 4.3.2 Especies a injertar. Muchas especies de plantas son más difíciles de injertar que otras, ya que no presentan una buena unión de los cortes, esta capacidad depende de la especie, del tipo de injerto, etc. Entre las especies forestales que se pueden injertar fácilmente tenemos la Ceiba tolúa (Bombacopsis quinata), Nogal cafetero (Cordia alliodora), Ciprés (Cupressus lusitánica), Pinus (Pinus patula), Caucho (Hevea brasilensis). Otras presentan dificultades en su compatibilidad, como por ejemplo: Samán (Pithecellobium samán). Los injertos se realizan entre árboles de la misma especie, pero se puede lograr entre árboles de especies diferentes, correspondientes al mismo género o a la misma familia. 4.3.3 El estado fisiológico: Es importante tener en cuenta para el injerto, la edad, la compatibilidad de éste y el estado fisiológico. Al realizar el injerto, el patrón debe estar en el inicio de rebrotes, cuando se inician las lluvias, mientras que la púa debe encontrarse al final del reposo. 4.3.4 Condiciones ambientales: Las más importantes son la temperatura, la humedad relativa del aire y la composición del sustrato. La temperatura óptima, oscila entre 24ºC y 27ºC que estimula los procesos de formación de nuevos tejidos, que unen el injerto con el patrón. La humedad relativa es necesaria mantenerla alta, especialmente después del injerto, ya que el cambium del patrón y las células parenquimatosas que forman el callo, tienden a secarse por la insuficiente provisión de agua. Está se puede suministrar colocando una bolsa plástica que se amarra en la parte baja del patrón y por encima de la púa, adicionándole agua para aumentar la humedad relativa. Este método se aplica para Cupressus lusitánica y Pinus patula en Colombia, por parte de la Empresa Cartón de Colombia. También se puede lograr una buena humedad relativa en invernaderos, donde se regulan la temperatura y la humedad relativa mediante nebulización del agua. (Ver figura No. 112)

273

4.3.5 Formación de la unión del injerto: • Las zonas de unión del patrón con el injerto, es la zona del “cambium” donde se generan las células nuevas de Xylema hacia adentro y Floema hacia afuera.

• El contacto íntimo del “cambium” produce el callus, compuesto de células meristemáticas, que al final sellan el injerto, producen y reparan el cambium que impulsa la formación de nuevas raíces y nuevas hojas. (Ver figuras No. 119 y 120)

Figura No. 119 Unión de la zona del cambium para los injertos de Pinus patula.

Figura No. 120 Estructura de la corteza, la madera y la zona de cambium en la unión de los injertos

274

4.3.6 Tipos de injertos. se pueden clasificar de acuerdo a la parte del tallo o patrón sobre el cual se injerta el esqueje. Las clases de injertos se pueden clasificar como: 1. Injerto por separación del esqueje lateral, apical de corteza y raíz. 2. Injerto por aproximación donde el sistema radicular del esqueje y el sistema del patrón no se sacan hasta que presente una buena unión del injerto

3. Injerto de reparación. Hay muchas variaciones de injertos apicales. El esqueje se inserta dentro de la parte superior del patrón, haciendo un corte severo.

� Injerto por separación del esqueje lateral, apical de corteza y raíz. Este

tipo de injerto presenta los siguientes subgrupos d e injertos:

� Injerto lengüeta: Particularmente útil para injertar material pequeño de 6 a 13 mm de diámetro. Es muy útil cuando está correctamente hecho porque hay un importante contacto vascular en el cámbium. Se cicatriza rápidamente y forma una unión fuerte. Preferiblemente el esqueje y el patrón deben tener el mismo diámetro. El esqueje debe tener dos o tres yemas, realizando el injerto en la parte liza del entrenado debajo de la yema inferior.

Los cortes hechos en la parte superior del patrón deben ser los mismos que se realizan en la parte inferior. Para ello primero se hace un corte suave y al sesgo de 2-5 a 6 cm de largo. Este deberá realizarse de una pasada del cuchillo para que la superficie quede liza y plana. Para cada uno de estos cortes se hace uno al revés comenzando hacia abajo alrededor de un tercio de distancia de la punta y una mitad de distancia del primer corte. Entonces se insertan el patrón y el esqueje dentro de cada uno con las lengüetas ajustadas. Es muy importante que las zonas de cambium vascular empaten en ambos lados. (Ver figura No. 121).

275

Después de unir el esqueje y el patrón este se protege amarrándolos con tiras de caucho o cinta especial para injertos. Es importante que los tejidos en el área del injerto no se sequen por lo que el injerto se sella con cera para injertos o parafina y se colocan bajo humedad relativa alta hasta que la unión del injerto esté debidamente formado.

� Injerto de copula. El injerto de copula es simple y fácil se hace un corte en ángulo de la misma longitud en el patrón y el esqueje. Se colocan los cortes juntos y se atan. Si el esqueje es más pequeño que el patrón se debe poner a un lado de este para que las capas del cambium vascular se pongan en contacto a lo largo de este lado.

El injerto de cópula es muy usado en plantas que tienen un tallo con mucha médula o que la madera no es lo suficientemente flexible para hacer una unión fuerte cuando se hace una lengüeta con el injerto de lengüeta. (Ver figura No. 122).

Figura No. 121 Injerto de lengüeta

276

� Injerto de hendidura: En el injerto de hendidura se hace un corte en la parte apical del patrón, en la dirección tangencial con relación al centro del árbol, cuidando que queden unos 15 cm. del patrón libre de nudos. esto permite la mejor colocación de los esquejes o púas para su posterior crecimiento.

Los esquejes que generalmente deben tener entre 8 y 10 cm. de largo y 10 a 13 mm. de diámetro, deben constar de 2 a 3 yemas, cortándose el esqueje en sesgo en forma de cuña. Tratando que el cámbium vascular del esqueje coincida con el cámbium vascular del patrón, realizada la operación se debe encerar el injerto completamente para protegerlo. (Ver figura No. 123)

Figura No. 122 Injerto de copula

277

� Injerto de cuña: El diámetro del patrón que va a ser injertado debe tener entre 5 a 10 cm. y las púas o esquejes de 10 a 13 cm. de largo y 10 a 13 mm. de diámetro. Se realiza para tal fin un corte en V de 5 cm. de largo sobre el patrón, y del ancho del esqueje, que le dé una forma de cuña, para que empate en el corte. De esta manera se obtiene que las dos capas de cámbium vascular se unan firmemente, cubriendo el injerto con cera y el esqueje con cinta. (Ver figura No. 124)

Figura No. 123 Injerto Hendidura

278

� El injerto de silla o soporte: El patrón y el esqueje deben ser del mismo tamaño. El esqueje se prepara haciendo cortes hacia arriba en forma de V, con un cuchillo afilado que penetra profundamente en la madera, formando una silla. El patrón se prepara cortando transversalmente, y recibiendo dos cortes en forma de cuña, para que se ajuste a la silla. Esto se hace para exponer el cambium vascular del patrón que empate con el cambium del esqueje. El injerto necesita ser atado y todas las superficies de corte expuestas, sellados o guardados en una caja porta injertos, hasta que la unión del injerto se haya sellado completamente.

Las cuatro tiras delgadas de la corteza del patrón con el cambium vascular expuesto, se ponen en contacto con los cuatro cortes o superficies hechos en el esqueje, injertándolos y amarrándolos con las tiras de la corteza. Se amarra el injerto con una banda de polietileno, que se le agrega agua amarrándola arriba y abajo con el fin de mantener una humedad relativa alta. Cuatro a seis semanas después se quitan las bolsas y las tiras de caucho. (Ver figura No. 125).

Figura No. 124 Injerto de cuña

279

� Injerto Lateral: Existen algunos tipos de injertos laterales. Es el nombre que se da al esqueje cuando es injertado en un lado del patrón, es un método muy usado en la propagación de árboles. Existen muchas clases de injertos laterales. Como el mismo nombre lo sugiere la púa se inserta dentro del lado del patrón que generalmente tiene mayor diámetro que el esqueje. Este método ha probado ser muy útil en propagación a gran escala de árboles en los viveros. Por lo general el corte se saca después del injerto y la púa se convierte en el sistema de corte dominante. • Injerto lateral de tacón. Muy útil para injertar brazos de árboles que son muy largos para realizar injertos de lengüeta y no tan grandes como para utilizar otros métodos tales como injertos de hendidura o de corteza.

Figura No. 125 Injerto de silla o soporte

280

Para este tipo de injerto lateral los mejores patrones son ramas de aproximadamente 2.5 cm de diámetro. Se efectúa un corte oblicuo en la rama patrón con un buril o un cuchillo grande en un ángulo de 20 o 30 grado. El corte debe tener unos 2.5 cm de profundidad y con esta el ángulo del corte debe quedar bien abierto cuando la rama es empujada hacia fuera y correrse cuando no se empuje. El esqueje debe tener 2 o 3 yemas y unos 7.5 cm de largo y también debe ser relativamente delgado. En el final basal del esqueje se hace una cuña de 2.5 cm de largo. Los cortes a ambos lados del esqueje deben ser muy tenues, cada uno hecho con un solo corte con un cuchillo afilado. El esqueje debe insertarse dentro del patrón en el ángulo que se muestra en la figura No. 126 hasta obtener un contacto máximo de las capas del cambium vascular. El injertador inserta el esqueje dentro del corte mientras que la parte superior del patrón es empujada hacia atrás cuidando de obtener el mejor contacto con el cambium. Después se suelta el patrón. La presión del patrón debe agarrar fuertemente el esqueje. El esqueje puede asegurarse aún más poniendo dos pequeñas uñas metálicas (medida 20, 1.5 cm de largo) dentro del enjerto a través del esqueje. También puede ser muy útil envolver el patrón y el esqueje en el punto de unión con cinta. Después que se ha completado el injerto el patrón debe cortarse justo arriba de la unión. Esto debe hacerse con mucho cuidado o el esqueje se puede desalojar. Toda la unión del injerto se debe cubrir con cera para injerto sellando todas las aberturas. La punta del esqueje también debe cubrirse con cera o sellarse con goma blanca.

Figura No. 126 Injerto lateral de tacón

281

� Injerto lateral de lengua. Es útil para plantas pequeñas, especialmente en algunas especies de hojas anchas y angostas. El diámetro del esqueje debe ser más pequeño que el del patrón. Los cortes en la base del esqueje son los mismos efectuados en el injerto de lengüeta. A lo largo del patrón se saca una porción lisa de tallo de la misma longitud de la sección cortada en la superficie del esqueje. Lugo se hace un corte invertido sobre el patrón donde se injertará el esqueje que se deberá ajustar con las dos lengüetas para que el cambium vascular quede en contacto. El injerto se envuelve muy bien utilizando cinta para injertar. La parte terminal del patrón se deja intacta por varias semanas hasta que la unión del injerto ha cicatrizado y luego se cortará para que el injerto asuma su actividad. (Ver figura No. 127)

Figura No. 127 Injerto Lateral de Lengüa

282

� Injerto lateral de cuña. Este injerto es ampliamente utilizado para árboles de viveros especialmente para coníferas, árboles frutales y arbustos. Se hace un corte lateral hacia debajo de 25 a 38 mm de profundidad extrayendo la lengüeta. El esqueje se prepara efectuando un corte a lo largo de un lado que se ajuste perfectamente en el patrón. Después de injertado es amarrado fuertemente con banda de caucho o cinta de injertar.

Una práctica común en este tipo de injertos es proporcionar unas condiciones de humedad relativa alta con musgo o bolsas de plástico amarradas alrededor, hasta que el injerto haya cerrado completamente. (Ver figura No. 128)

� Injerto Lateral -Stub.: Para este tipo de injertos se requieren árboles

patrones con cerca de 2.5 cm. de diámetro, se realiza un corte oblicuo

en el patrón con un cincel o navaja en un ángulo de 20 a 30 grados. El

corte es aproximadamente de 2.5 cm. de profundidad.

Figura No. 128 Injerto Lateral de cuña

283

El esqueje o púa debe tener entre 2 y 3 yemas con una longitud de 7.5 cm.

� Injerto de 4 superficies (Banana graft): Se utiliza en árboles que

tengan más de 2.5 cm. de diámetro, el esqueje y el patrón deben tener

el mismo diámetro. Para la preparación el patrón es sometido a un corte

de la parte terminal, en este lugar se efectúan cuatro cortes opuestos y

espaciados de 4 cm. de largo, con la navaja de injertar, que debe

penetrar desde la corteza hasta el interior de la madera, abriendo las tiras de los cortes. La púa o esqueje a injertar debe tener 15 cm. de

largo con 3 yemas, sobre las que se realizan cuatro cortes, en las cuatro

caras, en la parte basal. (Ver figura No. 129).

4.4 LA MICROPROPAGACIÓN

La micropropagación es el método de clonación más recientemente

desarrollado, así como el que ofrece mejores perspectivas para la silvicultura.

Presenta tres ventajas principales:

• Es una técnica de fácil aplicación, que puede ser mecanizada y automecanizada para producir volúmenes considerables de plantones.

Figura No. 129 Injerto de 4 superficies (Banana graft)

284

• Las células vegetales pueden ser conservadas de modo prácticamente

indefinido en nitrógeno líquido, lo que asegura a futuros silvicultores el

acceso a genes valiosos.

• Los cultivos de células pueden ser genéticamente alterados y clonados para

producir árboles transgénicos.

La mejor fuente de material para la micropropagación es el tejido de semilla, extraído de semillas fertilizadas que contienen embriones de plantas en

desarrollo. Los embriones se trocean, y los fragmentos resultantes son

tratados para que se conviertan en nuevas plantas idénticas. Los clones

microscópicos así obtenidos reciben la denominación de embriones somáticos,

es decir derivados de tejido del cuerpo (soma) y no de células reproductivas.

(Ver figura No. 130)

Muchos de los embriones somáticos desarrollados inicialmente a partir de unas

cuantas células en una caja petri de laboratorio pasan a convertirse en retoños,

que crecen en un vivero, los resultados, sin embargo, varían entre los grupos

de especies de coníferas que son mucho más fácil de micropropagar que otras.

Los dos grupos de coníferas económicamente más importantes del hemisferio

norte son las Píceas (unas treinta especies) y los Pinos (un centenar). Los

esfuerzos para micropropagar píceas han tenido un éxito considerable, mientras

Figura No. 130 Micropropagación de Pinus patula

285

que los intentos para reproducir diversas especies de pinos han resultado

desalentadores. (Ver figura No. 131)

4.4.1 Árboles mejorados: A medida que se perfeccionan las técnicas de clonación en masa de árboles a partir de tejidos, los científicos las van aplicando a otras especies, entre ellas las caducifolias de madera dura. En Estados Unidos los investigadores han empleado ya la micropropagación con el ocozol, el aliso y el arce de azúcar. En Colombia se está trabajando con la Teca (Tectona grandis), Nogal (Cordia alliodora) y Eucalipto (Eucalyptus grandis). Además de ello, el cultivo de tejidos se ha consolidado como un paso hacia la modificación genética de la acacia. Pueden ser introducidas nuevas características genéticas en los cultivos de árboles bien mediante la transferencia de genes de otros organismos a embriones somáticos, bien haciendo pruebas de variabilidad genética en diversos cultivos de tejidos y clonando después selectivamente aquellos que presenten las características deseadas. Los científicos del U.S. Forest Service

Figura No. 131 Plantaciones forestales de Eucalyptus grandis producidas por micropropagación. Cartón de Colombia

286

de Wisconsin utilizan ambas técnicas para desarrollar resistencia a los herbicidas en álamos híbridos, mientras que en Minesota otros investigadores insertan genes para la resistencia a los insectos en embriones somáticos de acacia. Una manera rápida de averiguar si una determinada planta posee alguno de los genes deseables para el cruce, consiste en utilizar sondas génicas. Esta técnica puede ser empleada para seguir los cambios genéticos de las semillas híbridas producidas en semillero, así como el grado de endogamia. Esta investigación a largo plazo de la expresión génica y la transformación genética está convirtiendo la ingeniería genética y la clonación en prácticas habituales en algunos sectores de la industria forestal.

287

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