Laminas

Junqueira y Carneiro: Histología básica. © Masson, Barcelona, 2005

Lámina 1-1Ácinos del páncreas teñidos con hematoxilina y eosina en los que se observan los núcleos (ADN) y el retículo endoplasmático rugoso (ARN) teñidos en azul por la hematoxilina. Este colorante es de tipo básico. El retículo se encuentra en la base de las células y su abundancia es típica de las células que sintetizan intensamente proteínas. En el vértice de las células, los gránulos de secreción se tiñen con el colorante ácido eosina. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 1-2Somas de células nerviosas cuyos nucléolos y corpúsculos de Nissl (ARN) se han teñido con azul de toluidina, colorante básico. En estas células, este colorante se une al ARN de los nucléolos y corpúsculos de Nissl. Es un ejemplo de célula con una intensa síntesis proteica. Aumento mediano.

Células nerviosas

Ácino

Células satélite (glía)

Base de las células ricas en ARN

Gránulos de secreción en el ápice de las células

Corpúsculo de Nissl. ARN


Células de Paneth

Lámina 1-3Cultivo de una célula neoplásica teñida con naranja de acridina observado al microscopio de fluorescencia. El ARN del citoplasma aparece fluorescente en rojo y el ADN en amarillo. En el centro hay una célula gigante. Las células de este cultivo experimentan una intensa multiplicación y precisan sintetizar grandescantidades de proteínas para restablecer el tamaño celular después de cada mitosis. Ello explica la abundancia de ARN en el citoplasma. Aumento mediano.

Fluorescencia roja. ARN del citoplasma

Fluorescencia amarilla. ADN nuclear

Lámina 1-4Corte transversal de intestino previamente incubado con el anticuerpo antilisozima. Se trata de un ejemplo del método inmunohistoquímico. Las células que aparecen en marrón son macrófagos y células de Paneth del intestino delgado que contienen lisozima en su citoplasma. Los núcleos se tiñen con hematoxilina. Aumento mediano.

Lámina propia

Epitelio intestinal

Macrófagos


Lámina 1-5Corte de intestino grueso teñido con azul alcián en el que se muestran, en azul, las células mucosas (caliciformes), que producen moco. Los núcleos están teñidos en rojo. Ejemplo de método histoquímico para la localización de glucoproteínas ácidas. Aumento mediano.

Lámina 1-6Intestino grueso teñido con el método de PAS (ácido peryódico de Schiff), con el que se localizan glucoproteínas neutras, teñidas en rojo, en las células productoras de moco (caliciformes). Aumento mediano.

Células caliciformes productoras de moco

Corte transversal de una glándula

del intestino

Lámina propia


Lámina 1-8Tumor que se ha originado a partir de las células epiteliales. En este corte se ha aplicado la técnica de hibridación in situ para poner de manifiesto el ADN del virus de tipo II del papiloma humano. El precipitado oscuro sobre algunos núcleos celulares indica la presencia del genoma vírico. (Cortesía de J. E. Levi.) Aumento mediano.

Núcleos con ADN vírico

Lámina 1-7Corte de riñón en el que se ha aplicado el método para localizar la enzima fosfatasa ácida, que aparece como gránulos cerca de los lisosomas de los túbulos y no en los glomérulos renales. Es un ejemplo del método histoquímico para localizar la actividad enzimática en los tejidos. Pequeño aumento.

Glomérulo

Túbulos renales teñidos


Lámina 2-1Corte de estómago en el que se muestran las abundantes mitocondrias esféricas rojas dentro de las células parietales que secretan ácido clorhídrico. Obsérvense, en el citoplasma de estas células, los canalículos intracitoplasmáticos que se estudian en el capítulo 15. Gran aumento.

Lámina 2-2Corte transversal de los túbulos renales que muestra una gran abundancia de mitocondrias en forma de bastoncillo en su citoplasma. La abundancia de mitocondrias aparece en todas las células que transportan iones activamente. Gran aumento.

Mitocondrias esféricas

Canalículo intracelular

Túbulo renal

Células indiferenciadas

Mitocondrias en forma de bastoncillo

Célula parietal Capilar

sanguíneo


Lámina 2-3Se observa un agregado de células productoras de anticuerpos (proteína) denominadas plasmocitos. Su citoplasma se tiñe intensamente con un colorante básico debido al elevado contenido en ARN del retículo endoplasmático rugoso, quedando sin teñir sólo un área redondeada al lado del núcleo ocupada por el complejo de Golgi y por centríolos. Si esta sección se hubiese tratado previamente con ARNasa, enzima que digiere el ARN, desaparecería su basofilia citoplasmática. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Linfocitos

Aparato de Golgi de plasmocitos productores de anticuerpos

Lámina 2-4Corte de túbulos renales que muestra la presencia de lisosomas secundarios en el interior de sus células, en las cuales tiene lugar la digestión de proteínas que no han sido retenidas por los glomérulos durante la filtración de la orina. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Capilares

Lisosomas secundarios

Túbulo renal


Núcleo

Citoplasma (aparato de Golgi en color negro)

Aparato de Golgi

Tejido conjuntivo

Lámina 2-5Corte de un ganglio nervioso impregnado con nitrato de plata para poner de manifiesto el aparato de Golgi. Las neuronas destacan por su tamaño y por su área central clara, que corresponde al núcleo celular no teñido con la técnica empleada. En estas células, el aparato de Golgi se dispone en pequeños agregados por todo el citoplasma y aparece en negro debido a la disposición de la plata. Aumento mediano.

Lámina 2-6Corte de epidídimo que muestra células epiteliales polarizadas con el aparato de Golgi en la parte apical. La impregnación argéntica pone de manifiesto el aparato de Golgi en color negro, pero no evidencia los núcleos celulares. La parte central de esta sección, más oscura, que aparece como un haz vertical, está formada por tejido conjuntivo. Gran aumento.


Lámina 3-1Cultivo de células normales que muestra núcleos de tamaño y de aspecto homogéneo, lo que contrasta con la figura siguiente de tejido conjuntivo. Tinción de hematoxina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 3-2Cultivo de células neoplásicas. Compárese con la lámina 3-1. Obsérvese la variabilidad del tamaño de los núcleos de las células tumorales y el aspecto irregular de su cromatina. La variabilidad en la morfología nuclear es un criterio importante en la evaluación del grado de malignidad de los tumores. Al tratarse de un tumor de crecimiento rápido se observan numerosas mitosis. Tinción de picrosirio y hematoxilina. Aumento mediano.

Núcleo grande

Núcleos pequeños

Mitosis

Núcleos grandes


Mitosis patológica

Mitosis al final de la telofase

Lámina 3-4Tumor de la epidermis. Obsérvense las mitosis, la variación en el tamaño de los núcleos y la basofilia citoplasmática en la mayor parte de las células tumorales que están proliferando. Aparece una mitosis anómala en una célula muy grande. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Mitosis

Lámina 3-3Cultivo de tejido en el que se muestran mitosis. Puesto que estas células crecen formando una sola capa de células aplanadas adheridas al sustrato, sus cromosomas aparecen más nítidamente que en los cortes histológicos. Tinción de hematoxilina y eosina. Gran aumento.


Lámina 4-1A, B y C) Diversos tipos de epitelio simple. En A es epitelio pavimentoso, en B es cúbico y en C es epitelio prismático. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 4-2A) Células de epitelio prismático ciliado, que alternan con células productoras de moco. B) Epitelio seudoestratificado ciliado del árbol respiratorio (tráquea). Hay núcleos a diversas alturas que adoptan un aspecto que imita a un epitelio de varias capas (seudoestratificado). Los epitelios ciliados desempeñan un papel relevante en la movilización de partículas que se adhieren al moco como sucede en el sistema respiratorio. Por debajo del epitelio hay fibras colágenas y elásticas que se tiñen, respectivamente, en rosa y oscuro. Corte semifino. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

A

B

C

A

B

Cilios

Epitelio simple pavimentoso

Célula mucosa

Epitelio simple cúbico

Epitelio simple prismático

Células mucosas

Tejido conjuntivo


Lámina 4-3A) Epitelio estratificado pavimentoso no queratinizado. Este epitelio reviste y protege superficies unidas del cuerpo, como los labios, la vagina y el ano. B) epitelio estratificado pavimentoso queratinizado que reviste la piel; es importante en la defensa contra la desecación y la invasión microbiana. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 4-4Se observa el epitelio estratificado de transición presente en el sistema urinario. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

A

B

Epitelio estratificadopavimentoso no queratinizado (mucosa) de la boca. Superficie húmeda

Epitelio estratificado pavimentoso con capa queratinizada de piel. Superficie seca

Epitelio de transición de la vejiga

Tejido conjuntivo

Tejido conjuntivo


Lámina 4-5A) Una glándula con células mucosas caracterizadas por un citoplasma abundante se tiñe débilmente; su núcleo se encuentra desplazado hacia la parte basal de la célula. B) En comparación con las células serosas del páncreas, se observa que la célula serosa presenta una acumulación de gránulos de secreción claramente visibles. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 4-6Corte de glándula endocrina vesicular (tiroides) formada por un epitelio secretor generalmente cúbico, que rodea el coloide, que es un depósito de hormona. Corte semifino. Tinción de azul de toluidina. Pequeño aumento.

A

B

Tejido conjuntivo

Células mucosas con núcleos basales aplanados. Ausencia de ARN en la parte basal de la célula

Conducto glandular

Coloide

Vesículas tiroideas

Conducto glandular

Células serosas con gránulos claramente visibles y núcleos redondeados


Lámina 4-7Corte de una glándula endocrina cordonal (hipófisis), que está formada por cordones celulares entre los cuales discurren vasos sanguíneos. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Lámina 4-8Corte de un glomérulo renal en que se observa un grupo de capilares sanguíneos y túbulos renales con sus láminas basales teñidas. Éstas confieren apoyo a las células renales y refuerzan la estructura de los vasos glomerulares, asumiendo también la función de filtrar la sangre, con lo que producen el líquido que generará la orina. Tinción de picrosirio y hematoxilina. Gran aumento.

Vasos sanguíneos

Membranas basales

Cordones celulares

Túbulo renal


Lámina 5-1Preparación total de mesenterio de ratón teñida con picrosirio y hematoxilina. Fotografía obtenida con luz polarizada. La figura muestra la red de fibras colágenas de diversos diámetros sobre un fondo oscuro. Aumento mediano.

Lámina 5-2Corte de piel que muestra las delgadas fibras elásticas de la dermis teñidas en negro y dispuestas entre las gruesas fibras colágenas, en rosa. Tinción específica para las fibras elásticas y de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Fibras elásticas

Fibra de colágeno

Vaso sanguíneo de pequeño calibre

Fibras de colágeno


Lámina 5-4Corte de la uretra peneana que muestra su epitelio estratificado en cuya base se observa una nítida lámina basal, que lo separa del tejido conjuntivo subyacente. Tinción de picrosirio y hematoxilina. Aumento mediano.

Lámina 5-3Corte de hígado impregnado con nitrato de plata para poner de manifiesto las delgadas fibras reticulares que se disponen entre las columnas de células hepáticas. Aumento mediano.

Núcleos de hepatocitos

Fibras reticulares entre los cordones de hepatocitos

Epitelio

Lámina basal que separa el epitelio del

tejido conjuntivo

Tejido conjuntivo con

capilares


Lámina 5-5A) Fibroblastos con sus núcleos alargados, de donde parten delgadas prolongaciones citoplasmáticas. Los fibroblastos producen las fibras y la sustancia amorfa de la matriz extracelular. B) Dos mastocitos que contienen gránulos intensamente basófilos debido a la presencia de glucosaminoglucanos ricos en radicales sulfato y carboxilo en sus gránulos. Estas células intervienen en los procesos alérgicos del organismo. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 5-6Corte de un ganglio linfático en que se muestran dos macrófagos con sus núcleos desplazados hacia la periferia, debido a la cantidad de material fagocitado y en vías de digestión intracelular. Corte semifino. Tinción de azul de toluidina. Gran aumento.

A

B

Fibroblastos que producen fibras y matriz

Macrófago, fagocitosis

Linfocitos

Vaso capilar

Núcleo del mastocito

Plasmocito

Gránulos de los mastocitos que contienen sustancias con actividad farmacológica


Lámina 5-7Tejido conjuntivo laxo (capa papilar de la dermis, v. cap. 18). Este tejido posee fibras más finas y contiene más células por área que el tejido conjuntivo denso. Es más elástico y maleable que el tejido conjuntivo denso. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 5-8Tejido conjuntivo denso no modelado (capa reticular de la dermis de la piel). Se caracteriza por presentar gruesas fibras de colágeno que se disponen en varias direcciones y un menor número de células por área que el tejido conjuntivo laxo. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Vasos capilares

Muchos núcleos de fibroblastos

Fibras colágenas finas dispuestas irregularmente

Fibras colágenas gruesas dispuestas irregularmente

Pocos núcleos de fibroblastos


Lámina 5-9Corte longitudinal de un tendón en el que se muestran hileras de núcleos y prolongaciones de los fibroblastos intercaladas entre fibras de colágeno gruesas. Esta disposición explica la gran resistencia de los tendones a las tracciones e ilustra un ejemplo de tejido conjuntivo denso modelado. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 6-1Se observa el tejido adiposo unilocular (o monovacuolar) que aparece como una red debido a la disolución de una única inclusión de grasa presente en cada célula. Esta inclusión desplaza el núcleo de las células hacia la periferia. Entre las células hay fibras reticulares y capilares sanguíneos. Este tejido constituye la mayor reserva de material energético del organismo. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Espacios dejados por las inclusiones lipídicas disueltas. Reserva energética

Núcleos de los adipocitos

Fibras de colágeno dispuestas paralelamente. Resistencia a la tracción

Núcleos de fibroblastos


Lámina 6-2Tejido adiposo plurilocular (o plurivacuolar) que se caracteriza por presentar numerosas inclusiones de grasa de tamaño variable en cada célula y un núcleo central en vez de periférico. Este tejido posee la capacidad, cuando es preciso, de movilizar esta grasa produciendo calor local que suministra a la región y a la sangre que lo atraviesa. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 7-1Tejido cartilaginoso hialino que muestra por debajo y por encima el pericondrio de cuyos fibroblastos se originan las células cartilaginosas. Éstas se reproducen en la parte más profunda del tejido, formando grupos de células. Algunas células presentan dos núcleos. Debido a su capacidad de absorber agua, cuando está bajo presión el cartílago cede transitoriamente agua, funcionado así como un ente biomecánico. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Pericondrio Fibroblastos

Condrocito en diferenciación

Núcleos en el centro de la célula

Condrocitos diferenciados uni o binucleados

Múltiples inclusiones lipídicas por célula. Producción de calor


Lámina 7-2El colágeno de la matriz celular de los cartílagos no es visible mediante las técnicas habituales de tinción. No obstante, cuando se tiñe con el método de picrosirio y hematoxilina y se observa al microscopio de luz polarizada, el colágeno aparece como una estructura de color variable que brilla sobre un fondo oscuro, mostrando que es un componente importante de este tejido. Aumento mediano.

Lámina 7-3Tejido cartilaginoso elástico. En este tejido, además de colágeno, se observan fibras elásticas en abundancia. Este tipo de cartílago está presente en el pabellón auricular y en la epiglotis. Tinción específica para fibras elásticas. Aumento mediano.

Espacios ocupados por condrocitos

Espacios ocupados por los condrocitos

no teñidos

Fibras elásticas

Material colágeno birrefringente


Lámina 7-4Este corte muestra la inserción de un tendón en el cartílago de un hueso. Obsérvese el tejido con características intermedias entre el cartílago hialino y el tendón. Obsérvese que hay condrocitos al lado de fibras colágenas sintetizadas por ellos. Este colágeno es de tipo I. La presencia de condrocitos al lado de los haces de colágeno indica que se trata de un cartílago fibroso o fibrocartílago. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 8-1Corte de la bóveda craneal de un animal recién nacido en la que se observa una osificación intramembranosa. Obsérvense los osteoblastos que rodean el tejido óseo que producen. Estas células presentan un citoplasma muy basófilo debido a su intensa síntesis de proteínas (colágeno y proteoglucanos). Los osteoblastos se sitúan gradualmente dentro la matriz ósea, pierden su basofilia y se transforman en osteocitos. Corte semifino. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Tejido óseo

Vasos

Fibras de colágeno

Los osteoblastos producen fibras y

matriz ósea

Condrocitos

Osteocitos


Lámina 8-2Corte de rodilla de un animal joven en el que se muestran sus principales componentes. La presencia de cartílago indica que se trata de un animal joven en fase de crecimiento. Tinción de picrosirio y hematoxilina. Pequeño aumento.

Lámina 8-3Corte de rodilla en el que se observa el área donde se halla el cartílago de conjunción. Obsérvese el aspecto seriado del cartílago cuyas células aumentan progresivamente de tamaño, siendo destruidas, finalmente, y quedando únicamente la matriz extracelular cartilaginosa (en azul) sobre la que se desarrolla el proceso de osificación endocondral. Tinción de picrosirio y hematoxilina. Aumento mediano.

Cápsula de la articulación

Sinovial. Lubrificación

Cartílago articular

Epífisis

Diáfisis

Hueso

Médula ósea. Producción de células

sanguíneas

Espículas óseas

Hueso

Cartílago de conjunción (crecimiento)

Médula ósea


Lámina 8-4Corte que permite observar una espícula donde está teniendo lugar la osificación endocondral. En azul aparece la matriz cartilaginosa sin células, rodeada por tejido óseo recién formado, rojo, con osteocitos en su interior. Alrededor está la médula ósea. Tinción de picrosirio y hematoxilina. Gran aumento.

Lámina 8-5Corte de la zona de transición entre el hueso (en rojo) y la médula ósea. Se observan seis osteoclastos que se han desprendido del hueso debido a la retracción del tejido durante el procesado de la técnica. Son células gigantes plurinucleadas cuya función es destruir el tejido óseo, contribuyendo así a su constante remodelación. Obsérvese cómo el hueso aparece deprimido en las regiones donde se hallaban los osteoclastos antes de la retracción. Estas células forman parte del sistema mononuclear fagocítico. Tinción de picrosirio y hematoxilina. Aumento mediano.

Hueso

Osteoclastos. Lisis de

tejido óseo

La médula ósea produce células

sanguíneas

Matriz cartilaginosa sin células

Tejido óseo

Osteocitos


Lámina 8-6Corte de hueso compacto descalcificado, teñido y observado con microscopio de luz polarizada. Obsérvese la alternancia de haces oscuros y haces brillantes alrededor de los sistemas de Havers. Así se demuestra que existe una alternancia en la orientación de las fibras de colágeno en sus laminillas, ya que el colágeno únicamente es birrefringente en un corte longitudinal. Tinción de picrosirio y polarización. Pequeño aumento.

Lámina 9-1Corte de la sustancia gris de la médula espinal que muestra tres somas celulares de neurona de la médula. Son células grandes que presentan corpúsculos de Nissl (polirribosomas y retículo endoplasmático rugoso) en su citoplasma, lo que indica una síntesis proteica intensa. Obsérvense los innumerables núcleos pequeños de las células gliales y las estructuras fibrosas cortas que son dendritas y axones cortados en distintas direcciones. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Espacios vasculares

Neuronas

Sustancia gris


Lámina 9-2Corte transversal de un nervio a pequeño aumento, en la que se observan varios haces de axones rodeados por el perineuro y el endoneuro. Estas estructuras de tejido conjuntivo forman parte del armazón estructural del nervio. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Lámina 9-3A mayor aumento se observa el epineuro, que presenta fibras de colágeno gruesas, fibroblastos y capilares sanguíneos. En la parte inferior se encuentra el perineuro, que está formado por varias capas de células aplanadas, formando una barrera que impide la penetración de sustancias extrañas y de microbios en los nervios. La mayoría de los axones están mielinizados y el espacio entre ellos está ocupado por el endoneuro, que es una estructura formada por delgadas fibras de colágeno. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Perineuro.Barrera protectora

Perineuro.Barrera

protectora

Haces de axones

Epineuro

Endoneuro.Tejido conjuntivo periaxonal.

Función estructural


Lámina 9-4Se observa una zona de transición entre la sustancia gris del sistema nervioso (parte inferior), formada por neuronas y células gliales (cuyos núcleos son claramente visibles) y la sustancia blanca (parte superior), sin neuronas, pocos núcleos de células gliales y axones mielinizados, cortados en diversas direcciones. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Lámina 9-5Corte del córtex del cerebelo que permite observar la capa molecular, la capa de células de Purkinje y la capa granulosa. Las dendritas de las células de Purkinje adquieren la forma de la ramificación de un árbol, dispuestas en un solo plano, como un abanico, y establecen un gran número de sinapsis que puede llegar a 200.000. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Capa molecular

Célula de Purkinje

Células granulosas

Sustancia blanca

Límite de las dos sustancias

Sustancia gris


Lámina 9-6Se observa el aspecto del córtex cerebral tras la impregnación con sales de plata (impregnación argéntica). Por causas que no se conocen, estas técnicas únicamente impregnan algunas células. En esta región aparecen nítidamente las células grandes, llamadas piramidales, que emiten, cada una de ellas, varias dendritas y un axón. Pequeño aumento.

Lámina 9-7Corte de un ganglio espinal, impregnado con plata, que muestra somas celulares redondos, seudounipolares entre los que aparecen sus prolongaciones. En esta preparación no son visibles las células gliales llamadas células satélite, dispuestas entre los cuerpos celulares, pero sí que se aprecian claramente sus núcleos en la lámina 1-2 del mismo tipo de ganglio, que se tiñe de distinto color. Aumento mediano.

Células piramidales

Prolongaciones celulares

Cuerpos celulares

Dendritas

Axones


Lámina 9-8Corte de intestino en el que se observa, entre las capas musculares externa e interna, un grupo de células nerviosas que forman un ganglio mesentérico, cuyas neuronas se reconocen por su tamaño. Los núcleos pequeños corresponden a células satélite (gliales). Las fibras rojas que rodean el ganglio son de colágeno. Tinción de picrosirio y hematoxilina. Aumento mediano.

Lámina 9-9Preparación procesada con un método inmunohistoquímico para caracterizar un ganglio mioentérico por su reacción con el anticuerpo contra la enolasa, que es una enzima específica del tejido nervioso. Aumento mediano.

Músculo liso

Núcleos de células satélite (glía)

Fibras de colágeno

Neuronas

Neuronas


Lámina 10-1Corte transversal de músculo estriado esquelético teñido con el método específico para el colágeno (rojo) en el que se observa nítidamente el perimisio que rodea los haces de fibras musculares cortados transversalmente. El endomisio separa individualmente cada fibra muscular. Tinción de picrosirio y hematoxilina. Pequeño aumento.

Lámina 10-2Corte de lengua en el que se observan fibras musculares estriadas seccionadas longitudinal y transversalmente. Obsérvese la estriación en el corte longitudinal y la disposición periférica de los núcleos en el corte transversal. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Arteriola

Perimisio

Fibras musculares estriadas

Célula adiposa

Fibras musculares en un corte transversal.

Núcleos en la periferia

Fibras musculares en un corte longitudinal.

Estriaciones transversales

Endomisio


Lámina 10-3Corte de lengua teñido con el método de picrosirio y hematoxilina y observado con microscopio de luz polarizada. Obsérvense las delgadas fibras de colágeno en el endomisio, en el corte transversal y la nítida estriación en el corte longitudinal. Las estrías claras se deben a la intensa birrefringencia de las moléculas de miosina orientadas. Entre las fibras musculares hay fibras de colágeno intensamente birrefringentes. Las estrías oscuras corresponden a las bandas I y están formadas por actina, que tiene una débil birrefringencia. Aumento mediano.

Lámina 10-4Se observa músculo estriado cardíaco cortado longitudinalmente. Obsérvese la estriación transversal de las fibras musculares y los discos intercalares, que es la zona donde las células cardíacas vecinas se unen entre sí. Aquí también se produce la transferencia del estímulo contráctil entre células vecinas. Tinción de hematoxilina férrica. Aumento mediano.

Endomisio

Células musculares cardíacas

Fibras musculares estriadas. Corte longitudinal

Discos intercalares. Adhesión celular

reforzada y transferencia del impulso nervioso

Fibras de colágeno


Lámina 10-5Corte de la pared muscular del intestino en la que se muestra músculo liso en un corte longitudinal y transversal. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 11-1Corte de una arteria elástica (de gran calibre) en la que se observan sus capas constituyentes. Estas arterias, por su gran cantidad de laminillas de elastina, presentan propiedades físicas que permiten amortiguar las continuas diferencias de presión que se producen en las arterias próximas al corazón. Tinción específica para la elastina. Pequeño aumento.

Capa adventicia. Fibras de colágeno. Resistencia

Capa o túnica media. Prevalencia de las capas de elastina (elasticidad)

Fibras musculares lisas. Corte longitudinal

Fibras musculares lisas. Corte transversal


Lámina 11-2Arteria muscular en cuya composición predominan las fibras musculares lisas. Son arterias de calibre mediano, se sitúan más lejos del corazón y su musculatura contribuye a regular la circulación y a mantener la presión arterial. Tinción específica para la elastina. Pequeño aumento.

Lámina 11-3A) Arteriola. B) Una arteriola a la izquierda y una vénula a la derecha. Obsérvese la capa muscular, claramente evidente, de las arteriolas, que es la responsable de que sus paredes sean más gruesas que en las vénulas. A es una preparación de G. Gomori teñida según un método específico para la elastina. Aumentos medianos.

Limitante elásticainterna

Capa o túnica media. Prevalencia de músculo liso y de colágeno (contractilidad)

Arteriola. Pared gruesa

Capa adventicia. Soporte de colágeno

Vénula. Pared delgada

A

B


Lámina 11-4Corte de pulmón en el que se muestra una anastomosis arteriovenosa, caracterizada por un engrosamiento de la capa muscular de la arteriola antes de su desembocadura en la vena. Estas estructuras desempeñan un papel relevante en la regulación de la circulación local en varios órganos. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 11-5Corte de la lengua en el que se observan delgados capilares sanguíneos en un corte transversal y oblicuo, rodeados por fibras colágenas rosadas. A ambos lados está el epitelio pluriestratificado de la lengua. Aumento mediano.

Arteria

Epitelio

Alvéolos pulmonares

Capilares

Vénula

Fibras de colágeno

Transición arteriola-vénula


Lámina 12-1A1, A2 y A3) Fotografías de un frotis de sangre humana que muestran cuatro granulocitos neutrófilos. La célula en A1 es un neutrófilo inmaduro cuyo núcleo en herradura (bastoncillo) todavía no se ha segmentado, como sucede en las células A2 y A3. La célula en A3 es de una mujer y muestra claramente la cromatina sexual sobre la forma de protuberancia del núcleo. Estas figuras y las siguientes se han teñido con el colorante de Leishman y se han fotografiado a gran aumento. B1) Granulocito eosinófilo con su núcleo bilobulado característico y gránulos macroscópicos teñidos en color rosa por la eosina. C1) Granulocito basófilo con gránulos intensamente teñidos en rojo por el colorante básico. C2) Monocito.

A1

A2

A3

B1

C1

C2

A1

A2

B1

Lámina 12-2A1 y B1) Linfocitos de varios tamaños. Los linfocitos son más pequeños que los monocitos, tienen un núcleo redondo y menos citoplasma. No presentan un núcleo en herradura y con cromatina laxa, que es característico de los monocitos.A2) Microfotografía de leucocitos obtenida mediante un proceso que separa los hematíes de los leucocitos por centrifugación. Obsérvense diversos leucocitos en el mismo campo con hematíes y gran cantidad de plaquetas. Estas preparaciones son muy didácticas para la identificación de las células sanguíneas.


Lámina 13-1Corte de médula ósea. Obsérvese la pared delgada del capilar. Corte de 1 μm. Tinción de Rosenfeld. Gran aumento.

Lámina 13-2Corte de médula ósea. Corte de 1 μm. Tinción de Rosenfeld. Gran aumento.

Megacariocito joven

Capilar de la médula. Obsérvese la pared fina que atraviesan los glóbulos blancos y rojos producidos en la médula ósea

Megacariocito adulto

Células de la médula

Células que generan los granulocitos

Grupo de células que generan los hematíes


Lámina 13-3Corte de médula que permite observar megacariocitos, células adiposas y granulocitos en diversas fases de desarrollo. Corte de 1 μm. Tinción de Rosenfeld.

Lámina 14-1Corte de timo que permite observar sus regiones cortical y medular. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Cortical

Medular

Mitosis

Células productoras de hematíes

Megacariocito productor de las plaquetas


Lámina 14-2Timo observado a aumento mediano con corpúsculo de Hassal (células epiteliales pavimentosas dispuestas concéntricamente). Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Lámina 14-3Corte de ganglio linfático que muestra células linfoides en varias fases de desarrollo. Las células grandes de núcleo grande con nucléolo se hallan en fase reproductiva, generando linfocitos maduros de núcleo oscuro pequeño y con poco citoplasma. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Corpúsculo de Hassal

Medular

Cortical


Lámina 14-4Se observa el seno marginal de un ganglio linfático. Las trabéculas que atraviesan el seno unen la región cortical a la cápsula del ganglio linfático. En el seno se observan linfocitos. En la pared interna del seno hay macrófagos. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Lámina 14-5Nódulo linfoide cuya región central más clara (centro germinativo) está básicamente formada por células linfoides en proliferación (inmunoblastos) (puntas de flecha) que generarán linfocitos que migran hacia la periferia del nódulo (región más oscura). Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Adipocito

Cápsula conjuntiva

Trabécula

Linfocitos

Seno marginal

Linfocitos


Lámina 14-6Sección de intestino delgado que muestra a la derecha el epitelio que recubre un nódulo linfático de una placa de Peyer. En esta región las células son las células M (presentadoras de antígeno), que cubren grupos de linfocitos. Compárese con las células absorbentes de las vellosidades a la izquierda, que son prismáticas y alternan con células caliciformes. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Epitelio de vellosidad intestinal. Absorción

Nódulo linfático

Células M que recubren el ganglio linfático

Lámina 14-7Corte de un ganglio linfático en cuya región medular se observa una vénula con endotelio cuboide. Obsérvense los linfocitos de núcleo oscuro, que atraviesan la pared de la vénula y cuyo endotelio tiene un núcleo claro. Se admite que el endotelio de estas vénulas contiene receptores que interactúan con glucoproteínas de la membrana plasmática de los linfocitos, regulando la entrada de determinados linfocitos hacia el interior de los ganglios linfáticos. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Vénula con diapédesis de linfocitos

Linfocitos


Lámina 15-1 Corte de esófago que muestra sus tejidos constituyentes. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Lámina 15-2Corte de estómago. Tinción de azul de toluidina. Pequeño aumento.

Epitelio superficial. Protección

Epitelio estratificado pavimentoso no queratinizado

Fosillas

Tejido conjuntivo

Glándulas fúndicas. Secreción de ácido

clorhídrico y de pepsina

Glándulas esofágicas. Lubrificación

Muscular de la mucosa. Movimiento

Muscular. Movimiento

Músculo estriado esquelético. Movimiento


Lámina 15-3Se muestran las células parietales y cimógenas de las glándulas fúndicas del estómago. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 15-4Vellosidades intestinales con su eje músculo conjuntivo vascular recubierto por células caliciformes y células absorbentes con su chapa característica. Ésta está formada por microvilli en los que se localizan las disacaridasas y las dipeptidasas, que son responsables de la digestión terminal de las proteínas y los glúcidos. Método de PAS (ácido peryódico de Schiff). Aumento mediano.

Células parietales (secreción de ácido clorhídrico)

Células cimógenas (secreción de pepsina)

Célula enteroendocrina

Célula caliciforme

Fibras musculares lisas. Movimientos de las vellosidades

Chapa


Lámina 15-5Corte de intestino grueso que muestra sus componentes. Hay abundantes células caliciformes, productoras de moco que lubrifica esta parte del tubo digestivo, intercaladas con células absorbentes. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Lámina 15-6Corte transversal de las glándulas del intestino grueso que muestra sus células caliciformes y absorbentes, las cuales absorben gran parte del agua que viene del intestino delgado con la porción no absorbida de los alimentos ingeridos. Método de PAS (ácido peryódico de Schiff). Aumento mediano.

Glándula. Secreción de moco. Lubrificación

Muscular dela mucosa. Movimiento

Tejido conjuntivo

Muscular. Movimiento

Células caliciformes

Células absorbentes


Lámina 16-2Corte de glándula salival submandibular con su estructura tubuloacinosa típica, formada por células mucosas en la porción tubular y serosas en los ácinos. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Células serosas

Células mucosas

Conductos

Conducto intercalar

Células serosas. Producción de amilasa

Conducto estriado. Transporte de iones

Lámina 16-1Corte de una glándula salival parótida que muestra sus ácinos formados por células serosas con típicos gránulos de secreción y un conducto estriado. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.


Lámina 16-3Corte de hígado que muestra los constituyentes de un típico espacio porta. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 16-4Se muestra una vena centrolobulillar del hígado caracterizada por su pared sumamente delgada, casi inexistente. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Arteriola. Pared gruesa

Tejido conjuntivo.Fibras de colágeno. Soporte

Capilar sinusoide que se abre en la vena

centrolobulillar

Conducto biliar.Transporte de bilis

Vena centrolobulillar. Sangre venosa

Vénula. Pared delgada

Vaso linfático

Vaso linfático. Pared endotelial


Lámina 16-5Corte de vesícula biliar con su epitelio cilíndrico y vellosidades epiteliales que descansan sobre tejido conjuntivo. Este epitelio posee un sistema transportador de cloruro sódico en dirección a la luz de la vesícula-tejido conjuntivo, que origina la diferencia osmótica responsable de la concentración de bilis. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Tejido conjuntivo. Soporte

Epitelio prismático. Reabsorción de iones y de agua: concentración de la bilis

Epitelio seudoestratificado prismático ciliado

Tejido conjuntivo. Glándulas mucosas

Cartílago

Lámina 17-1Corte de tráquea que muestra sus tejidos constituyentes. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.


Lámina 17-3Bronquiolo formado casi exclusivamente por una capa de epitelio cúbico. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 17-2Bronquiolo con su capa de músculo liso. Cuando el músculo se contrae se dificulta la respiración, por ejemplo, en los sujetos asmáticos. A su alrededor existe un infiltrado de linfocitos, que es importante para la defensa inmunológica del árbol respiratorio. Hay alvéolos en la parte más periférica. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Agregación de linfocitos. Inmunoprotección

Bronquiolo pequeño

Alvéolo pulmonar. Hematosis

Músculo liso. Control del diámetro del bronquiolo. Asma

Epitelio cúbico

Luz del bronquiolo. Circulación de aire


Lámina 17-4Corte de pulmón en la que se observa la transición de la porción de conducción (parte inferior) a la respiratoria (parte superior). Obsérvese un nódulo linfoide en la parte inferior a la izquierda del bronquiolo. Son estructuras frecuentes en el árbol respiratorio e importantes en la defensa inmunológica del sistema respiratorio. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Lámina 17-5Corte semifino de la pared alveolar en el que se muestran neumocitos de tipo I y de tipo II y un macrófago intraalveolar. Corte semifino. Tinción de azul de toluidina. Gran aumento.

Alvéolos (porción respiratoria)

Neumocitos tipo II. Producción de surfactante

Porción de transición

Macrófago intraalveolar. Defensa

Porción de conducción

Nódulo linfoide. Defensa inmunológica

Capilares

Neumocitos tipo I. Intercambio de gases entre

el aire y la sangre


Lámina 17-6Corte de pulmón humano en el que se pone de manifiesto una acumulación de partículas de carbono en agregados de macrófagos como consecuencia de la polución ambiental. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 18-1Corte de piel fina. La epidermis está formada por pocas capas de queratinocitos con una delgada capa queratinizada. No son visibles las capas granulosa y lúcida. Obsérvese la acumulación de melanina, que forma un capuchón por encima del núcleo de los queratinocitos, protegiéndolos de la acción nociva de los rayos UV. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Pared del bronquiolo

Grupo de macrófagos con partículas de carbono. Defensa

Capa córnea

Epitelio estratificado pavimentoso queratinizado.

Defensa

Tejido conjuntivo de la dermis


Lámina 18-2Piel gruesa que muestra papilas dérmicas que aumentan la superficie de contacto dermoepidérmica. Las capas granulosa y lúcida son claramente visibles. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Lámina 18-3Glándula sudorípara que muestra la porción secretora y los conductos. La porción secretora está rodeada por una capa de células mioepiteliales rojas. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Porciones secretoras

Conducto

Tejido conjuntivo

Capa lúcida

Capa granulosa

Capa espinosa

Papilas dérmicas


Lámina 18-4Glándula sebácea. Sus células se multiplican en la superficie interna de la pared de la glándula y acumulan lípidos en vesículas del citoplasma. Se diferencian gradualmente y cuando mueren se rompen, formando una masa amorfa, o sebo. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Lámina 18-5Corte de piel teñida específicamente para las fibras del sistema elástico. En la porción profunda de la dermis se aprecian las fibras elásticas gruesas que se vuelven más delgadas a medida que se aproximan a la epidermis. Pequeño aumento.

Epidermis

Células diferenciadas muertas que se agre-gan formando el sebo

Células en diferenciación

Dermis con fibras elásticas y colágenas.

Resistencia + elasticidad

Células indiferenciadas. Reposición celular


Lámina 18-6Corte grueso de piel teñida específicamente para las fibras del sistema elástico. Se ha fotografiado con filtro verde para potenciar el contraste. Obsérvense las fibras elaunínicas de aspecto irregular. Las fibras oxitalámicas delgadas se insertan posteriormente por debajo de la epidermis en la lámina basal (no visible en esta preparación). Las fibras oxitalámicas son importantes para la adhesión de la epidermis en el tejido conjuntivo subyacente. Preparación de E. Caldini. Aumento mediano.

Lámina 19-1Región cortical del riñón que muestra los glomérulos y los túbulos renales. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Epidermis no teñida

Fibras elaunínicas

Fibras elásticas

Glomérulos

Túbulos renales

Fibras oxitalámicas. Adhieren el sistema de fibras elásticas en la lámina basal


Lámina 19-2Glomérulo renal humano que muestra la mácula densa, los capilares glomerulares, la hoja parietal de la cápsula de Bowman y el espacio capsular. Este método de tinción específico para el colágeno muestra, con excepcional claridad, la lámina basal de los glomérulos. Tinción de picrosirio y hematoxilina. Aumento mediano.

Lámina 19-3Corte del riñón en el que se muestra el glomérulo, los túbulos contorneados proximales con el borde en cepillo y los distales sin éste. La lámina 2-2 presenta los túbulos contorneados distales a mayor aumento, mostrando la abundancia de mitocondrias en estas células transportadoras de iones. Corte semifino. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Túbulo

Glomérulo

Mácula densa. Regulación de la función glomerular

Túbulos contorneados proximales con borde en cepillo.

Reabsorción de metabolitos y transporte de iones

Capilares que filtran la sangre

Espacio capsular

Túbulos contorneados distales sin borde en cepillo.

Transporte de iones

Hoja parietal de la cápsula de Bowman


A

B

Lámina 19-4Región medular del riñón que muestra los túbulos colectores con su epitelio cúbico, porciones delgadas del asa de Henle y capilares sanguíneos. Corte semifino. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Lámina 19-5Corte de vejiga vacía (A) y llena (B). Obsérvese la diversidad del aspecto que adquiere el epitelio de la vejiga dependiendo de la cantidad de orina presente. Estas modificaciones alteran la forma de las células de revestimiento, motivo por el cual éstas tienen en su citoplasma un depósito de membrana plasmática descrito en el texto. Tinción de picrosirio y hematoxilina. Pequeño aumento.

Capilares con sangre

Epitelio de transición. Secreción de orina

Túbulos colectores. Control de la absorción de agua

Colágeno. Soporte

Parte delgada del asa de Henle

Colágeno

Músculo liso. Movimiento

Epitelio de transición


Lámina 19-6Sección de uréter que muestra sus tejidos constituyentes. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Lámina 20-1Corte de hipófisis. Las células azul oscuro son las basófilas y las rojas son las eosinófilas. Las células con citoplasma escaso son las cromófobas. Tinción de azul de toluidina y fucsina. Gran aumento.

Músculo liso. Movimiento

Tejido conjuntivo. Soporte

Vasos

Epitelio de transición

Células eosinófilas

Células basófilas

Célula cromófoba


Lámina 20-2Corte de la corteza suprarrenal observada a pequeño aumento y en la que se muestra la cortical con sus tres capas y la medular. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Lámina 20-3Cápsula, zona glomerular y zona fascicular de la glándula suprarrenal. Las células de la zona fascicular se caracterizan por la presencia de inclusiones de lípidos precursoras de las hormonas esteroideas que producen. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Cápsula conjuntiva

Zona glomerular

Zona fascicular

Zona reticular

Capa medular


Lámina 20-4Región medular de la glándula suprarrenal. Cordones celulares separados por capilares sanguíneos. Las escasas células más oscuras son productoras de noradrenalina y las más claras sintetizan adrenalina. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Lámina 20-5Glándula tiroides. Folículos constituidos por una única capa de células cúbicas que contienen un depósito de hormona tiroidea (coloide). Entre los folículos hay grupos de células parafoliculares que producen la hormona calcitonina. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Cordones celulares

Vasos

Folículos. Hormonas

tiroideas

Células parafoliculares. Calcitonina


Lámina 20-6Corte fino de páncreas que muestra, en la parte superior y a la derecha, los ácinos del páncreas exocrino. Islote de Langerhans con células oscuras (B) productoras de insulina y claras (A), que sintetizan glucagón. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Lámina 21-1Testículo que permite observar los túbulos seminíferos, en los cuales se aprecian varias fases de la espermatogénesis. Entre los túbulos hay acumulaciones de células intersticiales productoras de la hormona testosterona. Método tricrómico. Pequeño aumento.

Ácinos

Tejido conjuntivo

Túbulos seminíferos

Islote

Células A claras-glucagón

Células B oscuras-insulina

Conducto


Lámina 21-2Testículo observado a mayor aumento. Obsérvese la cápsula de los túbulos seminíferos, las células de Sertoli, los espermatocitos I y los espermatozoides. Existe un acúmulo de células intersticiales entre los túbulos. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 21-3Epidídimo con su característico epitelio y espermatozoides en la luz del túbulo. Obsérvense en la superficie del epitelio los estereocilios del epidídimo, los microvilli que participan en la absorción de material de la luz. Entre los túbulos hay tejido conjuntivo laxo y vasos. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Espermatozoides

Tejido conjuntivo

Espermatocitos de primer orden

Espermatogonia

Células de Sertoli. Nutrición del epitelio germinativo

Células intersticiales. Producción de andrógenos

Epitelio

Cápsula del túbulo seminífero


Lámina 21-4Corte de próstata. Túbulos-alvéolos recubiertos por epitelio cúbico simple. Entre los túbulos-alvéolos hay músculo liso responsable de la contracción del órgano durante la eyaculación. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Lámina 22-1Ovario en el que se observa el inicio del crecimiento de los folículos primarios. Obsérvese el crecimiento gradual de los oocitos y la multiplicación de las células foliculares. Compárese con la lámina 22-2. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Músculo liso (contracción)Folículos primarios

Túbulos-alvéolos (secreción y acumulación)

Inicio de la maduración

Folículo primario


Lámina 22-2Folículo ovárico en fase de crecimiento. El oocito es grande y está rodeado por la zona pelúcida. La granulosa ya está constituida por innumerables capas de células. Fibras colágenas en rojo. Tinción de picrosirio y hematoxilina. Aumento mediano.

Lámina 22-3Sección de ovario con un folículo casi maduro en la que se observa el oocito rodeado por la corona radiata, la zona pelúcida gruesa, el antro folicular lleno de líquido y las capas interna y externa. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Colágeno

Granulosa

Zona pelúcida

Núcleo del oocito

Antro

Oocito y zona pelúcida

Capas interna. Producción de

estrógenos

Granulosa


Lámina 22-5Corte de vagina que muestra el epitelio estratificado pavimentoso que descansa sobre el tejido conjuntivo laxo. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Epitelio

Tejido conjuntivo laxo

Lámina 22-4Corte de ovario que permite observar la estructura del cuerpo lúteo rodeado por una cápsula de tejido conjuntivo y que contiene células redondeadas con inclusiones de lípidos en su citoplasma. Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Cápsula del ovario

Células luteínicas. Producción de progesterona


Lámina 22-6Corte de útero en la fase proliferativa. Miometrio en la parte superior y endometrio en la inferior. Aparecen células glandulares con poco citoplasma y glándulas con una luz reducida. Tejido conjuntivo periglandular compacto. Tinción de hematoxilina y eosina. Pequeño aumento.

Lámina 22-7Endometrio en la fase secretora. Células glandulares con mayor volumen de citoplasma, luz de las glándulas distendida y tejido conjuntivo envolvente más laxo. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Miometrio, músculo liso y colágeno. Soporte y movimiento

Epitelio glandular (inicio de la secreción)

Glándula

Endometrio. Glándulas rodeadas por tejido

conjuntivo


Lámina 22-8Placenta humana. Vellosidades placentarias con sus principales elementos constituyentes: sincitiotrofoblasto, vasos y tejido conjuntivo laxo. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 22-9Glándula mamaria lactante. Alvéolos distendidos llenos de secreción formada por inclusiones lipídicas y proteína granulosa precipitada por el fijador. La intensa síntesis proteica que tiene lugar en sus células explica su fuerte basofilia debido a la abundancia de retículo endoplasmático rugoso (ARN). Tinción de azul de toluidina. Aumento mediano.

Sincitiotrofoblasto (síntesis de hormonas y filtración de la sangre)

Tejido conjuntivo

Vasos de la vellosidad. Circulación de la sangre fetal

Vellosidad

Espacio entre las vellosidades (circulación de la sangre materna)

Proteína precipitada

Alvéolo

Gotas lipídicas


Lámina 23-1Sección de corpúsculos de Pacini, que son sensibles a presiones. Terminación nerviosa rodeada por capas concéntricas de delgadas hojas de colágeno. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 23-2Corpúsculos gustativos de papilas de la lengua. Células sensoriales y de sostén que se agrupan y se comunican con el líquido de la boca a través de un poro. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Terminación nerviosa

Hojas de colágeno

Poro

Corpúsculos gustativos

Epitelio lingual


Lámina 23-3Epitelio olfativo. Células altas prismáticas con un núcleo en varias alturas de cuya superficie salen cilios que no se mueven. En la parte inferior hay tejido cartilaginoso. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Lámina 23-4Corte de retina con sus diversas capas que contienen células en tres alturas. Tinción de hematoxilina y eosina. Aumento mediano.

Conos y bastones (sensorial)

Epitelio olfativo

Células bipolares

VasosVasos

Células ganglionares

Cartílago

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