Laboratorio de microbiologia 1

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DEMOSTRACION DE LA PRESENCIA DE MICROORGANISMOS EN DIFERENTES AMBIENTES-MORFOLOGIA Y TINCION DE LOS MICROORGANISMOS DEYBI RUIZ, ISABEL NICHOLLS, ROXANA SALINAS INTRODUCCION Los microorganismos se presentan de formas variadas en diversos medios y así como pueden ser perjudiciales para el ser humano también llegan a ser primordiales en diversos procesos a nivel biológico e industrial , de allí la importancia de demostrar la presencia de estos en toda clase de ambientes en los cuales quizás no se pensaría que pusieran existir , para ello se parte de la base de que los microorganismos al ser colocados en medios en un medio de cultivo, sean sólidos o líquidos se multiplican dando tras su crecimiento una serie de características definidas que los hace posible de identificar y clasificar , así pues se tomaron muestras de diversas fuentes como el piso, la mesa, un celular , el aire , entre otros , se sembraron en cajas de petri con agar nutritivo se llevaron a incubación para su posterior observación e identificación .en la practica se prepararon además extendidos de serratia , Bacilus cereus staphilococcus aereus , los cuales se tiñen utilizando cristal violeta azul de metileno y safranina para lograr la tinción mas efectiva y así observar con el microscopio sus caracteres y morfología. Esta parte va en el resumen! La introducción va después de los objetivos Deben referenciar el material bibliográfico consultado. OBJETIVOS Comprobar la existencia de microorganismos en diversos ambientes. Reconocer una colonia en un medio de cultivo. Preparar extendidos para determinar la morfología de las diversas colonias y así determinar que microorganismo se esta tratando. Identificar la morfología de las bacterias tratadas.

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DEMOSTRACION DE LA PRESENCIA DE MICROORGANISMOS EN DIFERENTES AMBIENTES-MORFOLOGIA Y TINCION DE LOS

MICROORGANISMOSDEYBI RUIZ, ISABEL NICHOLLS, ROXANA SALINAS

INTRODUCCIONLos microorganismos se presentan de formas variadas en diversos medios y así como pueden ser perjudiciales para el ser humano también llegan a ser primordiales en diversos procesos a nivel biológico e industrial , de allí la importancia de demostrar la presencia de estos en toda clase de ambientes en los cuales quizás no se pensaría que pusieran existir , para ello se parte de la base de que los microorganismos al ser colocados en medios en un medio de cultivo, sean sólidos o líquidos se multiplican dando tras su crecimiento una serie de características definidas que los hace posible de identificar y clasificar , así pues se tomaron muestras de diversas fuentes como el piso, la mesa, un celular , el aire , entre otros , se sembraron en cajas de petri con agar nutritivo se llevaron a incubación para su posterior observación e identificación .en la practica se prepararon además extendidos de serratia , Bacilus cereus staphilococcus aereus , los cuales se tiñen utilizando cristal violeta azul de metileno y safranina para lograr la tinción mas efectiva y así observar con el microscopio sus caracteres y morfología.

Esta parte va en el resumen!La introducción va después de los objetivosDeben referenciar el material bibliográfico consultado.

OBJETIVOS Comprobar la existencia de microorganismos en diversos ambientes. Reconocer una colonia en un medio de cultivo. Preparar extendidos para determinar la morfología de las diversas

colonias y así determinar que microorganismo se esta tratando. Identificar la morfología de las bacterias tratadas. Identificar las bacterias que absorban con mayor efectividad los

diversos colorantes empleados y, así poder apreciar mejor su morfología.

Diferenciar las diversas estructuras bacterianas y determinar su forma y tipo de organización es el medio.

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METODOLOGIA

La practica fue dividida en dos secciones en la primera parte se procedió a tomar 8 cajas de petri con agar nutritivo que es una fuente rica en carbohidratos y nutrientes para el crecimiento de microorganismos, se rotularon con nombre grupo y fuente de muestra y fecha.Luego se tomaron las muestras, unas con aplicadores estériles en las que eran necesario,(el numero de rotulación de la muestra la fuente etc. , se encuentran en la tabla 1) # placa muestra Obtención Contacto muestra

agar1 Piso Hisopo estéril Pocos segundos2 Mesa Hisopo estéril Pocos segundos3 Celular Hisopo estéril Pocos segundos4 Lavamanos baño

mujeresHisopo estéril Pocos segundos

5 Aire Caja abierta 5 minutos 6 Reloj Contacto directo

con el agar5 minutos

7 Moneda Contacto directo con el agar

5 minutos

8 llaves Contacto directo con el agar

5 minutos

Tabla 1 obtención de muestra de diversas fuentes.

La numeración de las tablas va arriba

Se taparon las cajas se procedió a encubarlas en posición invertida para evitar de positos de agua en el agar por condensación en la tapa, la temperatura de incubación fue de 37 grados centígrados en un lapso de 24 horas , transcurrido el tiempo de incubación se procede al análisis de datos para el cual las colonias se observaron al estereoscopio y a simple vista para describir su morfología de acuerdo al patrón de la guía del laboratorio , luego se nos otorgo una cepa de staphilococcus aereus , se procedió a prender el mechero para asegurar un área aséptica donde trabajar de tomo el asa y se expuso al fuego hasta estar rojo se retira y se deja estar para tomar una muestra de staphilococcus aereus , y se introdujo en el tubo de agar inclinado sembrando este en forma zigzag se dejo incubando a la ya mencionada temperatura y tiempo, y se tomaron los datos pertinentes, para finalizar esta primera parte se toma un tubo con caldo nutritivo y se sigue el mismo procedimiento en el tubo de agar nutritivo con la misma temperatura y tiempo.

En la segunda sección de la practica se procedió a preparar 3 extendidos de cada una de las cepas bacterianas serratia, Bacilus cereus, staphilococcus aereus, se tomo una gota de solución salina y se puso en cada porta objetos se esterilizo el asa y se procedió a tomar una muestra de cada cepa y mezclarla

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con la gota de solución salina en zigzag (3 porta objeto por microorganismo se dejo secar a medio ambiente se fijo por medio del calor del mechero después de esto se colocaron las laminas sobre la bandeja de coloración se tiñeron una de cada sepa por colorante se dejaron expuestas el tiempo estipulado para cada colorante: safranina , se deja actuar por 30s , cristal violeta se deja actuar por un minuto, azul de metileno se deja actuar por 5 minutos. Después de transcurrir el tiempo mínimo para cada colorante se lavaron las laminas con agua destilada y semejaron secar a temperatura ambiente y se observaron al microscopio con un aumento de 100x para un buen campo visual se utilizo aceite de inmersión se observa cual colorante fue mas efectivo y se toman datos.

Mejorar la redacción (signos de puntuación)

DISCUSIÓN Y RESULTADOS

Una colonia bacteriana es el resultado de la agrupación de bacterias originadas a partir de una bacteria madre que se establece a lo largo de su ciclo celular ,tiene lugar por bipartición dependiendo de las condiciones en que se encuentra para esto se tienen en cuenta los factores intrínsecos: que son el PH incide en el crecimiento de los microorganismos en el medio, el cual varia en un rango de 3 a 11, el PH afecta la permeabilidad de la membrana un PH muy ácido o muy básico puede alterar la función habilidad de las células bacterianas, las bacterias generalmente prefieren PH neutros ;el PH intracelular es ligeramente superior al medio que rodea las bacterias en muchos casos , la obtención de energía metabólica depende de la existencia de una diferencia en la concentración de protones de ambos lados de la membrana citoplasmática, como consecuencia del metabolismo el PH del medio de crecimiento suele tender a bajar durante el cultivo, la bajada del PH del medio que producen .Potencial de Oxidorreducción es la tendencia de un sustrato de ganar o perder electrones, este esta asociado a la disponibilidad o ausencia de oxigeno en el medio algunos microorganismos requieren ambientes oxidantes para crecer, mientras que otros necesitan ambientes reductores, es muy diferente el requerimiento de condiciones oxidantes y reductoras, y la necesidad de presencia o ausencia de oxigeno para que se produzca el crecimiento bacteriano. Cuando las bacterias requieren de un ambiente oxidante desarrollan un metabolismo oxidativo y los que requieren ambientes reductores se desarrollan un metabolismo fermentativo, también hay que pueden desarrollar los dos tipos de metabolismo.Actividad del agua tan bien conocida como (aw) se conoce como la actividad de agua a la relación entre la presión de vapor de agua en el medio de cultivo y la presión del agua pura , esto esta relacionado con la humedad relativa, el valor del actividad del agua nos da la cantidad de agua disponible metabolitamente, el agua es el sustrato de creaciones bioquímicas fundamentales para las bacterias ,cuando el agua no es suficiente estas reacciones se detienen y el metabolismo deja de cumplir su tarea , también detiene muchas enzimas que podrían degradar estructuras biológicas por esto

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la células que no crecen por falta de agua no mueren rápidamente y por ende los sistemas de degradación tampoco funcionan y no las degradan el valor minimote actividad de agua para las bacteria es mayor que 0.90,en una bacteria el 90% de agua esta dispersa en el citoplasma .Los nutrientes que constituyen la actividad en las bacterias son: el Carbono que esta en un 50% de la célula , tiene un 32 %de Oxigeno y Nitrógeno que esta en un 14% estos deben estar dispuestos en forma de aminoácidos a los que se les pueda tomar el grupo amino, el Fósforo se encuentra en un 3% y el Azufre se encuentra en un 1% , estos son los macro nutrientes que componen cada célula bacteriana .También se encuentran los elementos traza que son los que inician la relación enzima sulfato, como lo es el Cobre ,Hierro ,Zinc, Magnesio ,Manganeso, potasio todo esto es la fuente fundamental de energía y nutrientes.Sustancias inhibidoras son las sustancias que al tener contacto con las bacteria impiden el crecimiento de estas en donde estén algunas de estas sustancias son lisosoma, lactoperoxidasa ,lacto ferina, proteínas catioicas , poli aminoácidos ácidos , polipéptidos básicos ,progesterol ,lúpulo ,gospol ,ácido ensoico ,pectina ,tiosufonatos y taninos ,estas sustancias se encuentran de forma dispersa y natural a nuestro alrededor. También se tienen en cuenta los factores extrínsecos como son la temperatura que determina el tipo de microorganismo que puede crecer en cierto sustrato, la muerte celular a altas temperaturas se da por la desnaturalización y las alteraciones producidas en las membranas lipidias a estas temperaturas .a temperaturas bajas el metabolismo celular es lento y las células paran de crecer y a veces mueren. Hay organismos pscicrofilos que viven a temperaturas que varían de 10 0C a 20 oC, organismos que pueden resistir altas temperaturas como los termofilos que vienen en temperaturas mayores que 450C y los termoduncos pueden vivir con una temperatura de 60 0C.También se considera como factor extrínseco la humedad relativa del medio y las atmósferas de incubación y concentración de gasas como el CO2, O3

El crecimiento microbiano es el aumento de microorganismos a lo largo del tiempo por tanto nos referimos al crecimiento demográfico de una población el proceso de desarrollo de las bacterias, a lo largo de su ciclo celular tiene lugar a la replicación de la bacteria la síntesis de sus componentes celulares el crecimiento para alcanzar un tamaño el doble del inicial , su división por bipartición da lugar a dos células hijas . la duración del ciclo celular este mismo depende de los factores de crecimiento. Este crecimiento suele ser asincrónico puesto que cada bacteria se encuentra en un punto diferente de ciclo celular . El crecimiento bacteriano consta de un ciclo que se divide en 4 fases que se pueden diferenciar en un cultivo bacteriano en medio liquido la primera fase es la fase de adaptación o lag en esta la células están en estado de latencia acondicionándose , reconociendo y adaptando su metabolismo a los factoras intrínsecos y extrínsecos para poder iniciar el crecimiento exponencial o fase de logaritmo en ella la velocidad de crecimiento es máxima , crece exponencialmente , produce la mayor cantidad de células mayor actividad metabólica y mayores factores de respuesta culminado llegando a su máximo pasa a la fase estacionaria en el cual el numero de células se estanca los nutrientes se escasean y se limitan desarrollando así un metabolismo diferente a la fase exponencial y durante ella se produce una acumulación y liberación

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de me tabalitos segundarios y así se pasa a la fase de muerte , las condiciones del medio no favorecen su viabilidad y por consiguiente mueren las células . Existen diferentes sistemas para detectar y medir el crecimiento de microorganismos; los principales son recuento directo medida de masa de las células , recuento de viables , medida de numero de partículas , medida de parámetros de químicos y medida de actividad metabólica .El recuento directo es la observación del microscopio de volúmenes muy pequeños de suspensiones de bacterias se usan las denominadas cámaras de petroff-Hausser . la medida de masa de las células se basa en que las células en suspensión dispersan la luz causando la turbidez del cultivo esta depende de la masa en suspensión y por tanto midiendo esta se puede estimar aquella . el recuento de variables consiste en sembrar un volumen determinado de cultivo o muestra sobre el medio de cultivo sólido adecuado para estimar el numero de viables contando el numero de colonias que forman puesto que cada una de estas deriva de una UFC. REFERENCIAS???? Y cómo relacionan todo lo anterior con la práctica de laboratorio?? Las discusiones no son simplemente copiar, Deben relacionar la consulta bibliográfica con cada resultado obtenido. Para la medida sea correcta desde el punto de vista estadístico , es necesario contar mas de 300 UFC , como el procedimiento que se llevo acabo en el laboratorio en el cual se encontró después del proceso de incubación diferentes colonias , en la muestra del lavamanos de mujeres se encontró colonias con superficie rugosa, mate ,cremosa e invasiva elevada con borde ondulado y forma puntiforme como se muestra en la imagen N01, en la muestra del aire se encontró aproximadamente 9 colonias con forma circular convexa con una superficie lisa cremosa brillante y superficial como se muestra en la imagen N02 y en detalle cinco de estas en la imagen N03, en la muestra encontrada del piso se encontraron 3 tipos de colonias como se muestra en la imagen N04: una de forma puntiforme borde entero elevada, lisa cremosas y brillante las otras eran de forma circular borde entero planas y de superficie seca mate y rugosa, los otros tipos de colonias encontradas tenían forma filamentosa convexas superficie mate seca, lisa e invasiva como se muestra en detalle en la imagen N05, en la muestra de la mesa se encontró 2 tipos de colonias como se muestra en la imagen N06, en el primer tipo se encontraron 6 colonias circulares de borde entero, planas con superficie mate ,seca, rugosa y superficial , en segundo tipo se encontraron 2colonias de forma rizoide , lobuladas ,crateriformes, rugosa ,seca y superficial como se muestra en la imagen N07 ; en la muestra tomada de las llaves se encontraron dos colonias como se muestra en la imagen N08 :una circular de borde entero ,convexa ,rugosa ,mate y cremosa la otra era de forma circular borde entero convexa, superficie, lisa, cremosa y brillante como se muestra en la imagen N09; en la muestra tomada del celular se encontraron dos tipos colonias como se muestra en la imagen N010 : una circular con borde entero ,plana, lisa, mate, seca y superficial , y otras tres colonias circulares con borde entero, acumuladas ,lisa ,mate y cremosa como se muestra en la imagen N011 ;las muestras tomadas del reloj habían dos tipos de colonias como se muestra en la imagen N012: dos colonias de forma irregular, borde ondulado ,conexa ,lisa brillante, cremosa y superficial y otra filamentosa con borde filamentoso ,crateriforme, rugosa, cremosa y superficial como se muestra en la imagen N013 .se encontraron 2 colonias de forma circular borde entero ,planas, secas, mate ,cremosa y superficial como se muestra en las imágenes N014

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y15. en el agar inclinado se obtuvo un optimo crecimiento , el crecimiento fue un informe a lo largo de la línea de inoculación este crecimiento se denomina filiforme como lo muestra la imagen N016 a diferencia del cultivo en caldo nutritivo en el cual no se3 observo ningún cambio ya sea por deficiencias en el proceso de incubación o por fallas en el procedimiento de siembra de B.cereus como se observa en la imagen N017. Todo esto hace parte de los resultados e irían aparte. Sería recomendable poner los resultados a modo de tabla para una mejor visualización de ellos.

Serratia sp., es un género que pertenece a la familia Enterobacteriaceae y como tal, es un bacilo Gram negativo, anaeróbico facultativo, oxidasa negativo, que crece abundantemente sobre agar sangre, agar chocolate y agar McConkey, produciendo colonias que pueden ser pigmentadas, especialmente Serratia marcescens y Serratia rubias, las cuales producen un pigmento rojo muy característico llamado prodigiosina (1). Sí, la Serratia crece roja en el agar pero por lo que tengo entendido uds no sembraron Serratia sino Bacillus cereus en agar inclinado y en el laboratorio sólo se utilizó agar nutritivo para las siembras, por lo tanto esto sobra como soporte bibliográfico.

Serratia marcescens forma colonias lactosa negativo en el agar McConkey y puede ser B-hemolítica en el agar sangre. Crece adecuadamente en hemocultivos, en especial, cuando se emplean sistemas automatizados con botellas aeróbicas (1,5,6). Y??? el objetivo del laboratorio no era saber si Serratia crece bien en agar McConkey o en hemocultivos.

La clasificación actual de¡ género Serratia, nos habla de 8 especies: Serratia entomophila, Serratia ficaria, Serratia fonticola, grupo Serratia liquefaciens ( liquefaciens, proteamaculans y grimesii), Serratia marcescens y Serratia marcescens biogrupo 1, Serratia odorífero biogrupos 1 y 2, Serratiaplymuthica y Serratia rubidae (1). ¿?? En el laboratorio no estudiamos las especies de Serratia, esto sobra en la discusión.

En cuanto a su potencial patogénico, S. entomophila, no ha sido asociada con problemas en el humano, S. plymuthica y S. fonticola muy raramente, mientras que el grupo S. liquefaciens, es la que se presenta con mayor frecuencia, pero es S. Marcescens quien presenta mayor importancia clínica y mayor resistencia antimicrobiana (1,2). Los extendidos de serratia se pueden observar en las imágenes 18 , 21 ,25. ¿? Y qué tiene que ver las especies patógenas de Serratia con los extendidos que se hicieron de ella? Uds simplemente tenían que observar la forma y comparar la efectividad de los colorantes.

Bacilus cereus Gram positivo, esporulado, aerobio o anaerobio facultativo, móvil. La espora es ovoidea, central y no deformante. Hidroliza la lecitina de la yema del huevo y no fermenta el manitol. Produce dos tipos de toxiinfecciones alimentarias: la forma diarreica y la forma emética.(4) este mismo se puede observar en las imágenes 20, 23 , 26. ¿?

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Staphylococcus aureus pertenece a la familia Micrococcaceae, al Género Staphylococcus , El género Staphylococcus está constituido por diecinueve especies y se diferencian de otros géneros de la familia, en base al contenido de guanina y citosina (G + C) en el DNA, composición de la pared celular y su habilidad de crecer anaeróbica mente y fermentar la glucosa bajo esas condiciones(7)este mismo se puede observar en las imágenes 19. 22, 24.

los colorantes que tiñeron cada extendido fueron , Safranina C20H19Cl N4 , M:350.85g/mol , punto de inflamación 49 grados centígrados colorante espectro fotométrico comúnmente utilizado en microscopia utilizado el laboratorios para tinsion de gram, la efectividad de este colorante se puede observar en las imágenes 24,25,26 , también fue utilizado cristal violeta C25H30ClN3 M: 407.99 g/mol colorante espectrofotometrico utilizado en laboratorios según gram ,su punto de inflamación es de 47 grados centígrados su efectividad para teñir las células se puede observar en las imágenes 18,19,20. Por ultimo mencionamos el colorante ,azul de metileno C16H12ClN3S * H2O con M:319.00 g/m colorante titano métrico utilizado según Loffer para microscopia punto de inflamación 40 grados centígrados se este nos adecuado para la tensión de gram las se muestra la tensión con este colorante en las imágenes 21,22,23. REFERENCIAS??? Y cuales colorantes fueron más efectivos?? Cuál es la diferencia entre cada uno de ellos??

Los resultados pueden ir junto con la discusión siempre y cuando después de cada resultado reportado discutan con base a la bibliografía.

No discuten sobre las diferencias de los colorantes y su efectividad. No describen las formas de las bacterias al observar las tinciones al microscopio. De la información que escriben mucho no tiene nada que ver con lo que se hizo en el laboratorio. Tampoco discuten sobre la diferencia de sembrar en medio líquido y sólido. No hacen una comparación de las cargas microbianas obtenidas en los análisis de las diferentes muestras y a qué se deben esas diferencias.

Anexo 1. las colonias bacterianas no se pueden observar en medio liquido por que para el crecimiento de muchos microorganismos aeróbicos es necesario suministrar mucho aire. Esto es así porque el oxígeno es poco soluble en el agua y el que es utilizado en el crecimiento microbiano, no es reemplazado suficientemente rápido a partir de simple difusión de aire. Lo mismo ocurriría con otras bacterias anaerobias que requieren una substancia diferente del oxígeno como aceptor de hidrógeno y son sensibles a la inhibición por aquél. Por esta razón se puede afirmar que las bacterias no se agruparan en colonias, el intercambio gaseoso sería aún más complicado, por lo que se ven obligadas a vivir separadas unas de otras en un medio líquido. Por qué no escribieron la pregunta? La respuesta que dan no tiene nada que ver con la pregunta.

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Las colonias bacterianas sólo se pueden ver en medio sólido como lo es el agar. Qué pasó con la primera pregunta de la guía???

Anexo 2 Al incrementar el tiempo de incubación, ¿se presenta aumento indefinido en el tamaño de las colonias?No se presentará un aumento indefinido en el tamaño de las colonias. El crecimiento de las colonias de microorganismos va estrechamente ligado a la disponibilidad de nutrientes en el medio, es decir, después de un determinado periodo las bacterias u hongos no tendrán recursos para suplir sus necesidades alimenticias, por lo que se observará un descenso en el número de células visibles y no un aumento de las mismas.

Anexo 3. ¿Cómo evitaría que los trabajos de laboratorio se contaminen?En primer lugar, cada uno de los integrantes del laboratorio debe portar adecuadamente la bata (limpia), guantes de látex de cirugía y tapabocas. Esto evitará la contaminación de las muestras y al mismo tiempo nos protegerá de los microorganismos. Antes de empezar, y al terminar la práctica, se debe limpiar la superficie de la mesa de trabajo con desinfectante para reducir el polvo y la contaminación. También es importante lavarse las manos antes y después de la práctica. Cabe mencionar que uno de los factores que aseguran el éxito del trabajo de laboratorio es saber con anterioridad lo que se debe hacer y asumir con gran responsabilidad los procedimientos a seguir.

Anexo 4. al realizar la tinción de la muestra se debe flamear para que las bacterias en este caso se adhieran a la lamina , de esta manera durante la tinción al momento de enjuagar conseguir que el agua no desprenda las muestras obtenidas , en si la fijación consiste en pasar la lamina por el mechero con rapidez tres veces aproximadamente para así fijar las muestras en la lamina.Anexo 5. los colorantes simples como el azul de metileno sirven para distinguir a simple vista los microorganismos en el microscopio y diferenciar su morfología .

Anexo 6. Las tinciones en las cuales se puede observar la morfología de las bacterias tratadas con mayor presicion fueron: imágenes 19 , 20 en las cuales se observa como el S. aureus , serratia y B. cereus absorben el cristal violeta , también se puede apreciar las imágenes 26 y 27 en las cuales el S. aureus y B. cereus absorben con gran capacidad la safranina , lo contrario ocurrió con el azul de metileno el cual solo se pudo observar con gran apreciación el B. cereus . puesto que este metodo de tincion sirve solo superficialmente. Y esto qué??

Deben escribir las preguntas!!Y háganlas como un punto aparte después de la discusión y antes de las conclusiones. No respondieron todas las preguntas.

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Imagen N 0 1 colonias halladas en la muestra del lavamanos de mujeres

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Imagen N 0 2 colonias obtenidas por expociccion al aire se observan las nueve colonias.

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Imagen N 0 3 detalle de cinco colonias bacterianas halladas en la muestra se exposición al aire

imagen N 0 4 colonias obtenidas del piso se observa la diversidad de estas

imagen N 0 5 colonias bacterianas observadas con el estereoscopio

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imagen N 0 6 colonias obtenidas de la mesa de trabajo

imagen N 0 7 detalle de las colonias encontradas en la muestra de la mesa.

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imagenN 0 8 colonias bacterianas encontradas en la muestra que tuvo contacto directo con la llave .

imagen N 0 9 detalle de las colonias en contradas en la muestra de la llave.

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imagen N 0 10 colonias bacterianas encontradas en la muestra después del contacto diresto con un celular

imagen N 0 11 detalle de dos colonias de esta muestra del celular .

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imagen N 0 12 colonias encontadas en en la muestra del reloj .

imagen N 0 13 detalle de dos de las colonias descritas en la muesatra del reloj.

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imagen N 0 14 colonias encontadas en la muestra de la moneda .

imagen N 0 15 detalle de las colonias encontradas en la muestra de la moneda .

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imagen N 0 16 crecimiento de B.cereus en tubo de agar inclinado.

imagen N 0 17 B.cereus en caldo nutritivo.

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imagen N 0 18 Serratia teñida con cristal violeta.

imagen N 0 19 S.aureus teñida con cristal violeta.

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imagen N 0 20 B. cereus teñido con cristal violeta.

imagen N 0 21 Serratia teñida con azul de metileno.

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imagen N 0 22 S.aureus teñida con azul de metileno.

imagen N 0 23 B. cereus teñido con azul de metileno

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imagen N 0 24 S.aureus teñida con safranina

imagen N 0 25 Serratia teñida con safranina.

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imagen N 0 26 B. cereus teñido con safranina.

CONCLUSIONES

Se puede afirmar que los microorganismos se encuentran en cualquier parte, e incluso en los seres vivos como personas.

El crecimiento microbiano depende de factores nutritivos fundamentalmente, así como de la temperatura, el pH, entre otros factores ambientales, y de las interacciones con otros microorganismos.

El mismo microorganismo se puede encontrar en dos ambientes contiguos o similares en su composición físico- química.

El agar inclinado es un medio que permite cultivar bacterias para mantenerlas durante un tiempo determinado y no para caracterizarlas, excepto decir que presentan crecimiento filiforme, ramificado, etc., a lo largo de la línea de inoculación. El agar no sólo sirve para mantener las bacterias cultivadas durante un determinado tiempo, también sirve para observar la morfología de las colonias bacterianas lo cual es importante en la caracterización de éstas.

Podemos concluir que las bacterias gram positivas retienen el complejo cristal violeta yodo Si??? Y a qué hora hicieron tinción de Gram??

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Se deben fijar las muestras para obtener una optima tinción .

Se deben tener precauciones para manipular las bacterias tratadas para evitar contaminaciones.

El lugar de trabajo dentro del laboratorio debe estar esterilizado para evitar contaminaciones dentro de las muestras.

Las conclusiones están muy pobres. No concluyen sobre nada de lo más importante: los colorantes, ni la diversidad de colonias encontradas en los sitios analizados, ni las formas de las diferentes bacterias coloreadas.

REFERENCIAS1. Abbott S.: Klebsiella, Enterobacter, Citrobacter, and Serratia. In: Manual of Clinical Microbiology. Murray P., Baron E., Pfaller M., Tenover F., Yolken R. eds 7th ed. American Society of Microbiology. Washington D.C. 1999.

2. ASCP Susceptibility Group. United States geographic bacteria susceptibility pattems. Amer. J. Clin. Pathol. 106: 275, 1996.

.3. MADIGAN, M. T., MARTINKO, J. M. & PARKER, J. 1999. Brock Biología de los microorganismos. 8ª edición. Madrid. Editorial Prentice Hall, inc. Pp. 161- 175, 628.

4 http://es.wikipedia.org/wiki/Bacillus_cereus#Caracter.C3.ADsticas_generales

5. Grimont F. & Grimont P.: The Genus Serratia In: Starr M., Stolp H., Tr_per H et al (eds), The Prokaryotes: a Handbook on Habitants, Isolation, and identification of Bacteria. Springer-Verlag, Berlin, Gerrnany, 1981.

6. http://es.wikipedia.org/wiki/Bacillus_cereus#Caracter.C3.ADsticas_generales Janda J. & Abbott S.: The Enterobacteria Lippincott-Raven, Philadelphia PA, USA, 1998.

7. Bergdoll, 1979, Kloos y Schleifer, 1986.

8. JAWETZ, E. et al. 1990. Microbiología médica. Decimotercera edición. México. Editorial El manual moderno, S.A. de C.V. Pp. 46- 53.

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OBSERVACIONES:

- Mejorar la redacción, el uso de signos de puntuación es importante para un mejor entendimiento del texto.

- El informe se ve muy desorganizado, es recomendable que para los resultados utilicen tablas.

- OJO! Parece que hubieran hecho sólo un “corte y pegue” de la información. La mayor parte de la información que está en la discusión no tiene nada que ver con los resultados que obtuvieron y lo que sí tiene que ver no lo relacionan en ningún momento con la práctica.

- Deben hacer un resumen- La introducción va después de los objetivo (en la fotocopiadora se dejó un

material sobre cómo hacer informes científicos, lo leyeron??)- Deben referenciar la bibliografía consultada

CALIFICACIÓN: 2.6