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Núm. 26-78 HDX

LA PODREDUMBRED E LAS RAICESDEL AGUACATE

LUISA GALLO LLOBETFELIPE MIRALLES CISCARFRANCISCO JAVIER ALVAREZ DE LA PEÑA

MINISTERIO DE AGRICULTURA

LA PODREDUMBRE DE LAS RAICES DELAGUACATE

La podredumbre de las raices es la enfermedad más graveque ataca al aguacate, y está producida por el hongo del sueloPhytophthora cinnamomi Rands., que destruye el sistema ra-dicular ocasionando la muerte del árbol.

La existencia de P. cinnamomi fue descrita por primeravez por Rands en el año 1922 en Sumatra y en el árbol dela canela. La primera cita en aguacates se debe a Tucker en elaño 1927 en Puerto Rico. En California se tienen noticias desde1930 de «decaimiento» de aguacates sin saber cuáles eran lascausas, hasta que en 1942 Wager aisló de dichos árboles enfer-mos el P. cinnamomi.

Aparte del aguacate ataca a 900 plantas, entre las cuales po-demos citar la piña tropical, pino, castaño, melocotonero,eucalipto y una serie de plantas ornamentales.

Se ha informado de la presencia de Phytophthora cinna-moni en casi todos los países del mundo que cultivan aguaca-tes: Estados Unidos (California, Florida, Hawaii y Tejas), Mé-jico, Centro y Sur América, Islas del Caribe, Australia, Nue-va Zelanda, La Unión Sudafricana y otros países de AfricaOccidental. El único país en donde no se ha encontrado Phy-

tophthora hasta la fecha es en Israel.Probablemente California ha sido el área productora más

dañada por la citada enfermedad en donde han muerto milesde árboles, estimándose de 3.000 a 4.000 hectáreas la superficieafectada a través de los tiempos.

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Indiscutiblemente el Phytophthora cinnamomi es el principalproblema que tiene el cultivo en dicho estado, habiéndose de-dicado esfuerzos notables para su solución, sin que hasta la fe-cha exista un remedio realmente eficaz.

De aquí la gran importancia que tiene evitar la introduc-ción y propagación de esta enfermedad en aquellas áreas quese están poniendo actualmente en cultivo, tales como las del sury Levante peninsular.

Concretamente en Canarias el Laboratorio de Fitopatologíadel CRIDA 11 (INIA), después de llevar varios años estudiandola muerte de árboles adultos en diversas plantaciones de las is-las, así como de jóvenes plantas en viveros, ha detectado queel responsable de dichas pérdidas es el hongo Phytophthoracinnamomi Rands.

SINTOMAS PARA RECONOCER UNA PLANTA ENFERMA

La enfermedad provoca un decaimiento progresivo del árbol,que ofrece un aspecto general de marchitez.

Las hojas son más pequeñas de lo normal y de un colorverde pálido. La copa del árbol se va defoliando, llegandolas ramas a secarse completamente en un estado avanzado de laenfermedad. La fructificación va decayendo, aunque a veces sepuede producir una fructificación excesiva, con muchos frutos

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Fig. l.-Decaimiento del ár-bol enfermo. Apréciense las ra-mas cnn escaso número de ho-

jas.

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de tamaño pequeño que no llegan a engordar (fig. 1, fig. 2,fig. 3 y fig. 5).

Fig. 2.-En los primerosestados de la enfermedadel árbol ofrece un aspectogeneral de marchitez y lashojas son de un color ver-

de pálido.

Fig. 3.-A la izquierda, ár-bol afectado. A1 fondo, ár-

bol sano.

Fig. 4.-Raices afectadaspor el hongo.

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Fig. 5.-Fructificación excesiva enun árbol enfermo, con muchos fru-

tos que no Ilegan a engordar.

Fig. 6.-Ausencia de raíces alimentarias en un árbol enfermo.

La causa del decaimiento del árbol es la pudrición de lamayor parte de las raíces alimenticias, que presentan un aspec-to ennegrecido. En etapas avanzadas de la enfermedad es difícilencontrar dicho tipo de raíces. Las raíces más viejas y gruesaspresentan en su interior unas manchas de color castaño-rojizo(fig. 4 y fig 6).

CONDICIONES QUE FAVORECEN EL DESARROLLODE LA ENFERMEDAD

Un exceso de humedad en el suelo permite un desarrollorápido del hongo. Por ello ha de evitarse plantar en suelosfuertes, arcillosos y con mal drenaje (fig. 7).

Fig. 7.-Arbol en-fermo plantado enun suelo arcilloso ycon mal drenaje.Ausencia de raícesa partir de los 30primeros centíme-

tros.

Por consiguiente se aconseja efectuar las nuevas plantacionesde aguacates en suelos que tengan un buen drenaje interno, yaque así es posible reducir o evitar los posibles daños producidospor Phytophthora. En California se han observado plantacionesrealizadas en esos tipos de suelos, creciendo normalmente du-rante veinte años en presencia del hongo.

La temperatura del suelo para el desarrollo del hongo sesitúa entre 21 y 30° C. Por encima de 33° C. y por debajo de9-12° C. apenas hay o se reduce considerablemente la infección.

El pH óptimo del suelo para el desarrollo de la enfermedades de 6,5. Reduciendo el pH hasta 3-3,5 se ha controlado eldesarrollo del hongo en el laboratorio. Esos niveles de pH sonprácticamente inalcanzables en el medio real de cultivo.

Fig. 8.-Si se podadrásticamente un ár-bol enfermo, novuelve a rebrotar, adiferencia de lo quesucede con el ata-que por Verticr!lium.

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PROPAGACION DE LA ENFERMEDAD

El hongo se puede propagar por medio del agua de riego,que puede pasar de zonas infectadas a zonas sanas dentro deuna misma plantación.

Asimismo se debe evitar cualquier movimiento o traslado detierra entre las citadas zonas por medio de máquinas y aperosde labranza, botas, paso de animales.

Es muy importante no propagar la enfermedad por la in-troducción de plantas jóvenes, procedentes de viveros infectados(figs. 10 y 11).

PRECAUCIONES PARA EVITAR QUE SE PROPAGUELA ENFERMEDAD EN PLANTACIONES YA ESTABLECIDAS

Si en una plantación se observa algún árbol con los síntomascitados anteriormente, se tomarán sin demora las medidas si-guientes:

- Reducir el número y volumen de los riegos para evitarun exceso de humedad en el suelo. Téngase en cuenta que unárbol enfermo utiliza aproximadamente sólo la cuarta parte deagua que un árbol sano. Para conocer el momento óptimo deriego, es muy aconsejable el empleo de tensiómetros.

- Si es posible, mejorar el drenaje (fig. 9).

Fig. 9.-Mejora del dre-naje de una parcela queestuvo afectada ^^or la

cnfermcdad.

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Fig. ]0.- Planta devivero sana.

Fig. 11.-La misma planta de la figura 10 al mes de haber sido inoculada en ellaboratorio por Phythopthora cinnamomi Rands. A la derecha, aspecto final de la

planta.

Fig. 12.-Formación de unabarrera quimica mediante in-

yección.

- Evitar la propagación de la enfermedad, no sólo en la mis-ma finca o parcela, sino también a la de los vecinos. Paraello hay que tener muy en cuenta lo indicado en el apartadoanterior.

- Aislar los árboles enfermos con una barrera seca, esdecir, rodear los árboles o área enferma por una zona que nose riegue nunca, con lo que se crea un ambiente tan seco queimpide que el hongo pueda atravesarla. También se puede ais-lar los árboles con una barrera quimica mediante el empleode Vapam, D-D, Telone, a las dosis qué se citan más adelante(fig. 12 y fig. 13).

Fig. 13.-Localizaciónde una barrera química.

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- Empleo de fungicidas y desinfectantes del suelo. En unprincipio se estuvo utilizando el fungicida Dexón que dio buenosresultados para el control de la enfermedad, tanto en ensayosrealizados en invernadero como en el campo. Su empleo en elaguacate estuvo autorizado en Estados Unidos durante variosaños, pero últimamente ha sido prohibido debido a un cambioen las disposiciones en lo referente a niveles de resíduos.

También se ha encontrado buena efectividad con el fungi-cida Etazol, que se comercializa bajo los nombres de Terrazoley Truban. En Estados Unidos aún no ha sido autorizado suempleo en el aguacate, pero se espera que lo sea pronto, unavez superadas las pruebas de investigación exigidas por la legis-lación gubernamental de dicho país en materia de productosfitosanitarios.

Si el ataque es muy intenso y avanzado, conviene arrancarel árbol con todas sus raíces, sacándolo de la parcela sin arras-trar, y quemarlo. Después se desinfectará el hoyo y sus alrede-dores con alguno de los fumigantes del suelo que a continuaciónse detallan:

D-D: Si se emplea el inyectable se harán 8 punciones/m'con inyector manual, introduciendo cada vez 17 c.c. Si lasuperficie lo permite, se puede emplear un inyector acoplado altractor.

Es más cómodo emplear el D-D emulsionable, dosificándoloen el agua de riego.

Telone: 8 inyecciones/mZ a razón de 15 c.c. por inyección.En ambos casos la inyección debe ser a 15 cm. de profundidady de 35 en 35 cm.

Basamid granulado: Esparcido a mano (emplear guantes),a razón de 200 gr./m2. A continuación dar una cava ligera yregar abundantemente, para que el producto profundice y lleguehasta las raíces.

Vapam: Productos de 410 gr./litro (Maposol y Vapam), arazón de 235 c.c./m2 dosificado en el agua de riego.

Productos de 510 gr./litro (Basamid L., Solasán 510 y Fu-mathane), a razón de 200 c.c./mz.

Fig. 14.-Desinfec-ción con bromuro demetilo, en una par-cela afectada, previa

a la replantación. ..^-

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Bromuro de metilo: Es el más eficaz, aunque su empleo espeligroso y se debe recurrir para su aplicación a equipos espe-cializados (fig. 14).

Como todos los productos citados son muy tóxicos tantopara el hombre, como para las plantas, su manejo requieretomar muchas precauciones y efectuar las aplicaciones con sumocuidado.

No se deberá replantar antes de un mes de efectuado eltratamiento, aireando antes convenientemente el terreno.

RECOMENDACIONES PARA REALIZAR UNANUEVA PLANTACION

Antes de proceder a ello, se enviará para analizar unas mues-tras de tierra, con un doble objetivo:

1. Para detectar la posible presencia del hongo en la parcela.2. Para conocer las propiedades fisicas del suelo.

Si el análisis detecta la presencia del hongo y/o las condi-ciones físicas no son apropiadas (tierras fuertes y pesadas), esaconsejable que no se realice la plantación, porque más prontoo más tarde se presentará la enfermedad.

Si el análisis no detecta la presencia del hongo, y si las

condiciones físicas del suelo son apropiadas, se puede proceder

a la plantación, teniendo la precaución de emplear plantassanas.

Fig. I5.-Baño maría para desinfección de lassemillas en agua caliente entre 49 y 50° C. durante

treinta minutos.

Fig. 16.-Mezcla de tierra pa- '^ra ser desinfectada por vapor

de agua. ^ j^

Para obtener plantas libres de la enfermedad se deben tomarlas siguientes precauciones:

Empleo de semillas sanas, ya que el hongo puede ser exten-dido por las semillas, si los frutos de los que proceden hanpermanecido en contacto con un terreno infectado. Por ello serecomienda que las semillas que van a ser empleadas para se-milleros, procedan de frutos cogidos directamente del árbol yde ramas que no toquen el suelo. En caso contrario, o si sedesconoce su procedencia, se deben desinfectar sumergiendo lassemillas en agua caliente (baño maría), entre 49 y 50° C du-rante treinta minutos. A continuación se lavan con agua fría,pudiendo darles un tratamiento preventivo con un fungicida talcomo Captan, TMTD, etc. Se deben secar en un sitio ventiladoa la sombra, sin ponerlas directamente sobre el suelo (fig. 15).

Una vez germinadas las semillas se suelen trasplantar a bol-sas que se llenan de una mezcla de tierra. Esta mezcla debeser convenientemente desinfectada por vapor de agua, bromurode metilo, Vapam, D-D, o Telone (fig. 16).

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Asimismo para prevenir la infección por el Phytophthoralas bolsas no deben colocarse directamente sobre el suelo del vi-vero, empleándose diferentes medios para aislarlas del mismo.

No obstante, si en las plantitas se observaran sintomas demarchitamiento, se debe analizar la tierra de la bolsa, extraídade la zona radicular. Si el análisis demuestra la presencia delhongo, lo ideal es quemar la planta y desechar la tierra.

Las herramientas empleadas en el vivero deberán ser de-sinfectadas convenientemente, sumergiéndolas en un cubo quecontenga una de las soluciones que se detallan a continuación:

Alcohol al 70 por 100, formol diluido al 5 por 100, lejíapura, sublimado corrosivo al 2 por mil (este es un productoextraordinariamente tóxico que sólo se consigue en farmaciasy con receta médica).

DETECCION DEL HONGO

El hongo puede detectarse en un suelo infectado utilizandoun fruto de aguacate de color verde y piel algo gruesa, comolos de la variedad Fuerte. El fruto se sumerge hasta la mitad enun recipiente que contenga una muestra del suelo que se quiere

Fig. 17.-Test para la detección del Phy(oph(hora cinnamomi, mediante el empleode un fruto trampa. A la derecha, después del test, fruto con mancha oscura pro-

ducida por el hongo.

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ensayar, manteniéndola húmeda constantemente durante variosdías. A continuación se saca el fruto, se lava y se deja a tem-peratura ambiente. Si el suelo estaba infectado se desarrollaránen el fruto, a lo largo de la línea de inmersión, unas manchasde color oscuro (fig. 17).

Para una identificación certera del Phytophthora se necesi-taría cultivar, en placa Petri, tejidos con esas manchas y ob-servar el desarrollo del hongo al microscopio.

También se puede emplear para la detección del Phytophtho-ra plantas jóvenes de Persea indica (viñátigo), que es muysusceptible al ataque de dicho hongo.

PROGRAMAS DE TRABAJO PARA SU CONTROL

Para controlar la enfermedad se está trabajando en dife-rentes campos. La mejor posibilidad parece centrarse en la ob-tención de un patrón resistente. Otros métodos incluyen el em-pleo de fungicidas y desinfectantes del suelo.

En el Departamento de Patologia Vegetal de la Universidadde Riverside (California) y desde hace unos veinticinco añosse está llevando a cabo un programa de búsqueda de patronesresistentes bajo la dirección del doctor Zentmyer.

Se han formado numerosas colecciones con semillas de ma-terial de aguacates (Persea americana) y otras especies de Per-sea, obtenidas en Hispanoamérica.

En Riverside se les somete a pruebas previas de resistenciaen invernadero haciendo crecer a las plantas en un suelo in-fectado, y en un tanque con una solución nutritiva más el hongo.Posteriormente las plantas seleccionadas pasan a ensayos decampo. Se ha encontrado alta resistencia en varias especies dePersea de frutos pequeños, cuyos injertos, desgraciadamente,no son compatibles con el aguacate.

Un nivel moderado de resistencia ha sido encontrado en lostipos «Duke 6» y«Duke 7», variedad que pertenece a la razamejicana.

Durante el período 1972-1975 se han realizado ensayos enáreas infectadas en el Sur de California, plantándose alrededor

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de unos 4.200 árboles. En la mayor parte de dichos ensayos lasplantas de «Duke 6» y«Duke 7» han mostrado una buenaresistencia (80-90 por 100 de árboles sanos), en comparacióncon «Topa-Topa» (10-20 por 100 de árboles sanos), patrón quese emplea corrientemente en California.

Existen ciertos indicios de que esa resistencia disminuyecuando sobre «Duke 6» y«Duke 7» se injertan las variedadescomerciales «Fuerte» y «Hass».

Por otra parte, se ha encontrado resistencia en un tipomejicano procedente de Guatemala denominado «G-6» y enotro tipo denominado «Huntala».

Otro hallazgo potencialmente interesante ha sido el encon-trar en Persea borbonia una sustancia química tóxica al Phy-tophthora, que ha sido aislada y denominada borbonol. Siposteriormente se pudiera sinterizar el borbonol, podría enton-ces utilizarse como un fungicida para el control de la enfermedad.

También se está trabajando en Riverside con diferentes fun-gicidas en pruebas de invernadero y en el campo, que puedancontrolar la enfermedad, pareciendo que ya existen algunos pro-ductos prometedores.

De todo lo anteriormente expuesto se desprende que lapodredumbre de las raíces producida por el Phytophthoracinnamomi ha causado y está causando muchas pérdidas a losagricultores de aguacates de todo el mundo. Por ello se ha deser consciente de este problema, y evitar su introducción en lasnuevas áreas de cultivo que se están plantando en España.

RESUMEN

Para prevenir la enfermedad:

- Obtener plantones libres de la enfermedad. Nunca emplearlos dudosos.

- Plantar en parcelas que no estén infectadas.- El terreno deberá tener buen drenaje, y la tierra una textura

adecuada.- Evitar movimientos de agua y tierra desde las zonas infec-

tadas a las zonas libres.

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Para controlar la enfermedad:

Tomar muestras para determinar la distribución del hongoen la parcela.Disminuir convenientemente los riegos.Aislar la zona afectada dejando una «barrera seca o quí-mica».Tratar la parte infectada.

Autores:

BIBLIOGRAFIA

Luisa Gallo Llobet.Licenciada en Ciencias Biológicas.Instituto Nacional Investigaciones AgrariasCRIDA 11. Centro Regional de Canarias.

Felipe Miralles Ciscar.Ingeniero Agrónomo.Servicio de Defensa contra Plagas.Jefatura Provincial de Santa Cruz de Tenerife.

Francisco Javier Alvarez de la Peña.Ingeniero Agrónomo.Servicio de Extensión Agraria.Centro Regional de Canarias.

«Citrus and Subtropical Fruit Research». Institute Information. Bulletinn.° 34. Junio 1975.Zentmyer, G. A.: «California Avocado Society Yearbock 1954-1974».Zentmyer, G. A.; Paulus, A. O., L. Burns, R. M.: «Avocado Root Rot».Univ. of California. Circu[ar SI1. Agosto 1967.Zentmyer, G. A.: «Soil-borne Pathogens of Avocado. Proceedings ofthe First International Frui[ Short Course the Avocado». Miami (Florida).Noviembre 1976.«El aguacate». Francisco Javier Alvarez de la Peña. Ministerio de Agri-cultura. Madrid, 1975.«Podredumbre de la raíz del aguacate. Phytophthora cinnamomi Rands.Felipe Miralles, Luisa Gallo, Francisco J. Alvarez de la Peña: Folletoeditado por el Servicio de Defensa contra Plagas e Inspección Fitopato-lógica. Jefatura Provincial de Santa Cruz de Tenerife. Julio 1976.

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