Informe de las actividades desarrolladas por la … · 2017-06-16 · 6 Informe anual sobre la...

Informe de las actividades desarrolladas por la Universidad de Zaragoza durante el año

2016 en virtud del procedimiento abierto Nº2015/507 PA004 para la realización del trabajo

técnico que lleva como título:

“VIGILANCIA ENTOMOLÓGICA EN AEROPUERTOS Y PUERTOS FRENTE A

VECTORES IMPORTADOS DE ENFERMEDADES INFECCIOSAS EXÓTICAS, Y

VIGILANCIA DE POTENCIALES VECTORES AUTÓCTONOS DE DICHAS

ENFERMEDADES”

Coordinado por:

Dr. JAVIER LUCIENTES Dr. RICARDO MOLINA

Proyecto financiado por:

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Informe anual sobre la vigilancia entomológica en puertos y aeropuertos españoles. 2016

INTRODUCCIÓN ........................................................................................................ 4

1 BIOLOGÍA Y ECOLOGÍA DE LOS CULÍCIDOS ..................................................................... 7

OBJETIVOS ................................................................................................................. 11

OBJETIVO 1 ................................................................................................................ 13

1 METODOLOGÍA .......................................................................................................................... 13

METODOLOGÍA DE CAMPO .......................................................................................................... 15

PROCESADO DE LAS MUESTRAS EN EL LABORATORIO ...................................................... 22

ZONAS DE ESTUDIO ........................................................................................................................ 24

AEROPUERTOS CIVILES ............................................................................................................. 25

AEROPUERTOS MILITARES ....................................................................................................... 29

PUERTOS ......................................................................................................................................... 31

2 RESULTADOS ............................................................................................................................... 33

AEROPUERTOS CIVILES .................................................................................................................. 33

AEROPUERTOS MILITARES ........................................................................................................... 42

PUERTOS ............................................................................................................................................. 50

OBJETIVO 2 ................................................................................................................ 56

1 METODOLOGÍA .......................................................................................................................... 56


PROCESADO DE MUESTRAS EN EL LABORATORIO............................................................... 59

ZONAS DE ESTUDIO ........................................................................................................................ 60

COMUNIDAD VALENCIANA .................................................................................................... 61

REGIÓN DE MURCIA ................................................................................................................... 61

ISLAS BALEARES .......................................................................................................................... 62

ANDALUCÍA .................................................................................................................................. 62

PAÍS VASCO ................................................................................................................................... 63

ARAGÓN ......................................................................................................................................... 64

MADRID .......................................................................................................................................... 65

2 RESULTADOS ............................................................................................................................... 65

COMUNIDAD VALENCIANA ........................................................................................................ 66

REGIÓN DE MURCIA ....................................................................................................................... 70

ISLAS BALEARES ............................................................................................................................... 72

ANDALUCÍA ...................................................................................................................................... 74

PAÍS VASCO........................................................................................................................................ 78

ARAGÓN ............................................................................................................................................. 79

MADRID .............................................................................................................................................. 81

OBJETIVOS 3 Y 4 ....................................................................................................... 82

3


1 METODOLOGÍA .......................................................................................................................... 82


PROCESADO DE MUESTRAS EN EL LABORATORIO............................................................... 85

ZONAS DE ESTUDIO ........................................................................................................................ 85

ISLA DE TENERIFE ...................................................................................................................... 87

ISLA DE GRAN CANARIA ......................................................................................................... 90

ISLA DE LA PALMA ..................................................................................................................... 91

ISLA DE LANZAROTE ................................................................................................................. 92

ISLA DE FUERTEVENTURA ........................................................................................................ 93

2 RESULTADOS ............................................................................................................................... 95

ISLA DE TENERIFE ............................................................................................................................ 95

ISLA DE GRAN CANARIA............................................................................................................. 111

ISLA DE LA PALMA ........................................................................................................................ 116

ISLA DE LANZAROTE .................................................................................................................... 118

ISLA DE FUERTEVENTURA .......................................................................................................... 123

OBJETIVO 5 .............................................................................................................. 127

1 METODOLOGÍA ........................................................................................................................ 127

2 RESULTADOS ............................................................................................................................. 136

CONCLUSIONES ..................................................................................................... 138

4


INTRODUCCIÓN

El crecimiento económico y la globalización han generado en los últimos años, un

incremento del transporte de mercancías y personas por todo el mundo, que ha

propiciado a su vez, el aumento de las posibilidades de transporte accidental de especies

biológicas de un ecosistema a otro. Algunos autores han sugerido un nombre para

caracterizar esta nueva era que conoce el planeta en la que el ser humano tiene sin duda

un gran impacto en la biota, es lo que han denominada “el Antropoceno” (Zalasiewicz et

al, 2010).

Las especies pueden entonces llegar a desplazarse, distancias muy largas de forma muy

rápida utilizando aviones o barcos por ejemplo, fenómeno denominado globalización

biológica por algunos autores, y que han podido producir problemas en los países

destino, muy alejados de los de origen, con su evidente importancia, por un lado

agrícola, mediante la introducción de especies plaga por la importación de especies

vegetales (gorgojo rojo en los palmerales de Elche), y por el otro sanitario mediante la

introducción de especies con capacidad para transmitir enfermedades, también llamadas

“vectores”, en zonas libres de estas.

La introducción continuada de estos vectores, unida a los cambios naturales en el

medioambiente y a la acción del hombre sobre la naturaleza (expansión de las ciudades

hacia zonas selváticas), ha propiciado la adaptación y el establecimiento de estas especies

a nuevos hábitats en ocasiones muy alejados de sus lugares de origen y ha facilitado la

transmisión de ciertos patógenos.

Esta situación está aconteciendo en Europa, se han introducido especies exóticas con

capacidad vectorial como Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse, 1984), Ae. (Stegomyia) aegypti

(Linnaeus 1762), Aedes (Finlaya) atropalpus (Coquillet, 1902), Aedes (Finlaya) japonicus

(Theobald, 1901) y Aedes (Finlaya) koreicus (Edwards, 1917) hecho que ha ocasionado la

reaparición de enfermedades tropicales o subtropicales reemergentes en algunos países

de nuestro entorno. El brote de virus chikungunya ocurrido en el norte de Italia en el año

2007 y más recientemente en el sur de Francia (2014) relacionado con Aedes (Stegomya)

albopictus, culícido invasor originario de Asia, es un claro ejemplo de lo que esté

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ocurriendo en nuestro entorno sanitario actual. Otro ejemplo es el caso de paludismo

autóctono ocurrido en Monegros (Huesca) en el año 2010, o en Navarra en 2014,

relacionado con Anopheles atroparvus, especie de culícido autóctona con capacidad para

transmitir Plasmodium vivax (CCAES 2015). También son destacables los casos de dengue

autóctonos ocurridos en la Isla de Madeira (Portugal) en el año 2010, o en Francia en los

años 2010, 2013 y 2014, relacionados con Aedes aegypti y Aedes albopictus respectivamente,

ambos invasores y capaces de transmitir esta enfermedad. Sin duda lo destacable de 2015

y 2016 es la epidemia de virus Zika que se ha extendido rápidamente por las Américas,

Asia y África, y ha puesto de relieve la necesidad de establecer buenos protocolos de

vigilancia sanitaria de enfermedades vectoriales a nivel internacional ya que se reciben a

diario miles de viajeros procedentes de países de riesgo.

El transporte intercontinental aéreo o marítimo ha sido considerado como un factor de

gran importancia para el desplazamiento eficaz de estas especies invasoras y por lo tanto

para la aparición de las enfermedades asociadas a la transmisión vectorial, ya sea

mediante el transporte del artrópodo hematófago, el de individuos infectados o por

ambos.

En lo que se refiere al transporte de vectores, los aviones, suponen un excelente foco de

atracción debido sobre todo a las emisiones de CO2 de los motores, a las luces, y en

general al calor que desprenden, siendo estos factores particularmente importantes para

la atracción de las hembras de mosquitos.

Si a estos condicionantes le añadimos la gran plasticidad en cuanto a supervivencia de

estas especies, capaces de sobrevivir en condiciones ambientales adversas, es fácil

entender cómo se pueden producir desplazamientos de largas distancias.

Son numerosos los casos relacionados con un vector infectado, trasladado

accidentalmente en aviones a zonas lejanas y que han ocasionado problemas de salud

pública. Desde el año 1969 hasta 1999 se han notificado a nivel mundial 89 casos de

paludismo de aeropuerto. En España se produjo un caso de paludismo importado en el

área de influencia aeroportuaria en 2001. (CCAES 2015)

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Si bien es cierto que el establecimiento de estas poblaciones de artrópodos vectores en los

nuevos territorios, puede resultar complicada por las diferentes condiciones físico-

químicas o climatológicas de los nuevos biotopos. Son numerosos los casos descritos de

este fenómeno en el mundo. Especialmente llamativo es, por ejemplo, el asentamiento de

Aedes aegypti en la isla de Madeira, o el de Aedes albopictus en la mayoría de los países

europeos, incluida España. El éxito de estas dispersiones depende de multitud de

factores, entre los que se podría destacar las condiciones climáticas similares, la época

(periodo estacional de la llegada) en el territorio destino, y la capacidad de adaptación a

nuevos biotopos intrínseca de la especie en particular. En este caso es destacable la

capacidad de adaptación de Ae. aegypti y Ae. albopictus, que siendo los huecos de los

árboles sus criaderos originarios en Asia se ha adaptado a criaderos larvarios de origen

antrópico como fuentes, macetas, platos, etc… A todo ello se suma el cambio climático

que genera estaciones menos extremas, con inviernos más cálidos lo cual amplia el

periodo de actividad de estos insectos y disminuye su mortalidad invernal, modificando

el periodo y el riesgo de trasmisión de ciertas enfermedades.

Por todo lo dicho anteriormente es fácil inferir en la necesidad de implementar

programas de vigilancia y alerta entomológica en puertos y aeropuertos tanto frente a

vectores importados de enfermedades infecciosas exóticas, como de los potenciales

vectores autóctonos de dichas enfermedades.

En este marco y como consecuencia de la ratificación por el Reino de España del

reglamento Sanitario Internacional, que entró en vigor el 15 de Julio de 2007, se

estableció un Programa de Vigilancia Entomológica en Puertos y Aeropuertos a nivel

nacional. Para la ejecución de este programa nacional se ha establecido una colaboración

entre el Ministerio de Defensa y el Ministerio de Sanidad, Servicios Sociales e Igualdad,

para establecer un plan de vigilancia de vectores importados en las principales bases

aéreas españolas. En estos dos últimos años ha quedado constancia de la rápida

expansión del mosquito Ae. albopictus por el sur de la península, y se ha continuado con

las labores de vigilancia en colaboración con la Junta de Andalucía. Tras la confirmación

2015 de la presencia de la especie en la ciudad de Huesca, el Gobierno de Aragón ha

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desarrollado una primera fase de vigilancia en 2016 en la que se ha podido muestrear en

las tres provincias aragonesas (Huesca, Zaragoza y Teruel).

De igual manera, este es el tercer año que se continúa con el convenio de colaboración

establecido con la Consejería de Sanidad del Gobierno de Canarias, para la realización de

actividades especialmente dirigidas a la vigilancia entomológica frente Ae. aegypti y Ae.

albopictus en la Comunidad Autónoma de Canarias.

La Universidad de Zaragoza y el Instituto Carlos III, en el seno de los contratos que

desde 2008 ha venido realizando con el Ministerio de Sanidad ha puesto en marcha un

plan de vigilancia entomológica en los principales puertos y aeropuertos de España a los

que se ha tenido acceso.

El plan de vigilancia implica la monitorización de las poblaciones de mosquitos

existentes en los aeropuertos donde aterrizan aeronaves procedentes de zonas de riesgo.

Este plan tiene como objetivo el determinar la presencia de especies alóctonas

potencialmente invasoras antes de que se puedan establecer en nuestro territorio o en el

caso de que se demuestren que ya están asentadas, establecer planes de control integrado

eficaces frente a las mismas, así como conocer las especies autóctonas con riesgo de ser

invasoras en otros países.

1 BIOLOGÍA Y ECOLOGÍA DE LOS CULÍCIDOS

Bajo el nombre popular de mosquitos se conocen un buen número de insectos voladores

que muchas veces no tienen mucho que ver con los mosquitos verdaderos o culícidos

(Diptera: Culicidae). Estos últimos se caracterizan principalmente por tener un aparato

bucal modificado en forma de aguja que les permite penetrar la piel y realizar así la

ingesta de sangre, se denominan solenófagos. Hay que destacar que los mosquitos no

solo son importantes por sus molestas picaduras sino porque en ocasiones poseen la

capacidad de transmitir patógenos. Éstos pueden derivar en enfermedades, en muchos

casos olvidadas o desconocidas en los países desarrollados, pero que en las últimas

décadas están tomando de nuevo importancia debido a la gran globalización que

experimenta el planeta. Existen muchas especies de mosquitos, en concreto en España se

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han citado 63 (Eritja y col. 2006), de las cuales al menos 13 son vectores de algún tipo de

patógeno para el ser humano.

Los mosquitos experimentan una metamorfosis holometábola o completa lo que implica

que deben pasar por diferentes formas de desarrollo para completar su ciclo vital. Así

pues los adultos alados y aéreos depositan los huevos, ya sea en forma única o de

manera grupal, directamente sobre el agua o sobre superficies en contacto con la misma.

El foco larvario puede ser muy diverso según las propiedades del agua lo cual la hará

más o menos atractiva para los distintos géneros de mosquitos. Así pues los géneros

Anopheles y Culex tienden a criar en aguas estancadas o con poca corriente con más o

menos materia orgánica, y los géneros Aedes y Ochlerotatus prefieren poner los huevos

que pueden sobrevivir en zonas que temporalmente permanecen secas y que se inundan

periódicamente.

Existe gran variedad de hábitats acuáticos capaces de ser colonizados por los mosquitos.

Pueden ser naturales como charcos, zonas pantanosas, ríos con vegetación, huecos en los

árboles y en las rocas. Y también lugares artificiales como canales, sifones de acequias y

balsas de regadío, cultivos de arroz, piscinas y prácticamente cualquier objeto

susceptible de almacenar agua como macetas, neumáticos, latas, etcétera…

Tras la eclosión del huevo, la larva atraviesa 4 formas de desarrollo que se diferencian

principalmente por el tamaño y que reciben el nombre de L1, L2, L3 y L4

consecutivamente. Se alimentan por filtración activa de las partículas orgánicas en

suspensión, o bien por raspado de los substratos. De forma general, la duración del

desarrollo larvario depende estrechamente de las condiciones atmosféricas y

principalmente de la temperatura ambiental y por lo tanto está directamente relacionada

con la época del año en la que nos encontremos. Así pues en época estival, el ciclo tiende

a acortarse durando aproximadamente 7 días a diferencia de épocas más frías en las que

los ciclos de algunas especies pueden alargarse alcanzando meses de duración. La

disponibilidad de alimento es otro factor determinante que influye directamente en la

velocidad de crecimiento de la fase larvaria.

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La etapa pupal dura unos pocos días, durante la cual la pupa no se alimenta y alterna

movimientos rápidos por el agua con periodos de flotación en reposo en superficie que le

permite realizar el intercambio gaseoso. Cuando se ha completado el desarrollo, el

estuche pupal se desgarra y emerge el adulto o imago que permanece durante unos

minutos sobre la exuvia hasta que sus estructuras corporales se hayan secado y

endurecido permitiendo así el vuelo.

CICLO BIOLÓGICO

Aedes (Ae)

Culex (Cx)

Anopheles (An)

An.

An.An.

Cx.

Cx-Ae.

Ae.

Cx-Ae.

Ovíparos

4 larvas

(3mudas)

pupas móviles

Metamorfosis holometábola

Figura 1. Esquema del ciclo biológico de un culícido.

Generalmente los machos emergen primero y maduran sexualmente para realizar la

cópula inmediatamente después de que emerjan las hembras. Los machos son

poseedores de antenas muy plumosas y aparentes y presentan sin excepción palpos

largos muy bien desarrollados. Además la disposición de su genitalia es externa y

fácilmente apreciable. Las hembras por el contrario presentan antenas filiformes y menos

visibles y poseen una genitalia interna. Ambos sexos se alimentan de sustancias

azucaradas de origen vegetal que les proporciona la energía necesaria para volar. Tan

solo las hembras precisan ingerir sangre, requisito indispensable en algunas especies

para la maduración de los huevos. Los mosquitos poseen diferentes preferencias tróficas

según la especie, teniendo mayor tropismo por mamíferos, aves e incluso por anfibios o

reptiles. Las hembras una vez saciadas con sangre inician la digestión y el desarrollo

simultáneo de los ovarios, que culminará en la puesta de los huevos al cabo de unos días;

10


de estos huevos nacerán las larvas, completándose así el ciclo. La supervivencia de los

adultos al igual que en las etapas inmaduras depende directamente de la temperatura y

humedad ambiental, así como de la disponibilidad de alimento. Por lo general los

machos mueren antes que las hembras, quienes en algunos casos son capaces de

sobrevivir meses en reposo. Esto es lo que sucede con algunas especies que hibernan en

estado adulto en cuanto detectan el descenso de temperaturas durante el invierno

activándose nuevamente en la primavera con la mejora de las condiciones ambientales.

La presencia de abundantes mosquitos adultos (concretamente la observación de

abundantes machos) en un lugar concreto puede dar la pista de la cercanía de focos

larvarios por lo que habría que buscarlos con el fin de eliminarlos o realizar alguna tarea

de control. No obstante las hembras de algunas especies, en situaciones de ausencia de

alimento, son capaces de desplazarse varios kilómetros sobre todo si son favorecidas por

corrientes de aire. Por lo tanto a la hora de realizar controles, es importante no ceñirse

únicamente a zonas cercanas a masas de agua sino ampliar el rango de búsqueda a zonas

con cierta vegetación o lugares de reposo para estos insectos.

11


OBJETIVOS

Se detallan a continuación los objetivos del plan de vigilancia entomológica durante el

año 2016 tal como está reflejado en el pliego de condiciones del procedimiento:

OBJETIVO 1

Detectar el establecimiento de especies de mosquitos alóctonos especialmente aquellas

con capacidad invasora. Se ha prestado especial atención a las que pueden representar

un peligro potencial para la salud humana por ser hematófagas y por consiguiente,

posibles portadoras de patógenos no presentes en España. Para ello se ha llevado a cabo

un seguimiento de las especies de mosquitos presentes en la zona de influencia de los

principales puertos y aeropuertos.

En este periodo se continuó con la vigilancia de los aeropuertos civiles de Madrid,

Barcelona y Palma de Mallorca. Así como en las Bases aéreas militares de Torrejón de

Ardoz y Zaragoza. Además se trabajará en los puertos de Barcelona, Valencia y Palma de

Mallorca.

OBJETIVO 2

Realizar una vigilancia en potenciales zonas de expansión de Aedes albopictus (mosquito

tigre) para detectar poblaciones de reciente colonización.

OBJETIVO 3

Mantener la red de vigilancia entomológica para la detección de la presencia de Aedes

aegypti en los principales Puntos de Entrada (PdE) de mosquitos por vía marítima o aérea

en el archipiélago Canario. Para ello el trabajo se ha centrado en los puertos y

aeropuertos de las islas de Gran Canaria, Tenerife, La Palma, Lanzarote y Fuerteventura.

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OBJETIVO 4

Comprobar si se ha establecido recientemente el Aedes aegypti en algunas de las Islas de

la Comunidad Canaria que reciben un aporte de tráfico o de mercancías de zonas de

riesgo. Para ello se establecerán los oportunos puntos de muestreo.

OBJETIVO 5

Llevar a cabo pruebas de susceptibilidad de los mosquitos tigre (Aedes albopictus) adultos

frente a diferentes tipos de insecticidas en zonas seleccionadas, representativas de las

áreas de riesgo. Se deberán realizar al menos una vez al año, de cara a disponer de una

base de datos actualizada que sirva de referencia ante situaciones de emergencia.

13


OBJETIVO 1

1 METODOLOGÍA

Los métodos de muestreo empleados han sido principalmente dirigidos a la captura de

mosquitos adultos. Se han empleado diferentes tipos de trampas de captura para ampliar

el rango de especies capturadas así como para la elección del mejor método de captura

en función del entorno. El número de trampas utilizadas ha variado en cada instalación

en función de las características de cada aeropuerto/puerto intentando muestrear en los

diferentes tipos de ambientes tanto naturales como antrópicos y siempre que las medidas

de seguridad de cada enclave lo permitieran. Debido a la fototaxia positiva de los

mosquitos se han utilizado principalmente trampas de succión tipo mini CDC

(Communicable Diseases Center de EEUU), unas con luz blanca y otras con luz

ultravioleta. En alguno de los puntos de muestreo se han empleado conjuntamente con

Anhídrido carbónico (CO2), especialmente en aquellos con cierta contaminación

lumínica.

Para aumentar las posibilidades de detección, también se han empleado trampas que

llevan acoplados cebos químicos olorosos como método de atracción, éstos simulan los

metabolitos exudados por las personas o animales. Concretamente empleamos las

trampas de succión tipo BG-Sentinel, trampas de referencia en planes de vigilancia del

Aedes aegypti y Aedes albopictus a nivel internacional y que son especialmente útiles para

la monitorización de especies con actividad diurna. (ECDC 2012)

En cada una de las instalaciones se ha seguido el mismo protocolo de actuación al situar

y retirar las trampas. Protocolo diseñado específicamente para la elaboración de este

proyecto. Para el diseño del conjunto del trabajo se tuvo principalmente en cuenta las

zonas susceptibles de albergar insectos de interés sanitario. Los hangares y lugares de

carga y descarga de mercancías son especialmente atractivos para la colocación de

trampas debido a que se realizan en ellos actividades que podrían desempeñar un papel

importante en la introducción y/o salida de insectos de nuestro país. También formaron

parte de nuestras prioridades a la hora de organizar el muestreo et trabajo en ambientes

14


naturales con abundante vegetación y presencia de masas de agua como estanques o ríos

cercanos, etc… éstos podrían facilitar la cría y colonización de nuevas áreas por parte de

algunas poblaciones de mosquitos.

Durante el presente año se mantuvieron los puntos de muestreo de años anteriores

donde se obtenían capturas de dípteros de interés sanitario y aquellos que mostraron

resultados negativos han sido eliminados o sustituidos por nuevos puntos susceptibles

de ser interesantes para la captura de distintos dípteros de interés para el proyecto. En

caso concreto de Canarias, se ha podido muestrear en dos islas más, incluidas en los

nuevos PdE

Por lo tanto se trabajó en 5 zonas de la base aérea de Zaragoza, 5 zonas en la base militar

de Torrejón de Ardoz y 5 zonas en el área de influencia del Aeropuerto Madrid-Barajas.

En el aeropuerto de Barcelona se trabajó en 4 puntos y en el de Palma de Mallorca en 4

también.

En el puerto de Valencia se trabajó en 2 puntos, 4 en el puerto de Palma de Mallorca y

por último en el puerto de Barcelona se colocaron trampas en un solo punto como se

detallará más adelante.

Las trampas fueron colocadas con una periodicidad quincenal, mantenidas durante 24

horas en los puntos seleccionados siempre que las condiciones ambientales lo

permitieran.

Para el diseño del trabajo se tuvieron en cuenta los siguientes aspectos:

Selección de los PdE.

En los propios PdE, identificación de los diferentes puntos de muestreo.

Posibilidad de acceso a los mismos de una forma continuada a lo largo del

periodo de muestreo establecido.

Frecuencia y sistematización de los muestreos.

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Las estaciones de muestreo fueron seleccionadas en los primeros años del Plan Nacional

de Vigilancia entomológica, en una fase previa en la que se realizaron visitas a las áreas

de estudio, tratando de seleccionar puntos de agua representativos de las diferentes

unidades fisiográficas e intentando abarcar el máximo de superficie a estudiar. Así como

posibles lugares de entrada de adultos (hangares) procedentes de otros países.

METODOLOGÍA DE CAMPO

Captura de adultos

El modelo de trampa tipo CDC de luz blanca, suele colgarse de algún árbol o estructura

a una distancia de 1’5-1’8 metros del suelo. Funciona como atrayente para distintos

insectos y consta de 3 partes: la trampa propiamente dicha, formada por un cuerpo

principal de metacrilato que contiene un ventilador y una pequeña luz de baja

intensidad, la parte superior con los circuitos eléctricos que funcionan conectados a una

batería de 6 voltios y por último, en la parte inferior, el sistema de contención que

consiste en un cilindro de tela donde quedan atrapados los insectos. Toda esta estructura

está cubierta por una bandeja metálica que protege de condiciones climáticas adversas

(Figura 2).

Figura 2. Trampa CDC de luz blanca

16


Por otro lado la trampa tipo CDC de luz ultravioleta que es muy parecida a la anterior

con la diferencia de que la fuente lumínica es un tubo de luz ultravioleta. Las trampas

con célula fotoeléctrica funcionan desde una hora antes de la puesta del sol hasta una

hora después del amanecer. Se evita colocarlas cerca de fuentes de luz artificial porque se

reducen considerablemente las capturas (Figura 3).

Figura 3. Trampa CDC de luz UV

En el aeropuerto de Barcelona Sants se ha empleado la trampa EVS (Encephalitis Virus

Survey) de luz blanca. Éste tipo de trampa también se basa en el fototaxia positiva de

algunos insectos incluyendo además un recipiente donde se introduce el CO2 que sirve

como atrayente suplementario para los mosquitos (Figura 4).

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Figura 4. Trampa EVS de luz blanca con aporte de CO2

El cuarto modelo de trampa para captura de adultos empleada es la BG Sentinel Trap

que es muy distinta a las dos anteriores pues la captura de insectos esta vez se consigue

mediante atracción química. Con ésta trampa se usa un cebo que desprende sustancias

volátiles que simulan parte de las sustancias excretadas durante metabolismo de los

mamíferos.

Figura 5. Trampa de cebo químico BG Sentinel

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La trampa consta de un cilindro de tela plástica que alberga en su interior en la parte

central inferior un ventilador y una bolsa de contención para recoger los insectos en la

parte superior del mismo. Dentro se coloca el cebo (Lure) que va liberando lentamente

las sustancias volátiles que son diseminadas alrededor de la trampa gracias al ventilador.

La trampa tiene que ir conectada a una batería de 12 voltios y debido al tamaño

normalmente se colocan entre la vegetación a nivel del suelo (Figura 5). Como la fuente

de atracción no son las luces puede estar activa tanto por el día como por la noche.

Las trampas se colocaban en los lugares seleccionados y se recuperaban al día siguiente

por la mañana. Su funcionamiento durante 24h asegura las capturas durante los periodos

de máxima actividad de las diferentes especies de mosquitos.

Monitorización de estadios inmaduros

Para la detección de huevos de algunas especies se emplearon trampas de ovoposición u

ovitrampas. Son uno de los sistemas recomendados por el ECDC (European Center for

Diseasse Prevention and Control) para la detección de actividad reproductora de especies

de Aedes (Culicidae) arborícolas, entre los que se encuentran Aedes albopictus o Aedes

aegypti. Se trata de un método sencillo y económico mediante el cual se puede

determinar la presencia del insecto y en ocasiones correlacionar el número de huevos con

la densidad poblacional de hembras (Manica y col. 2017). Estas trampas consisten en un

recipiente, generalmente de color oscuro que dispone de un orificio de drenaje para

evitar el llenado completo por agua de lluvia. Las ovitrampas se llenan

aproximadamente hasta la mitad de agua (250 ml) y se coloca una pieza de madera

sumergida, ésta será el sustrato sobre el cual la hembra de mosquito hará la puesta de

huevos. Durante los muestreos se utilizaron recipientes de color negro de 400 ml de

capacidad con tablillas de madera de 12 x 3 cm como superficie para la ovoposición. Las

hembras de algunas especies del género Aedes se sienten atraídas por la humedad que

empapa la pieza porosa, haciendo la puesta de huevos sobre ella, justo en la interfase

agua-aire.

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Siguiendo las recomendaciones del ECDC se buscó la situación más adecuada para

instalar las trampas de oviposición:

- En zonas de sombra, protegidas del viento, preferentemente entre arbustos.

- A ser posible, situadas a nivel de tierra, no superando los tres metros de altitud.

- Que no estén a la vista, evitando así que las trampas sean robadas o volcadas, etc…

- Situados lejos de aspersores de agua de jardines o cualquier otra fuente de agua.

La frecuencia de muestreo fue variable según la zona de estudio, realizándose recogidas

semanales (en aquellos puntos seleccionados para realizar el seguimiento anual) y

recogidas quincenales en el resto de puntos designados para la vigilancia.

Durante los muestreos se sustituye tanto el agua como las tablillas de madera de la

trampa. Éstas se etiquetan y almacenan individualmente para su envío al laboratorio. Si

en el agua de las ovitrampas se observan pupas, éstas se introducen en un eclosionador

hasta su metamorfosis a adulto y las larvas se montan entre porta y cubre con medio de

montaje para su posterior identificación. Las tablillas son revisadas bajo la lupa binocular

entre 10 y 80 aumentos, identificando y realizando el recuento de los huevos. La eclosión

de éstos en condiciones de laboratorio se lleva a cabo siguiendo las recomendaciones de

Alarcón-Elbal y col. (2010).

20


Figura 6. Vista de una ovitrampa y táblex de oviposición utilizadas en el estudio.

Figura 7. Huevos de Ae. albopictus vistos bajo la lupa binocular.

Se ha monitorizado en los ambientes naturales que poseían lugares susceptibles de servir

de refugio a los mosquitos durante el día (vegetación arbustiva y arbórea) así como

enclaves donde potencialmente puedan desarrollarse hábitats de cría (zonas encharcadas

de forma permanente o temporales) de las diferentes especies de mosquitos.

En los lugares con aguas estancadas se han prospectado buscando de forma activa la

presencia de larvas y pupas de mosquitos utilizando la técnica del Dipper aforado y

siguiendo los protocolos previamente establecidos. Esta técnica consiste en la recogida

de pequeñas muestras de agua mediante la utilización de un “cazo” enmangado y la

21


verificación de la presencia o ausencia de estadios inmaduros de mosquito. Permite

hacer una estimación de las densidades de mosquitos en esas zonas.

Figura 8. Técnica de dipping

La elección de los días de muestreo estuvo estrechamente relacionada con las

condiciones atmosféricas pues hay que evitar hacer las capturas aquellas noches en las

que se prevean precipitaciones o fuertes ráfagas de viento pues aparte de reducir

considerablemente el número de capturas pueden romperse o estropearse las trampas.

La vigilancia se ha realizado, siempre que se ha podido, principalmente en la zona de

influencia de descarga de las aeronaves así como en los hangares y almacenes donde se

abren los contenedores de carga, lugares que puedan servir de refugio temporal de

mosquitos que lleguen dentro de las aeronaves o de los contenedores de mercancías.

Todas las trampas, por medidas de seguridad, se han ubicado siempre de acuerdo con

las directrices específicas de las autoridades de cada aeropuerto/puerto con el objetivo

de no suponer ningún obstáculo a las actividades de las instalaciones y de mantener los

niveles de seguridad necesarios.

22


PROCESADO DE LAS MUESTRAS EN EL LABORATORIO

El material recogido en las trampas de adultos se introduce en cajas aislantes de

poliespan con termoplacas frías para conservar los mosquitos en condiciones adecuadas

de temperatura y humedad hasta su llegada al laboratorio.

Una vez allí, los contenedores se introducen en un congelador donde permanecen 24

horas con el fin de eutanasiar por frío a los artrópodos capturados, de esta manera se

evita dañar las muestras y se conservan todos los caracteres taxonómicos que serán

necesarios para su correcta identificación. Posteriormente se procesan las muestras

separando todos los ejemplares de insectos hematófagos de interés sanitario (culícidos,

flebótomos, ceratopogónidos, simúlidos…) pues el procesado será distinto según el

orden del que se trate. Para ello se emplea una lupa binocular con objetivos de 90

aumentos y con fuente de luz fría.

Montaje e identificación de culícidos

Una vez separados los culícidos, lo primero que se determina es el sexo puesto que la

identificación a nivel de especie se lleva a cabo con diferentes protocolos. Las hembras de

culícido, se introducen en seco en placas Petri para su conservación, también pueden ser

congeladas. Si se quiere, para mayor comodidad a la hora de manipular, se puede

proceder a montar los especímenes sobre minucias (pequeñas agujas entomológicas),

éstas deben ser insertadas en el tórax del insecto atravesándolo entre las patas (Figura 9).

El otro extremo de la aguja se clavará en un pedacito de corcho, que será lo que

manipulemos cuando se proceda a la identificación de los mosquitos bajo la luz de la

lupa binocular. Esta forma de trabajar evita el deterioro de los especímenes en los

procesos de identificación. Se tendrá en cuenta la morfología general de la hembra para

la determinación de la especie.

23


Figura 9. Hembra de Ochlerotatus caspius montada con una minucia entomológica

Los machos en cambio, deben ser sometidos a otro procedimiento ya que tan solo se

emplea la genitalia para su identificación. Por ello, lo primero que hay que hacer es

introducir los machos en tubos Eppendorf con alcohol al 70% durante una semana para

fijar correctamente los tejidos. A continuación bajo la luz de una lupa binocular y con la

ayuda de dos agujas enmangadas, se realiza un corte a nivel del último segmento

abdominal dejando libre así la genitalia. Se coloca una gota de líquido de Hoyer (líquido

de montaje) sobre un porta y se dispone la genitalia de uno o varios machos sobre la

gota, por último se coloca el cubreobjetos teniendo de nuevo cuidado en no dejar

burbujas (Figura 10).

La preparación debe permanecer durante una semana a 55ºC en una estufa, para que las

genitalias se aclaren lo suficiente y poder así observar las estructuras que permitan una

correcta identificación mediante la utilización de un microscopio y con la ayuda de

claves específicas.

24


Figura 10. Genitalia de macho de Culex pipiens montada entre porta y cubre

Las larvas y pupas de culícidos, serán fijadas en alcohol al 70% con el fin de fijar los

tejidos y mantener su anatomía en buen estado hasta su posterior montaje entre porta y

cubre. Las preparaciones deberán de permanecer durante una semana a 55ºC en una

estufa, para que las muestras se aclaren lo suficiente y poder así observar las estructuras

de la cabeza y del los últimos segmentos del abdomen, que permitan una correcta

identificación (Figura 11).

La identificación de adultos y larvas se lleva a cabo mediante la utilización de un

microscopio y con la ayuda de claves dicotómicas específicas. (Schaffner y col. 2001)

Figura 11. Larva de culícido montada entre porta y cubre

ZONAS DE ESTUDIO

Se ha realizado este trabajo en 8 PdE, los 5 principales aeropuertos españoles, tanto

civiles como militares, seleccionados en función del tráfico aéreo con países de riesgo

25


endémicos de enfermedades vectoriales. Además se ha trabajado en 3 de los principales

puertos del país. Dependiendo de las características de cada uno de los enclaves así

como de los protocolos de seguridad propios de cada punto hemos diseñado planes de

monitorización específicos y adaptados a cada uno de ellos, para la detección de los

mosquitos que puedan encontrarse en su área de influencia.

A continuación se detallan los aeropuertos civiles y militares así como los puertos donde

se ha establecido el plan de vigilancia entomológica

Aeropuertos civiles:

* Aeropuerto de Madrid- Barajas- Adolfo Suárez

* Aeropuerto de Barcelona- El Prat

* Aeropuerto de Palma de Mallorca- Base aérea de Son Sant Joan

Aeropuertos militares

* Base aérea de Torrejón de Ardoz- Madrid

* Base aérea de Zaragoza

Puertos civiles

* Puerto de Valencia

* Puerto de Palma de Mallorca

* Puerto de Barcelona

AEROPUERTOS CIVILES

Madrid Barajas

El aeropuerto Madrid - Barajas - Adolfo Suárez es uno de los principales puntos de

entrada de personas en España. El aeropuerto se ubica en el noreste de la capital, a tan

solo 12 kilómetros del núcleo urbano, lo cual le convierte en una pieza fundamental del

26


sistema nacional turístico. Tiene una superficie de 39 km², de los que 4,5 Km²

corresponden a zonas de espacios libres que incluye un área de protección ambiental de

2,5 Km². Tras su ampliación, se consolida como un aeropuerto hub donde las compañías

aéreas pueden aumentar su conectividad entre los mercados hispanoamericano, nacional

y europeo. Todo esto no ha hecho más que afianzar su posición de liderazgo entre los

principales aeropuertos del mundo situándose en el quinto puesto entre los aeropuertos

europeos y el primer aeropuerto español por tráfico de pasajeros, carga aérea y

operaciones. Las terminales se localizan en el término municipal de Madrid, pero el

campo de vuelos se extiende también por Alcobendas, San Sebastián de los Reyes y

Paracuellos del Jarama. Los muestreos se enfocan de forma que se puedan abarcar las

terminales de carga y descarga de mercancías y equipajes que accidentalmente pudieran

contener ejemplares de mosquitos potencialmente invasores o portadores de alguna

enfermedad.

Se han colocando 5 trampas mini CDC de luz blanca conservando aquellos lugares

estratégicos de las instalaciones y espacios naturales del área de seguridad del

aeropuerto seleccionados en años anteriores. Hay que destacar la importancia de zonas

de agua como arroyos, depuradoras y zonas verdes como el observatorio de fauna que

contiene un lago natural cerrado al público. Éste último enclave de gran importancia en

la vigilancia epidemiológica por acoger regularmente miles de aves de paso

estrechamente relacionadas con las diseminación y transmisión de arbovirus como el

Virus del Nilo Occidental entre otros.

Las trampas se han puesto quincenalmente desde el mes de agosto hasta finales del mes

de octubre. Se colocaron trampas de luz y un total de 10 ovitrampas repartidas por el

recinto del aeropuerto. Este año se tuvo algunos contratiempos con los permisos de

acceso al aeropuerto por ello se retrasó el inicio del trabajo de campo y se realizaron un

total de 7 visitas.

27


Aeropuerto Localización de las trampas

Madrid- Barajas Arroyo de Rejas (CDC)

Madrid- Barajas Observatorio de Fauna (CDC)

Madrid- Barajas Antigua umbral RWY Caballos (CDC)

Madrid- Barajas Arroyo de las Zorreras (PRESA)(CDC)

Madrid- Barajas Arroyo de las Zorreras (DEPURADORA)(CDC)

Tabla 1. Puntos de vigilancia en el aeropuerto de Barajas

Barcelona El Prat

El aeropuerto de El Prat se encuentra situado a 12 kilómetros al suroeste de la Ciudad

Condal, entre los términos municipales de El Prat de Llobregat, Viladecans y Sant Boi. Es

el segundo aeropuerto más importante de España en cuanto a tráfico aéreo tras el

aeropuerto madrileño de Madrid-Barajas con el que mantiene el corredor aéreo regular

de pasajeros más transitado del mundo. El hecho de que esté solamente a 3 kilómetros

del Puerto de Barcelona, uno de los puertos más importantes del Mediterráneo en tráfico

de contenedores y líder del mercado de cruceros, hace de éste aeropuerto un punto

estratégico en cuanto a la vigilancia de vectores importados. Un ejemplo claro de ello es

la vigilancia que se lleva a cabo desde hace años de las poblaciones de la especie invasora

Aedes albopictus.

Se han muestreado en dos enclaves, muy próximos a los hangares y a la Reserva natural

del Delta de Llobregat que presenta numerosos puntos de aguas estancadas que

pudieran servir de atracción a los mosquitos importados. Se han empleando 4 trampas

de luz blanca, 2 tipos CDC y 2 EVS cebadas con un atrayente de CO2 con periodicidad

quincenal desde el mes de mayo hasta la segunda quincena de noviembre en las

cercanías de los salicorniales y praderas halófilas, muy abundantes en la zona. Este tipo

de ambientes suele atraer a multitud de especies de mosquitos del género

Aedes/Ochlerotatus. Se realizaron un total de 12 visitas.

28



Barcelona- El Prat A: garita de la residencia militar (CDC)

Barcelona- El Prat B: garita de la residencia militar (CDC)

Barcelona- El Prat Aeropuerto Tcn.: aparcamiento del bloque técnico (EVS)

Barcelona- El Prat Aeropuerto Res.: garita de la residencia militar (EVS)

Tabla 2. Puntos de vigilancia en el aeropuerto de Barcelona

Palma de Mallorca

Se han seleccionado las infraestructuras con un mayor tráfico de personas y mercancías en la

isla de Mallorca, concretamente el Aeropuerto Internacional de Palma de Mallorca (PMI).

Se encuentra situado dentro de la Bahía de Palma entre la ciudad y uno de los destinos

turísticos más importantes de la isla: la playa de Palma y s’Arenal de Llucmajor. Esta

comunicado a través de la autovía de Levante y de la carretera de Manacor.

Debido a las restricciones en la entrada de personal ajeno al aeropuerto, los muestreos se

realizaron dentro de las instalaciones militares de Son Sant Joan, que se encuentra situada al

final de las pistas del aeropuerto civil internacional.

Se buscaron las zonas más adecuadas para la instalación de las trampas, distinguiendo 4

puntos (Cuerpo de Guardia, Botiquín, Torre de Control-Spantax y Patio de Armas).

Los muestreos dieron comienzo a mediados de julio hasta mediados de noviembre con una

frecuencia mínima quincenal, reforzando los muestreos a final de verano. Se realizaron un

total de 14 visitas. Las trampas BG y de luz se mantuvieron operativas durante un período

comprendido entre 12 y 24 horas en el lugar de muestreo como se indica en la siguiente

tabla:

Tabla 3. Puntos de vigilancia en las instalaciones militares de Son San Joan. Palma de Mallorca


Palma de Mallorca- Son San Joan Torre control – Spantax (BG-CDC)

Palma de Mallorca- Son San Joan Patio de Armas (BG-CDC)

Palma de Mallorca- Son San Joan Cuerpo de Guardia (BG-CDC)

Palma de Mallorca- Son San Joan Botiquín (BG-CDC)

29


AEROPUERTOS MILITARES

Base aérea de Torrejón de Ardoz

La Base Aérea de Torrejón de Ardoz se sitúa al Noroeste de la región madrileña y a unos

20 kilómetros del centro de la ciudad. Incluida dentro del término municipal del que

toma su nombre, mantiene un perímetro de 20 km e incluye una superficie aproximada

de 11 km2 de los que casi 2 km² corresponden a un campo de golf con arboleda riparia.

Siendo recorrida por el arroyo Ardoz de NO-SE, y por el Torote que la recorre en el este

de N-S. Históricamente la Base aérea de Torrejón ha sido un punto clave para la logística

nacional e internacional ya que fue originalmente la sede del Instituto Nacional de

Técnica Aeroespacial así como fue una de las tres principales sedes de la Fuerza Aérea de

los Estados Unidos en España junto a las Bases Aéreas de Zaragoza y Morón. En la

actualidad multitud de vuelos realizan paradas técnicas en sus instalaciones por lo que

esto implica un alto riesgo de introducción de especies alóctonas de forma accidental.

Se han colocado 5 trampas en las inmediaciones de la base, 4 trampas de luz blanca en

zonas verdes entre las que se encuentra el campo de golf y entre la vegetación bajo

influencia del arroyo que aporta la humedad necesaria para la supervivencia de estos

insectos. Además se ha colocado una trampa BG en el interior del hangar principal de la

base y 10 trampas de ovoposición repartidas por las mismas zonas.

Los muestreos con carácter quincenal, comenzaron este año en junio y hasta octubre se

han realizado un total de 8 visitas a la base aérea. Solo se representan en las gráficas y

tablas adjuntas los datos a partir de los primeros positivos. El tipo de muestreo que se

estableció fue tanto cuantitativo como cualitativo ya que se pretende recoger el mayor

número de especies de interés sanitarios presentes en el área. Los puntos seleccionados

para la colocación de trampas fueron los siguientes:

30



Torrejón de Ardoz T2 Hangar nº2 A (BG)

Torrejón de Ardoz T4 Arroyo S.A.T.A (CDC)

Torrejón de Ardoz T4 B Arroyo S.A.T.A b. (300m arroyo abajo) (CDC)

Torrejón de Ardoz T5 Campo de golf (CDC)

Torrejón de Ardoz T6 Entrada (CDC)

Tabla 4. Puntos de vigilancia en la Base aérea de Torrejón de Ardoz

Base aérea de Zaragoza

La Base Aérea de Zaragoza está situada al suroeste de la ciudad, en el término municipal

de Garrapinillos, a unos 15 kilómetros de la capital aragonesa. Se trata de un aeródromo

de utilización cívico-militar que tiene una superficie de 23Km² y un perímetro de 36 Km

situado en la margen derecha del Canal Imperial de Aragón. Debido a su privilegiada

situación, donde en un radio de trescientos kilómetros se agrupan más de veinte

millones de personas, es un importante centro distribuidor de mercancías, en 2012 fue el

tercer aeropuerto de la red de Aena Aeropuertos en volumen de carga tras Madrid-

Barajas y Barcelona-El Prat. Por otro lado, la histórica de la Base Aérea de Zaragoza

(BAZ) no deja lugar a duda de la importancia que desempeña como apoyo a otras bases

aéreas nacionales e internacionales. En el pasado, fue utilizada por las unidades de la

aviación nacional además de por la Fuerza Aérea de los Estados Unidos (USAF) desde

1958 hasta 1994, siendo una de las 3 bases aéreas de la USAF en España durante la

Guerra Fría, junto a la de Torrejón y a la de Morón. En la actualidad sigue ocupando un

lugar estratégico para la realización de las múltiples actividades que desarrolla el Ejército

del Aire Español por lo que la vigilancia entomológica realizada en sus instalaciones

puede ser muy representativa del riesgo de introducción de especies exóticas en nuestro

país.

Se colocaron 4 trampas tipo mini CDC de luz (2 de luz blanca y 2 de luz ultravioleta)

localizadas en zonas verdes como el campo de golf situado en el interior mismo de la

base, entre la vegetación cercana a las pistas y hangares así como en aquella que rodea

las balsas artificiales, piscinas y desagües. Además se ha colocado 1 trampa BG sentinel

en las inmediaciones del hangar de carga y descarga del EADA. La periodicidad del

31


muestreo fue quincenal desde el mes de julio hasta finales del mes de octubre con un

total de 7 visitas. Se colocaron 6 trampas de oviposición, 3 en cada zona de la BAZ.

Los puntos seleccionados para la colocación de las trampas de fueron los siguientes:


BAZ Sur Golf (CDC)

BAZ Sur EADA (BG )

BAZ Sur Desagüe UME (CDC)

BAZ zona Valenzuela Central eléctrica (CDC)

BAZ ALA 15 Perros PA (CDC)

Tabla 5. Puntos de vigilancia en Base aérea de Zaragoza

PUERTOS

Valencia

El Puerto de Valencia es uno de los principales puertos de tráfico comercial en el

Mediterráneo. Acoge un tráfico regular de pasajeros y mercancías con otros puertos

españoles e internacionales. Asimismo, su privilegiada situación geográfica en el centro

del arco mediterráneo occidental, en línea con el corredor marítimo este-oeste que

atraviesa el Canal de Suez y el Estrecho de Gibraltar, le posiciona como primera y última

escala de las principales compañías marítimas de línea regular entre América, la Cuenca

Mediterránea y el Lejano Oriente. Por todo ello supone un punto estratégico para la

vigilancia de la introducción de vectores por el este de la Península Ibérica.

Se ha muestreado quincenalmente desde el mes de julio hasta finales del mes de

septiembre con un total de 8 visitas. Al igual que en 2015 se han colocado trampas de

cebo oloroso tipo BG Sentinel en todas las zonas muestreadas (zona de influencia del PIF

y zonas principales de atraque de buques) puesto que en el puerto hay mucha

contaminación lumínica por lo que las trampas tipo CDC con luz como atrayente no son

efectivas. Las 3 trampas de oviposición se colocaron en el muelle de poniente.

32


Puerto Localización de las trampas

Valencia Espigón Turia norte (BG)

Valencia Muelle costa (BG)

Tabla 6. Puntos de vigilancia en el puerto de Valencia

Palma de Mallorca

El puerto de Palma de Mallorca es el más grande e importante de las islas Baleares,

cubriendo la línea de costa entre el muelle viejo y el dique del oeste de la Bahía de Palma.

Se trata de uno de los más importantes de todo el Mediterráneo en relación al tráfico de

mercancías, navegación deportiva y pesca y tráfico de cruceros.

Debido al difícil acceso solo se colocaron trampas en el dique de oeste, que se caracteriza por

presentar una elevada actividad de circulación de vehículos, pasajeros y mercancías. Se

trabajó de forma quincenal y se realizaron 10 visitas. Los muestreos de adultos realizados

mediante trampas BG se complementaron con muestreos mediante trampas de luz.

Los sistemas utilizados para la detección de especies invasoras de Culícidos fueron

instalados en las zonas que se detallan a continuación:


Palma de Mallorca Dique de oeste (BG)

Palma de Mallorca Muelle de Ribera en San Carlos

Palma de Mallorca Plataforma adosada al Dique del Oeste

Palma de Mallorca Muelles de Poniente

Tabla 7. Puntos de vigilancia en el puerto de Palma de Mallorca

Barcelona

El Puerto de Barcelona está situado en el noreste de la ciudad de Barcelona, encajado

entre la nueva desembocadura del río Llobregat y el barrio de la Barceloneta. Con más de 800

ha de superficie, es el mayor puerto del Mediterráneo en tráfico de cruceros y mercancías. Se

trabajó de forma quincenal desde el mes de mayo hasta noviembre, realizando así 12 visitas.

33



Barcelona Puerto comercial (EVS)

Tabla 8. Puntos de vigilancia en el puerto de Barcelona

2 RESULTADOS

AEROPUERTOS CIVILES

Madrid Barajas

En total se han identificado cuatro especies de mosquitos culícidos diferentes: Culex

pipiens, Anopheles atroparvus, Culiseta longiareolata y Culiseta annulata.

El número total de ejemplares capturados ha sido de 180 cuya composición específica se

muestra en la tabla a continuación:

Especie Totales

Culex pipiens 128

Anopheles atroparvus 13

Culiseta longiareolata 36

Culiseta annulata 3

TOTAL 180

Tabla 10. Especies identificadas en el aeropuerto de Barajas

34


Figura 18. Variación por estación de las capturas en el aeropuerto Madrid Barajas.

La gran mayoría de los ejemplares capturados, concretamente el 71,11% corresponde a la

especie Culex pipiens y se encuentra presente en todas las estaciones de muestreo. Le

sigue Culiseta longiareolata y Anopheles atroparvus con un 20% y un 7,22%

respectivamente. Ésta última es la especie con mayor potencial como vector de

paludismo, además Cx.pipiens es una especie cosmopolita ligada a la transmisión de

múltiples enfermedades.

71%

7%

20%

2%

Culex pipiens Anopheles atroparvus

Culiseta longiareolata Culiseta annulata

Figura 19. Porcentaje de especies de culícidos en el Aeropuerto Madrid Barajas.

35


0

10

20

30

40

50

60

70

80

Culex pipiens Anopheles atroparvus

Culiseta longiareolata

Culiseta annulata

machos

hembras

Figura 20. Sex-ratio de las especies de culícidos capturadas en el Aeropuerto Madrid Barajas.

Se han capturado tanto hembras como machos por lo que se podría deducir que el foco de

cría no está muy alejado del lugar donde se colocan las trampas. La captura de hembras es lo

realmente relevante desde el punto de vista epidemiológico puesto que son las responsable

de la posible transmisión de patógenos.

0 20 40 60 80 100

01/07/2016

18/07/2016

05/08/2016

25/08/2016

09/09/2016

22/09/2016

05/10/2016

Culex pipiens

Anopheles atroparvus


Culiseta annulata

Figura 21. Evolución de las capturas de culícidos a lo largo del muestreo en el Aeropuerto Madrid Barajas.

Tan solo Cx.pipiens ha sido capturada a lo largo de todo el muestreo, no es de extrañar

puesto que es una especie muy abundante y capaz de críar en hábitats muy diversos.

36


No se han contabilizado huevos ni larvas de especies de culícidos en ninguna de las

tablillas recogidas de las trampas de oviposición a lo largo de las 7 visitas que se

realizaron al aeropuerto de Barajas.

Entre otro grupos de insectos hematófagos capturados en los muestreos realizados en

Madrid-Barajas, cabe destacar la identificación de ejemplares pertenecientes a la

subfamilia Phlebotominae. Concretamente ejemplares de las especies Sergentomyia minuta

y en mayor proporción Phlebotomus perniciosus, considerado principal vector de

Leishmaniasis en España.

Especie Totales

Phlebotomus (L) perniciosus 247

Sergentomyia minuta 80

TOTAL 327

Tabla 11. Especies de flebotomos identificadas en el aeropuerto de Barajas

Figura 22. Detalle de la dinámica temporal de las capturas de flebótomos en el Aeropuerto de Madrid-Barajas.

37


0

5

10

15

20

25

30

35

40

45

Phlebotomus (L) perniciosus hembras

Phlebotomus (L) perniciosus machos

Sergentomyia minuta hembras

Sergentomyia minuta machos

Figura 23. Sex-ratio de las especies de flebotomos capturadas en las diferentes estaciones de muestreo.

Este año, ha habido capturas en todas las estaciones de muestreo, se han detectados

ejemplares de culícidos y de flebótomos en todos los lugares donde se colocan trampas

en el aeropuerto de Barajas.

Barcelona El Prat

Desde el mes de mayo hasta noviembre, se han identificado un total de seis especies:

Ochlerotatus caspius, Ochlerotatus detritus, Aedes albopictus, Culex pipiens, Culiseta subochrea

y Coquillettidia richiardii. Se subraya un año más la presencia de mosquito tigre (Aedes

albopictus) entre las capturas realizadas en las instalaciones del aeropuerto.

Se han capturado un total de 255 ejemplares hembra distribuidos por especies como

sigue:

Especie Totales

Culex pipiens 94

Ochlerotatus caspius 5

Aedes albopictus 5

Ochlerotatus detritus 1

Culiseta subochrea 1


TOTAL 108

Tabla 12. Especies de culícidos identificadas en el aeropuerto de Barcelona

38


Un año más, destaca Ochlerotatus caspius con 201 ejemplares correspondiente al 78,82 %

de las capturas totales realizadas este año. El aeropuerto de Barcelona linda con el mar y

se caracteriza por tener extensas zonas de salicorniales y praderas halófilas que se

encharcan con facilidad sobre todo por las lluvias dando lugar a importantes criaderos

de esta especie de mosquito. Culex pipiens es la segunda especie en abundancia con un

14,5% de las capturas, mientras que las especies Aedes albopictus y Ochlerotatus detritus,

especies con capacidad vectorial, son menos abundantes representando un 1,96% y

1,56% respectivamente.

Figura 24. Porcentaje de especies de culícidos hembras en las distintas zonas de muestreo del Aeropuerto de Barcelona.

39


0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

Aeropuerto BCN A Aeropuerto BCN B Aeropuerto res. Aeropuerto Tecn.

Culex pipiens

Ochlerotatus caspius

Aedes albopictus

Ochlerotatus detritus

Culisieta subochrea

Coquillettidia richiardii

Figura 25. Detalle de las capturas de culícidos en las distintas zonas de muestreo del Aeropuerto de Barcelona.

Se han realizado capturas en todas las estaciones de muestreo seleccionadas en el Aeropuerto

de Barcelona, no obstante donde mayor variedad ha habido es en la estación más cercana a la

residencia militar. Todos los ejemplares calculados fueron hembras.

La especie Ochlerotatus caspius destaca por haber sido capturado en todas las estaciones

de muestreo salvo en la del aparcamiento del bloque técnico. La biología de esta especie

hace que cuando se inunda el sustrato donde han sido depositados los huevos, se den

abundantes eclosiones de adultos en momentos puntuales de lluvias abundantes.

0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100

19-05-16

01-06-16

16-06-16

30-06-16

14-07-16

28-07-16

10-08-16

25-08-16

08-09-16

22-09-16

06-10-16

26-10-16

10-11-16

Culex pipiens


Aedes albopictus


Culisieta subochrea

Coquillettidia richiardii

Figura 26. Evolución de las capturas de culícidos a lo largo del muestreo en el Aeropuerto de Barcelona.

40


La única especie presente a lo largo de todo el periodo y en todas las estaciones de

muestreo ha sido Cx. pipiens.

Palma de Mallorca

En total se han identificado cuatro especies diferentes: Culex pipiens, Aedes albopictus,

Ochlerotatus caspius y Ochlerotatus detritus.

El número total de ejemplares capturados incluidos en la familia Culicidae ha sido de

1413, siendo el 99,6% hembras y el 0,4% machos y cuya composición específica se

muestra a continuación:

Especie Totales

Culex pipiens 353


Aedes albopictus 23


otros 107

TOTAL 1413

Tabla 13. Especies de culícidos identificadas en el aeropuerto de Palma de Mallorca

La especie capturada en mayor proporción es Ochlerotatus caspius, supone un 65,6% de

las capturas, obteniéndose la mayor parte de las mismas en los muestreos realizados en

las instalaciones militares mediante las trampas mini CDC cebadas con CO2. Por su

parte, Culex pipiens ha supuesto el 24,9% de las capturas, estando presente en ambas

localizaciones al igual que Ae. albopictus (1,6%), hay que destacar que la mayoría de

ejemplares de ésta última especie fueron capturados mediante la utilización de la trampa

BG-sentinel. Algunos de los culícidos no se pudieron identificar a nivel de especie

debido a su mal estado de conservación.

41


25%

66%

2%

0%

7%

Culex pipiens


Aedes albopictus


otros

Figura 27. Porcentaje de mosquitos adultos capturados en el Aeropuerto de Son Sant Joan en Palma de Mallorca.

Figura 28. Dinámica temporal de lo culícidos capturados en el aeropuerto de Son Sant Joan en Palma de Mallorca.

Cx. pipiens ha mostrado un comportamiento irregular en el número de capturas durante

todo el periodo de muestreo, con tres picos de capturas: a finales de julio, finales de

septiembre y entre finales de octubre.

Se han colocado 5 trampas de oviposición en el área de influencia del aeropuerto de

Palma de Mallorca. Se obtuvo un total de 56 muestras, siendo el 47,6% positivas a huevos

de Ae. albopictus.

42


AEROPUERTOS MILITARES

Base aérea de Zaragoza

En 2016 se han capturado 51 ejemplares de dos especies diferentes como se detalla a

continuación:

Especie Totales

Culex pipiens 31


otros 10

TOTAL 51

Tabla 14. Especies capturadas en la Base aérea de Zaragoza

El 75,6% de las capturas identificadas corresponden a Cx. pipiens. El 19,6% de culícidos

capturados no han podido ser identificados a nivel de especie debido a su mal estado de

conservación.

Figura 29. Porcentaje de mosquitos adultos capturados en la Base aérea de Zaragoza.

Este año ha habido capturas en tres de las seis estaciones muestreadas. Como se observa

en la gráfica, el 94,1% de las capturas se realizaron en la zona de desagüe de la UME que

es un lugar donde constantemente hay algo de agua estancada y por lo tanto suele crecer

vegetación aportando así humedad , refugio y alimento a los mosquitos en esa zona.

43


0

5

10

15

20

25

30

35

Cx.pipiens Cs.longiareolata

Figura 30. Variación por estación de muestreo de las capturas de culícidos en la Base aérea de Zaragoza

0

10

20

30

40

50

60

70

80

Culex pipiens Culiseta longiareolata

machos

hembras

Figura 31. Sex-ratio de las especies identificadas en la Base aérea de Zaragoza

La mayoría de los ejemplares son machos, este hecho se explica porque como hemos

dicho anteriormente el lugar donde se han producido la mayoría de las capturas es un

desagüe donde se acumula constantemente agua. Los machos no suelen alejarse del foco

de cría ya que suelen esperar a que las hembras emerjan para realizar la copula.

44


Figura 32. Evolución de las capturas de culícidos a lo largo del muestreo en la Base aérea de Zaragoza

Cabe destacar que se han capturado junto a los culícidos, 58 ejemplares adultos

pertenecientes a la subfamilia Phlebotominae que incluye algunas especies de interés

vectorial, concretamente se identificaron ejemplares de las especie Phlebotomus

perniciosus, Phlebotomus papatasi y Sergentomyia minuta. A excepción de la última especie,

las demás están en menor o mayor medida relacionadas con la transmisión de la

leishmaniasis y podrían convertirse en un grave problema en sanidad animal como de

salud pública.

Especie Totales


Phlebotomus papatasi 3


TOTAL 58

Tabla 15. Especies de flebótomos capturadas en la Base aérea de Zaragoza

45


0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

Ph.perniciosus Ph.papatasi S.minuta

machos

hembras

Figura 33. Sex-ratio de poblaciones de flebotomos identificados en la Base aérea de Zaragoza.

Figura 34. Variación por estaciones de muestreo de las capturas de flebotomos en la Base aérea de Zaragoza

Además, tras las 7 revisiones de las trampas de ovoposición realizadas no se

contabilizaron huevos compatibles con la morfología de ningún culícido en ninguna de

las 35 tablillas recogidas.

46


Base aérea de Torrejón de Ardoz

Se han identificado dos especies diferentes: Culex pipiens y Culiseta longiareolata. Se

contabilizaron un total de 109 ejemplares como se detalla a continuación:

Especie Totales

Culex pipiens 104


TOTAL 109

Tabla 15. Especies de culícidos capturadas en la Base aérea de Torrejón de Ardoz

La especie mejor representada ha sido Cx. pipiens con el 95,41% de las capturas, siendo el

41,1% de los ejemplares hembras.

95%

5%


Figura 35. Porcentaje de culícidos capturados en la Base aérea de Torrejón de Ardoz

47


0

10

20

30

40

50

60

hangar SATA

arroyo SATA

arroyo SATABB

árbol campo

golf

entrada

Culex pipens


Figura 36. Variación por estación de muestreo de las capturas realizadas en la Base aérea de Torrejón de Ardoz

Cx. pipiens ha sido la especie más abundante desde el comienzo del muestreo en el mes

de julio y a falta del hangar de la SATA donde no se han realizado capturas, esta especie

ha sido identificada en todas las estaciones de muestreo.

0 5 10 15 20 25

23/06/2016

12/07/2016

29/07/2016

19/08/2016

31/08/2016

13/09/2016

27/09/2016

11/10/2016

Culex pipens


Figura 37. Evolución de las capturas durante el tiempo de muestreo en la base aérea de Torrejón de Ardoz

Las máximas densidades se alcanzan en el mes de julio y disminuyen progresivamente

hasta no obtener capturas en el último muestreo de finales de octubre debido

probablemente a la bajada de temperaturas y poniendo así fin a los muestreos de 2016.

48


0

20

40

60

80

100

120


hembras

machos

Figura 38. Sex-ratio de los culícidos capturados en la base aérea de Torrejón de Ardoz

En ninguna de las 6 visitas realizadas a la base aérea de Torrejón de Ardoz se recogieron

trampas de ovoposición con presencia de huevos compatibles con la morfología de

culícidos de interés.

En los muestreos realizados en las Instalaciones aeroportuarias de la base aérea de Torrejón

de Ardoz, destaca también las capturas de ejemplares pertenecientes a la subfamilia

Phlebotominae que incluye algunas especies de interés vectorial, concretamente ejemplares de

la especie Phlebotomus perniciosus y Phlebotomus papatasi, ésta última se identificó por primera

vez en esta base aérea en los muestreos del año pasado. También se identificaron dos

ejemplares de Sergentomyia minuta, que carece de interés sanitario.

Especie Totales


Phlebotomus papatasi 1


TOTAL 107

Tabla 16. Especies de flebotomos capturadas en la Base aérea de Torrejón de Ardoz

49


0

20

40

60

80

100

120

Phlebotomus perniciosus

Phlebotomus papatasi

Sergentomyia minuta

hembras

machos

Figura 39. Sex-ratio de los flebotomos capturados en la base aérea de Torrejón de Ardoz.

0

10

20

30

40

50

60

hangar SATA

arroyo SATA

arroyo SATABB

árbol campo

golf

entrada



Sergentomyia minuta

Figura 40. Variación por estación de muestreo de las capturas de flebótomos en la Base aérea de Torrejón de Ardoz

50


0 10 20 30 40

23/06/2016

12/07/2016

29/07/2016

19/08/2016

31/08/2016

13/09/2016

27/09/2016

10/10/2016



Sergentomyia minuta

Figura 41. Variación a los largo del muestreo de las poblaciones de flebotomos capturados en la Base aérea de Torrejón

Se han realizado capturas de flebotomos en todas las. La especie mayoritaria ha sido

Ph.perniciosus con un pico importante de abundancia a finales del mes de agosto.

PUERTOS

Valencia

Se han capturado un total de 40 ejemplares pertenecientes a 2 especies diferentes Culex

pipiens y Culiseta longiareolata.

Especie Totales

Culex pipiens 39


TOTAL 40

Tabla 17. Especies de culícidos capturados en puerto de Valencia

Culex pipiens ha sido la especie más abundante representando el 97,5% de las capturas

totales de este año en el puerto de Valencia.

51


Figura 42. Porcentajes por especie de los culícidos capturados en el puerto de Valencia

Por primera vez en varios años no se capturaron adultos de mosquito tigre en las

trampas, probablemente sea debido a los esfuerzos que está llevando a cabo el

ayuntamiento de Valencia para el control de esta plaga. No obstante sí que se detectó de

forma puntual 80 huevos en las tablillas de la trampa de oviposición colocada en las

cercanías del PIF correspondiente a la quincena del 7 al 20 de septiembre. Se recogieron

un total de 16 tablillas y solo en una se contabilizaron huevos.

Figura 43. Abundancia de capturas por punto de muestreo en el puerto de Valencia.

52


0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

hembras machos

Cs.longiareolata

Cx.pipiens

Figura 44. Sex.ratio de las capturas de culícidos en el puerto de Valencia

0 5 10 15 20

07/06/2016

23/06/2016

05/07/2016

28/07/2016

11/08/2016

24/08/2016

08/09/2016

20/09/2016

Cx.pipiens

Cs.longiareolata

Figura 45. Variación por fechas de las capturas de culícidos en el puerto de Valencia.

Palma de Mallorca

Se han capturado un total de 75 ejemplares pertenecientes a 3 especies diferentes Culex

pipiens, Aedes albopictus y Ochlerotatus mariae como se detalla a continuación:

53


Especie Totales

Culex pipiens 24

Aedes albopictus 50

Ochlerotatus mariae 1

TOTAL 75

Tabla 18. Especies de culícidos capturados en puerto de Palma de Mallorca

Llama la atención que la especie más abundante con un 66,66% es Ae. albopictus. Esta especie

ya forma parte de manera habitual de la fauna entomológica capturada en la isla de

Mallorca. Hay que destacar que el 82% de la captura de mosquito tigre se ha hecho mediante

el uso de la trampa BG sentinel. Este hecho refuerza la metodología descrita en los manuales

del ECDC sobre vigilancia entomológica de especies invasoras. Confirma que se ha adaptado

de forma eficaz al medio dispersándose por la geografía Balear de forma rápida como se verá

en los resultados del Objetivo II del presente informe.

Figura 46. Porcentajes de las especies de culícidos capturadas en el puerto de Palma de Mallorca.

54


Figura 47. Variación por fechas de las capturas de culícidos en el puerto de Palma de Mallorca

Como se puede observar en la figura 46 tanto Ae. albopictus como Cx.pipiens presentan un

máximo de capturas durante el muestreo realizado entre el 13 y 14 de octubre de 2016.

Durante el resto del período de muestreo las capturas se mantuvieron en muy baja

densidad.

Mediante las revisiones realizadas a través de la red de ovitrampas ubicadas en las

instalaciones portuarias se obtuvieron un total de 42 muestras, de las cuales el 48,2%

fueron muestras positivas a huevos de Ae.albopictus con un recuento total de 1064

huevos. El valor promedio máximo de huevos/trampa/día se obtuvo durante el

muestreo realizado entre el 13 y el 20 de octubre correspondiente a los picos de actividad

de esta especie descritos en bibliografía.

Barcelona

Se han capturado un total de 108 ejemplares pertenecientes a seis especies diferentes

Culex pipiens, Ochlerotatus caspius, Aedes albopictus, Ochlerotatus detritus, Culiseta subochrea

y Culiseta longiareolata como se detalla a continuación.

55


Especie Totales

Culex pipiens 94


Aedes albopictus 5


Culisieta subochrea 1


TOTAL 108

Tabla 19. Especies de culícidos capturados en el puerto de Barcelona

El 87,03% de las capturas pertenecen a la especie Cx. pipiens, seguido de Ae. albopictus y

Ochlerotatus caspius con un 4,62% en ambos casos.

Figura 48. Porcentaje de especies de mosquitos adultos capturados en el puerto de Barcelona.

0 10 20 30

19-05-16

01-06-16

16-06-16

30-06-16

14-07-16

28-07-16

10-08-16

25-08-16

08-09-16

22-09-16

06-10-16

26-10-16

10-11-16

Culex pipiens


Aedes albopictus


Culisieta subochrea


Figura 49. Variación de las capturas de culícidos en el puerto de Barcelona a lo largo del periodo del estudio.

56


De nuevo Cx.pipiens es la especie más frecuente y presente a lo largo de todo el periodo

en que se ha trabajado. El resto de especies han sido detectadas de forma puntual y sin

continuidad. Las capturas de mosquito tigre, como ha ocurrido en otros lugares se

realizan a partir de mediados del mes de octubre.

0102030405060708090

100

machos

hembras

Figura 50. Sex ratio de las especies capturadas en el puerto de Barcelona a lo largo del periodo del estudio.

OBJETIVO 2

1 METODOLOGÍA

El segundo objetivo engloba asimismo el seguimiento de zonas potenciales de expansión

de las poblaciones de Aedes albopictus, comúnmente conocido como mosquito tigre

asiático. Esta especie invasora se reportó por vez primera en España en 2004 y se

encuentra en plena expansión por la geografía española, gracias a unas características

bióticas que le permiten vivir estrechamente ligado a zonas urbanas residenciales.

(Alarcón-Elbal y col. 2014)

Nuestra actuación se ha centrado en el seguimiento de la expansión de mosquito tigre en

Andalucía, País Vasco, Baleares y Aragón. Se ha trabajado en algunos puntos donde ya

se conoce que el mosquito está asentado como es la Comunidad Valenciana y Murcia con

57


el fin de seguir obteniendo datos de distribución pero debemos hacer hincapié en las

nuevas zonas de expansión en aquellos lugares donde todavía no se llevan a cabo tareas

concretas de control contra el Ae. albopictus.

Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse, 1984) (Diptera; Culicidae) llamado comúnmente

mosquito tigre es considerado una de las especies exóticas de mayor potencial invasor y

además posee una gran capacidad de transmisión de virus como el dengue, el

chikungunya, la fiebre amarilla (Mitchell, 1995; Gratz, 2004 y Eritja y col, 2005) y más

recientemente zika (PAHO/WHO, 2016). También actúa como vector de nematodos

causantes de filariasis como Dirofilaria immitis (Cancrini y col., 2003). Se trata de una

especie originaria de zonas tropicales, subtropicales y templadas del sudeste asiático.

Actualmente se puede encontrar en los cinco continentes gracias a su elevada

adaptabilidad y el incremento del transporte de mercancías por todo el Mundo (ECDC,

2012).

Se trata de una especie con un ciclo holometábolo. La puesta de los huevos se realiza en

pequeños acúmulos de agua. Una vez que los huevos eclosionan, las larvas pasan por 4

estadios (L1-L4) con una intermuda entre cada uno de ellos. Durante la última muda, el

mosquito pasa a fase de pupa donde se produce la metamorfosis del insecto hasta que el

adulto o imago emerge. La duración del ciclo es variable en función de las condiciones

ambientales (Alarcón-Elbal, y col., 2010).

El Ae. albopictus, fue detectado por primera vez en Europa en 1979 concretamente en

Albania (Adhami y Reiter, 1998). A partir de ese momento se fueron sumando los países

a la lista de lugares con presencia de la especie.

En España, fue identificada por primera vez en 2004, concretamente en el municipio

barcelonés de San Cugat del Vallés (Aranda y col., 2006) y fuera de la provincia de

Barcelona en Altafulla (Tarragona) en el año 2005. Desde entonces los Servicios de

Control de Mosquitos se han visto obligados a poner en marcha sistemas de vigilancia y

control de esta especie para evitar en lo posible su mayor dispersión. A pesar de todo

ello, en 2006 se detectó un nuevo foco, esta vez fuera de los límites de la Comunidad

Autónoma de Cataluña, concretamente en Orihuela, municipio de Alicante. En 2008 se

58


puso en marcha un Programa de Vigilancia del mosquito tigre financiado por el

Ministerio de Sanidad, Servicios Sociales e Igualdad (en aquel entonces denominado

Ministerio de Sanidad y Consumo, Política Social e Integración) que permitió no solo

confirmar la presencia consolidada de esta especie en el municipio de Orihuela sino

además constatar su dispersión siendo posteriormente detectado en 2009 en la próxima

localidad de Torrevieja (municipio colindante al anteriormente citado) (Delacour-Estrella

y col., 2009 y Bueno-Marí y col., 2010) y en 2010 en Benicàssim (municipio de Castellón)

(Delacour-Estrella y col., 2010). Posteriormente en Murcia (Collantes y Delgado, 2011),

Mallorca (2012) (Miquel y col., 2013), Valencia (2013) (Alarcon-Elbal y col., 2013), en

Andalucía (Delacour-Estrella y col., 2014), País Vasco (2015) (Delacour-Estrella y col.,

2015) y muy recientemente Aragón (Delacour y col., 2016). La vigilancia se está llevando

a cabo desde el año 2011 mediante trampas de oviposición. Esta estrategia permite

obtener información más detallada de la magnitud del problema que supone tener una

especie invasora con gran capacidad colonizadora como es el caso de este díptero, de

gran importancia epidemiológica debido a su conocido papel como vector de numerosas

arbovirosis. No obstante, la gran capacidad de adaptación a diferentes factores climáticos

y ecológicos con la que se caracteriza esta especie y su desplazamiento a través de

vehículos ha facilitado que durante los últimos años haya aumentado el número de

municipios colonizados a lo largo de la geografía española (Collantes y col., 2016). En

2016 se ha trabajado en 145 municipios, siendo 23 de ellos nuevos positivos a la presencia

de huevos de mosquito tigre.

Se han colocado trampas de ovoposición en 1324 puntos repartidas en 18 provincias de 7

comunidades autónomas de la geografía española haciendo especial hincapié en los

municipios del sur y del norte de la Península con fuertes probabilidades de albergar

poblaciones en expansión de mosquito tigre. Se ha trabajado en Madrid, País Vasco

(Vizcaya, Álava y Guipúzcoa), Aragón (Teruel, Zaragoza y Huesca), Comunidad

Valenciana (Castellón, Valencia y Alicante), Islas Baleares (isla de Mallorca), Región de

Murcia y Andalucía (Almería, Granada, Málaga, Cádiz, Sevilla y Huelva).

59



Para el muestreo de Ae. albopictus, como se ha explicado en años anteriores se han

empleado trampas de oviposición. La diferencia viene dada por el tamaño ya que se han

empleado trampas de mayor volumen. Con ello se evita que en época estival se evapore

el agua disminuyendo así la eficiencia de la trampa.

Cada una de las trampas es localizada mediante GPS, anotando las coordenadas

geográficas. Las trampas de ovoposición se dejan fijas durante todo el periodo de

muestreo que será variable en función de las posibilidades del muestreo. Cada una de las

estaciones (punto de muestreo) se revisa con periodicidad quincenal. En cada punto se

colocan dos o 3 trampas en función de las características del propio lugar. Tras cada

visita se sustituyen las tablillas de madera (muestras) de cada trampa por una nueva,

guardándose la anterior en una bolsa de plástico para su posterior análisis en el

laboratorio.

PROCESADO DE MUESTRAS EN EL LABORATORIO

Una vez en el laboratorio, cada tablilla de madera es examinada bajo la lupa binocular a

10X/20X en busca de huevos, revisando la totalidad de la pieza (anterior y

posteriormente) e incluyendo los bordes, para localizar la presencia de huevos.

Todas aquellas positivas se guardaron a temperatura ambiente (± 20ºC) y se dejaron

secar aproximadamente 7 días. A fin de confirmar la identificación se procedió a una cría

controlada en laboratorio, para ello se sumergieron las tablillas en placas Petri de 20 cm

de diámetro con agua declorada y se esperó unos días hasta la eclosión de las primeras

larvas. Antes de que llegaran a estadio de pupa se sacrificaron y se fijaron en alcohol de

70º para posteriormente ser montadas con líquido de Hoyer e identificadas al

microscopio.

Se tomaron todas las precauciones en el manejo de las muestras por tratarse de un

vector invasor citado en el Real Decreto 630/2013 que regula el Catálogo español de

especies exóticas invasoras del Ministerio de Agricultura, Alimentación y Medio

60


Ambiente. Una vez finalizado el estudio, todas las tablillas (positivas o no) y materiales

empleados (pipetas, bandejas, etc…) fueron esterilizados con agua hirviendo (>100º C)

durante unos minutos para neutralizar los huevos que pudieran quedar adheridos.

Los factores que se tuvieron en cuenta a la hora de organizar el muestreo fueron, por un

lado, los hábitos biológicos de las hembras para la elección de los lugares de colocación

de las trampas, a ser posible en zonas con abundante vegetación y sombra gran parte del

día, y por otro, el hecho de que este insecto se introduce de forma activa (adulto) o

pasiva (en formas preimaginales en el interior de mercancías) en vehículos, puede ser

transportado kilómetros desde su punto de origen, lo cual claro está facilita y acelera su

dispersión, ya que por sí mismo, solo tiene una capacidad de vuelo de cientos de metros.

De hecho, las últimas detecciones dan a entender que el mosquito da saltos de dispersión

de forma imprevisible. Por ello se eligieron principalmente carreteras que comunicasen

municipios que ya se habían catalogado como positivos a la presencia de mosquito tigre

con municipios en los que no se tenía información acerca de la presencia o ausencia de la

especie. Para la colocación de trampas, se hizo hincapié en las áreas de servicio (lugares

donde las gente para sus vehículos pudiendo transportar algún ejemplar adulto de Ae.

albopictus), viveros, urbanizaciones con amplias zonas ajardinadas, residenciales,

rotondas urbanas, colegios, campings y cementerios (conocidos por ser lugares de

preferencia para la cría).

ZONAS DE ESTUDIO

La vigilancia tuvo lugar de forma quincenal, entre los meses de julio y noviembre en País

Vasco y los aeropuertos de Madrid. En Alicante, Murcia y Andalucía desde agosto hasta

octubre. En Baleares se trabajó desde el mes de junio hasta noviembre. Y en Aragón se

dio comienzo el muestreo en mayo/junio, hasta octubre. En algunos puntos de la

Comunidad Valenciana y Málaga se está realizando un seguimiento anual, recogiendo

semanal o quincenalmente las tablillas con el fin de conocer que dinámica estacional del

mosquito tigre.

61


COMUNIDAD VALENCIANA

Debido a la situación geográfica que sitúa a esta Comunidad limítrofe con Tarragona, la

vigilancia en años anteriores en esa zona permitió confirmar que el mosquito había

colonizado la vertiente mediterránea en dirección al sur y suroeste de la Comunidad.

Dado que la expansión del mosquito se ha dado de forma muy rápida, en lugar de seguir

sumando municipios colindantes a la vigilancia, se decidió realizar un seguimiento en el

tiempo de algunos de ellos.

Provincia de Castellón

En 2016 se han colocado trampas en Benicasim donde se conoce que la especie estás bien

asentado. Han pasado 6 años desde que se detectó el mosquito en este municipio y se ha

querido hacer un seguimiento de sus poblaciones a lo largo de todo un año para conocer

algo más acerca de su ecología, su periodo de vuelo y los picos de máxima actividad del

adulto.

Provincia de Valencia

Se ha elegido el municipio de Gandía para la obtención de información acerca de las

dinámicas poblacionales anuales de mosquitos tigre en la zona. Además se colocaron

trampas en el puerto de Valencia.

Provincia de Alicante

Esta fue la primera provincia fuera de Cataluña donde se describió la presencia del mosquito

tigre en el año 2006. Con el fin de evaluar la situación después de 10 años, se decidió colocar

trampas en los municipios de Los Montesinos, Crevillente, Catral, Dolores, Orihuela,

Orihuela costa y Torrevieja.

REGIÓN DE MURCIA

En 2011 se registró por primera vez el mosquito tigre en la Región de Murcia, en la

ciudad de Murcia en la Era Alta. En 2016 se ha trabajado en un total de 30 municipios, 7

más que en 2015 para seguir haciendo la valoración del estado de sus poblaciones.

62


Abanilla, Abarán, Águilas, Albudeite, Alcantarilla, Alguazas, Archena, Beniel, Blanca,

Bullas, Campos del Río, Cartagena, Cehegín, Ceutí, Cieza, Fortuna, Jumilla, Librilla,

Lorquí, Mazarrón, Molina de Segura, Mula, Murcia, Ojós, Puerto Lumbreras, Ricote,

Santomera, Ulea, Villanueva del Río Segura

La intensidad del muestreo (números de trampas y puntos) ha variado según las

posibilidades de cada enclave.

ISLAS BALEARES

Las Islas Baleares presentan un clima idóneo para el establecimiento del mosquito tigre.

Su ubicación y la gran afluencia turística desde diversas zonas del Mediterráneo, como

Francia, Italia o la misma España peninsular hacen de este archipiélago un lugar de gran

relevancia para la vigilancia. Fue detectado por primera vez en 2012 en la isla de

Mallorca, en 2014 en Ibiza y en 2015 en Menorca. En 2016 se ha continuado trabajando en

Mallorca y se ha aumentado el número de municipios. Se han colocado trampas en 26

municipios incluyendo Palma de Mallorca , Alaró, Algaida, Andratx, Banyalbufar,

Binissalem , Bunyola, Capdepera , Colonia de Sant Jordi , Consell , Deià, Esporles,

Estellencs , Inca, Llucmajor , Manacor , Marratxí , Puigpunyent, Santa Eugènia, Santa María

del Camí , Sant Llorenç de Cardassar , Sóller, Son Servera , Valldemossa.

ANDALUCÍA

En 2016 se ha continuado con el convenio con la Junta de Andalucía y se ha trabajado

siguiendo la metodología de años anteriores en los que se elegían los lugares de

muestreo en función de la localización de los municipios con respecto a las vías de

comunicación y siempre teniendo en cuenta la conexión con municipios con presencia

confirmada de mosquito tigre. Se han colocado trampas siguiendo carreteras principales

como la autopista A7 y algunas carreteras secundarias principalmente de costa.

63


Se trabajó por tanto en los siguientes municipios:

Provincia de Almería

Se han colocado trampas en Adra, Almería, Berja, Carboneras, Cuevas del Almanzora, El

Ejido, Garrucha, La Mojonera, Mojácar, Níjar, Pulpí, Roquetas de Mar, Vera y Vícar.

Provincia de Granada

Se ha continuado trabajando en Albuñol, Almuñécar, Granada, Gualchos, Motril,

Polopos, Rubite y Salobreña.

Provincia de Málaga

Se han colocado trampas en Alhaurín de la Torre, Benalmádena, Casares, El Algarrobo,

Estepona, Fuengirola, Málaga, Manilva, Marbella, Mijas, Nerja, Rincón de la Victoria,

Torremolinos, Torrox y Vélez-Málaga.

Provincia de Cádiz

Algeciras, Barbate, Cádiz, Chiclana de la Frontera, Chipiona, Conil de la Frontera, El

Puerto de Santa María, Jerez de la Frontera, La Línea de la Concepción, Los Barrios,

Puerto Real, Rota, San Fernando, San Roque, Sanlúcar de Barrameda, Tarifa, Trebujena.

Provincia de Sevilla

Se ha trabajado en Dos Hermanas, Las Cabezas de San Juan, Lebrija, Los Palacios y

Villafranca, Sevilla, Bormujos, Bollullos de la Mitación, Tomares y Umbrete.

Provincia de Huelva

En Huelva, se ha trabajado en nuevos municipios con respecto a 2015 y se han colocado

trampas en Chucena, Almonte, Huelva, Palos La Rabida y Punta Umbría.

PAÍS VASCO

Desde su detección en 2014, se ha podido confirmar el establecimiento de una población

de mosquito tigre en el municipio de Irún (Guipúzcoa) puesto que se localizaron de

64


nuevo en 2015 trampas positivas y durante el presente año se pudo contabilizar huevos

en las trampas colocadas en las mismas zonas que en años anteriores. Este año 2016, se

ha trabajado conjuntamente con la Dirección de Salud Pública del Gobierno Vasco, el

Departamento de Sanidad Animal de NEIKER, el área de Salud y Consumo del

Ayuntamiento de Bilbao y el Área de Salud y Consumo del Ayuntamiento de Donostia

lo que ha permitido ampliar la zona de muestreo en el País Vasco, seleccionando un total

de 12 municipios de las 3 provincias. El objetivo ha sido comprobar si esta especie de

mosquito estaba implantada y/o extendiéndose en la zona.

Se ha trabajado en concreto en 4 localidades de Guipúzcoa (Donostia-San Sebastián,

Handarribia, Irún y Usurbil), además en 5 municipios de Vizcaya (Arrigorriaga,

Barakaldo, Basauri, Bilbao y Ugao-Miraballes) y 3 de Álava (Altube, Vitoria-Gasteiz y

Okiturri).

ARAGÓN

Considerando la distribución en los últimos años de las poblaciones de mosquito tigre en

España, se preveía que la especie no tardaría en ser citada en Aragón. Esta última comunidad

posee importantes vías de comunicación con Cataluña y Comunidad Valenciana, desde hace

años colonizadas por esta especie de mosquito invasor. Como consecuencia de la

confirmación en 2015 de la presencia de mosquito tigre en la ciudad de Huesca, se planteó

por parte de la Dirección general de Salud Pública del Gobierno de Aragón la puesta en

marcha de una estrategia de vigilancia activa de mosquitos del género Aedes en la

Comunidad Autónoma, ya que quedaba confirmado que este mosquito daba saltos de

dispersión y podría ser descrito de manera impredecible en cualquier municipio. Así pues

se planteó inicialmente para 2016 un muestreo en 22 municipios de las tres

provincias con el fin de evaluar la situación en la Comunidad autónoma. Los puntos

fueron seleccionados teniendo en cuenta posibles vías de colonización, tanto por

medios naturales (el vuelo de los insectos permite la dispersión por nuevos

ambientes) como debido a la acción humana a través de intercambio turístico o

comercial con zonas donde ya ha sido confirmada la presencia del vector. Se

colocaron 2 trampas por punto y las tablillas fueron cambiadas con periodicidad

65


quincenal desde el mes de mayo/junio hasta octubre. Se colocaron también trampas

de ovoposición en la Base aérea de Zaragoza.

Así pues en 2016 se trabajó en:

Provincia de Teruel

Albarracín, Alcañiz, Calaceite, Teruel y Villarquemado.

Provincia de Zaragoza

Alfajarín, El Burgo de Ebro, Cadrete, Calatayud, Caspe, Cuarte de Huerva, La Joyosa,

Mequinenza, Utebo, Garrapinillos (Base aérea de Zarazoga) y Zuera.

Provincia de Huesca

Barbastro, Binéfar, Fraga, Huesca, Jaca, Monzón y Sabiñánigo.

MADRID

Los resultados que aparecerán en los mapas de seguimiento de mosquito tigre en

Madrid corresponderán a los resultados de las tablillas colocadas en los aeropuertos de

Madrid-Barajas y Torrejón.

2 RESULTADOS

Para la vigilancia de potenciales zonas de expansión de Aedes albopictus (mosquito tigre)

en 2016 se ha ampliado la red de ovitrampas con respecto a 2015. Se ha trabajado en siete

comunidades autónomas con un total de 1058 puntos con 2 o 3 trampas en cada uno de

ellos repartidas en 171 municipios. En 2409 muestras correspondientes a 251 puntos de

80 municipios se han contabilizado huevos de morfología compatible con la de mosquito

tigre. En 79 de estos municipios se ha podido confirmar que las larvas eclosionadas de

esos huevos eran de Aedes albopictus.

66


Figura 51. Municipios muestreados en la península para la detección de Ae. albopictus en 2016. En rojo los municipios

positivos, en verde los negativos. La zona dudosa coincide con el municipio donde se contabilizó un huevo y no se pudo

confirmar la especie.

COMUNIDAD VALENCIANA

En la Comunidad Valenciana se seleccionaron dos municipios con presencia de

Ae.albopictus confirmada desde hace años para el estudio de la evolución anual de la

especie. Con el contaje de forma continuada de huevos, se podrá conocer en qué

momento aparece la actividad de la especie y dará una estimación de la abundancia de

ésta. No obstante, hay que decir que hay que emplear esta información con cierta cautela

ya que solo con el número de huevos no se puede hacer una valoración definitiva de la

densidad de la población de mosquito tigre debido a que en ocasiones no se puede

estimar la cantidad real de lugares de cría que puede encontrar la especie en el hábitat

natural y que por tanto entrar en competencia directa con las trampas de ovoposición.

En Alicante se ha trabajado en aquellos municipios donde se conoce existe un

67


establecimiento desde hace años pero también en algunos colindantes donde se tenía

sospecha que se podía dar o ya se había dado la expansión de la especie.

Provincia MunicipioPuntos

totales

Total

muestras

Muestras

positivas

Albatera 5 43 0

Catral 5 45 5

Crevillente 17 287 0

Dolores 4 40 1

Los Montesinos 1 42 11

Orihuela 16 115 17

Torrevieja 10 69 45

Valencia 3 21 1

Gandía 3 287 96

CASTELLÓN Benicasim 3 203 101

ALICANTE

VALENCIA

Tabla 20: Municipios muestreados, nº de puntos, puntos y muestras positivas de la Comunidad Valenciana. En rojo se

muestran las localidades positivas en 2016.

Figura 51. Mapa de la distribución en la Comunidad Valenciana de trampas positivas (rojas) y negativas (verdes)

68


-50

0

50

100

150

200

250

300

350

BENICASIM

Figura 52. Evolución del promedio de huevos/trampa contabilizados en el seguimiento anual llevado a cabo en el

municipio de Benicasim.

Figura 53. Evolución del número de huevos contabilizados por punto en el seguimiento anual llevado a cabo en el

municipio de Gandía.

Se observa que existen varios picos de abundancia de huevos. En Benicasim aparece un

primer pico de abundancia a mediados de junio, luego disminuye en los periodos de

mayor calor para volver a aumentar a mediados de septiembre y desaparecer poco a

poco a finales de noviembre. Se observa que Ae.albopictus empieza su periodo de

69


actividad en abril y se mantiene hasta finales de noviembre. Este tipo de información

resulta muy útil para el diseño de planes de vigilancia y control esta plaga.

En Gandía las poblaciones este año han tenido tres picos de abundancia, el primero al

igual que en Benicasim en junio y el segundo y más abundante en agosto, un mes antes

que lo observado en Benicasim, por último un pico menos marcado en septiembre y poco

a poco disminuye para desaparecer en noviembre. El inicio de la actividad se registra en

mayo y dura hasta noviembre.

Los cambios observados en la actividad y dinámica poblacional del mosquito tigre en

estos dos municipios demuestra que su biología está muy condicionada por las

características ambientales (temperatura, humedad, vegetación, masas de agua, etc…)

intrínseco a cada municipio concreto.

70


REGIÓN DE MURCIA


totales

Total

muestras

Muestras

positivas

Abanilla 8 41 2

Abarán 5 25 0

Águilas 36 1105 378

Albudeite 6 32 1

Alcantarilla Adultos

Alguazas 15 217 4

Archena 5 29 0

Beniel 8 42 1

Blanca 6 33 0

Bullas 5 26 1

Campos de

Río4 23 1

Cartagena 21 544 194

Cehegín 5 25 0

Ceutí 5 29 1

Cieza 7 38 0

Fortuna 4 24 0

Jumilla 11 345 0

Librilla 5 29 11

Lorquí 5 29 2

Lorca 15 120 2

Mazarrón AdultosMolina de

SeguraAdultos

Mula 8 48 0

Murcia 6 198 37

Ojós 2 9 0Puerto

Lumbreras7 39 0

Ricote 4 20 0

Santomera 5 29 0

Ulea 3 18 0

Villanueva

del Río

segura

4 20 0

MURCIA

Tabla 33: Municipios muestreados en la Región de Murcia. En rojo se muestran las localidades positivas en 2016.

71


Figura 55. Mapa de la distribución en Murcia de trampas positivas (rojas) y negativas (verdes)

En 2016, se trabajó en 215 puntos repartidos en 34 municipios. Fueron 14 los municipios

positivos siendo Abanilla, Alguazas, Bullas, Campos de Ríos, Ceutí, Librilla y Lorquí

nuevos lugares de expansión del mosquito en Murcia. Se confirma la presencia por

segundo año y por lo tanto el establecimiento de la especie en los municipios de

Albudeite, Beniel y Lorca.

72


ISLAS BALEARES


totales

Total

muestras

Muestras

positivas

Alaró 5 50 22

Algaida 7 84 28

Andratx 19 228 129

Banyalbufar 4 48 29

Binissalem 5 55 32

Bunyola 6 72 50

Capdepera 23 253 85

Ses Salines 5 55 3

Consell 5 35 18

Deyá 6 72 30

Esporles 6 72 46

Estellencs 2 22 17

Inca 6 60 26

Llucmajor 16 192 98

Manacor 4 44 3

Marratxi 34 408 263

Palma 10 98 76

Puigpunyent 10 120 46

Sant Llorenç de Cardassar 10 90 0

Santa Eugènia 5 60 41

Santa Maria del Camí 10 120 49

Sòller 12 144 51

Son Servera 10 80 31

Valldemossa 6 72 11

MALLORCA

Tabla 34: Municipios muestreados en Mallorca. En rojo se muestran las localidades positivas en 2016.

73


Figura 56. Mapa de la expansión del mosquito tigre en Mallorca. Los municipios en blanco no han sido muestreados.

Datos de Consultoría Moscard Tigre.

En la isla de Mallorca se ha trabajado en 226 puntos repartidos en 24 municipios. Fueron

23 los municipios positivos y tan solo en Sant Llorenç de Cardassar no se han localizado

poblaciones de mosquito tigre. Se confirma por lo tanto el establecimiento y la dispersión

de la especie en la isla con el 46,7% de las muestras obtenidas positivas.

74


ANDALUCÍA


totales

Total

muestras

Muestras

positivas

Adra 3 18 0

Almería 5 28 0

Berja 1 5 0

Carboneras 3 18 5

Cuevas del Almanzora 4 24 5

El Ejido 10 66 0

Garrucha 2 9 2

La Mojonera 1 6 0

Mojácar 2 12 3

Níjar 4 23 0

Pulpí 2 12 6

Roquetas de Mar 3 18 0

Vera 2 12 0

Vícar 1 6 0

Albuñol 1 6 0

Almuñécar 5 25 13

Granada 24 115 19

Gualchos 2 12 3

Motril 8 45 0

Polopos 2 11 0

Rubite 1 6 3

Salobreña 2 12 1

Alhaurín de la Torre 3 16 5

Benalmádena 5 30 13

Casares 1 6 0

El Algarrobo 1 5 0

Estepona 5 29 6

Fuengirola 2 11 3

Málaga 6 32 7

Manilva 3 18 1

Marbella 9 52 13

Mijas 4 23 10

Nerja 3 18 7

Rincón de la Victoria 3 17 5

Torremolinos 3 15 8

Torrox 2 12 0

Vélez-Málaga 6 35 5

ALMERÍA

GRANADA

MÁLAGA

Tabla 35.a: Municipios muestreados en Andalucía. En rojo se muestran las localidades positivas en 2016.

75



totales

Total

muestras

Muestras

positivas

Algeciras 5 19 4

Barbate 9 28 0

Cádiz 4 9 0

Chiclana 6 16 0

Chipiona 5 11 0

Conil 4 14 0

El puerto de Santa María 3 8 0

Jerez de la Frontera 4 11 0

La Línea de la Concepción 5 13 0

Los Barrios 2 4 0

Puerto Real 2 6 0

Rota 4 12 0

San FernandO 3 9 0

Sanlúcar de Barrameda 5 16 0

San Roque 4 15 1

Tarifa 3 9 0

Trebujena 1 3 0

Bollullos de la Mitación 1 3 0

Bormujos 1 3 0

Dos Hermanas 2 4 0

Las cabezas de San Juan 1 3 0

Lebrija 1 2 0

Los Palacios y Villafranca 2 6 0

Sevilla 9 30 0

Tomares 1 4 0

Umbrete 1 4 0

Almonte 2 6 0

Chucena 1 4 0

Huelva 1 4 0

Palos de la Frontera 1 3 0

Punta Umbría 1 3 0

CADIZ

SEVILLA

HUELVA

Tabla 35.b: Municipios muestreados en Andalucía (Continuación) En rojo se muestran las localidades positivas en 2016.

76


0

20

40

60

80

100

120

140

160

180

Alhaurin de la Torre

Torremolinos

Benalmádena

Figura 57. Evolución anual del número de huevos promedio contabilizados en las ovitrampas de 3 municipios de la

provincia de Málaga

Como se puede observar en la figura 57, el seguimiento de puesta de huevos en los

municipios de Alhaurin de la Torre (A), Torremolinos (T) y Benalmádena (B) muestra

una serie de picos que en ocasiones coinciden en las tres localidades. Es posible que sea

debido a que se trata de zonas residenciales con muchas zonas verdes y abundante riego,

y que estos picos coincidan con ciclos gonotróficos de las poblaciones de mosquito tigre.

El inicio de la temporada en T viene marcado por un pico a principios del mes de abril

(probablemente por la eclosión de la primera generación procedente de la diapausa

invernal). Éste en A tiene lugar final del mes de abril pero en el caso de B no se detecta

hasta el mes de julio aunque se observa actividad a mediados del mes de mayo. Al

menos el final del periodo de actividad coincide en el mes de noviembre en los tres

casos.

77


Figura 58. Mapa de la distribución en Andalucía de trampas positivas (rojas) y negativas (verdes)

Se ha continuado trabajando intensamente en Andalucía debido a la confirmación de la

expansión de Ae.albopictus a través de las provincias andaluzas. En 2016 se ha trabajado

en 238 puntos y en cada uno de ellos se han colocado 2 trampas. Finalmente se han

recogido 1090 muestras (tablillas). En 148 correspondientes a 24 municipios se han

contabilizado huevos de mosquito tigre. Eso se traduce en que en el 34,78% de los

municipios muestreados pertenecientes a las provincias de Almería, Granada, Málaga y

Cádiz se ha podido confirmar la presencia de Ae.albopictus. En Almería se detecta por

primera vez en Carboneras y se confirma por segundo año en Cuevas de Almanzora y

Mojácar. En Granada no se ha registrado ningún nuevo municipio pero si se confirma

por segundo años la presencia de la especie en Almuñécar y Granada; y Rubite y

Salobreña se unen a la lista de ciudades colonizadas por el mosquito . Málaga parece ser

la provincia más con un establecimiento importante ya que se han confirmado la

presencia en 11 de los 15 municipios en los que se ha trabajado y se ha detectado por

primera vez en Manilva (Tabla 35 a). Cabe destacar que en El Algarrobo, se detectaron

huevos en 2015 y este año el muestreo ha dado negativo. En Cádiz se ha detectado un

nuevo municipio positivo próximo a la provincia de Málaga, San Roque, y se ha

confirmado por segundo año la presencia en Algeciras y se confirma una leve dispersión

puesto que dos puntos limítrofes con el anterior han sido positivos en 2016. Es posible

que este punto sea el origen de una nueva expansión del mosquito tigre por las

provincias del suroeste de la Península.

78


Todas las muestras de Sevilla han sido negativas a la presencia de mosquito tigre. Se

encontró sin embargo un huevo con morfología compatible con la de mosquito tigre en

una tablilla El Rocío (Almonte, Huelva) pero no se ha podido confirmar a que especie

pertenece, no eclosionó ninguna larva y el análisis molecular no dio resultados

concluyentes.

PAÍS VASCO


totales

Total

muestras

Muestras

positivas

Donostia-San Sebastián 3 514 0

Hondarribia 2 353 0

Irún 5 885 5

Usurbil 1 173 0

Arrigorriaga 1 44 0

Barakaldo 1 107 0

Basauri 1 100 0

Bilbao 3 177 0

Ugao-Miraballes 1 44 0

Zuia 1 98 0

San Millán/Donemiliaga 1 98 0

Vitoria-Gasteiz 1 189 0

GUIPÚZCOA

VIZCAYA

ALAVA

Tabla 36: Municipios muestreados en País Vasco. En rojo se muestran la localidad positiva en 2016.

Figura 59. Mapa de la distribución en País Vasco de trampas positivas (rojas) y negativas (verdes)

79


En 2016 se ha ampliado el número de ovitrampas colocadas en Vizcaya (5 municipios) y

Álava (4 municipios), en el entorno de gasolineras localizadas en autopistas y/o

autovías, y en otras zonas frecuentadas por tráfico vial. Los muestreos han tenido lugar

entre finales de agosto y mediados de noviembre de 2016. En cada punto de muestreo se

colocaron 10 ovitrampas. Tras el examen de 2802 muestras (tablillas), se observaron

huevos de morfología compatible con Ae. albopictus en 5 tablillas recogidas en 2 puntos

diferentes entre finales de agosto y mediados de noviembre. La positividad detectada en

2015 fue sensiblemente más alta que la detectada en 2016, tanto en el número de tablillas

positivas como en número de huevos contabilizados. Respecto a las localidades

positivas, éstas vuelven a repetirse. El Parking de la zona comercial de Behobia fue

positivo en 2014, y la gasolinera Zaisa III fue positiva en 2015. Ambas zonas tienen una

gran afluencia de tráfico. No obstante, el entorno del polideportivo de Irún que fue

positivo en 2015, en 2016 ha sido negativo a la presencia de huevos de Aedes spp. Es

posible de las tareas de control de la especie que se han estado llevando a cabo por parte

del ayuntamiento de Irún estén limitando en cierta medida al vector.

ARAGÓN

Se seleccionaron en total de 115 puntos de muestreo repartidos en 22 municipios. En

9 de ellos se detectó la presencia de mosquito tigre. Se han obtenido un total de 2374

muestras. En 91 de ellas se contabilizaron huevos de mosquito tigre. El trabajo

realizado este año ha permitido confirmar la presencia del vector en las tres

provincias aragonesas, citándose por primera vez en Zaragoza y Teruel.

Curiosamente no se ha detectado la presencia del mosquito en Huesca capital por lo

que quizás sus poblaciones no sobrevivieron al pasado invierno o las medidas de

control llevadas a cabo fueron lo suficientemente rápidas y efectivas como para evitar

la dispersión por la ciudad. Los resultados obtenidos reafirman la idea de que la

expansión de este díptero está muy ligada a las principales vías de comunicación y al

turismo. En Teruel, tanto Calaceite, que dista de unos pocos kilómetros de la

provincia de Tarragona, como Alcañiz (con el circuito de Motorland) reciben mucha

afluencia de vehículos desde zonas con presencia continua de mosquito tigre. Algo

80


parecido ha ocurrido en la provincia de Huesca donde la localidad de Fraga se

encuentra limítrofe con la provincia de Lérida donde recientemente ha sido descrita

también la presencia de Ae. albopictus. Por otro lado, Barbastro y Monzón se

encuentra en la carretera que une la ciudad de Lérida con la ciudad de Huesca.

En Zaragoza, la presencia de mosquito tigre parece asociada al transporte comercial,

es el caso de los municipios de La Joyosa y Alfajarín donde las primeras trampas

positivas fueron las situadas en las estaciones de servicio con paradas frecuentes de

camiones. Por otro lado el turismo de pesca deportiva habitual en los municipios de

Caspe y Mequinenza también recibe al año miles de visitantes procedente de

cualquier parte del mundo por lo que no es de extrañar que la presencia de huevos

haya tenido lugar en las zonas de camping y zonas de recreo.

Provincia Municipio Puntos totalesTotal

muestras

Muestras

positivas

Barbastro 10 128 2

Binéfar 10 119 0

Fraga 12 130 1

Huesca 16 176 0

Jaca 12 142 0

Monzón 29 219 48

Sabiñánigo 10 120 0

Albarracín 8 64 0

Alcañiz 10 120 1

Calaceite 8 96 7

Teruel 11 121 0

Villarquemado 8 96 0

Alfajarin 7 77 3

El Burgo de Ebro 10 109 0

Cadrete 6 60 0

Calatayud 10 98 0

Caspe 10 90 13

Cuarte de Huerva 10 98 0

La Joyosa 6 48 14

Mequinenza 10 100 2

Utebo 10 83 0

Zuera 8 80 0

Garrapinillos 5 35 0

HUESCA

TERUEL

ZARAGOZA

Tabla 37: Municipios muestreados en Aragón. En rojo se muestran las localidades positivas en 2016.

81


Figura 60. Mapa de la distribución en Aragón de trampas de ovoposición.

MADRID


totales

Total

muestras

Muestras

positivas

Barajas 5 40 0

Torrejón 5 40 0MADRID

Tabla 38: Municipios muestreados en Madrid.

Figura 61. Mapa de la distribución en Madrid de trampas de ovoposición.

82


Se colocaron trampas en 10 puntos dentro de los Aeropuertos de Barajas (5) y Torrejón

(5) y tras la observación bajo estereoscopio de 80 tablillas, no se contabilizaron huevos.

OBJETIVOS 3 Y 4

1 METODOLOGÍA

Han sido dos los objetivos alcanzados en los tres primeros años:

Se ha implementado y mantenido la red de vigilancia entomológica para la detección de la

presencia de Ae. aegypti en los principales PdE de mosquitos en el archipiélago Canario

(puertos, aeropuertos e invernaderos de las islas de Tenerife, Gran Canaria y La Palma).

Se ha implementado la vigilancia en hábitat del vector para comprobar si se ha establecido

recientemente el mosquito Ae. aegypti en las Islas.

Canarias es considerada una de las CCAA españolas con riesgo elevado de introducción

y establecimiento del mosquito invasor Aedes aegypti (Diptera: Culicidae), transmisor

principal del virus de la Fiebre amarilla, Dengue, Chikungunya y Zika (ECDC). La

introducción de este mosquito en nuevas áreas, como Europa, ha sido debida

principalmente al incremento del transporte. Por este motivo, desde el año 2013

(CCAES), se vigila en Canarias la introducción de este vector con el objetivo de evitar

precozmente su establecimiento.

En el año 2016, con la expansión del virus Zika y la detección de casos importados en

Canarias, algunos en Islas donde no se había implementado aún la vigilancia del vector, la

Fundación Canaria para el Control de las Enfermedades Tropicales (FUNCCET) alerta de la

necesidad de establecer la vigilancia del vector en el resto de las Islas ante la falta de

conocimiento sobre el estado actual de las poblaciones de mosquitos en islas de

Fuerteventura, Lanzarote, La Gomera y El Hierro. La Dirección General de Salud Pública del

Servicio Canario de la Salud ante esta situación promueve la implantación de la vigilancia

del mosquito en el resto de las Islas. Finalmente, gracias a la financiación del Cabildo de

Lanzarote, a un proyecto de colaboración ciudadana (Crowdfunding) y a la colaboración del

personal del Área de Salud de Lanzarote y Fuerteventura, del Cabildo de Lanzarote y del

83


Ayuntamiento de Arrecife, se implementa la vigilancia en la isla de Lanzarote y

Fuerteventura. Como en años anteriores ha sido el Instituto Universitario de Enfermedades

Tropicales y Salud Pública de Canarias, de la Universidad de La Laguna (Tenerife), el centro

responsable de la coordinación de la vigilancia en Canarias, además de la actividad de

muestreos en la isla de Tenerife y el procesamiento e identificación de las muestras obtenidas

de la vigilancia en el resto de Islas.

El conjunto de estas actividades han sido encomendadas por el Ministerio de Sanidad,

Servicios Sociales e Igualdad y la Consejería de Sanidad del Gobierno de Canarias, bajo

la supervisión de los responsables del contrato con el MSSSI, y darle continuidad al

Programa de Vigilancia Entomológica en Aeropuertos y Puertos de España, D. Javier

Lucientes Curdi, de la Universidad de Zaragoza, y D. Ricardo Molina Moreno, del Instituto

de salud Carlos III. Al no contar con recursos suficientes para implementar la vigilancia en la

totalidad del territorio y al tratarse de un territorio fragmentado (islas), se dio prioridad a

aquellas Islas con riesgo mayor de introducción, en base al nivel de tráfico, procedencia

(países de riesgo endémico de enfermedades vectoriales) y presencia de hábitats del vector

en el Punto de Entrada (PdE) y su entorno. Hasta el año 2015 se ha llevado a cabo esta

vigilancia en Puertos y Aeropuertos de las islas de Tenerife, Gran Canaria y La Palma, por

ser los posibles PdE de los vectores y ser Islas con mayor riesgo de introducción accidental.

Además de establecer la vigilancia en puertos y aeropuertos, la vigilancia se ha extendido a

otros posibles PdE, invernaderos de empresas importadoras de plantas, ya que el sector de la

flor y planta ornamental es un tipo de comercio de riesgo de importación de formas

inmaduras (huevos, larvas…) de especies invasoras.


Las actividades desarrolladas han sido las mismas que en los años anteriores así como

también la metodología empleada. No obstante a continuación se detallará los métodos

de trabajo empleados.

La frecuencia y periodicidad del trampeo fue determinada en base a los datos de

temperatura (datos obtenidos de la AEMET), factor climático que influyen sobre la

duración del ciclo de Ae. aegypti y otros datos relacionados con el transporte como el

84


aumento del volumen de tráfico y mercancías en determinados periodos durante el año.

La elección de los sitios de interés para la colocación de las trampas se realizó en dos

partes, una primera parte en la que con la ayuda del visor de GRAFCAN (IDECanarias

visor, 3.0) se pudo estudiar la zona a partir de los datos espaciales (suelo agrícola,

vegetación, edificios públicos, núcleo de población, etc.) y otros datos (mapas de las

infraestructuras de puertos y aeropuertos), en busca de ambientes adecuados para la

ubicación de las trampas. Una segunda parte en la que una vez estudiada la zona de

interés se realizó el primer trabajo de campo que consistió en la visita a estas zonas para

concretar los puntos de muestreo, tanto dentro como fuera del límite portuario y

aeroportuario.

Los métodos de captura empleados fueron elegidos en función del hábitat, especie y

estadio de desarrollo. Así, para la detección de huevos (larvas) de Aedes spp. se

emplearon trampas de ovoposición de 250 ml con sustrato de puesta poliuretano (claro).

Estas se colocaban en hábitat característicos de la especie. Para la captura de adultos se

emplearon trampas BG-Sentinel (Biogent) con BG-Lure que fueron ubicadas en espacios

cerrados, principalmente en puntos de apertura de mercancías. También fueron

inspeccionados criaderos, tanto fuera como dentro de los puertos y aeropuertos, en

busca de larvas y pupas que fueron capturadas mediante pipeteo. Mediante un aspirador

bucal se realizó la captura directa de ejemplares adultos detectados durante el

monitoreo. Respecto al número de ovitrampas fue determinado en función de las

características del medio, es decir número de lugares de refugio, de cría, etc. Cada una de

las trampas fueron georeferenciadas con la ayuda de un GPS (GARMIN®) para más

tarde construir mapas en los que mostrar los datos de presencias de mosquitos en cada

PdE. Estos fueron generados con el programa ArcGIS (ESRI®). Con la ayuda de un

termo-higrómetro (TESTO®) se midió la temperatura y humedad relativa para cada

punto con el fin de conocer la variabilidad microclimática en cada PdE, variables que

afectan a la abundancia de los vectores y que permitirán ajustar los periodos y

frecuencias del muestreo en cada posible PdE estudiado.

85


PROCESADO DE MUESTRAS EN EL LABORATORIO

Las muestras recogidas eran transportadas en condiciones adecuadas al laboratorio del

IUETSPC, donde personal del citado centro realizaban el procesamiento de las muestras.

En el caso de las muestras procedentes de las trampas de oviposición eran observadas al

microscopio estereoscópico en busca de huevos. Los huevos detectados eran mantenidos

al menos durante 48 h en condiciones óptimas de temperatura y humedad para permitir

la embriogénesis y más tarde ser introducidos en agua para inducir su eclosión.

En el caso de las muestras de adultos capturadas mediante trampas BG-Sentinel o

captura directa fueron identificadas morfológicamente con la ayuda de un microscopio

estereoscópico y molecularmente. Las larvas capturadas mediante pipeteo fueron fijadas

en etanol 70° y glicerina y montadas en DMHF (dimetil hidantoína formaldehido) para

su identificación morfológica con la ayuda de un microscopio óptico.

La identificación de los huevos de aedinos detectados se ha realizando mediante técnicas

moleculares (análisis del ADN).

ZONAS DE ESTUDIO

En líneas generales la vigilancia del vector Ae. aegypti ha consistido en la monitorización

de las poblaciones de mosquitos existentes en los PdE y su entorno, mediante el

muestreo periódico de los adultos y fases inmaduras a lo largo del año (cada 10 días), y

el procesamiento e identificación de las muestras en el laboratorio.

En la tabla 9 aparecen los PdE vigilados a lo largo del año 2016 e indica el tipo de PdE y la

isla donde se localiza. Aquellos marcados en rojo son los nuevos PdE que han sido incluidos

en la vigilancia a lo largo del año 2016.

86


PoE (abreviatura) Isla

Aeropuerto -

Aeropuerto Tenerife Norte (A-TN) Isla de Tenerife

Aeropuerto Tenerife Sur (A-TS) Isla de Tenerife

Aeropuerto de Gran Canaria (A-C) Isla de Gran Canaria

Aeropuerto de Lanzarote (A-L) Isla de Lanzarote

Aeropuerto de Fuerteventura (A-F) Isla de Fuerteventura

Puertos -

Puerto de Santa Cruz de Tenerife (P-T) Isla de Tenerife

Puerto de Las Palmas (P-C) Isla de Gran Canaria

Puerto de Santa Cruz de La Palma (P-P) Isla de La Palma

Puerto de Arrecife (P-L) Isla de Lanzarote

Puerto de Fuerteventura (P-F) Isla de Fuerteventura

Invernaderos -

Invernadero Gran Canaria (I-C) Isla de Gran Canaria

Invernadero 1 Tenerife (I1-T) Isla de Tenerife



Invernadero La Palma (I-P) Isla de La Palma

Invernadero Lanzarote (I-L) Isla de Lanzarote

Invernadero Fuerteventura (I-F) Isla de Fuerteventura

Tabla 39. PoEs vigilados en Canarias, en rojo se muestran los puntos incorporados en la vigilancia de 2016. Principales

puertos y aeropuertos que reciben tráfico procedente de áreas de riesgo e invernaderos dedicados a la importación de plantas

procedentes de áreas de riesgo.

87


ISLA DE TENERIFE

Seis de los diecisiete PdE en los que ha sido implantada la vigilancia se encuentran en la

isla de Tenerife, ubicados en el noreste y sur de la isla (Figura 62). Estos son, los

aeropuertos Tenerife Sur (A-TS) y Tenerife Norte (A-TN), el Puerto de S/C de Tenerife

(P-T) y los invernaderos de una empresa dedicada a la importación de plantas (I1-T, I2-T, I3-

T), localizados en las proximidades del A-TN. En el año 2016 se ha ampliado la vigilancia a

dos empresas más dedicadas a la importación de plantas ornamentales, ambas localizadas en

el noreste de la isla de Tenerife (I2-T e I3-T, Figura 62), y a una nueva zona en el entorno del

P-T. En el resto, se han vigilado las mismas zonas que en años anteriores, reduciendo,

aumentando o reubicando el número de puntos vigilados donde fue necesario, a partir de la

información recogida de cada muestreo.

También el personal responsable de la implementación y coordinación de la vigilancia en

estas Islas ha realizado una visita a los PdE en compañía del personal encargado de los

muestreos con el objetivo de evaluar la situación de los puntos de muestreo y proceder a

realizar los cambios pertinentes (ubicación de las trampas, tipo de trampa, inclusión y

eliminación de puntos de muestreo, etc).

Figura 62. Localización de los PdE vigilados en la isla de Tenerife en 2016 (Capa de usos del suelo,

http://idecan2.grafcan.es/ServicioWMS/SIOSE?). Se indica la situación en la isla del A-TN, A-TS, P-T, l1-T, I2-T e I3-T

A-TN

I1-T

P-T

I2-T

I3-T

A-TS

88


Aeropuerto Tenerife Sur (A-TS)

El A-TS fue el segundo aeropuerto Canario con mayor nivel de tráfico de pasajeros y

operaciones y el tercero con mayor nivel de tráfico de mercancías en 2016. Se trata de un

aeropuerto localizado en el sur de Tenerife (Temperatura anual, 21,4 °C, y precipitación

anual, 131,6 mm) con un entorno formado principalmente por cultivos intensivos y

vegetación arbustiva o herbácea donde son escasos los puntos de agua estancada que

pudieran atraer al mosquito invasor. Por ello, todas las zonas vigiladas se encuentran dentro

del aeropuerto. Se continuó con la misma frecuencia de muestreos que en años anteriores,

cada 10 días, en los que el personal revisaba las trampas colocadas, 41 ovitrampas (Jardines

del parking público, planta de procesamiento de aguas y residuos sólidos) y 5 BG-Sentinel

(Terminal de carga y patio de carrillos), y 3 trampas de electrocución (Parque de bomberos y

patio de carrillos), e inspeccionaba cada zona en busca de posibles criaderos, permanentes y

no permanentes, para la captura de larvas y pupas, como los tanques de las plantas de

procesamiento de aguas, los imbornales en ésta y los localizados en el parking público.

Aeropuerto Tenerife Norte (A-TN) e invernaderos (I-T)

El A-TN e I1-T presentan en su entorno ambientes antrópicos (urbanos y agrícolas) que

favorecen la presencia de hábitats de cría del vector, por lo que los puntos de muestreo

fueron seleccionados tanto dentro como fuera de ellos. A lo largo del año 2016 se

muestrearon cada 10 días un total de 21 ovitrampas en A-TN y su entorno (Jardines del

bloque técnico, parque de bomberos y control de fauna, y en el entorno jardines de viviendas

y huertas), 1 trampa BG-Sentinel (Terminal de carga), 2 criaderos permanentes (Huerta y

bloque técnico) y una trampa de electrocución (Parque de bomberos). En el I1-T y con la

misma frecuencia se vigilaron 18 ovitrampas (en 3 invernaderos, donde se depositan plantas

procedentes de áreas de riesgo y fuera de éstos), 1 BG-Sentinel (dentro de invernadero) y 3

criaderos artificiales permanentes localizados dentro y fuera de los invernaderos. Respecto al

año anterior, disminuyó el número de trampas BG-Sentinel colocadas en este aeropuerto

debido al cierre de una de las terminales de carga. Para cubrir esa posible deficiencia se

aumentó el número de ovitrampas en el jardín del bloque técnico, muy cercano a la zona de

apertura de los aviones.

89


Puerto de S/C de Tenerife (P-T)

El P-T igual que el A-TN y el I1-T se localiza en un ambiente urbano, en la ciudad de S/C de

Tenerife. Así los 64 puntos vigilados en este PdE se han situado tanto dentro como fuera del

Puerto. Se han empleado 54 ovitrampas y 5 BG-Sentinel las cuales eran revisadas cada 10

días, además de 4 criaderos de tipo artificial y natural que fueron detectados dentro y en el

borde del Puerto (p. ej.: estanques en parques, fuentes ornamentales y agua en el cauce del

Bco. de Santos). Este año, a partir del mes de agosto, se ha intensificado la vigilancia en el

entorno del P-T incluyendo una nueva zona de muestreo, Barranco de Santos, y se ha

disminuido el esfuerzo en la zona del Palmetum (Jardín botánico anexo al puerto). Este

barranco discurre a lo largo del área metropolitana de la ciudad, desembocando en el P-T.

Invernaderos (I2-T e I3-T)

Como ya se explicó en la introducción la vigilancia en Canarias se llevó, no sólo a puertos y

aeropuertos, sino además a las empresas dedicadas a la importación de flores y plantas.

Hasta el año 2015 la vigilancia se había establecido en tres empresas líderes en este sector

localizadas en las islas de Tenerife, Gran Canaria y La Palma. Sin embargo, era necesario

ampliar la vigilancia debido al aumento de la importación de plantas, especialmente de áreas

de riesgo como son Italia y Países Bajos. Por lo que en 2016, a través de la Asociación de

Cosecheros y Exportadores de Flores y Plantas Vivas de Canarias (ASOCAN), se introdujo la

vigilancia de Ae. aegypti en dos empresas que importaban flores y plantas desde áreas de

riesgo. Ambas empresas están localizadas en el noreste de la isla de Tenerife, en el municipio

de San Cristóbal de La Laguna, en la localidad de Valle Guerra, a una altitud media de 220

msnm y a sólo unos 15 km de la ciudad de San Cristóbal de La Laguna, donde se ubica el A-

TN (Figura 62). Se trata de un valle intercolinar sometido a la influencia directa de los Alisios

por lo que es una zona eminentemente agrícola y productiva, abundando las empresas

dedicadas a esta actividad.

Se seleccionaron aquellos invernaderos (2 invernaderos en I2-T y 4 invernaderos en I3-T) con

mercancía importada y en ellos se ubicaron dos tipo de trampas: ovitrampas y BG-Sentinel, y

se buscaron posibles criaderos de moquitos. En total se colocaron 20 ovitrampas y 2 trampas

BG-Sentinel en cada una de las empresas y se detectaron 3 posibles criaderos de tipo

90


artificial, tanto permanentes como no permanentes. Los puntos fueron revisadas por el

personal responsable 2 veces al mes a lo largo de todo el año.

ISLA DE GRAN CANARIA

En 2016 se continuó la vigilancia en los PdEs en los que fue implantada en 2014: el Puerto de

Las Palmas (P-C), el Aeropuerto de Gran Canaria (A-C) y en una empresa próxima al

aeropuerto dedicado a la importación de plantas (I1-C) (Figura 14).

A-C

I1-C

P-C

Figura 64. Localización de los PdE vigilados en la isla de Gran Canaria en 2016 (Capa de usos del suelo,

http://idecan2.grafcan.es/ServicioWMS/SIOSE?). Se indica la situación en la isla del A-C, P-C e l1-C.

Puerto de Las Palmas (P-C)

El P-C, igual que el P-T y el A-TN, está rodeado de ambiente urbano, al encontrarse situado

en la ciudad de Las Palmas, y por esta razón la vigilancia fue establecida tanto dentro

(Jardines del puerto y PIF) como fuera del perímetro del puerto (Jardines del Ayuntamiento).

Aeropuerto de Gran Canaria (A-C) e invernadero (I1-C)

Por otro lado el A-C comparte un entorno similar al del A-TS por lo que los puntos fueron

seleccionados en el interior del recinto aeroportuario (Terminal de Carga, jardines de la

central eléctrica y parking público). Durante este periodo los puntos seleccionados en Gran

Canaria fueron muestreados cada 10 días.

91


Como ya se hizo referencia, el A-C comparte una situación y características similares a las del

A-TS. Su perímetro limita con un entorno en el que predominan los cultivos intensivos, poco

favorables para la supervivencia de Ae. aegypti, y por este motivo la vigilancia se ha dirigido

al espacio del aeropuerto. Han sido 25 los puntos vigilados en el A-C (23 ovitrampas y 2 BG-

Sentinel), dos puntos menos que en 2015. Esto fue debido al desarrollo de una obra en la

terminal de carga que obligó a reducir el número trampas, de 4 a 2 trampas BG-Sentinel. En

el I1-C se ubicaron 7 ovitrampas en el recinto donde se trabaja con las plantas de importación

y se examinaron criaderos artificiales (no permanentes), ya que los criaderos permanentes

muestreados durante el periodo de vigilancia de 2015 fueron eliminados.

ISLA DE LA PALMA

En la isla de La Palma se ubican dos de los PdEs en los que se implantó la vigilancia en 2014,

el Puerto de La Palma (P-P) y los invernaderos de una empresa que recibe plantas de

importación procedentes de áreas de riesgo (I1-P) (Figura 65).

P-P

I-P

Figura 65. Localización de los PdE vigilados en la isla de La Palma en 2016 (Capa de usos del suelo,

http://idecan2.grafcan.es/ServicioWMS/SIOSE?.). Se indica la situación en la isla del P-P e l1-P.

En el caso del P-P la vigilancia también ha sido establecida fuera del perímetro del PoE, en

ambientes urbanos que limitan con el PoE, ya que el puerto queda anclado en la capital de la

isla, S/C de Palma.

92


Puerto de La Palma (P-P) e invernadero (I1-P)

Como ya se ha dicho el P-P se localiza en la ciudad de S/C de La Palma y por tanto rodeado

de un ambiente urbano. En el año 2016 han sido 41 las trampas vigiladas (ovitrampas y BG-

sentinel), las cuales en su mayoría se encuentran localizadas dentro y fuera del perímetro

portuario, y el resto en el invernadero (8 ovitrampas). También se han vigilado posibles

criaderos, principalmente en los invernaderos.

ISLA DE LANZAROTE

En el año 2016 se ha implementado la vigilancia en el Aeropuerto de Lanzarote (A-L), el

Puerto de Arrecife (P-L) y en los invernaderos de una empresa dedicada a la importación de

plantas (I1-L), localizados en las proximidades del P-L. Estos PoE se encuentran ubicados en

el este de la isla como se muestra la Figura 66. En el caso del I1-L y A-L se ha establecido la

vigilancia en el PdE, sin embargo en el caso del P-L al ser escasos los ambientes apropiados

para la ubicación de las ovitrampas, éstas fueron todas colocadas en sus inmediaciones. Los

muestreos fueron realizados en todo el periodo de vigilancia, año 2016, de forma quincenal.

P-L

I-L

A-L

Figura 66. Localización de los PdE vigilados en la isla de Lanzarote en 2016 (Capa de usos del suelo,

http://idecan2.grafcan.es/ServicioWMS/SIOSE?.). Se indica la situación en la isla del A-L, P-L e l1-L.

93


Aeropuerto de Lanzarote (A-L)

El A-L fue el cuarto aeropuerto Canario con mayor nivel de tráfico de mercancías y el

segundo de pasajeros en 2016. La vigilancia en este aeropuerto fue establecida dentro del

recinto aeroportuario aunque está próximo a viales y viviendas. Dentro de este recinto

existían ambientes apropiados para la ubicación de las ovitrampas, en jardines en el control

de fauna, parking público, etc. Se colocaron un total de 20 ovitrampas y 3 trampas BG-

Sentinel, estas últimas en la terminal de carga (2) y en el patio de carrillo (1).

Puerto de Arrecife (P-L) e invernadero (I1-L)

Está situado en la capital de la isla, Arrecife de Lanzarote. Nació como un puerto

eminentemente pesquero, aunque el destacado crecimiento de su industria turística lo ha

convertido en el tercer puerto de Canarias en mercancías y primero en pesca fresca. Sus

principales tráficos son los contenedores y los cruceros de turismo, por el que ocupa un

importante puesto en el Atlántico Oriental. Este Puerto se encuentra localizado en la capital

de la Isla, Arrecife. Cuando se inspeccionó el PdE en la planificación de la vigilancia no se

localizaron lugares apropiados para la colocación de las trampas y finalmente éstas fueron

ubicadas en sus proximidades, en el entorno urbano que caracteriza a la ciudad de Arrecife

(urbanizado construido). Las ovitrampas fueron colocadas principalmente en jardines de esta

ciudad próximos al P-L. En total se emplearon 20 ovitrampas y se inspeccionaron posibles

criaderos artificiales que resultaron ser no permanentes.

ISLA DE FUERTEVENTURA

Fuerteventura es la Isla más cercana a la costa africana y junto a Lanzarote, son las islas más

áridas del Archipiélago. En el año 2016 (a partir de mayo) comienzan los muestreos en esta

Isla. Concretamente en el Aeropuerto de Fuerteventura (A-F), el Puerto de Puerto del

Rosario (P-F) y en los invernaderos de una empresa dedicada a la importación de plantas (I1-

F), localizados en las proximidades del P-F. Estos PdE se encuentran en el este de la isla

como muestra la Figura 67. En el caso del P-F, además de establecer la vigilancia en el PdE

también se han ubicado trampas en el entorno antrópico (residencial) con el que limita. Los

muestreos fueron realizados quincenalmente a lo largo del periodo de vigilancia del año

2016.

94


I-F

P-F

A-F

Figura 67. Localización de los PdE vigilados en la isla de Fuerteventura en 2016 (Capa de usos del suelo,

http://idecan2.grafcan.es/ServicioWMS/SIOSE?.). Se indica la situación en la isla del A-F, P-F e l1-F.

Aeropuerto de Fuerteventura (A-F)

Este aeropuerto se ubica a 25 msnm a 5 km de Puerto del Rosario. En 2016 este aeropuerto

fue el cuarto aeropuerto Canario en tráfico de pasajeros y el quinto en mercancías, además

del onceavo a nivel nacional en tráfico de pasajeros y el décimo octavo en tráfico de

mercancías. Tiene conexiones con países y ciudades españolas en los que existe presencia de

vectores invasores como Italia, Holanda, Francia, Barcelona y Valencia.

La vigilancia fue establecida dentro del recinto aeroportuario y fuera en una zona residencial

situada en el límite del aeropuerto, y próxima a la estación de tratamiento de aguas del

aeropuerto. Dentro del recinto de este PdE existían ambientes apropiados para la colocación

de ovitrampas, en jardines del bloque técnico, terminal de carga y parking público. Se

colocaron un total de 14 ovitrampas y 2 trampas BG-Sentinel, estas últimas en la terminal de

carga (1) y en el patio de carrillo (1). También se inspeccionó la zona y se localizaron posibles

criaderos artificiales (permanentes).

95


Puerto de Fuerteventura (P-F) e invernadero (I1-F)

El P-F se encuentra localizado en Puerto del Rosario, la capital de la Isla. Igual que el P-L el

tráfico es el de mercancía variada y dispone de infraestructura para recibir de cruceros de

turismo. La importante industria turística de la Isla ha propiciado un incremento del tráfico

de cruceros estos últimos años. El P-F cuenta con una infraestructura para el control de

seguridad de pasajeros no sólo por el aumento de los cruceros si no también ante el posible

restablecimiento de la línea con Tarfaya (Marruecos), lo cual no se ha producido hasta el

momento. Barcos procedentes de países africanos como Marruecos y Senegal, asiáticos como

China y Singapur o europeos como Holanda y Francia, donde la presencia de los vectores

invasores ha sido confirmada, embarcan y desembarcan mercancías en y desde el P-F.

El perímetro del Puerto limita con la ciudad por lo que la vigilancia fue establecida dentro y

fuera de éste. Se colocaron un total de 16 ovitrampas en jardines de la terminal de

contenedores, en el muelle deportivo, en la terminal de cruceros y en jardines localizados a lo

largo del perímetro de este puerto (residencial). En el CIF, donde se realiza el control

aduanero de las mercancías, se instalaron 2 BG-Sentinel y se localizaron posibles criaderos

(no permanentes) en la desembocadura del Barranco de los Pozos.

Muy próximo al P-F se encuentran los invernaderos de I1-F, ubicados en suelo denominado

matorral (vegetación arbustiva y/ herbácea) según el mapa de ocupación del suelo (Figura

17). La vigilancia se limitó al recinto del invernadero donde se ubicaron 16 ovitrampas y 1

trampa BG-Sentinel, y se inspecciones criaderos artificiales (no permanentes).

2 RESULTADOS

ISLA DE TENERIFE

Aeropuerto Tenerife Sur (A-TS)

Un total de 75 individuos adultos fueron capturados en el A-TS y fueron identificados como

Culex pipiens, Culex laticinctus, Culex theileri y Culiseta longiareolata, las mismas especies que

fueron identificadas durante la vigilancia en 2015.

96


Especie Totales

Cs. longiareolata 11

Cx. pipiens 44

Cx. theileri 10

Cx. laticinctus 10

TOTAL 75

Tabla 40. Especies de culícidos capturados en el aeropuerto de Tenerife sur.

Figura 68. Recuento cualitativo de especies capturadas. Se presentan el porcentaje (%) de cada especie (adultos y larvas),

capturadas en el A-TS en 2016.

0

10

20

30

40

50

60

70

Cs. longiareolata

Cx. pipiens Cx. theileri Cx. laticinctus

hembras

machos

Figura 69 Sex ratio de las especies capturadas en el puerto de Tenerife Sur a lo largo del periodo del estudio.

97


A.

B.

Figura 70. Abundancia de mosquitos en el A-TS (isla de Tenerife), 2016. Se muestra la superficie ocupada por el A-TS

(en gris) y el suelo urbanizado (residencial continuo) (rojo), muy alejado del perímetro aeroportuario (> 500 m) y escaso. Se

indican los puntos de muestreo (gris) en el A-TS. Los puntos en rosa indican la abundancia de culícidos (A). Los puntos en

amarillo indican la abundancia de Cx. pipiens (B).

98


Es nuevamente Cx. pipiens, especie de interés sanitario, la especie más abundante y

distribuida en este PdE (N= 44, en 4 de las 5 zonas) como muestran las figuras 69 y 70, B,

siendo más abundante en el parque de bomberos, muy cerca de la estación de procesamiento

de residuos sólidos, donde abundan ambientes apropiados para la cría de estos mosquitos.

Sin embargo, su abundancia relativa disminuyó y en el caso de especies como Cx. theileri y

Cs. longiareolata aumentó respecto al año anterior. El número de individuos de esta especie

aumentó en los meses de marzo, agosto y noviembre (Figura 69). Sin embargo, como ya se

comentó el número de culícidos fue muy inferior al de otros año. Según los datos

climatológicos recogidos de la AEMET para Canarias, la primavera de 2016 resultó fría y las

precipitaciones inferiores respecto a los valores normales, el verano muy cálido y las

precipitaciones no alcanzaron ni el 25% de los valores normales, y el otoño frío y con valores

de precipitación inferiores al 75% respecto a los normales.

Figura 71. Fenología de Cx. pipiens, 2016. Se representa el número de Cx. pipiens capturados cada mes en el A-TS (año

2016), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación Tenerife Sur

aeropuerto (fuente: AEMET).

Aeropuerto Tenerife Norte (A-TN) e invernaderos (I-T, I2-T, I3-T).

Respecto al año anterior, disminuyó el número de trampas BG-Sentinel colocadas en este

aeropuerto debido al cierre de una de las terminales de carga. Para cubrir esa posible

deficiencia se aumentó el número de ovitrampas en el jardín del bloque técnico, muy

cercano a la zona de apertura de los aviones.

99


Como en años anteriores fue el A-TN y el I1-T donde se capturó el mayor número de

individuos en Canarias (A-TN, N= 1428 e I1-T, N= 1329, Total= 2757).

En el A-TN se identificaron ejemplares pertenecientes a las especies Cx. pipiens, Cs.

longiareolata, Ochlerotatus. eatoni y Cx. laticinctus. Respecto a la abundancia relativa entre

las especies fue el vector Cx. pipiens (55,88%) la especie más abundante en 2016 seguido

de Cs. longiareolata (43,21%), especie sin importancia sanitaria.

Especie Totales A-TN

Ae. eatoni 2


Cx. pipiens 803

Cx. laticinctus 10

TOTAL 1427

Tabla 41. Especies de culícidos identificadas en el aeropuerto de Tenerife Norte.

Figura 72. Recuento cualitativo de especies capturadas. Se presentan los porcentajes (%) de cada especie (adultos y

larvas), capturadas en el A-TN en 2016.

100


Especie Totales I1-T

Ae. eatoni 71


Cx. pipiens 266

Cx. theileri 83

Cx. laticinctus 255

TOTAL 1329

Tabla 42. Especies de culícidos identificadas en el invernadero 1 de Tenerife.


larvas), capturadas en el I1-T en 2016

Hay que destacar que el 79,9% y el 74,35% de las capturas del A-TN y I1-T

respectivamente fueron en estadio de larva debido a la abundancia de criaderos artificiales

que favorece el entorno (huertas y viviendas).

101


A.

B.

Figura 74 Abundancia de mosquitos en el A-TN e I1-T (isla de Tenerife), 2016. Se muestra la superficie ocupada por

el A-TN (gris) y el suelo urbanizado, residencial continuo (rojo), que corresponde a la ciudad de San Cristóbal de La Laguna,

y agrícola, huerta (rosa). El círculo en rojo localiza el I-T y los puntos en gris los puntos de muestreo. Los puntos en rosa

indican la abundancia de culícidos (A) y los puntos en amarillo la abundancia de Cx. pipiens (B).

Se detectaron huevos (N=7) sólo en el I1-T que pertenecían al aedino residente Ae. eatoni, lo

cual ocurrió en una ocasión y donde el número de ovitrampas positivas fue sólo una.

Aunque las ocasiones y el número de ovitrampas positivas fue menor, el número de adultos

capturados fue mayor al de 2015 (N= 86, 81 hembras y 5 machos). Entre los adultos

102


capturados en el I1-T (trampa BG-Sentinel), Ae. eatoni fue el más abundante (72,73%),

seguido de Cs. longiareolata (16,88%) y Cx. pipiens (5,19%), y fue detectado por primera vez en

la trampa BG-Sentinel localizada en el A-TN. La figura 67, B muestra la distribución y

abundancia de Cx. pipiens, el vector más distribuido y abundante en el A-TN y I1-T ya que

Cx. theileri sólo fue detectado en los criaderos del I1-T. Así, en el I1-T se detectaron dos

especies de vectores (Cx. pipiens y Cx. theileri) frente al A-TN donde se detectó sólo una (Cx.

pipiens). Respecto a la abundancia y fenología del vector Cx. pipiens, aunque se detectó todos

los meses, su abundancia fue menor a la de 2015, en concreto en los meses de invierno y

primavera.

A.

Figura 75. Fenología de Cx. pipiens, 2016. Se representa el número de Cx. pipiens capturados cada mes en el A-TN (A) y el

I1-T (B) (año 2016), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación

Tenerife Norte aeropuerto (fuente: AEMET).

B.

103


El mes de enero fue cálido pero muy seco, y luego febrero, aunque fue húmedo, fue

extremadamente frío en el A-TN. Estas temperaturas medias muy bajas pueden haber

afectado a la abundancia anual de este vector (Figura 75).

Invernaderos (I2-T e I3-T)


Cs. longiareolata 4

Cx. pipiens 76

Cx. laticinctus 3

TOTAL 83

Tabla 43. Especies de culícidos capturados en invernadero 2 de Tenerife


larvas), capturadas en el I2-T en 2016.


Cx. pipiens 46

Cx. laticinctus 4

TOTAL 50

Tabla 44. Especies de culícidos capturados en el invernadero 3 de Tenerife

104



larvas), capturadas en el I3-T en 2016.

Se capturaron un total de 83 individuos en el I2-T y 50 en el I3-T, entre adultos (N= 21, 11

machos y 10 hembras) y larvas (N= 112). Las especies identificadas fueron Cx. pipiens y Cx.

laticinctus, en ambos invernaderos, y Cs. longiareolata que sólo se detectó en el I2-T (Figura

76).

La única especie de importancia sanitaria identificada fue Cx. pipiens la cual resultó la más

abundante y distribuida en el I2-T e I3-T (Figura 77). Ésta se detectó en criaderos, ovitrampas

y trampas BG-Sentinel localizadas en diferentes zonas del recinto (invernaderos, jardines,

exposición, canales de riego, etc.).

105


A.

B.

Figura 78. Abundancia de mosquitos en el I2-T (círculo en rojo) e I3-T (círculo en amarillo) (isla de Tenerife), 2016. Se

muestra la superficie ocupada por invernaderos (marrón) y el suelo urbanizado, residencial continuo (rojo), que corresponde a

la localidad de Valle Guerra, y agrícola, huerta (rosa). Los puntos en gris localizan los puntos de muestreo. Los puntos en

rosa indican la abundancia de culícidos (A) y los puntos en amarillo la abundancia de Cx. pipiens (B).

106


Cx pipiens no se detectó en el I2-T en los meses de invierno ni en algunos meses del verano.

En el I3-T este vector tampoco se capturó en invierno ni en verano probablemente debido a la

escasez de lugares de cría por las bajas precipitaciones.

A.

B.

Figura 79. Fenología de Cx. pipiens, 2016. Se representa el número de Cx. pipiens capturados cada mes en el I2-T (A) y

el I3-T (B) (año 2016), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación

Santa Cruz de Tenerife (fuente: AEMET).

Puerto de Santa Cruz de Tenerife (P-T)

Se capturaron un total de 812 individuos, 767 fueron larvas encontradas en estanques

cercanos al puerto, el resto fueron adultos. Pudieron ser identificados como

pertenecientes a las especies Oc.caspius, Cs. longiareolata, Cx. pipiens, Cx. theileri, Cx.

107


laticinctus, Anopheles sergentii y Anopheles cinereus hispaniola como se muestra a

continuación:

Especie Totales

Oc. caspius 4


Cx. pipiens 399

Cx. theileri 43

Cx. laticinctus 9

An. c. hispaniola 27

An. sergentii 97

TOTAL 812

Tabla 45. Especies identificadas en el puerto de Santa Cruz de Tenerife (PT)

Estos fueron detectados la mayoría en el “Palmetum”, luego en el CIF, sus alrededores y en

el Bco. de Santos, y por último en la terminal de contenedores (Figura 82).

Oc. caspius 0,49

Cs. longiareolata28,69

Cx. pipiens49,14

Cx. theileri

5,30

Cx. laticinctus1,11

An. c. hispaniola3,33

An. sergentii11,95

Figura 80. Recuento cualitativo de especies capturadas. Se presentan los porcentajes (%) de cada especie (adultos, larvas

y huevos), capturadas en el P-T en 2016.

108


0,0

5,0

10,0

15,0

20,0

25,0

30,0

35,0

40,0

45,0

50,0

Hembras

Machos

Figura 81. Sex-ratio de las especies capturadas en el P-T en 2016

A.B.

109


Figura 82. Abundancia de mosquitos en el P-T (isla de Tenerife),

2016. Se muestra en el mapa la superficie ocupada por el P-T (en

gris) y el suelo urbanizado, residencial continuo (rojo), que

corresponde a la ciudad de S/C de Tenerife. Se indican los puntos

de muestreo sobre la capa (gris). Los puntos en rosa indican la

abundancia de culícidos (A), los puntos en amarillo la

abundancia de Cx. pipiens (B) y en azul se muestra sobre el

mapa la distribución y abundancia de An. sergentii en el PdE

(C).

En esta ocasión no se detectaron huevos de Ae. eatoni y se identificando dos especies que

no habían sido antes encontradas en este PdE, Ochlerotatus caspius (“Palmetum”) y

Anopheles sergentii (Bco. de Santos y terminal de contenedores), ambas con importancia

sanitaria. Este informe además, cita por primera vez a Oc. caspius en la isla de Tenerife ya

que ésta sólo aparece citada en Gran Canaria. La mayoría de las capturas se trataron de

larvas que se encontraron en criaderos artificiales y naturales. Hay que puntualizar que

mientras especies como Cx. pipiens, Cx. theileri, Cx. laticinctus y Cs. longiareolata se

encontraron en criaderos de ambos tipos, los anofelinos sólo fueron encontrados en

criaderos de tipo natural (Bco. de Santos). Aunque en menor abundancia, también se

detectaron mosquitos adultos en las BG-sentinel del CIF y en trampas de electrocución

situadas en el recinto portuario, terminal de contenedores (30 hembras y 15 machos).

C.

110


Figura 83. Fenología de Cx. pipiens, 2016. Se representa el número de Cx. pipiens capturados cada mes en el P-T (año

2016), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación Santa Cruz de

Tenerife (fuente: AEMET).

Respecto a la abundancia y distribución, fue Cx. pipiens el vector potencial más abundante y

distribuido (N= 399, en 4 de las 5 zonas), seguido de An. sergentii (N=97, en 2 de las 5 zonas).

Este último se capturó en criaderos del Barranco y en trampas de electrocución (Terminal de

contenedores), situadas muy cerca de la desembocadura de otro barranco, denominado del

Bufadero, en la que en años anteriores en lugar de An. sergentii se había detectado An. c.

hispaniola. La variación estacional de la abundancia de Cx pipiens en este PdE muestra la

presencia del vector en todos los meses, con una abundancia menor en otoño (Figura 83).

En el caso de An. sergentii y An. c. hispaniola, ambos vectores potenciales de enfermedades

humanas, mostraron una diminución de la abundancia en otoño. Pero aún los datos son

escasos para determinar su abundancia estacional en este PdE. Al revisar los datos de la

AEMET se puede ver que el año 2016 se caracterizó por un enero seco, una primavera fría

con un mayo muy húmedo, un mes de agosto muy cálido y extremadamente seco, un

noviembre muy frío y un diciembre muy cálido.

111


A.

B.

Figura 84 Fenología de los anofelinos, 2016. Se representa el número de An. sergentii (A) y An. c. hispaniola (B)

capturados cada mes en el P-T (año 2016), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-

2010, estación Santa Cruz de Tenerife (fuente: AEMET).

ISLA DE GRAN CANARIA

Puerto de Las Palmas (P-C)

De las 47 ovitrampas y 6 trampas BG-Sentinel colocadas para la vigilancia de Ae. aegypti,

sólo fueron detectadas formas adultas (N= 77) en las trampas BG-Sentinel situadas en el

PIF de este puerto (Figura 79), y que fueron identificadas como Cx. pipiens (49 hembras y

27 machos) y 1 macho de Cs.longiareolata.

112


Especie P-C

Cs. longiareolata 1

Cx. pipiens 76

TOTAL 77

Tabla 46. Especies de culícidos capturados en puerto de Las Palmas de Gran Canaria

Figura 85. Recuento cualitativo de especies capturadas. Se presentan los porcentajes (%) de cada especie (adultos),

capturadas en el P-C en 2016.

113


Figura 86. Abundancia de mosquitos en el P-C (isla de Gran Canaria), 2016. La superficie del P-C aparece en color gris

y en rojo se representa el suelo urbanizado (residencial continuo) que corresponde con la ciudad de Las Palmas. Se

indican los puntos de muestreo en gris y la abundancia de Cx. pipiens (punto amarillo) que corresponde con la

localización del PIF.

Los resultados en 2016 son similares a los del año 2015 donde la abundancia del vector Cx.

pipiens aumento respecto a 2014, detectando su presencia en casi todos los meses del año. En

este caso, en 2016, los meses de invierno fueron los que mostraron mayor abundancia (Figura

87). Enero de este año se caracterizó por ser muy cálido, aunque seco. Esto ha podido

favorecer la reproducción del mosquito en aguas procedentes de la planta de recogida y

gestión de residuos, que colinda con el PIF.

114


Figura 87. Fenología de Cx. pipiens, 2016. Se representa el número de Cx. pipiens capturados cada mes en el P-C (año

2016), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación Gran Canaria

Aeropuerto (fuente: AEMET).

Aeropuerto de Gran Canaria (A-C) e invernadero (I-C).

Recordemos que el A-C comparte una situación y características similares a las del A-TS.

Su perímetro limita con un entorno en el que predominan los cultivos intensivos, poco

favorables para la supervivencia de Ae. aegypti, y por este motivo la vigilancia se dirigido

al espacio del aeropuerto.

El número de individuos capturados durante 2016 ha sido de (N= 278) en la terminal de

carga, un todos ellos adultos (Figura 90. A) Respecto al año anterior fueron sólo identificadas

dos especies: Cx. pipiens, Cs. longiareolata y tan solo un ejemplar de Cx.laticinctus. Fue de

nuevo Cx. pipiens la más abundantemente distribuida en este PdE.

Especie Totales A-C+ I1-C


Cx. pipiens 267

Cx. laticinctus 1

TOTAL 278

Tabla 47. Especies de culícidos capturados en el aeropuerto e invernadero 1 de Las Palmas

115



larvas), capturadas en el A-C en el I-C en 2015.

Figura 90. Abundancia de mosquitos en el A-C y en el I1-C (isla de Gran Canaria), 2016. La superficie del A-C aparece

en color gris y en rojo se representa el suelo urbanizado (residencial continuo). El círculo en rojo señala al I1-C. Se indican

los puntos de muestreo sobre una capa usos del suelo (puntos en gris). Los puntos amarillos indican la abundancia de Cx.

pipiens.

116


De nuevo fue Cx.pipiens la especie más abundante y estuvo presente en todos los meses del

año. Al representar (Figura 83) la evolución de la abundancia de Cx. pipiens en este periodo

se observa que va acorde a las precipitaciones alcanzándose un pico de abundancia en el mes

de septiembre que fue algo cálido respecto a los valores normales.

Figura 91. Fenología de Cx. pipiens, 2016. Se representa el número de Cx. pipiens capturados cada mes en el A-C (año

2016), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación Gran Canaria


El número de individuos capturados en el I1-C durante 2016 fue muy inferior al de años

anteriores (N= 24, larvas) debido a la reducción de los criaderos. Estas larvas fueron

identificadas como Cx. pipiens y fueron encontradas en un criadero no permanente en dos

ocasiones durante diciembre (Figura 90. A).

ISLA DE LA PALMA

Puerto de Santa Cruz de La Palma (P-P+I1-P)

Se detectaron culícidos, larvas (N= 1) y huevos (N= 29), en el entorno del P-P (Figura 92), en

trampas de oviposición y todos fueron identificados como Ae. eatoni. No se detectó ninguna

especie de importancia sanitaria. Estos huevos fueron detectados en los meses de otoño,

invierno y primavera. Esto forma parte de la estrategia de resistencia al invierno de los

aedinos.

117


Figura 92. Abundancia de mosquitos en el P-P (isla de La Palma), 2016. La figura muestra la ubicación de los puntos de

muestreo (puntos en gris) en el P-P (en gris), y la abundancia de culícidos (Ae. eatoni) (puntos rosa). En rojo se representa el

suelo urbanizado (residencial continuo).

Los invernaderos de la empresa vigilada fue el único PoE donde se produjeron cero capturas,

el mismo resultado que en años anteriores. Así, a partir del 2017 se instalará al menos una

trampa BG-Sentinel en este invernadero con el objetivo de detectar a los mosquitos a través

de la captura de las formas adultas.

Aeropuerto de La Palma (A-P)

El número de individuos capturados durante 2016 ha sido de (N= 176), un total de 137

larvas y 39 individuos adultos de los cuales el 88,8% fueron hembras. Respecto al año

anterior fueron sólo identificadas dos especies: Cx. pipiens y Cs. longiareolata.

Especie A-L


Cx. pipiens 61

TOTAL 176

Tabla 48. Especies de culícidos capturados en el aeropuerto de La Palma

118



larvas), capturadas en el A-P 2016.

ISLA DE LANZAROTE

Puerto de Arrecife (P-L+I1-L)

En el puerto de Lanzarote solo se han contabilizado 15 larvas que fueron identificadas como

pertenecientes a la especie Cs longiareolata. En el invernadero, se realizaron capturas de

adultos (N=8) de dos especies: Cx. pipiens y Cs. longiareolata siendo el 87,7% hembras.

Especie I1-L

Cs. longiareolata 7

Cx. pipiens 1

TOTAL 8

Tabla 49. Especies de culícidos capturados en el invernadero de Lanzarote

En el P-L sólo se detectaron larvas de culícidos en criadero artificial localizado en la zona

próxima a las garcillas por una fuga de agua del riego de los jardines en el mes de octubre.

Fueron un total de 15 larvas que fueron identificadas como Cs. logiareolata (Figura 94),

especie sin interés sanitario.

119


Figura 94. Abundancia de mosquitos en el P-L (isla de Lanzarote), 2016. La figura muestra la ubicación de los puntos de

muestreo (puntos en gris) en el P-L (en gris), y la abundancia de culícidos (Cs. longiareolata) (puntos rosa). En rojo se

representa el suelo urbanizado (residencial continuo).

A.

B.

Figura 95. Abundancia de mosquitos en el I1-L (isla de Lanzarote), 2016. La figura A muestra la localización del I1-L

(círculo en rojo). Se muestra la superficie entorno a los invernaderos, cultivo abandonado (marrón) y el suelo urbanizado,

residencial continuo (rojo), que corresponde a la ciudad de Arrecife. La figura B muestra en detalle los puntos muestreados en

el I1-L y la abundancia. Los puntos en gris localizan los puntos de muestreo. Los puntos en rosa indican la abundancia de

culícidos.

120


A las afueras de Arrecife se encuentra los invernaderos (I1-L), ubicados en suelo urbanizado,

rodeado de terreno de cultivo abandonado y próximo a viviendas (Figura 94). La vigilancia

se limitó al recinto del invernadero donde se detectaron tan sólo 8 adultos y 4 larvas que

fueron identificadas como: Cs. longiareolata y Cx. pipiens (Figura 95). Éste último estuvo

representado por sólo un ejemplar adulto que fue capturado en el mes de marzo. En general

ha sido muy baja la abundancia de culícidos en estos PoE, especialmente de las especies de

interés sanitario, durante este periodo de vigilancia.


larvas), capturadas en el I1-L en 2016.

Aeropuerto de Lanzarote (A-L)

Se capturaron 176 mosquitos entre larvas (N= 137) y adultos (N= 39). Estos fueron

identificados como: Cs. longiareolata y Cx. pipiens. (Figura 98).

Especie A-L


Cx. pipiens 62

TOTAL 176

Tabla 50. Especies de culícidos capturados en el aeropuerto de Lanzarote

121



larvas), capturadas en el A-L en 2016.

Las larvas fueron capturas principalmente de una arqueta próxima al parque de bomberos

que mantenía agua de forma permanente y los adultos fueron encontrados en el parque de

bomberos (trampa de electrocución), y en la terminal de carga. En estas zonas fueron

capturados ejemplares adultos y larvas de ambas especies (Figura 98).

A.

122


B.

Figura 98. Abundancia de mosquitos en el A-L (isla de Lanzarote), 2016. Se muestra la superficie ocupada por el A-L

(gris) y el suelo urbanizado, residencial continuo (rojo) y vegetación arbustiva y/o herbácea (naranja). Los puntos en gris es

la localización de los puntos de muestreo. Los puntos en rosa indican la abundancia de culícidos (A) y los puntos en amarillo

la abundancia de Cx. pipiens (B).

El vector no fue detectado todos los meses, sin embargo fue más abundante en el trimestre

de julio, agosto y septiembre, el más seco en Canarias (Figura 99).

Figura 99. Fenología de Cx. pipiens, 2016. Se representa el número de Cx. pipiens capturados cada mes en el A-L (año

2016), la temperatura media mensual (T) y precipitación mensual (R) en el periodo 1981-2010, estación Lanzarote


123


ISLA DE FUERTEVENTURA

Aeropuerto de Fuerteventura (A-F)

Se capturaron 126 mosquitos entre larvas (N= 123) y adultos (N= 3). Estos fueron

identificados como: Cx. pipiens, Cs. longiareolata y Cx. theileri, especie de importancia sanitaria

que no había sido citada en Fuerteventura hasta el momento (Figura 100). Las capturas

fueron positivas en la estación de tratamiento de aguas y en la zona del patio de carrillos.

Especie Totales A-F


Cx. pipiens 92

Cx. theileri 1

TOTAL 126

Tabla 51. Especies de culícidos capturados en el Aeropuerto de Fuerteventura

Cx. pipiens fue la especie más abundante (Figura 100), siendo capturada mayoritariamente en

el mes de abril y mayo, en la estación de tratamiento de aguas. A partir de esta fecha la

ausencia de larvas es debida a la eliminación del criadero. Éste se trataba de un tanque de la

estación de tratamiento de aguas (tanque de micrófitos flotantes) el cual fue eliminado por

una obra de remodelación de la estación.

Cs. longiareolata; 26,19

Cx. pipiens;

73,02

Cx. theileri; 0,79


larvas), capturadas en el A-F en 2016.

124


Figura 101. Abundancia de mosquitos en el A-F (isla de Fuerteventura), 2016. Se muestra la superficie ocupada por el

A-F (gris) y el suelo urbanizado, residencial continuo (rojo) y agrícola, huerta (rosa). Los puntos en gris es la localización de

los puntos de muestreo. Los puntos en amarillo indican la abundancia de Cx. pipiens.

Puerto de Fuerteventura (P-F+I1-F)

Especie P-F


TOTAL 128

Tabla 52. Capturas realizadas en el Puerto de Fuerteventura

En el P-F sólo se detectaron larvas de culícidos en criaderos localizado en la zona de

desembocadura del barranco en el que el agua procedía o de las precipitaciones o de una

fuga de agua de origen desconocido. Todas las larvas fueron identificadas (N= 128) como Cs.

longiareolata (Figura 102), y ésta carece de interés médico-veterinario.

125


Figura 102. Abundancia de mosquitos en el P-F (isla de Fuerteventura), 2016. Se muestra la superficie ocupada por el P-

F (gris) y el suelo urbanizado, residencial continuo (rojo) y vegetación arbustiva y/o herbácea (naranja). Los puntos en gris es

la localización de los puntos de muestreo. Los puntos en rosa indican la abundancia de culícidos (Cs. longiareolata) en este

PdE.

Muy próximo al P-F se encuentran los invernaderos de I1-F, donde se identificó un total de

124 individuos, 40 larvas y 84 adultos, fueron capturados e identificadas como: Cx. pipiens

(98,39%) y Cs. longiareolata (1,61%). Ésta última especie estuvo representada por sólo dos

ejemplares que fueron capturados en el mes de julio y noviembre. Las larvas de Cx. pipiens

fueron capturadas en criaderos artificiales encontrados en el I1-F pero también fueron

localizadas en las ovitrampas. El vector Cx. pipiens fue el más abundante con valores mayores

en verano.

126


Especie I1-F

Cs. longiareolata 2

Cx. pipiens 122

TOTAL 124

Tabla 53. Capturas realizadas en los invernaderos I1-F

B.

C

Figura 103. Abundancia de mosquitos en el I-F (isla de Fuerteventura), 2016. La figura A muestra la localización del I1-F

(circulo en rojo) la superficie sobre la que se localiza y que rodea al I1-F, vegetación arbustiva y/o herbácea (naranja) y el

suelo urbanizado, residencial continuo (rojo). Las figuras B y C son una aproximación a los puntos de muestreo en el I1-F.

127


OBJETIVO 5

1 METODOLOGÍA

En nuestra situación actual en la que el uso generalizado de insecticidas en ambientes

domésticos está siendo revisado y valorado por el riesgo de impacto en la salud humana

y animal (One Health) resulta imprescindible la vigilancia para detectar la aparición de

resistencia a los diferentes biocidas autorizados para su uso en ambientes humanizados.

El conocimiento de esta potencial resistencia de determinados compuestos es básico para

establecer planes de control de las especies antropófilas que permitan la máxima eficacia

con las mínimas cantidades de producto empleado, lo que además permitirá abaratar el

coste de los tratamientos. Fundamental en caso de brotes de enfermedades exóticas

importadas de transmisión vectorial.

La base más racional del control de mosquitos es la destrucción de los habitats larvarios,

y el uso de larvicidas es la medida más eficaz para disminuir las poblaciones de estos

insectos y reducir o incluso eliminar la transmisión de enfermedades (WHO 2006).

Durante los brotes epidémicos el uso de insecticidas frente adultos es lo recomendado

para disminuir el número de hembras voladoras y sobre todo las que pueden ser

portadoras de los patógenos. La aparición de resistencia a los insecticidas de uso habitual

representa un problema serio y grave en el desarrollo de los programas de control por el

uso de productos ineficaces.

La resistencia a insecticidas es la capacidad desarrollada por los insectos para adaptarse

a la toxicidad de los mismos ante una exposición continuada y sub-letal. La OMS define

la resistencia a insecticidas como la capacidad de una población de insectos de tolerar

dosis de un insecticida que serían letales para la mayoría de los individuos en una

población normal de la misma especie y es el resultado de la presión de selección

positiva ejercida por el insecticida (OMS 1975)

128


Conocer el estado de las resistencias en la población de Aedes albopictus a tratar es

fundamental para el correcto diseño de cualquier campaña de control. Estos valores

deberían de conocerse antes de realizar aplicaciones adulticidas, ya que en brotes

epidémicos en los que el Aedes aegypti actuaba como vector este podría haber sido un

factor clave en el bajo éxito de las campañas de control (Marcombe et al. 2009; Dusfour et

al. 2011; Macoris et al. 2014).

Dos son las principales vías o mecanismo de aparición de resistencia frente a insecticidas:

un incremento de las enzimas de detoxicación y una insensibilidad (bloqueo) de los

puntos de actuación. Las principales enzimas implicadas en la desactivación de los

insecticidas son esterasas, la cytochrome P450 oxidasas y la glutathione-S-transferasas,

ofreciendo una resistencia de base metabólica. Las dianas insectidas (insecticide targets)

son la acetilcolinesterasa sináptica, el ácido γ-aminobutirico (GABA) y el canal de sodio,

los cuales están codificados por los genes (ace-1, Rdl, kdr respectivamente). Si surgen

mutación en alguno de estos genes puede inferir en insensibilidad a los insecticidas.

Este primer año hemos puesto apunto las técnicas de laboratorio que sirven para valorar

la aparición de resistencias. Esta puesta a punto ha consistido en calcular las

concentraciones discriminantes de los principales insecticidas que se utilizan en España

empleando como técnica base o “técnica de oro” bioensayos con tubos, que es la

recomendada por la OMS por ser la referencia estandarizada. Además de ayudarnos a

ver el estado de susceptibilidad de nuestras diferentes poblaciones y su posible

evolución en el tiempo, nos permite comparar nuestros resultados con lo que está

sucediendo en otros países de nuestro entorno.

Para poner a punto la técnica se ha empleado una colonia de Aedes albopictus que se

encuentra establecida en el Laboratorio de Entomología Médico Veterinaria del

Departamento de Patología Animal de la Facultad de veterinaria de la Universidad de

Zaragoza. La información relativa a composición y mantenimiento se especifican en

Alarcón Elbal et al. 2010. Esta colonia se estableció en 2008 con huevos procedentes de

una población silvestre en el Prat de Llobregat (Barcelona). Se ha considerado que es

129


susceptible a los insecticidas testados ya que lleva ocho años en laboratorio y no ha

estado en este tiempo expuesta a la acción de ningún tipo de insecticida.

Figura 104. Fotografía del insectario

Bioensayo con Tubo de la OMS (OMS, 2016)

Para llevar a cabo este ensayo se emplean unos kits suministrados por la propia OMS.

Cada kit de ensayo consiste en dos tubos que se pueden unir para transferir los

mosquitos de un tubo a otro mediante un soplido. Uno de los tubos (Tubo de

recuperación) está libre de insecticidas y está marcado con un punto verde, mientras que

en el otro (Tubo de exposición) es en el que se coloca un papel impregnado con

insecticida, y está marcado con un punto rojo.

El procedimiento del ensayo varía ligeramente según el tipo de dato que se quiera

obtener (Concentración Discriminante o Mortalidad de una población), aunque los pasos

básicos son los siguientes:

130


1. Se transfieren desde las jaulas de cría a los tubos de recuperación 25 mosquitos

hembras no alimentadas con sangre, de 4 a 6 días de edad. Se repite este proceso 4 veces

para testar 100 mosquitos

2. Se dejan los mosquitos en los tubos de recuperación durante 1 hora, para descartar los

mosquitos moribundos o muertos.

3. Se inserta el papel impregnado con insecticida en el tubo de exposición.

4. Se unen tubo de exposición y tubo de recuperación mediante una guillotina, que

permite transferir mediante un soplido los mosquitos del tubo de recuperación al tubo

de exposición.

5. Los mosquitos son mantenidos en el tubo de exposición durante 1 hora. El tubo ha de

mantenerse en posición vertical.

6. Tras la hora de exposición los mosquitos vuelven a ser transferidos al tubo de

recuperación, y se coloca un algodón impregnado con agua y azúcar al 10% en la rejilla.

7. Los mosquitos son mantenidos en el tubo de recuperación durante 24 horas. Las

condiciones climáticas ambientales han de ser: 25 ± 1 ºC de temperatura y 75% ± 5% de

Humedad relativa, y un fotoperiodo de 12 horas de luz y 12 horas de oscuridad.

8. Al final del periodo de recuperación (24 horas), se cuenta el número de mosquitos

muertos. Se considera que un mosquito está vivo si es capaz de volar, aunque le falten

patas. Se considera que un mosquito está muerto si está inmóvil o es incapaz de

mantenerse de pie o de volar.

131


Figura 105. Kit de la OMS para testar resistencias a insecticidas (WHO/VBC/81.805)

Figura 106. Detalle del Kit de la OMS para testar resistencias a insecticidas (WHO/VBC/81.805).

132


Figura 107. Detalle de la exposición de los mosquitos a los papeles impregnados (WHO/VBC/81.805).

Impregnación de los papeles con las diferentes concentraciones de insecticidas

Se han seleccionado inicialmente tres insecticidas, Deltametrina, Permetrina y

Cipermetrina, que son los tres principios activos más utilizados en ambientes urbanos.

Los tres pertenecen al grupo de los insecticidas Piretroides sintéticos.

Para calcular si las poblaciones naturales presentan resistencias hay que determinar las

concentraciones de discriminación con las que poder comparar la sensibilidad a los

mismos de las poblaciones silvestres a testar.

Como se ha comentado antes se tienen que enfrentar los mosquitos a papeles

impregnados con distintas concentraciones de cada insecticida para determinar la dosis a

la que se produce la mortalidad.

Los papeles (de 12 x 15 cm) se impregnaron en el laboratorio de la Universidad de

Zaragoza en una campana de extracción para evitar intoxicaciones con los insecticidas.

Se disolvieron diferentes concentraciones de dichos insecticidas de grado técnico en

133


acetona (2ml por papel) y aceite de silicona (0,66 ml por papel) siguiendo el método

descrito por la OMS (WHO 2006), por lo que en cada papel se aplican 2,66 ml. Las

concentraciones se expresaron como el porcentaje de materia activa por unidad de

volumen del aceite de silicona. Los mg de insecticida que hay que aplicar en cada papel

se calculan multiplicando la concentración deseada por los ml de aceite de silicona.

Dividiendo los mg de insecticida entre 0,018 m2 (la superficie de cada papel es de 180

cm2) obtenemos la cantidad por metro cuadrado. También se prepararon del mismo

modo los papeles control, pero sin insecticida.

A la hora de impregnar los papeles es muy importante que la mezcla de aceite de

silicona y acetona sea lo más homogénea posible, agitando el tubo con la mezcla antes de

tomar la alícuota de 2,66 ml. A la hora de hacer la aplicación sobre el papel se utilizó una

micropipeta, distribuyendo la dilución de la manera más homogénea posible sobre el

papel. Para secar los papeles se fabricó un tenderete con clips en los que se colgaban los

papeles impregnados. Entre las diferentes concentraciones se colocaron papeles secantes

para evitar que se contaminasen.

Figura 108. Papeles impregnados con insecticidas

134


Las concentraciones discriminantes permiten realizar una evaluación rápida de la

resistencia de una población de mosquitos a un insecticida concreto. Estas

concentraciones están prefijadas por organizaciones mundiales como la OMS, aunque

también pueden ser establecidas en cada territorio para adaptarse mejor a las

poblaciones existentes. Gracias a las concentraciones discriminantes se pueden hacer

evaluaciones más rápidas de las poblaciones salvajes de insectos, sin necesidad de

comparar estas poblaciones con cepas susceptibles continuamente. La OMS recomienda

unas concentraciones discriminantes para varios mosquitos (Anophelinos, Culex

quinquefasciatus o Aedes aegypti), pero no para Aedes albopictus ni para todos los

insecticidas.

Para calcular la concentración discriminante, se necesita una población susceptible de

referencia. Nosotros hemos empleado una cepa de referencia en España, recogida en

Barcelona y mantenida desde 2008 en nuestros laboratorios de la Universidad de

Zaragoza Esta población no ha sido expuesta a insecticidas en el laboratorio, por lo que

puede suponerse como no resistente. El coste normalmente asociado a mantener los

mecanismos de resistencia contra insecticidas acaba generando gradualmente

poblaciones susceptibles cuando desaparece la presión selectiva al retirar el insecticida

de su entorno (Wan-Norafikah et al 2008; Chan y Zairi 2013).

De cada materia activa se realizaron 5 diluciones. De Deltametrina: 0,005%, 0,0125%,

0,025%, 0,05% y 0,1%. De Permetrina: 0,1%, 0,25%, 0,5%, 0,75% y 1%. De Cipermetrina:

0,0125%, 0,025%, 0,05%, 0,1% y 0,25%. Lo ideal sería que al menos una de estas

concentraciones diese el 100% de mortalidad, dos entre el 50% y el 99% y al menos dos

entre el 5% y el 50%. Debido a la escasa bibliografía existente sobre el Aedes albopictus y

los tres insecticidas seleccionados se emplearon concentraciones empleadas para estos

insecticidas en otros mosquitos y recomendadas por la OMS. Del mismo modo se

expusieron 2 grupos de 25 mosquitos de cada población a papeles no impregnados con

insecticidas, a modo de control.

Se siguió la metodología de la OMS descrita anteriormente, exponiendo grupos de 100

hembras de la cepa de mosquitos susceptibles a las diferentes concentraciones. Además

135


de la mortalidad tras las 24 horas de exposición, se determinó el número de mosquitos

abatidos o “Knock Down” cada 15 minutos durante los 60 minutos que los mosquitos

están en el tubo de exposición. Con estos valores se puede calcular el KDT50, que es el

tiempo en el que el 50% de los mosquitos caen abatidos.

La OMS define las concentraciones discriminantes mediante dos criterios: el doble de la

concentración más baja que obtiene una mortalidad del 100% o el doble del valor de la

LC99 (concentración letal que mata al 99% de los mosquitos). Hemos empleado el primer

criterio para fijar nuestras concentraciones discriminantes. También se calcularon las

LC99 de cada insecticida para poder comparar los resultados. Las LC99 se calcularon

mediante un análisis probit, con 3 variables numéricas: Concentración (covariable

transformada en Log base 10), mosquitos expuestos y mosquitos muertos.

Según la OMS, una población se considera susceptible si la mortalidad registrada tras las

24 horas está entre el 90% y el 98%, y es resistente si la mortalidad es inferior al 90%. La

OMS también recomienda en el caso de poblaciones resistentes analizar la intensidad de

las resistencias. Se considera una población de baja intensidad de la resistencia aquella

que tenga menos mortalidad que el 90% con la concentración diagnóstico pero más del

98% con la concentración diagnóstico multiplicada por 5. Sería una resistencia de

intensidad moderada si la mortalidad es inferior al 98% con la concentración diagnóstico

multiplicada por 5 pero superior al 98% con la concentración diagnóstico multiplicada

por 10. Y una población presentaría una resistencia de intensidad elevada si la

mortalidad es inferior al 98% con la concentración diagnóstico multiplicada por 10. Estas

clasificaciones de las intensidades se han fijado por primera vez en la segunda edición de

“Test procedures for insecticide resistance monitoring in malaria vector mosquitoes”

(Noviembre 2016) de la OMS (WHO 2016).

Los datos del Knock Down cada 15 minutos se emplearon para calcular el KDT50 de

cada población frente a cada insecticida. Con este dato podemos comparar las KDT50 de

cada población con la KDT50 de la cepa susceptible a insecticidas, calculando la

proporción de resistencia RR50 (KDT50 de la población de campo / KDT50 de la

136


población susceptible). Valores altos de la RR50, por encima de 2 pueden indicar un

estado incipiente de resistencia (Marcombe et al 2014).

2 RESULTADOS

A continuación presentamos los resultados de los ensayos realizados para la

determinación de las concentraciones discriminantes de los tres insecticidas.

Concentración 0,005% 0,013% 0,025% 0,050% 0,100%

Mortalidad a las 24 horas

Tubo 1 40 60 92 100 100

Tubo 2 20 64 92 100 100

Tubo 3 28 72 100 100 100

Tubo 4 16 72 92 100 100

*en rojo se representa la concentración discriminante

Deltametrina. Referencia 45423 De Sigma-Aldrich

Tabla 54. Resumen de los ensayos realizados con Deltametrina

Concentración 0,100% 0,250% 0,500% 0,750% 1,000%


Tubo 1 12 36 100 100 100

Tubo 2 4 32 100 100 100

Tubo 3 0 48 100 100 100

Tubo 4 16 44 100 100 100


Permetrina. Referencia 45614 De Sigma-Aldrich

Tabla 55. Resumen de los ensayos realizados con Permetrina

137


Concentración 0,013% 0,025% 0,050% 0,100% 0,250%


Tubo 1 8 32 84 100 100

Tubo 2 28 56 100 100 100

Tubo 3 0 28 100 100 100

Tubo 4 48 48 96 100 100


Cipermetrina. Referencia 36128 De Sigma-Aldrich

Tabla 56. Resumen de los ensayos realizados con Cipermetrina

Deltametrina 0,05% Permetrina 1% Cipermetrina 0,1 %

KDT50 30,1 25,14 26,75

RR50 1 1 1

% Mortalidad 100% 100% 100%

Tabla 57. Tiempo del efecto Know down en minutos, la proporción de resistencia (Resistence Ratio), y porcentaje de

mortalidad a las 24 horas de exposición a las concentraciones discriminantes encontradas en el Test de tubo de la OMS.

Deltametrina Permetrina Cipermetrina

0,0449 (0,0352-0,0628) 0.6913 (0,5490-0.9863) 0,1077 (0,0746-0,2050)

Tabla 58. Concentración Letal 99 (LC99) de los tres insecticidas usando análisis log-Probit

138


CONCLUSIONES

OBJETIVO 1

A lo largo del año 2016 en el que se ha continuado con las labores de prospección

entomológica en puertos y aeropuertos de la península y Baleares; se han podido

identificar un total de 2282 ejemplares, 2165 pertenecientes a diez especies diferentes de

dípteros hematófagos pertenecientes a la familia de los culícidos: Culex pipiens,

Ochlerotatus caspius, Ochlerotatus detritus, Ochlerotatus mariae, Aedes albopictus, Culiseta

annulata, Culiseta longiareolata, Culiseta subochrea, Coquillettidia richiardii y Anopheles

atroparvus. Algunos ejemplares no pudieron ser identificados debido al mal estado de

conservación. Se han capturado las mismas especies que en 2015 y se trata de especies

autóctonas a excepción de Ae. albopictus que es una especie invasora pero ya se puede

considerar que se encuentra establecido desde hace más de 10 años en España.

La metodología ha sido la misma que la empleada en los últimos años de trabajo

entomológico. Se han empleado diferentes métodos de captura (trampas de luz, de cebo

químico y de ovoposición) con el fin de aumentar las posibilidades de detección de

culícidos que pudieran haber llegado de forma accidental a España. En los casos en los

que no ha habido impedimento climático ni burocrático, se ha muestreado

quincenalmente desde el mes de julio hasta noviembre.

Cuatro de las especies capturadas pueden estar relacionadas con la transmisión de

patógenos. Cx. pipiens ha sido con diferencia la especie mayormente capturada

representando el 38,31% de las capturas. Su presencia ha sido registrada en la totalidad

de las estaciones de muestreo. Oc. caspius ha sido sin embargo el más abundante, con un

53,59% de las capturas y ha sido capturado en Barcelona (tanto en el aeropuerto como en

el puerto) así como en el aeropuerto de Palma de Mallorca. Ae. albopictus, representa un

3,93% de las capturas en 2016 se han detectado adultos en Barcelona y Palma de Mallorca

y en forma de huevo en el puerto de Valencia. Finalmente An.atroparvus solo representa

el 0,61% puesto que solo se han encontrado en el aeropuerto de Barajas. Es un hecho a

tener en cuenta a pesar de las pocas capturas puesto que es el principal vector de

paludismo en nuestro país.

139


No se han detectado hasta el momento la presencia de especies exóticas de mosquitos a

excepción del Aedes albopictus que lleva ya más de diez años en expansión geográfica por

España. Ver Anexo I, II y III.

OBJETIVO 2

Se han obtenido datos actualizados de la distribución de Aedes albopictus en siete

Comunidades autónomas: País Vasco, Aragón, Madrid, Comunidad Valenciana, Islas

Baleares, Región de Murcia y Andalucía.

En la Comunidad valenciana se está llevando a cabo un seguimiento continuo de

trampas en los municipios de Benicasim y Gandía, las observaciones a lo largo del año

2016 parecen indicar que los picos de abundancia suelen aparecer en primavera

(mayo/junio) y a finales del verano (agosto/septiembre). No obstante es una especie

cuya distribución y dinámica poblacional está estrechamente relacionada con las

condiciones atmosféricas así como con las actividades antrópicas y caracterizada por una

gran capacidad adaptativa, hecho que parece venir reflejado en la el patrón observado en

el seguimiento llevado a cabo en Benalmádena, Alhaurin de la Torre y Torremolinos

donde se observan varios picos de actividad caóticos a lo largo del año. La actividad del

mosquito se inicia a en abril/mayo y desaparece a finales de noviembre con las bajas

temperaturas. El conocimiento de la actividad de Ae.albopictus en cada zona es

importante para el diseño de las estrategias de vigilancia y control con el fin realizar los

tratamientos que puedan acabar con las primeras generaciones anuales y de esta manera

mitigar las molestias ocasionadas por esta especie exótica invasora.

Se ha trabajado en siete comunidades autónomas con un total de 1058 puntos con 2 o 3

trampas en cada uno de ellos repartidas en 171 municipios. En 2409 muestras (tablillas

de madera) correspondientes a 251 puntos de 80 municipios se han contabilizado huevos

de morfología compatible con la de mosquito tigre. En 79 de estos municipios se ha

podido confirmar que las larvas eclosionadas de esos huevos eran de Aedes albopictus.

Hay que destacar que 34 municipios son nuevas detecciones en 2016 en las provincias de

Murcia (Abanilla, Alguazas, Bullas, Campos de Río, Ceutí, Librilla, Lorquí), Almería

(Carboneras), Granada (Rubite y Salobreña), Málaga (Manilva y Vélez-Málaga), Cádiz

140


(San Roque), Baleares (Binissalem, Capdepera, Costitx, Consell, Estellencs, Llucmajor,

Manacor, Puigpunyent, Selva, Son Servera), Huesca (Barbastro, Fraga, Monzón),

Zaragoza (La Joyosa, Alfajarín,Caspe, Mequinenza) y Teruel (Calaceite y Alcañiz). Se

puede concluir con este segundo año de trabajos intensivos en Andalucía que la especie

sigue su dispersión en zonas muy relacionadas con las actividades humanas. Se ha

trabajado en una primera valoración de la situación de la distribución en Aragón de

Ae.albopictus, quedando confirmada su presencia en más del 40% de los municipios

muestreados en 2016. Sin embargo en el País Vasco no se ha observado dispersión del

vector por el municipio de Irún ni en sus localidades limítrofes lo cual puede tener varias

lecturas, o bien que las condiciones ambientales de la zona no permiten la supervivencia

y dispersión a gran escala del mosquito tigre por el norte de la Península como preveían

los primeros modelos predictivos, o bien que las tareas de control llevadas a cabo en la

zona han ejercido suficiente presión sobre la especie como para dejar las poblaciones a

unos niveles mínimos que limiten su reproducción y expansión geográfica.

OBJETIVOS 3 Y 4

En todos los PdE de las islas Canarias estudiados y su entorno se detectaron culícidos a

excepción del invernadero de isla de La Palma. Al igual que en años anteriores, los PdE

con mayor abundancia fueron aquellos que favorecían la presencia de ambientes de cría,

como los invernaderos, huertas, jardines, etc... sobre todo los de la isla de Tenerife y

Fuerteventura y puntualmente en Gran Canaria y Lanzarote.

Respecto a las especies detectadas, no se encontraron aedinos invasores pero si de nuevo

Ochlerotatus eatoni, endémico de la Macaronesia. Si recordamos, esta especie experimentó

un reciente expansión en la isla de Madeira (Clairouin, 2010), ubicándose en ambientes

antrópicos como son los cementerios, y compartiendo hábitat con Ae. aegypti. Por este

motivo altas probabilidades de detectar precozmente a otros aedinos con preferencias

bioecológicas semejantes. Todos los huevos encontrados durante el estudio fueron

identificados mediante el análisis del ADN. Larvas y huevos de Oc. eatoni fueron

encontrados en ovitrampas y en criaderos situados en Tenerife y en La Palma, y este año

también en las trampas BG-Sentinel, hecho que no tuvo lugar en 2015. En estas trampas,

como era de esperar, la mayoría de las capturas hembras correspondieron a la especie

141


Culex pipiens. Esta especie resultó ser la más abundante con un 47,8% de las capturas

totales.

Todos los ejemplares identificados como Anopheles cinereus hispaniola fueron larvas

capturadas en el Puerto de Santa Cruz de Tenerife (Terminal de contenedores), puerto

ubicado en un área que presentó paludismo en el pasado. Por este municipio discurren

gran número de barrancos en los que existen ambientes apropiados para la cría de estos

y otros anofelinos de importancia sanitaria como es Anopheles sergentii, también

capturado este año en este mismo PdE. Algunos de estos barrancos desembocan en el P-

T y próximo a él como son el barranco Santos, del Bufadero y Tahodio.

La temperatura y precipitación son parámetros climáticos limitantes que influyen

considerablemente sobre la abundancia de los mosquitos. Por lo general en los meses de

verano, cuando las temperaturas máximas son las más altas del año y las precipitaciones

escasas o ausentes, se produce una disminución de la abundancia de mosquitos en los

PdE. Luego en los meses de otoño (Septiembre-Noviembre), con el aumento de las

precipitaciones se produce un ligero aumento de la abundancia que luego se ve afectada

nuevamente en los meses de invierno (Diciembre-Febrero) por la disminución de las

temperaturas.

Este año, con el aumento de los lugares de muestreo en invernaderos y zonas de

alrededores de los PdE (por ejemple en el aeropuerto Tenerife Norte, que presenta el

mayor porcentaje de suelo de cultivo) se ha podido confirmar que el uso del suelo

también afecta a la abundancia ya que influye sobre la mayor o menor disponibilidad de

ambientes de cría para los culícidos. Ver Anexo III Y IV.

OBJETIVO 5

Las concentraciones discriminantes obtenidas en los bioensayos con el kit de la OMS

(WHO/VBC/81.805) en la población de laboratorio fueron: Deltametrina al 0,05%,

Permetrina al 1% y Cipermetrina al 0,1%, de acuerdo con el criterio seleccionado.

Se han calculado también otros factores de importancia para poder valorar en un futuro

esa aparición de resistencias como son la KDT50, el RR50 y la LC99.

142


Estos resultados nos han permitido determinar la base a partir de la cual se podrá

evaluar el grado de resistencia de las diferentes poblaciones de Aedes albopictus a los

principales productos adulticidas que se encuentran disponibles y autorizados para su

uso en ambientes urbanos en España.

CONCLUSIONES GENERALES

En los muestreos realizados en 2016 no se ha detectado, a excepción del Aedes albopictus,

especie invasora asentada en España desde hace más de 10 años, la presencia de nuevos

vectores importados exóticos en los principales puertos y aeropuertos de España, tanto en la

Península como en los archipiélagos Balear y Canario.

Se han identificado 15 especies diferentes de Culícidos (Culex pipiens, Ochlerotatus caspius,

Ochlerotatus detritus, Ochlerotatus mariae, Aedes albopictus, Culiseta annulata, Culiseta

longiareolata, Culiseta subochrea, Coquillettidia richiardi, Anopheles maculipennis, Ochlerotatus

eatoni, Culex theileri, Culex laticinctus, Anopheles sergentii y Anopheles cinereus hispaniola.)

Destacar un año más, la presencia ubicuista y abundante de la especie Cx pipiens en todos los

puntos muestreados tanto en la península como en Baleares y Canarias, vector reconocido de

arbovirosis importantes.

Se ha confirmado de manera significativa que la expansión del mosquito tigre (Aedes

albopictus) no cesa, detectándose con intensidad en Andalucía en las provincias de Almería,

Granada y Málaga, y puntualmente aunque en proceso de expansión en Cádiz. Además se

confirma su establecimiento en Guipúzcoa aunque parece que sus poblaciones se han podido

controlar ya que no se ha observado dispersión en municipios limítrofes con Irún. En Aragón

se ha iniciado una intensa vigilancia y se ha podido confirmar que el vector está presente en

municipios de las tres provincias. En la isla de Mallorca como se preveía se ha observado un

aumento notable de su área de distribución.

Se ha añadido dos islas (Fuerteventura y Lanzarote) a la vigilancia entomológica establecida

en los principales puntos de entrada identificados en el archipiélago de las Islas Canarias. No

se ha detectado la presencia ni el establecimiento de especies de mosquitos invasoras como

son Aedes aegypti y Aedes albopictus, ni tampoco otros mosquitos exóticos.

143


Vigilar las poblaciones de culícidos en el entorno de los PdE de España nos permite, no

sólo valorar el riesgo de importación de especies exóticas con importancia en la

transmisión de enfermedades, sino tener un conocimiento de las especies autóctonas

presentes en los principales PdE así como sus áreas de influencia y que podrían ser

exportadas de forma accidental a otros países ocasionando problemas medioambientales

o sanitarios.

144


ANEXO I .IMÁGENES DE LOS PUERTOS Y AEROPUERTOS MUESTREADOS EN 2016

OBJETIVO 1

Imagen satélite de las zonas muestreadas en la Base aérea de Zaragoza. Fuente: GoogleEarth

Imagen satélite de las zonas muestreadas en la Base aérea de Torrejón de Ardoz. Fuente: GoogleEarth

145


Imagen satélite del aeropuerto civil de Barcelona. Fuente: GoogleEarth

Imagen satélite de la localización del Aeropuerto Internacional de Palma de Mallorca y de la Base Militar Aérea de Son Sant

Joan (perímetro enmarcado en rojo). Fuente: GoogleEarth.

146


Imagen satélite de la Base Militar de Son Sant Joan. a: Cuerpo de Guardia; b: patio de armas. c: Torre de Control-Spantax;

Fuente: GoogleEarth.

Imagen satélite de las zonas muestreadas en el aeropuerto civil de Madrid Barajas. Fuente: GoogleEarth

147


Imagen satélite de las zonas muestreadas en el puerto de Valencia. Fuente: GoogleEarth

Zonas muestreadas en el Puerto de Palma de Mallorca. A: Muelles Comerciales; B: Dique del Oeste- Muelle Ribera en

San Carlos; C: Dique del Oeste: Plataforma adosada. Fuente: Autoridad portuaria (http://www.portsdebalears.com)

http://www.portsdebalears.com/

ANNEXO II: RESULTADOS DE LAS CAPTURAS REALIZADAS EN EL OBJETIVO 1

sp/PdE BARAJAS EL PRAT SON SANT JOAN BARCELONA VALENCIA PALMA ZARAGOZA TORREJÓN totales

Culex pipiens 128 37 353 94 39 24 128 37 840

Anopheles atroparvus 13 0 0 0 0 0 0 0 13

Culiseta longiareolata 36 0 0 2 1 0 36 0 75

Culiseta annulata 3 0 0 0 0 0 0 0 3

Ochlerotatus caspius 0 201 927 5 0 0 0 0 1133

Aedes albopictus 0 5 23 5 0 50 0 0 83

Ochlerotatus detritus 0 4 3 1 0 0 0 0 8

Culiseta subochrea 0 4 0 1 0 0 0 0 5

Coquillettidia richiardii 0 4 0 0 0 0 0 0 4

Ochlerotatus mariae 0 0 0 0 0 1 0 0 1

totales 180 255 1306 108 40 75 164 37 2165

AEROPUERTOS CIVILES PUERTOS BASES AÉREAS MILITARES

2


ANNEXO III: RESULTADOS DE LAS CAPTURAS REALIZADAS EN LOS OBJETIVOS 3 Y 4

sp/PdE P-T A-TN I1-T A-TS I2-T I3-T P-C A-C I1-C P-P I1-P A-L P-L I1-L A-F P-F I1-F Totales

Oc. caspius 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 4

Ae. eatoni 0 3 71 0 0 0 0 0 0 30 0 0 0 0 0 0 0 104

Cs. longiareolata 233 612 654 11 4 0 1 10 0 0 0 114 15 11 33 128 2 1828

Cx. pipiens 399 803 266 45 76 46 76 267 24 0 0 62 0 1 92 0 122 2279

Cx. theileri 43 0 83 10 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 137

Cx. laticinctus 9 10 255 10 3 4 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 292

An. c. hispaniola 27 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 27

An. sergentii 97 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 97

Totales 812 1428 1329 76 83 50 77 278 24 30 0 176 15 12 126 128 124 4768

ISLAS CANARIAS

TENERIFE GRAN CANARIA LA PALMA LANZAROTE FUERTEVENTURA

ANNEXO IV: BIOLOGÍA Y ECOLOGÍA DE LAS ESPECIES CAPTURADAS EN LOS

MUESTREOS DE 2016

Culex pipiens Linné, 1758

Se trata de un complejo de especies que se encuentran en toda Europa y Norte de Africa.

Un año más ha sido la especie más frecuentemente capturada y presente en todos los

PdE a excepción de la isla de La Palma donde no ha habido capturas. Esto se debe a que

es capaz de criar en todo tipo de aguas, desde las estrictamente peridomésticas a aquellas

situadas en pleno campo. Este hecho facilita mucho la subsistencia de la especie pues

permite llevar a cabo varias generaciones al año e incluso resistir a los inviernos más

fríos. Las hembras procedentes de las últimas generaciones de larvas del año entran en

hibernación sin realizar ninguna toma de sangre. Parece ser que es una combinación de

temperaturas bajas y fotoperiodos cortos los que actúan en la naturaleza como señal

fenológica para alterar la fisiología de las hembras provocando que entren en diapausa.

Éstas reemprenderán su actividad entre Marzo y Abril, después desaparecen y es en el

mes de Junio cuando generalmente se produce un aumento masivo de actividad de la

especie, fenómeno que podría interpretarse como resultado de las primeras generaciones

larvarias del año. Tanto machos como hembras, en su periodo activo, prefieren

ambientes con temperaturas comprendidas entre 15-20°C y una humedad relativa en

torno a los 60-70%, condiciones que se hallan de forma nocturna al principio del verano.

Durante el día esta especie suele cobijarse entre la vegetación, alcantarillas, grutas, en

definitiva lugares que mantienen unas temperaturas, respecto al ambiental, más bajas a

comienzos y meses centrales del verano y aproximadamente iguales en otoño y más altas

en invierno.

Importancia médica: Se considera que Culex pipiens está relacionado con la transmisión a

humanos de arbovirosis como el virus del Nilo Occidental, filariasis linfáticas así como

encefalitis.

2


Culex laticinctus Edwards 1913

Posee una distribución Mediterránea, pasando por la Península Arábica hasta Asia

central. No se han realizado abundantes capturas de esta especie pero todas ellas han

tenido lugar en Tenerife (tanto en el puerto como en el aeropuerto y sus áreas de

influencia) y muy puntualmente en el aeropuerto de Gran Canaria. Sus larvas suelen

encontrarse en contenedores artificiales o macetas en zonas ajardinadas, generalmente

asociadas a los géneros Anopheles y Culiseta. Es una especie exófila que raramente pica a

humanos por lo que no se le ha atribuido ningún papel vectorial.

Culex theileri Theobald, 1903

Se trata de una especie ampliamente distribuida por la región Paleártica, África y

Europa. Se ha capturado en la isla de Tenerife y puntualmente una larva en el aeropuerto

de Fuerteventura. Su biología se caracteriza por tener varias generaciones anuales con

gran resistencia a altas altitudes y con cierta diversidad en la elección de lugares de cría.

Este mosquito puede encontrarse tanto en pantanos como arrozales o criaderos

artificiales con aguas muy contaminadas. Suelen ser zoófilos y exófilos, aunque en

ocasiones pueden picar a humanos.

Importancia médica: Se relaciona a la especie con la transmisión del virus de la Fiebre

del Rift y con la Dirofilaria canina.

Ochlerotatus caspius (Pallas, 1771)

Se trata de una especie Paleártica. Se caracteriza por ser muy agresivo, capaz de picar a

través de la ropa y a plena luz del día. Son capaces de desplazarse grandes distancia

volando con el único fin de alimentarse. Sus hábitats larvarios se relacionan con zonas

inundables, bien por el desbordamiento de acequias y ríos en épocas estivales bien por

encontrarse en charcos de aguas permanentes junto a juncos y carrizos e incluso árboles.

Esto concuerda con los hábitats en los que se ha identificado en los muestreos de este

año, El Prat, Palma de Mallorca y puntualmente en el puerto de Tenerife. La hibernación

se hace en fase de huevo, éstos son depositados en sitios que están expuestos a

inundaciones intermitentes. Es frecuente que se dé la eclosión de los adultos a finales de

3


abril o primeros de mayo y que se mantengan todo o parte del verano lo cual explica

algunos de los resultados obtenidos en los muestreos realizados estos últimos años.

Importancia médica: Se ha detectado virus del Nilo Occidental así como la bacteria

causante de la tularemia en poblaciones naturales de esta especie por lo que puede jugar

un papel importante como vector de enfermedades.

Ochlerotatus eatoni (Edwards, 1920)

Especie endémica de los archipiélagos de Canarias y Madeira. Las larvas desarrollan su

ciclo vital dentro de cavidades naturales, muy frecuentemente en los agujeros que

presentan algunos árboles, en donde el agua de lluvia queda retenida durante los meses

de primavera y verano, acumulando una gran cantidad de taninos y materia orgánica

vegetal en descomposición. Las hembras de esta especie no son antropofílicas. Este año

se ha capturado en Tenerife y La Palma.

No hay descrita ninguna relación con patógenos de importancia médica.

Ochlerotatus detritus (Haliday, 1833)

Es una especie Paleártica con una distribución costera a lo largo de toda Europa.

Ochlerotatus detritus es una especie multivoltina capaz de cerrar más de 3 generaciones

por año. Normalmente la especie hiberna en estadio de huevo y las primeras larvas

eclosionan algunas semanas después de la mayoría de las especies que hibernan debajo

del hielo cuando la temperatura supera los 10ºC. La especie tiene una gran tolerancia a la

salinidad por lo que corresponde con los enclaves donde se colocan las trampas en el

aeropuerto y puerto de Barcelona y Palma de Mallorca. Las hembras son muy agresivas

sobre los seres humanos y siempre pican en gran número. Pueden alimentarse durante

todo el día pero están más activas al atardecer.

No se asocia con la transmisión de ningún patógeno.

4


Ochlerotatus mariae (Sergent and Sergent 1903)

Especie perteneciente a un complejo distribuido por las costas del Mediterráneo, desde el

Algarve hasta Sicilia, pasando por las Islas Baleares (único lugar en el que se ha

identificado en los muestreos de 2016 con tan solo un ejemplar capturado en el puerto de

Palma de Mallorca). Sus larvas se desarrollan exclusivamente en zonas con gran

influencia marina, en agua con altas concentraciones de sal. Suelen tener varias

generaciones al año entre el mes de marzo y octubre.

Importancia médica: Algunos autores la relacionan con la transmisión de plasmodium

aviar.

Aedes albopictus (Skuse 1895)

Es una especie originaria del sureste asiático aunque desde hace unos años ha colonizado

todos los continentes a excepción de la Antártida ocasionando importantes molestias.

Este año se han identificado ejemplares de esta especie en Barcelona, Palma de Mallorca

y en fase de huevo en Valencia. Como novedad este año, cabe destacar su detección

dispersión en Andalucía así como en Aragón. Se caracteriza por criar en gran variedad

de ambientes y contenedores. Desde huecos en árboles (haciendo caso a sus orígenes) a

ceniceros e incluso floreros y neumáticos usados. Pasan el invierno en forma de huevo y

las hembras suelen ser muy antropófilas aunque también se alimentan de forma

oportunista de otros mamíferos (perros, conejos, vacas…) y aves. Éste hecho indica que

esta especie posee grandes ventajas a la hora de participar en ciclos de transmisión de

gran variedad de arbovirus que utilizan a estos animales como principales

hospedadores. Suelen picar tanto de día como de noche.

Importancia médica: Esta especie es un principal vector de dengue, chikungunya

además de otras arbovirosis y Dirofilaria immitis.

Culiseta longiareolata (Macquart, 1838)

Se trata de una especie ampliamente distribuida por todo el sur de la región Paleártica,

sur de África y parte de Asia aunque presenta una fuerte influencia mediterránea.

5


Se trata de una de las especies más abundantes identificada en los muestreos y a menudo

asociada a Cx pipiens. Sus hábitats larvarios varían desde charcos o fosas de riego a

pilones de abrevaderos de animales domésticos. Se ha capturado en Canarias, en

Barcelona, Barajas, Valencia y Zaragoza.

A pesar de ser un culícido de gran tamaño no plantea problemas para el ser un humano

por lo que no tiene implicaciones a nivel de salud pública.

Culiseta annulata (Edwards) 1921

Esta especie suele encontrarse por toda Europa e incluso en el norte de África.

Suelen hibernar en forma de adulto escondiéndose en sótanos, cobertizos e incluso en el

interior de las casas. Con los primeros cambios de temperatura de la primavera, tiene

comienzo su actividad y alcanzan un máximo de poblaciones entorno al mes de

septiembre. Suelen evitar las altas temperaturas y crían en todo tipo de hábitats

acuáticos, desde charcas limpias hasta aguas estancadas e incluso resisten un cierto

grado de salinidad, solo se ha capturado puntualmente en el aeropuerto de Barajas.

Importancia médica: Se ha relacionado con la transmisión del virus Tahyna. Pueden

alimentarse ocasionalmente de sangre humana aunque también se conoce que tienen un

papel importante en la transmisión de patógenos a pájaros.

Culiseta subochrea (Edwards 1921)

Esta especie suele encontrarse por toda Europa e incluso en el norte de África.

Suelen hibernar en forma de adulto escondiéndose en sótanos, cobertizos e incluso en el

interior de las casas. Con los primeros cambios de temperatura de la primavera, tiene

comienzo su actividad y alcanzan un máximo de poblaciones entorno al mes de

septiembre. Suelen evitar las altas temperaturas y crían en todo tipo de hábitats


grado de salinidad. Solo ha sido capturada en el aeropuerto y puerto de Barcelona.

Importancia médica: Se ha relacionado con la transmisión del virus Tahyna.

6



alimentarse de sangre humana aunque también se conoce que tienen un papel

importante en la transmisión de patógenos a pájaros.

Anopheles maculipennis Complejo

Hasta 1925 se decía que la malaria era transmitida por “An.maculipennis”, pero las

investigaciones acerca de la biología y ecología de este mosquito pudieron demostrar

que la prevalencia de la enfermedad no estaba correlacionada con la distribución de este

vector. Es lo que se denominó “anofelismo sin malaria”. Falleroni en 1926 dio la primera

evidencia de la existencia de un complejo de especies que en estado adulto no podían

distinguirse morfológicamente pero si existían diferencias en el hábitat y

comportamiento así como en algunas características del huevo. Varios investigadores

apoyaron esta idea y Bates en 1940 hizo una identificación más exhaustiva del complejo

que engloba en Europa a las siguientes especies: Anopheles (Anopheles) atroparvus Van

Thiel 1927, Anopheles (Anopheles) becklemishevi Stegnii and Kabanova 1976, Anopheles

(Anopheles) labranchiae Falleroni 1926, Anopheles (Anopheles) maculipennis s.s. Meigen 1818,

Anopheles (Anopheles) melanoon Hackett 1934, Anopheles (Anopheles) messeae Falleroni 1926,

Anopheles (Anopheles) sacharovi Favre 1903 y Anopheles (Anopheles) subalpinus Hackett and

Lewis 1935.

Importancia médica: Las especies antropofílicas como An. atroparvus, An.labranchiae y

An.sacharovi son los principales vectores de paludismo. El resto de especies, más

zoofílicas, juegan un papel secundaria en la transmisión de la malaria

Anopheles cinereus hispaniola (Theobald, 1903)

Especie distribuida por el Mediterráneo y Norte de África. Su presencia en los muestreos

de 2016 al igual que en 2015 se limita a las islas Canarias, concretamente a la isla de

Tenerife. Posee varias generaciones anuales y puede encontrarse tanto a nivel del mar

como en alta montaña. Acostumbran a criar en arroyos con aguas limpias y poco

profundas, pero también pueden encontrarse en los márgenes de lagos o pantanos. Son

de preferencia zoófilos aunque también pican a humanos.

7


Importancia médica: Es un vector potencial de paludismo en el sur de Europa.

Coquilletidia richiardii (Ficalbi, 1889)

Esta especie es habitual en toda Europa y está ampliamente distribuida en las regiones

Paleárticas del Oeste. Tiene una generación por año en el norte y de 2 a 3 generaciones en

el sur. Las hembras depositan los huevos en racimos circulares. Las larvas eclosionan dos

semanas tras la oviposición y suelen hibernar en L3 o L4. Las larvas y pupas viven

sumergidas y obtienen el oxígeno del parénquima de las plantas acuáticas moviéndose

muy poco. Los lugares de cría pueden ser diferentes cuerpos de agua permanente ricos

en Acorus sp., Typha sp., Phragmites sp., etc… la pupación tienen lugar a finales de mayo o

principios de junio coincidiendo con los ocurrido en el aeropuerto de Barcelona. Las

hembras pueden ser muy numerosas y causar severas molestias a los humanos y

animales domésticos en los alrededores de lagunas, lagos, marismas y estuarios. Se ha

identificado alimentándose sobre el ser humano dentro de las casas en Portugal e

Inglaterra. Las molestias suelen estar restringidas a los alrededores de los focos de cría

pero pueden llegar a ser desplazadas por acción del viento e invadir altitudes de 800-900

metros. Las hembras tienen preferencias tróficas sobre los mamíferos pudiéndose

alimentar también sobre pájaros y anfibios.

Importancia médica: Las hembras son capaces de transmitir el Virus del Oeste del Nilo y

el Virus de la Fiebre hemorrágica de Omsk en la naturaleza, además de la tularemia en

condiciones de laboratorio.

Culiseta subochrea (Edwards 1921)

Esta especie suele encontrarse por toda Europa e incluso en el norte de Africa.

Acostumbran a hibernar en forma de adulto escondiéndose en sótanos, cobertizos e

incluso en el interior de las casas. Con los primeros cambios de temperatura de la

primavera, tiene comienzo su actividad y alcanzan un máximo de poblaciones entorno al

mes de septiembre. Suelen evitar las altas temperaturas y crían en todo tipo de hábitats


8


grado de salinidad. Este hecho tiene sentido ya que solo ha sido identificada en el

aeropuerto de El Prat en Barcelona.


alimentarse de sangre humana aunque también se conoce que tienen un papel

importante en la transmisión de patógenos a pájaros.

9


Trabajos realizados por:

Javier Lucientes Curdi, Sarah Delacour Estrella, Rosa Estrada Peña. Facultad de

Veterinaria. Universidad de Zaragoza. (Muestreos en Zaragoza, Aragón y

Valencia)

Ricardo Molina y Rosario Melero Alcíbar. Instituto de Salud Carlos III.

Majadahonda, Madrid. (Muestreos en Madrid)

Carles Aranda. Servei de Control de Mosquits, Consell Comarcal del Baix

Llobregat, (Muestreos en Barcelona)

Mikel Bengoa. Consultoría Moscard Tigre. (Muestreos en Palma de Mallorca).

Francisco Collantes, Juan Antonio Delgado y Umberto Guinea. Departamento de

Zoología y Antropología Física, Facultad de Biología, Universidad de Murcia.

(Muestreos en Murcia y Alicante)

Jesús Félix Barandika y Ana L. García-Pérez. NEIKER, Instituto Vasco de

Investigación y Desarrollo Agrario, Derio, Bizkaia. (muestreos en País Vasco)

Basilio Valladares Hernández, Mª Cristina Pou Barreto, Carolina Fernández

Serafín e Irene Serafín Pérez. Instituto Universitario de Enfermedades Tropicales

y Salud Pública de Canarias (IUETSPC), ULL. (Muestreos en Canarias)

Miguel-Ángel Miranda y David Borrás. Departamento de Zoología. Universitat

de les Illes Balears (UIB). (Muestreos en Mallorca)

Santiago Ruiz Contreras, Juana Moreno Fernández y Manuel Toledano de Sancha.

Servicio de Control de mosquitos de la Diputación de Huelva. (Muestreos en

Cádiz, Sevilla y Huelva)

Compañía de tratamientos Levante. (CTL) Delegaciones de Paiporta, Daimús y

Elche. (Muestreos en Comunidad Valenciana)

Rafaela Belmonte Nortes (Muestreos en

10


Campos Serrano Biólogos (Muestreos en

Compañía de Control de Plagas GesplaSur (Muestreos en Málaga)

Andaluza de Tratamientos e Higiene SA (ATHISA) (Muestreos en

Grupo GAM, Seguridad Alimentaria y Control de Plagas (Muestreos en

11


REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Adhami, J. & Reiter, P. (1998). Introduction and establishment of Aedes (Stegomyia) albopictus

Skuse (Diptera: Culicidae) in Albania. Journal of the American Mosquito Control Association. 14:

340-343.

Alarcón-Elbal, P.M., Delacour-Estrella, S., Pinal, R., Ruiz-Arrondo, I., Muñoz, A., Bengoa, M.,

Eritja, R. & Lucientes, J. (2010). Establecimiento y mantenimiento de una colonia autóctona

española de Aedes (Stegomyia) albopictus Skuse, 1894, (Diptera: Culicidae) en laboratorio.

Revista Ibero-Latonoamericana de Parasitología. 69: 140-148.

Alarcon-Elbal, P., Delacour- Estrella, S., Collantes, F., Delgado, J.A., Ruiz-Arrondo, I., Pinal-

Prieto, R., Melero-Alcibar, R., Molina,R., Sierra, M.J., Amela, C. & Lucientes, J. (2013).

Primeros hallazgos de Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse, 1894) en la provincia de Valencia,

España. Anales de Biología. 35: 95-99.

Alarcón-Elbal, P.M., Delacour-Estrella, S., Ruiz-Arrondo, I., Collantes, F., Delgado, J.A.,

Morales-Bueno, J., Sánchez-López, P.F., Amela, C., Sierra-Moros, M.J., Molina, R. &

Lucientes, J. (2014). Updated distribution of Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) in Spain:

new findings in the mainland Spanish Levante, 2013. Memorias do Instituto Oswaldo Cruz. 109:

782-786.

Aranda, C., Eritja, R. & Roiz, D. (2006). First record and establishment of the mosquito Aedes

albopictus in Spain. Medical and Veterinary Entomology. 20: 150-152.

Baéz, M. (1988) Análisis faunístico de los Dípteros de la laurisilva de Tenerife, Islas Canarias

(Insecta, Diptera). Boletín Asoc. esp. Entom. Vol. 12: páginas 181-208.

Bueno-Marí, R., Chordá-Olmos, F.A., Barnués-Bañeres, A., Jiménez-Peydró, R. (2010).

Detección de Aedes albopictus (Skuse, 1894) en Torrevieja (Alicante, España). Boletín de la

Asociación Española de Entomología. 33: 529-532.

Bueno Marí, R. & Jiménez Peydró, R. Situación actual en España y eco-epidemiología de las

arbovirosis transmitidas por mosquitos culícidos (diptera: culicidae). Rev. Esp. Salud Pública

[Internet]. 2010 Jun [citado2017Feb08]; 84(3): 255-269.

12


Barceló, C., Bengoa, M., Monerris, M., Molina, R., Delacour-Estrella, S., Lucientes, J. &

Miranda, M.A. (2015). First record of Aedes albopictus (Skuse, 1894) (Diptera; Culicidae)

from Ibiza (Balearic Islands; Spain). Journal of the European Mosquito Control Association.

33: 1–4.

Becker, N., Petric, D., Zgomba, M., Boase, C., Minoo, M., Dahl, C. & Kaiser, A.

Mosquitoes and Their control. 2010. Second Edition. Ed.Springer.

Cancrini, G., Frangipane di Regalbono, A., Riccia, I., Tessarin, C., Gabrielli, S. & Pietrobelli,

M. (2003). Aedes albopictus is a natural vector of Dirofilaria immitis in Italy. Veterinary

Parasitology. 118: 195-202.

Clairouin, I. (2010). Estudo dos culicídeos (Diptera: Culicidae) nos cemitérios das ilhas da

Madeira e Porto Santo. Tesis de Maestría. Universidade Nova de Lisboa.

Chen, C.D., Nazni, W.A., Lee, H.L., Norma-Rashid, Y., Lardizabal, M.L. & Sofian-Azirun

M. (2013) Temephos resistance in field Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse) from

Selangor, Malaysia. Tropical Biomedicine Jun;30(2):220-30.

Collantes, F. & Delgado, J.A. (2011). Primera cita de Aedes (Stegomia) albopictus (Skuse, 1894)

en la región de Murcia. Anales de Biología. 33: 99-101.

Delacour-Estrella, S., Alarcón-Elbal, P., Bengoa, M., Melero-Alcíbar, R., Pinal, R., Ruiz-

Arrondo, I., Molina, R. & Lucientes, J. (2009). Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse, 1894)

primera cita en Torrevieja (Alicante). Boletín de la Sociedad Entomológica Aragonesa. 45: 518.

Delacour-Estrella, S., Bravo-Minguet, D., Alarcón-Elbal, P.M., Bengoa, M., Casanova, A.,

Melero-Alcibar, R., Pinal, R., Ruiz-Arrondo, I., Molina, R. & Lucientes, J. (2010). Detección de

Aedes (Stegomyia) albopictus (Skuse, 1894) (Diptera: Culicidae) en Benicàssim. Primera cita

para la provincia de Castellón (España). Boletín de la Sociedad Entomológica Aragonesa. 47: 440

Dusfour, I., Thalmensy, V., Gaborit, P., Issaly, J., Carinci, R. & Girod, R. (2011) - Multiple

insecticide resistance in Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) populations compromises the

effectiveness of dengue vector control in French Guiana.- Memerias Instituto Oswaldo

Cruz. 2011 May;106(3):346-52.

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Chen%20CD%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23959487

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Nazni%20WA%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23959487

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Lee%20HL%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23959487

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Norma-Rashid%20Y%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23959487

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Lardizabal%20ML%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23959487

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Sofian-Azirun%20M%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23959487

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Sofian-Azirun%20M%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23959487

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Dusfour%20I%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=21655824

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Thalmensy%20V%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=21655824

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Gaborit%20P%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=21655824

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Issaly%20J%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=21655824

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Carinci%20R%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=21655824

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Girod%20R%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=21655824

13


European Centre for Disease Prevention and Control. Guidelines for the surveillance of

invasive mosquitoes in Europe. Stockholm: ECDC; 2012.

Eritja, R., Aranda, C. & Báez, M. (2002). Catálogo de los Diptera de España, Portugal y

Andorra ( Insecta ) Culicidae. Monografías SEA, vol. 8.

Eritja, R., Escosa, R., Lucientes, J., Marqués, E., Molina, R., Roiz, D. & Ruiz, S. (2005).

Worldwide invasion of vector mosquitoes: present European distribution and challenges for

Spain. Biological Invasions. 7: 87-97.

Gratz, NG. (2004). Critical review of the vector status of Aedes albopictus. Medical and

Veterinary Entomology. 18: 215–227.

Khadem, M. (2015 Sep) Deep Interisland Genetic Divergence in the Macaronesian Endemic

Mosquito Ochlerotatus eatoni (Diptera: Culicidae), Indication of Cryptic Species. J Med

Entomol.; 52(5):1175-80. doi: 10.1093/jme/tjv094. Epub 2015 Jul 12. PubMed PMID: 26336234.

Márquez Arce, D. (Septiembre 2015). “Evaluación del riesgo de transmisión de paludismo en

Canarias”. Trabajo Fin de Máster. Máster Investigación y Diagnóstico de Enfermedades

Tropicales. ULL.

Macoris, M.L.G., Andrighetti, M.T.M., Otrera, V.C.G., Carvalho, L.R., Júnior, A.L.C. &

Brogdon, W.G. (2007). Association of insecticide use and alteration on Aedes aegypti

susceptibility status. Memorias do Instituto Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro 102(8): 895-900

Manica, M., Rosà, R., Della Torre, A. & Caputo, B. (2017). From eggs to bites: do ovitrap

data provide reliable estimates of Aedes albopictus biting females? PeerJ 5:e2998; DOI

10.7717/peerj.2998

Marcombe, S., Poupardin, R., Darriet, F., Reynaud, S., Bonnet, J., Strode, C., Brengues, C.,

Yébakima, A., Ranson, H., Corbel, V. & David, J.P. (2009). BMC Genomics. 2009 Oct

26;10:494. doi: 10.1186/1471-2164-10-494.- Exploring the molecular basis of insecticide

resistance in the dengue vector Aedes aegypti: a case study in Martinique Island (French

West Indies).

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Poupardin%20R%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Darriet%20F%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Reynaud%20S%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Bonnet%20J%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Strode%20C%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Brengues%20C%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Y%C3%A9bakima%20A%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Ranson%20H%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Corbel%20V%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=David%20JP%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19857255

14


Márquez, D. Septiembre 2015. “Evaluación del riesgo de transmisión de paludismo en

Canarias”. Trabajo Fin de Máster. Máster Investigación y Diagnóstico de Enfermedades

Tropicales. ULL.

Miquel, M., Del Rio, R., Borràs, D., Barceló, C., Paredes-Esquivel, C., Lucientes, J. & Miranda,

M.A. (2013). First detection of Aedes albopictus (Skuse, 1894) (Diptera: Culicidae) in the

Balearic Islands (Spain). Journal of the Eurpean Mosquito Control Association. 31: 8-10.

Mitchell, C. J. (1995) The role of Aedes albopictus as an arbovirus vector. Parassitologia. 37: 109–

113.

Morchón R., Bargues M. D., Latorre-Estivalis J. M., Pou-Barreto C., Melero-Alcibar R.,

Moreno M., Va. Culex theileri is a potencial natural vector of Dirofilaria immitis in Canary

Islanad, Spain. Journal of Clinical & Experimental Pathology. 3 - 001, pp. 1 - 7. OMICS

Publishing Group, 2012. ISSN2161-0681

Robayna, G. (1952). “El paludismo en Tenerife”. Revista de Sanidad e Higiene Pública 26, 1-

16.

Schaffner, F., Angel, G., Geoffroy, JP., Hervy, A., Rhaiem, A. & Brunhes ,J. (2001) The

mosquitoes of Europe. An identification and training programm (CD-Rom). IRD Editions &

EID Méditerranée. Montpellier, France.

OMS 1975. Manual on Practical Entomology in Malaria. Part II. Methods and

Techniques. World Health Organization, Geneva.

OMS 2006. Guidelines for testing mosquito adulticides for indoor residual spraying and

treatment of mosquito nets

OMS 2006.Pesticides and their application for the control of vectors and pests of public health

importance.

http://apps.who.int/iris/bitstream/10665/69795/1/WHO_CDS_NTD_WHOPES_GCD

PP_2006.1 _eng.pdf

15


Wan-Norafikah O, Nazni WA, Lee HL, Chen CD, Wan-Norjuliana WM, et al. (2008)

Detection of permethrin resistance in Aedes albopictus Skuse, collected from Titiwangsa

Zone, Kuala Lumpur, Malaysia. Proc ASEAN Congr Trop. Med. Parasitol 3: 69–77

Evaluación del riesgo de introducción y circulación del virus de dengue en España. Mayo

2013. Centro de Coordinación de Alertas y Emergencias sanitarias (CCAES). Ministerio de

Sanidad, Servicios Sociales e Igualdad.

Informe de situación y evaluación del riesgo para España de Paludismo. Julio 2015.

Centro de Coordinación de Alertas y Emergencias sanitarias (CCAES). Ministerio de

Sanidad, Servicios Sociales e Igualdad.

Agricultura-Planta ornamental y flor cortada. 2014. Análisis agroganadero. Coordinadora de

organizaciones de agricultores y ganaderos.

Zalasiewicz, J., Williams, M., Steffen, W. & Crutzen P. The new world of the Anthropocene.

Environ Sci Technol. 2010; 44(7):2228–31. doi: 10.1021/es903118j PMID: 20184359

https://www.msssi.gob.es/profesionales/saludPublica/ccayes/.../doc/actDen27_11.pdf

https://www.boe.es/boe/dias/2014/12/03/pdfs/BOE-A-2014-12583.pdf

http://www.palmasport.es/web/guest/publicaciones

http://www.who.int/ith/en/

http://ecdc.europa.eu/en/healthtopics/vectors/mosquitoes/Pages/aedes-aegypti.aspx

http://ecdc.europa.eu/en/healthtopics/vectors/mosquitoes/Pages/aedes-albopictus.aspx

https://www.msssi.gob.es/profesionales/saludPublica/ccayes/.../doc/actDen27_11.pdf

https://www.boe.es/boe/dias/2014/12/03/pdfs/BOE-A-2014-12583.pdf

http://www.palmasport.es/web/guest/publicaciones

http://www.who.int/ith/en/

http://ecdc.europa.eu/en/healthtopics/vectors/mosquitoes/Pages/aedes-aegypti.aspx

http://ecdc.europa.eu/en/healthtopics/vectors/mosquitoes/Pages/aedes-albopictus.aspx

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