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I. Guía Pedagógica del Módulo Análisis de procesos microbiológicos

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Guía Pedagógica y de Evaluación del Módulo:

Análisis de procesos microbiológicos

Contenido

Pág.

I. Guía pedagógica

1. Descripción 3

2. Datos de identificación de la norma 4

3. Generalidades pedagógicas 5

4. Enfoque del módulo 12

5. Orientaciones didácticas y estrategias de aprendizaje por unidad

13

6. Prácticas/ejercicios/problemas/actividades 26

II. Guía de evaluación 86

7. Descripción 87

8. Matriz de ponderación 91

9. Materiales para el desarrollo de actividades de evaluación 92

10. Matriz de valoración o rúbrica 104

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1. Descripción

La Guía Pedagógica es un documento que integra elementos técnico-metodológicos planteados de acuerdo con los principios y lineamientos del

Modelo Académico del Conalep para orientar la práctica educativa del docente en el desarrollo de competencias previstas en los programas de

estudio.

La finalidad que tiene esta guía es facilitar el aprendizaje de los alumnos, encauzar sus acciones y reflexiones y proporcionar situaciones en las que

desarrollará las competencias. El docente debe asumir conscientemente un rol que facilite el proceso de aprendizaje, proponiendo y cuidando un

encuadre que favorezca un ambiente seguro en el que los alumnos puedan aprender, tomar riesgos, equivocarse extrayendo de sus errores lecciones

significativas, apoyarse mutuamente, establecer relaciones positivas y de confianza, crear relaciones significativas con adultos a quienes respetan no

por su estatus como tal, sino como personas cuyo ejemplo, cercanía y apoyo emocional es valioso.

Es necesario destacar que el desarrollo de la competencia se concreta en el aula, ya que formar con un enfoque en competencias significa crear

experiencias de aprendizaje para que los alumnos adquieran la capacidad de movilizar, de forma integral, recursos que se consideran

indispensables para saber resolver problemas en diversas situaciones o contextos, e involucran las dimensiones cognitiva, afectiva y

psicomotora; por ello, los programas de estudio, describen las competencias a desarrollar, entendiéndolas como la combinación integrada de

conocimientos, habilidades, actitudes y valores que permiten el logro de un desempeño eficiente, autónomo, flexible y responsable del individuo en

situaciones específicas y en un contexto dado. En consecuencia, la competencia implica la comprensión y transferencia de los conocimientos a

situaciones de la vida real; ello exige relacionar, integrar, interpretar, inventar, aplicar y transferir los saberes a la resolución de problemas. Esto significa

que el contenido, los medios de enseñanza, las estrategias de aprendizaje, las formas de organización de la clase y la evaluación se

estructuran en función de la competencia a formar; es decir, el énfasis en la proyección curricular está en lo que los alumnos tienen que aprender,

en las formas en cómo lo hacen y en su aplicación a situaciones de la vida cotidiana y profesional.

Considerando que el alumno está en el centro del proceso formativo, se busca acercarle elementos de apoyo que le muestren qué competencias va a

desarrollar, cómo hacerlo y la forma en que se le evaluará. Es decir, mediante la guía pedagógica el alumno podrá autogestionar su aprendizaje a

través del uso de estrategias flexibles y apropiadas que se transfieran y adopten a nuevas situaciones y contextos e ir dando seguimiento a sus avances

a través de una autoevaluación constante, como base para mejorar en el logro y desarrollo de las competencias indispensables para un crecimiento

académico y personal.

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2. Datos de Identificación de la Norma

Título:

Unidad (es) de competencia laboral:

Código: Nivel de competencia:

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3. Generalidades Pedagógicas

Con el propósito de difundir los criterios a considerar en la instrumentación de la presente guía entre los docentes y personal académico de planteles y Colegios Estatales, se describen algunas consideraciones respecto al desarrollo e intención de las competencias expresadas en los módulos correspondientes a la formación básica, propedéutica y profesional.

Los principios asociados a la concepción constructivista del aprendizaje mantienen una estrecha relación con los de la educación basada en competencias, la cual se ha concebido en el Colegio como el enfoque idóneo para orientar la formación ocupacional de los futuros profesionales técnicos y profesionales técnico-bachiller. Este enfoque constituye una de las opciones más viables para lograr la vinculación entre la educación y el sector productivo de bienes y servicios.

En los programas de estudio se proponen una serie de contenidos que se considera conveniente abordar para obtener los Resultados de Aprendizaje establecidos; sin embargo, se busca que este planteamiento le dé al docente la posibilidad de desarrollarlos con mayor libertad y creatividad.

En este sentido, se debe considerar que el papel que juegan el alumno y el docente en el marco del Modelo Académico del Conalep, tenga, entre otras, las siguientes características:

El alumno: El docente:

Mejora su capacidad para resolver

problemas.

Aprende a trabajar en grupo y comunica

sus ideas.

Aprende a buscar información y a

procesarla.

Construye su conocimiento.

Adopta una posición crítica y autónoma.

Realiza los procesos de autoevaluación y

coevaluación.

Organiza su formación continua a lo largo de su trayectoria profesional.

Domina y estructura los saberes para facilitar experiencias de aprendizaje significativo.

Planifica los procesos de enseñanza y de aprendizaje atendiendo al enfoque por

competencias, y los ubica en contextos disciplinares, curriculares y sociales amplios.

Lleva a la práctica procesos de enseñanza y de aprendizaje de manera efectiva, creativa e

innovadora a su contexto institucional.

Evalúa los procesos de enseñanza y de aprendizaje con un enfoque formativo.

Construye ambientes para el aprendizaje autónomo y colaborativo.

Contribuye a la generación de un ambiente que facilite el desarrollo sano e integral de los

estudiantes.

Participa en los proyectos de mejora continua de su escuela y apoya la gestión institucional.

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En esta etapa se requiere una mejor y mayor organización académica que apoye en forma relativa la actividad del alumno, que en este caso es mucho mayor que la del docente; lo que no quiere decir que su labor sea menos importante. El docente en lugar de transmitir vertical y unidireccionalmente los conocimientos, es un mediador del aprendizaje, ya que:

Planea y diseña experiencias y actividades necesarias para la adquisición de las competencias previstas. Asimismo, define los ambientes de aprendizaje, espacios y recursos adecuados para su logro.

Proporciona oportunidades de aprendizaje a los estudiantes apoyándose en metodologías y estrategias didácticas pertinentes a los Resultados de Aprendizaje.

Ayuda también al alumno a asumir un rol más comprometido con su propio proceso, invitándole a tomar decisiones.

Facilita el aprender a pensar, fomentando un nivel más profundo de conocimiento.

Ayuda en la creación y desarrollo de grupos colaborativos entre los alumnos.

Guía permanentemente a los alumnos.

Motiva al alumno a poner en práctica sus ideas, animándole en sus exploraciones y proyectos.

Considerando la importancia de que el docente planee y despliegue con libertad su experiencia y creatividad para el desarrollo de las competencias consideradas en los programas de estudio y especificadas en los Resultados de Aprendizaje, en las competencias de las Unidades de Aprendizaje, así como en la competencia del módulo; podrá proponer y utilizar todas las estrategias didácticas que considere necesarias para el logro de estos fines educativos, con la recomendación de que fomente, preferentemente, las estrategias y técnicas didácticas que se describen en este apartado.

Al respecto, entenderemos como estrategias didácticas los planes y actividades orientados a un desempeño exitoso de los resultados de aprendizaje, que incluyen estrategias de enseñanza, estrategias de aprendizaje, métodos y técnicas didácticas, así como, acciones paralelas o alternativas que el docente y los alumnos realizarán para obtener y verificar el logro de la competencia; bajo este tenor, la autoevaluación debe ser considerada también como una estrategia por excelencia para educar al alumno en la responsabilidad y para que aprenda a valorar, criticar y reflexionar sobre el proceso de enseñanza y su aprendizaje individual.

Es así como la selección de estas estrategias debe orientarse hacia un enfoque constructivista del conocimiento y estar dirigidas a que los alumnos observen y estudien su entorno, con el fin de generar nuevos conocimientos en contextos reales y el desarrollo de las capacidades reflexivas y críticas de los alumnos.

Desde esta perspectiva, a continuación se describen brevemente los tipos de aprendizaje que guiarán el diseño de las estrategias y las técnicas que deberán emplearse para el desarrollo de las mismas:

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TIPOS APRENDIZAJES.

Aprendizaje Significativo

Se fundamenta en una concepción constructivista del aprendizaje, la cual se nutre de diversas concepciones asociadas al cognoscitivismo, como la teoría psicogenética de Jean Piaget, el enfoque sociocultural de Vygotsky y la teoría del aprendizaje significativo de Ausubel.

Dicha concepción sostiene que el ser humano tiene la disposición de aprender verdaderamente sólo aquello a lo que le encuentra sentido en virtud de que está vinculado con su entorno o con sus conocimientos previos. Con respecto al comportamiento del alumno, se espera que sean capaces de desarrollar aprendizajes significativos, en una amplia gama de situaciones y circunstancias, lo cual equivale a “aprender a aprender”, ya que de ello depende la construcción del conocimiento.

Aprendizaje Colaborativo.

El aprendizaje colaborativo puede definirse como el conjunto de métodos de instrucción o entrenamiento para uso en grupos, así como de estrategias para propiciar el desarrollo de habilidades mixtas (aprendizaje y desarrollo personal y social). En el aprendizaje colaborativo cada miembro del grupo es responsable de su propio aprendizaje, así como del de los restantes miembros del grupo (Johnson, 1993.)

Más que una técnica, el aprendizaje colaborativo es considerado una filosofía de interacción y una forma personal de trabajo, que implica el manejo de aspectos tales como el respeto a las contribuciones y capacidades individuales de los miembros del grupo (Maldonado Pérez, 2007). Lo que lo distingue de otro tipo de situaciones grupales, es el desarrollo de la interdependencia positiva entre los alumnos, es decir, de una toma de conciencia de que sólo es posible lograr las metas individuales de aprendizaje si los demás compañeros del grupo también logran las suyas.

El aprendizaje colaborativo surge a través de transacciones entre los alumnos, o entre el docente y los alumnos, en un proceso en el cual cambia la responsabilidad del aprendizaje, del docente como experto, al alumno, y asume que el docente es también un sujeto que aprende. Lo más importante en la formación de grupos de trabajo colaborativo es vigilar que los elementos básicos estén claramente estructurados en cada sesión de trabajo. Sólo de esta manera se puede lograr que se produzca, tanto el esfuerzo colaborativo en el grupo, como una estrecha relación entre la colaboración y los resultados (Johnson & F. Johnson, 1997).

Los elementos básicos que deben estar presentes en los grupos de trabajo colaborativo para que éste sea efectivo son:

la interdependencia positiva.

la responsabilidad individual.

la interacción promotora.

el uso apropiado de destrezas sociales.

el procesamiento del grupo.

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Asimismo, el trabajo colaborativo se caracteriza principalmente por lo siguiente:

Se desarrolla mediante acciones de cooperación, responsabilidad, respeto y comunicación, en forma sistemática, entre los integrantes del grupo y subgrupos.

Va más allá que sólo el simple trabajo en equipo por parte de los alumnos. Básicamente se puede orientar a que los alumnos intercambien información y trabajen en tareas hasta que todos sus miembros las han entendido y terminado, aprendiendo a través de la colaboración.

Se distingue por el desarrollo de una interdependencia positiva entre los alumnos, en donde se tome conciencia de que sólo es posible lograr las metas individuales de aprendizaje si los demás compañeros del grupo también logran las suyas.

Aunque en esencia esta estrategia promueve la actividad en pequeños grupos de trabajo, se debe cuidar en el planteamiento de las actividades que cada integrante obtenga una evidencia personal para poder integrarla a su portafolio de evidencias.

Aprendizaje Basado en Problemas.

Consiste en la presentación de situaciones reales o simuladas que requieren la aplicación del conocimiento, en las cuales el alumno debe analizar la situación y elegir o construir una o varias alternativas para su solución (Díaz Barriga Arceo, 2003). Es importante aplicar esta estrategia ya que las competencias se adquieren en el proceso de solución de problemas y en este sentido, el alumno aprende a solucionarlos cuando se enfrenta a problemas de su vida cotidiana, a problemas vinculados con sus vivencias dentro del Colegio o con la profesión. Asimismo, el alumno se apropia de los conocimientos, habilidades y normas de comportamiento que le permiten la aplicación creativa a nuevas situaciones sociales, profesionales o de aprendizaje, por lo que:

Se puede trabajar en forma individual o de grupos pequeños de alumnos que se reúnen a analizar y a resolver un problema seleccionado o diseñado especialmente para el logro de ciertos resultados de aprendizaje.

Se debe presentar primero el problema, se identifican las necesidades de aprendizaje, se busca la información necesaria y finalmente se regresa al problema con una solución o se identifican problemas nuevos y se repite el ciclo.

Los problemas deben estar diseñados para motivar la búsqueda independiente de la información a través de todos los medios disponibles para el alumno y además generar discusión o controversia en el grupo.

El mismo diseño del problema debe estimular que los alumnos utilicen los aprendizajes previamente adquiridos.

El diseño del problema debe comprometer el interés de los alumnos para examinar de manera profunda los conceptos y objetivos que se quieren aprender.

El problema debe estar en relación con los objetivos del programa de estudio y con problemas o situaciones de la vida diaria para que los alumnos encuentren mayor sentido en el trabajo que realizan.

Los problemas deben llevar a los alumnos a tomar decisiones o hacer juicios basados en hechos, información lógica y fundamentada, y obligarlos a justificar sus decisiones y razonamientos.

Se debe centrar en el alumno y no en el docente.

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TÉCNICAS

Método de proyectos.

Es una técnica didáctica que incluye actividades que pueden requerir que los alumnos investiguen, construyan y analicen información que coincida con los objetivos específicos de una tarea determinada en la que se organizan actividades desde una perspectiva experiencial, donde el alumno aprende a través de la práctica personal, activa y directa con el propósito de aclarar, reforzar y construir aprendizajes (Intel Educación).

Para definir proyectos efectivos se debe considerar principalmente que:

Los alumnos son el centro del proceso de aprendizaje.

Los proyectos se enfocan en resultados de aprendizaje acordes con los programas de estudio.

Las preguntas orientadoras conducen la ejecución de los proyectos.

Los proyectos involucran múltiples tipos de evaluaciones continuas.

El proyecto tiene conexiones con el mundo real.

Los alumnos demuestran conocimiento a través de un producto o desempeño.

La tecnología apoya y mejora el aprendizaje de los alumnos.

Las destrezas de pensamiento son integrales al proyecto.

Para el presente módulo se hacen las siguientes recomendaciones:

Integrar varios módulos mediante el método de proyectos, lo cual es ideal para desarrollar un trabajo colaborativo.

En el planteamiento del proyecto, cuidar los siguientes aspectos:

Establecer el alcance y la complejidad.

Determinar las metas.

Definir la duración.

Determinar los recursos y apoyos.

Establecer preguntas guía. Las preguntas guía conducen a los alumnos hacia el logro de los objetivos del proyecto. La cantidad de preguntas guía es proporcional a la complejidad del proyecto.

Calendarizar y organizar las actividades y productos preliminares y definitivos necesarias para dar cumplimiento al proyecto.

Las actividades deben ayudar a responsabilizar a los alumnos de su propio aprendizaje y a aplicar competencias adquiridas en el salón de clase en proyectos reales, cuyo planteamiento se basa en un problema real e involucra distintas áreas.

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El proyecto debe implicar que los alumnos participen en un proceso de investigación, en el que utilicen diferentes estrategias de estudio; puedan participar en el proceso de planificación del propio aprendizaje y les ayude a ser flexibles, reconocer al "otro" y comprender su propio entorno personal y cultural. Así entonces se debe favorecer el desarrollo de estrategias de indagación, interpretación y presentación del proceso seguido.

De acuerdo a algunos teóricos, mediante el método de proyectos los alumnos buscan soluciones a problemas no convencionales, cuando llevan a la práctica el hacer y depurar preguntas, debatir ideas, hacer predicciones, diseñar planes y/o experimentos, recolectar y analizar datos, establecer conclusiones, comunicar sus ideas y descubrimientos a otros, hacer nuevas preguntas, crear artefactos o propuestas muy concretas de orden social, científico, ambiental, etc.

En la gran mayoría de los casos los proyectos se llevan a cabo fuera del salón de clase y, dependiendo de la orientación del proyecto, en muchos de los casos pueden interactuar con sus comunidades o permitirle un contacto directo con las fuentes de información necesarias para el planteamiento de su trabajo. Estas experiencias en las que se ven involucrados hacen que aprendan a manejar y usar los recursos de los que disponen como el tiempo y los materiales.

Como medio de evaluación se recomienda que todos los proyectos tengan una o más presentaciones del avance para evaluar resultados relacionados con el proyecto.

Para conocer acerca del progreso de un proyecto se puede:

Pedir reportes del progreso.

Presentaciones de avance,

Monitorear el trabajo individual o en grupos.

Solicitar una bitácora en relación con cada proyecto.

Calendarizar sesiones semanales de reflexión sobre avances en función de la revisión del plan de proyecto.

Estudio de casos.

El estudio de casos es una técnica de enseñanza en la que los alumnos aprenden sobre la base de experiencias y situaciones de la vida real, y se permiten así, construir su propio aprendizaje en un contexto que los aproxima a su entorno. Esta técnica se basa en la participación activa y en procesos colaborativos y democráticos de discusión de la situación reflejada en el caso, por lo que:

Se deben representar situaciones problemáticas diversas de la vida para que se estudien y analicen.

Se pretende que los alumnos generen soluciones válidas para los posibles problemas de carácter complejo que se presenten en la realidad futura.

Se deben proponer datos concretos para reflexionar, analizar y discutir en grupo y encontrar posibles alternativas para la solución del problema planteado. Guiar al alumno en la generación de alternativas de solución, le permite desarrollar la habilidad creativa, la capacidad de innovación y representa un recurso para conectar la teoría a la práctica real.

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Debe permitir reflexionar y contrastar las propias conclusiones con las de otros, aceptarlas y expresar sugerencias.

El estudio de casos es pertinente usarlo cuando se pretende:

Analizar un problema.

Determinar un método de análisis.

Adquirir agilidad en determinar alternativas o cursos de acción.

Tomar decisiones.

Algunos teóricos plantean las siguientes fases para el estudio de un caso:

Fase preliminar: Presentación del caso a los participantes

Fase de eclosión: "Explosión" de opiniones, impresiones, juicios, posibles alternativas, etc., por parte de los participantes.

Fase de análisis: En esta fase es preciso llegar hasta la determinación de aquellos hechos que son significativos. Se concluye esta fase cuando se ha conseguido una síntesis aceptada por todos los miembros del grupo.

Fase de conceptualización: Es la formulación de conceptos o de principios concretos de acción, aplicables en el caso actual y que permiten ser utilizados o transferidos en una situación parecida.

Interrogación.

Consiste en llevar a los alumnos a la discusión y al análisis de situaciones o información, con base en preguntas planteadas y formuladas por el docente o por los mismos alumnos, con el fin de explorar las capacidades del pensamiento al activar sus procesos cognitivos; se recomienda integrar esta técnica de manera sistemática y continua a las anteriormente descritas y al abordar cualquier tema del programa de estudio.

Participativo-vivenciales.

Son un conjunto de elementos didácticos, sobre todo los que exigen un grado considerable de involucramiento y participación de todos los miembros del grupo y que sólo tienen como límite el grado de imaginación y creatividad del facilitador.

Los ejercicios vivenciales son una alternativa para llevar a cabo el proceso enseñanza-aprendizaje, no sólo porque facilitan la transmisión de conocimientos, sino porque además permiten identificar y fomentar aspectos de liderazgo, motivación, interacción y comunicación del grupo, etc., los cuales son de vital importancia para la organización, desarrollo y control de un grupo de aprendizaje.

Los ejercicios vivenciales resultan ser una situación planeada y estructurada de tal manera que representan una experiencia muy atractiva, divertida y hasta emocionante. El juego significa apartarse, salirse de lo rutinario y monótono, para asumir un papel o personaje a través del cual el individuo pueda manifestar lo que verdaderamente es o quisiera ser sin temor a la crítica, al rechazo o al ridículo.

El desarrollo de estas experiencias se encuentra determinado por los conocimientos, habilidades y actitudes que el grupo requiera revisar o analizar y por sus propias vivencias y necesidades personales.

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4. Enfoque del Módulo

La competencia que se adquiere con el desarrollo del módulo es que el alumno adquiera conocimientos, habilidades y destrezas para identificar,

analizar y obtener productos de origen biológico mediante el uso de microrganismos y el manejo de técnicas específicas de análisis, cumpliendo con los

requerimientos de calidad y productividad indicados, dichas competencias le permitirán desarrollar su potencial tanto en lo personal como para contribuir

al desarrollo social y laboral.

Este módulo pretende desarrollar habilidades en el manejo y la aplicación de procedimientos y técnicas de identificación de microrganismos, extracción,

análisis y la aplicación de estos en la obtención de productos biológicos, por lo tanto, la guía esta ordenada por unidades y resultados de aprendizajes

con un enfoque por competencias, las cuales deben ser alcanzadas por los estudiantes de la carrera de Técnico Profesional y Técnico Bachiller en

Química Industrial. Para el logro de tal propósito se aplican estrategias de aprendizaje como desarrollo de prácticas de laboratorio, exposición de temas,

dialogo- discusión entre alumnos, demostración de procedimientos, preguntas orales y escritas todas ellas dentro de un trabajo colaborativo. Con estas

estrategias se pretende que los estudiantes desarrollen las habilidades de organización, investigación, exploración, comunicación, pensamiento crítico y

reflexivo, construcción del conocimiento, aprendizaje autónomo y de colaboración.

El módulo, desarrolla habilidades y conocimientos generales, necesarios para la continuación de la formación profesional y de los trayectos técnicos, al

establecer las principales bases. Por lo tanto, es de especial importancia la observancia a detalle de los temas propuestos y las actividades de

evaluación incorporadas, con objeto de que el alumno obtenga los conocimientos mínimos necesarios de la competencia, que le permitan no sólo

enriquecer su formación desde el punto de vista académico, sino también, capacitarle para que en su vida profesional (o en estudios superiores) pueda

afrontar trabajos que, en mayor o menor medida, estén relacionados con el área.

Educar con un enfoque en competencias significa crear experiencias de aprendizaje para que los estudiantes desarrollen habilidades que les permitan

movilizar, de forma integral recursos que se consideran indispensables para realizar satisfactoriamente las actividades demandadas. Se trata de activar

eficazmente distintos dominios del aprendizaje; en la categorización más conocida, diríamos que se involucran las dimensiones cognitiva, afectiva y

psicomotora. En este sentido, la formación del CONALEP se fundamenta en una propuesta de aprendizaje profesionalizado, el cual implica el uso de

estilos de aprendizaje y técnicas que permiten un desarrollo integral de la formación.

Dado la naturaleza de formación integral, el módulo también fomenta el desarrollo de las competencias genéricas tales como el trabajo en equipo estableciendo pautas de cooperación social, y manteniendo relaciones interpersonales positivas con sus maestros y compañeros de grupo; participando en el mejoramiento social y ambiental, mediante una actitud constructiva y propositiva, lo cual le permitirá definir su postura profesional dentro de un marco laboral con base en criterios sustentados.

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5. Orientaciones didácticas y estrategias de aprendizaje por unidad

Unidad I: Preparación de microrganismos para los procesos microbiológicos industriales

Orientaciones Didácticas

Esta unidad está orientada a proporcionar al alumno los conocimientos, actitudes y habilidades que le permitan ser competente en el manejo de equipo de laboratorio, en la identificación y aislamiento de microrganismos, así como en la aplicación de técnicas y procedimientos para el acondicionamiento de los materiales y la realización de pruebas analíticas para identificar las características fisiológicas de los microrganismos que seran empleados en la obtencion de productos alimenticios de origen biológico.

Establecer al inicio de la unidad de aprendizaje las reglas y compromisos que el docente y los alumnos asumirán, con el fin de crear un ambiente de confianza, respeto y cooperación, que favorezca la libertad para expresar dudas, emitir opiniones y aprender a escuchar.

Cerciorase a través de una evaluación diagnostica si el estudiante cuenta con las competencias disciplinares requeridas para el desarrollo del módulo, con el fin de que las competencias profesionales propias de éste logren ser adquiridas y aplicadas. Para ello el docente:

Alienta a los estudiantes a asistir habitualmente tanto a las sesiones de clase como al desarrollo de las prácticas le permitirá adquirir conocimientos, habilidades y actitudes que serán evaluados en la competencia adquirida.

Emplea estrategias de aprendizaje colaborativo para potenciar el trabajo en equipo, el uso del pensamiento, la indagación, reflexión y la capacidad de manejar equipo de laboratorio para la obtención de microrganismos que serán empleados en los procesos para la obtención de productos alimenticios.

Orienta y apoya el desarrollo de las prácticas, la aplicación de las medidas de seguridad e higiene en el ambiente de trabajo, así como fomentar actitudes de responsabilidad, orden, respeto, limpieza y trabajo colaborativo.

Promueve discusiones grupales, acerca de los temas referentes a la unidad a través de cuestionar los conceptos, teorías, técnicas y fundamentos que permitan a los alumnos analizar, interpretar y emitir conclusiones.

Instruye en la elaboración de trabajos escritos acentuando el uso de las formas lingüísticas correctas, fomenta la comunicación interpersonal que

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conlleva a adquirir nuevos aprendizajes en la medida que comprende y analiza la realidad.

Analiza detalladamente y junto con los alumnos los criterios que serán evaluados en cada una de las rúbricas y su relación con el apartado 9 “Materiales para el desarrollo de Actividades de Evaluación” con el fin de tener presente las habilidades conocimientos y actitudes evaluables durante el desarrollo del módulo.

Orienta a los alumnos para que realicen evaluaciones periódicas sobre su propio desempeño con la intensión de que fortalezcan sus áreas de oportunidad.

Aborda los temas presentando situaciones reales o simuladas en relación con el cuidado del medio ambiente y la seguridad e higiene que se debe tener en el área de trabajo resulta útil para fomentar la discusión, análisis y emitir conclusiones que permitan crear conciencia, con el objetivo de salvaguardar la integridad física del alumno y del medio ambiente.

Fomenta el uso de las tecnologías de la información como una estrategia de aprendizaje resulta de interés para aquellos temas que requieren de análisis y comprensión, por lo que se recomienda emplearlo como una herramienta para las tareas encomendadas, dando la oportunidad de formular cuestionamientos, o planteamientos de problemas que podrían ser empleados en el salón de clases, para asegurar la construcción de conocimiento significativo

Emplea estrategias de cierre con el fin de que los alumnos adopten una actitud reflexiva y crítica sobre lo que se les explicó en las sesiones precedentes, para que aclaren, recuperen o consoliden la información conceptual, procedimental y actitudinal; con ello se busca fomentar el establecimiento de conclusiones.

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Estrategias de Aprendizaje Recursos Académicos

Participar en una plenaria de grupo en la que se realice el encuadre del módulo, planteando sus dudas respecto a los contenidos correspondientes a esta unidad, o dando sus propuestas a partir de sus propias experiencias respecto a los temas comprendidos en la unidad, de forma tal que desde el inicio pueda establecer con precisión qué es lo que se espera de él y qué puede esperar del proceso de aprendizaje que está por emprender.

Asistir habitualmente tanto a las sesiones de clase como al desarrollo de las prácticas te permitirá adquirir conocimientos, habilidades y actitudes que serán evaluados en la competencia adquirida.

Participar en las exposiciones que realicen el docente y tus compañeros, interviniendo de forma ordenada y respetuosa, aportando ideas que enriquezcan el tema tratado, incrementará tus habilidades de expresión oral.

Explicar con tus palabras a los miembros del equipo al que perteneces, los conceptos de microrganismo, microbiología y proceso microbiológico de acuerdo al contexto del tema a tratar, y describir la relación entre aspectos generales y su interpretación científica, construir mediante una lluvia de ideas las definiciones propias de cada concepto.

Participar en un debate grupal sobre la generación espontánea, intercambiar puntos de vista y extraer comentarios de los nuevos conocimientos adquiridos.

Realizar una investigación en diversas fuentes que muestre las características de las escuelas de Pasteur y Koch sobre la investigación de microrganismos.

Elaborar un collage, con apoyo de libros y revistas especializadas, sobre los primeros microrganismos que fueron encontrados o identificados por los primeros microscopistas de la historia.

Realizar un ensayo que muestre la importancia o el papel de los microrganismos en la naturaleza y cuál es su relación con la aparición de la microbiología industrial así como su aplicación en la obtención de alimentos y medicamentos, exponerlo ante el grupo compartiendo comentarios.

Realizar una investigación documental y elabora un cuadro comparativo; el cual demuestre una clasificación de microrganismos que son de interés para los procesos microbiológicos, explica al grupo sus características morfológicas.

Realizar un cuadro comparativo de los diferentes tipos de tinción de microrganismos, explicando en grupo su fundamentación y uso.

Garay Martínez, Luz Eduviges. Microbiología general: manual de prácticas de laboratorio. Universidad de Guadalajara, Centro Universitario de Ciencias Exactas e Ingenierías, División de Ciencias Básicas, 2008.

Madigan, M.T., J.M. Martinko y J. Parker. Brock: Biología de los microrganismos. 10ª edición, Madrid, España: Pearson-Prentice-Hall, 2003.

Pérez, Raquel; Villaverde Peris, María Carmen. Microbiología. / Volumen 1. Serie: Ciencias de la salud Granados. Editorial Paraninfo. Madrid, España. 2003.

Singleton, Paul. Bacterias en biología, biotecnología y medicina. Editorial Acribia, Zaragoza 2003.

Concepto e historia de la microbiología. Disponible en: http://www.biologia.edu.ar/microgeneral/micro-ianez/01_micro.htm (21-06-2012

Manual de procesos biológicos. Disponible en: http://sied.conalep.edu.mx/bv3/MenLineaBg.aspx (21-06-2012

Video: Historia de la microbiología. Disponible en: http://www.youtube.com/watch?v=czGJMyoFLHk (21-06-2012

http://www.biologia.edu.ar/microgeneral/micro-ianez/01_micro.htm

http://www.biologia.edu.ar/microgeneral/micro-ianez/01_micro.htm

http://sied.conalep.edu.mx/bv3/MenLineaBg.aspx


http://www.youtube.com/watch?v=czGJMyoFLHk

http://www.youtube.com/watch?v=czGJMyoFLHk

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Realizar la práctica No. 1 Maneja el microscopio y autoclave de acuerdo a su instructivo de operación

Realizar la práctica No 2 Prepara frotis por extensión de la muestra en portaobjetos

Realizar la práctica No 3 Identifica las características generales de los protistas por observación en microscopio

Realizar la práctica No.4 Identifica bacterias por observación en microscopio

Realizar la práctica No.5 Realiza la tinción de hongos, bacterias y levaduras con colorantes para su observación al microscopio.

Realizar la práctica No.6 Aplica técnicas de tinción diferenciales por medio de Tinción de Gram.

Realizar la práctica No 7 Identifica la estructura típica de una bacteria por medio de tinciones selectivas

Realizar la actividad de evaluación 1.1.1. Determina a partir de su morfología y estructura los tipos de microrganismos potenciales para ser usados en la obtención de productos biológicos; considerando el material incluido en el apartado 9 “Materiales para el desarrollo de actividades de evaluación”.

Realizar una investigación documental indicando la importancia del concepto de esterilización y asepsia en los análisis microbiológicos aplicados a un proceso en la obtención de productos de origen biológico, exponerlo al grupo intercambiando opiniones.

Realizar el ejercicio No. 1 Lineamientos para el muestreo y transporte de alimentos durante

su análisis microbiológico (NMX-F-285-1977).

Realizar una investigación documental sobre las características de los diferentes tipos de reservorios de microrganismos, explicar al grupo las diferencias encontradas.

Realizar un cuadro comparativo que integre las características de los términos de aislamiento y selección de microrganismos en un proceso biológico.

Participar en una lluvia de ideas que permita realizar un listado de los aspectos a considerar para aplicar los métodos de aislamiento de microrganismos en un proceso biológico, e indicar como es que se llevan a cabo.

Realizar un ejercicio en casa tomando como muestra un alimento en estado de

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descomposición, y mediante un cuchillo o espátula separar la parte descompuesta simulando hacer un aislamiento de microrganismos para su estudio, llevarlo al laboratorio para observarlo al microscopio, comentar sus observaciones ante grupo o equipo.

Elaborar un cuadro descriptivo de los diferentes tipos de medios de cultivo existentes, indicar sus características de composición y los nutrientes más importantes que lo caracterizan, explicarlos ante el grupo y completar su información con la que expongan sus compañeros.

Realizar ejercicios teóricos-prácticos para la formulación de medios de cultivo, calcular el rendimiento y productividad, determinar su funcionalidad y ejemplificar sus aplicaciones.

Evaluar el desempeño, actitud y las habilidades de los compañeros de equipo al finalizar las prácticas previstas para esta unidad.

Realizar la práctica No.8 Prepara medios de cultivo, soluciones y diluciones de acuerdo al tipo de organismo a procesar

Realizar la práctica No 9 Aísla y siembra microrganismos por la técnica de estría e inclusión.

Realizar la práctica No. 10 Siembra de bacterias en medios de cultivo preparados en tubos.

Realizar una lista clasificando las fuentes de obtención de microrganismos naturales y colecciones microbianas.

Realizar la práctica No. 11 Aplica técnicas de cultivo de microrganismos por diferentes técnicas de siembra

Realizar visitas a diferentes industrias de alimentos para observar cómo se llevan a cabo los análisis microbiológicos a los alimentos, extrae información y compártela con tus compañeros de grupo.

Realizar una autoevaluación por escrito misma que consistirá, en describir detalladamente el desempeño personal logrado al término de las actividades, prácticas y ejercicios considerados en este resultado de aprendizaje y entrégala al docente. Contará para la evaluación.

Realizar la actividad de evaluación 1.2.1. Obtiene y prepara microrganismos para ser empleados en la obtención de productos biológicos; considerando el material incluido en el apartado 9 “Materiales para el desarrollo de actividades de evaluación”.

Participar en el cierre grupal de la unidad, plantea preguntas o dudas y elabora una recopilación de los resultados de aprendizaje obtenidos

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Unidad II: Obtención de productos mediante procesos microbiológicos industriales

Orientaciones Didácticas

Esta unidad está orientada a proporcionar al alumno los conocimientos, habilidades y actitudes que le permitan ser competente para realizar procesos microbiológicos en la obtención de productos de consumo y en el manejo de equipo que se emplea en los mismos, así como en la aplicación de sus técnicas y procedimientos que regularan la calidad de los productos obtenidos. Para ello el docente:

Emplea estrategias de aprendizaje colaborativo para potenciar el trabajo en equipo, el uso del pensamiento, la indagación, reflexión y la capacidad de realizar y evaluar procesos industriales.

Incentiva en el alumno la creatividad, el interés por la observación y el análisis de situaciones relacionadas con los procesos en cuestión, para alentar al alumno a la construcción de su propio conocimiento.

Propicia el razonamiento lógico: inductivo-deductivo y de simulación así como el pensamiento crítico y la capacidad de resolución de problemas.

Promueve discusiones grupales, acerca de los temas referentes a la unidad a través de cuestionar los conceptos, teorías, técnicas y fundamentos que permitan a los alumnos analizar, interpretar y emitir conclusiones.

Lleva a cabo actividades que fomenten la habilidad de la expresión oral, a través de moderar debates en los cuales se mantenga una actitud constructiva, participativa y de respeto en el grupo en general, con el propósito de promover la participación activa en su totalidad.

Orienta y apoya el desarrollo de las prácticas, la aplicación de las medidas de seguridad e higiene y ambiente, así como fomentar actitudes de responsabilidad, orden, respeto, limpieza y trabajo colaborativo.

Fomenta la visita a empresas e instituciones de su comunidad, que así lo permitan, en las cuales se manejen procesos e identifiquen los materiales, observen y establezcan una relación entre el escalamiento de los procesos de laboratorio y el de la industria.

Fomenta el uso de las tecnologías de la información como una estrategia de aprendizaje resulta de interés para aquellos temas que requieren de análisis y comprensión, se recomienda emplearlo como una herramienta para las tareas encomendadas, dando la oportunidad de formular cuestionamientos, o planteamientos de problemas que podrían ser empleados en el salón de clases, para asegurar la construcción de conocimiento significativo.

Analiza detalladamente y junto con los alumnos los criterios que serán evaluados en cada una de las rúbricas y su relación con el apartado 9 “Materiales para el desarrollo de Actividades de Evaluación” con el fin de tener presente las habilidades conocimientos y actitudes eva luables durante el desarrollo

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del módulo.

Emplea estrategias de cierre con el fin de que los alumnos adopten una actitud reflexiva y crítica sobre lo que se les explico en las sesiones precedentes, para que aclaren, recuperen o consoliden la información conceptual, procedimental y actitudinal; con ello se busca fomentar el establecimiento de conclusiones.

Destina una sesión al final de la unidad para recapitulación, autoevaluación, coevaluación y recepción de evidencias.

Estrategias de Aprendizaje Recursos Académicos

Asistir habitualmente tanto a las sesiones de clase como al desarrollo de las prácticas te permitirá adquirir conocimientos, habilidades y actitudes que serán evaluados en la competencia adquirida.

Investigar y explicar con tus palabras dentro del equipo conformado, la relación entre los aspectos generales y la interpretación científica de los conceptos de metabolito, ruta metabólica y síntesis química de acuerdo al contexto del tema a tratar.

Participar en una lluvia de ideas para construir las definiciones propias de cada concepto.

Realizar un mapa conceptual sobre fermentación y procesos fermentativos e intercambia opiniones entre los compañeros y realizar una síntesis de los conocimientos adquiridos.

Participar en un debate grupal moderado por el docente para analizar el desarrollo de la fermentación con técnicas artesanales y la diferencia del uso de técnica industrial.

Elaborar un resumen que describa las ventajas y desventajas que presenta la obtención de compuestos por fermentación con relación a una síntesis química, presentarlo al grupo por medio de herramientas didácticas.

Observar los procesos de descomposición de un alimento que se tenga en casa, y llevar un registro del desarrollo de este proceso. tomar muestras a diferentes tiempos y llevar al laboratorio para observarlas al microscopio, ver el crecimiento de los microrganismos y realizar un análisis de los resultados encontrados que expliquen la evolución de los mismos.

Intervenir ejemplificando, cuestionando o aportando ideas que enriquezcan la exposición

Ahmed E. Yousef- Carolyn Carlstrom. Microbiología de los alimentos (Manual de Laboratorio). España, Editorial ACRIBIA, S.A, Zaragoza, ISBN: 10.84-200-1066-9 y 13.978-84-200-1066-3. 2006.

D.A.A.Mossel, B. Moreno y C.B. Struijk. Microbiología de los alimentos. 2° Edición, Zaragoza España, Editorial ACRIBIA, S.A., ISBN 10:84-200-0998-9, y 13:978-84-200-0998-8. 2006.

González-Morán, María Genoveva. Técnicas de laboratorio en biología celular y molecular. México, D.F, AGT EDITOR, S.A. ISBN: 968-463-138-3 y 978-968-463-138-0, 2008.

Jiménez Gómez, Pedro Antonio; Díaz Martin, Ricardo. Guía de prácticas de laboratorio en microbiología industrial. Editorial Roble, Madrid, 2006.

Manual de Análisis físico-químico y microbiológico de los alimentos. Disponible en: http://sied.conalep.edu.mx/bv3/MenLineaBg.aspx (21-06-2012

Manual de procesos biológicos. Disponible en: http://sied.conalep.edu.mx/bv3/MenLineaBg.aspx (21-06-2012

Métodos de conservación de alimentos. Disponible en: http://www.consumer.es/seguridad-alimentaria/ciencia-y-tecnologia/2004/05/20/20135.php. (21-06-2012

Microbiología industrial. Disponible en: http://www.science.oas.org/Simbio/mbio_ind/mbio_ind.



http://www.consumer.es/seguridad-alimentaria/ciencia-y-tecnologia/2004/05/20/20135.php

http://www.consumer.es/seguridad-alimentaria/ciencia-y-tecnologia/2004/05/20/20135.php

http://www.science.oas.org/Simbio/mbio_ind/mbio_ind.htm

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que el docente lleve a cabo sobre las causas o fundamento científico que originan la descomposición de un alimento natural, exponerlo al grupo dando ejemplos de las reacciones que se presentan en la etapa de descomposición.

Elaborar un cuadro comparativo que integre las ventajas y desventajas que presentan las fuentes naturales en la obtención de microrganismos contra las colecciones microbianas dar ejemplos de cada una de ellas y presentarlo ante el al grupo, extraer comentarios.

Participar en un debate grupal donde se discuta por que los licores sulfhídricos son una de las fuentes de carbono más apropiada para microrganismos que requieren concentraciones bajas de azucares y pueden resistir concentraciones medias de lignina en una fermentación comercial, finalizar con la elaboración de una síntesis.

Describir el concepto de medio de cultivo y definir su objetivo en los procesos microbiológicos a través de un ensayo, que será intercambiado con algún compañero para la revisión de secuencias de ideas, gramática y ortográfica

Realizar una investigación documental para identificar las características de los medios de cultivo, las condiciones deseables, funciones y la formulación aplicada para su elaboración, presentar un resumen con la bibliografía utilizada, considerando para esta última la estructura que la compone.

Realizar la práctica No. 12 Aplica técnicas de recuento de microrganismos por medio del cuenta colonias

Realizar la práctica No.13 Obtiene cultivos puros de microrganismos por aislamiento

Realizar una investigación documental que describa las condiciones bajo las que se realiza la producción de ácido cítrico a nivel industrial empleando el cultivo sumergido, posteriormente, formula preguntas correctamente estructuradas para ser aplicadas en intercambio a los compañeros de clase.

Realiza un experimento casero de cultivo de superficie y sumergido en el cual puedas demostrar las ventajas y desventajas de la producción de enzimas e intuye como se lleva a cabo a nivel industrial, presentar comentarios ante el grupo.

Elaborar un diagrama de flujo donde se esquematicen las etapas para la producción industrial de estreptomicina empleando el cultivo sumergido, y la producción de amilasa en cultivo de superficie, presentarlo ante el grupo y extraer comentarios y conclusiones.

Realizar una investigación documental en internet o libros especializados sobre lo que ocurre

htm (21-06-2012

Página web Procesos biotecnológicos de los alimentos. http://www.ibt.unam.mx/ (21-06-2012

Química alimentaria. Disponible en: http://www.inha.sld.cu/vicedirecciones/conservaciondealimentos.htm (21-06-2012

Video: Microbiología Industrial. Disponible en: http://www.youtube.com/watch?v=jlJkepTScoQ&feature=related (21-06-2012

http://www.science.oas.org/Simbio/mbio_ind/mbio_ind.htm

http://www.ibt.unam.mx/

http://www.inha.sld.cu/vicedirecciones/conservaciondealimentos.htm

http://www.inha.sld.cu/vicedirecciones/conservaciondealimentos.htm

http://www.youtube.com/watch?v=jlJkepTScoQ&feature=related

http://www.youtube.com/watch?v=jlJkepTScoQ&feature=related

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en el cultivo continuo con un microrganismo que fue sembrado, mencionar cual es el objetivo principal de este tipo de cultivo, los componentes que intervienen y representarlo de forma gráfica ante grupo.

Representar una gráfica de la velocidad de crecimiento y de producción; rendimiento y productividad de un microrganismo en el cultivo continuo.

Realizar cálculos para determinar la velocidad de crecimiento, velocidad de producción, rendimiento y productividad de un microrganismo, intercambiar los resultados con sus compañeros para su evaluación.

Elaborar un mapa conceptual creativo, referente a los organismos mutantes, las características que presentan, la clasificación, los métodos de aislamiento y obtención, su aplicación en la industria de alimentos y medicamentos.

Realizar un resumen que integre las características de las cepas microbianas, la importancia de la preservación y conservación y su aplicación en los procesos microbiológicos.

Demostrar a través de un experimento realizado por el alumno con alimentos en descomposición, las etapas que presenta la técnica para la conservación de cepas microbianas mediante la transferencia en serie, exponer ante grupo.

Elaborar un cuadro comparativo que integre las técnicas de conservación y preservación de cepas microbianas más conocidas, presentar al grupo por medio de rotafolio o presentaciones digitales.

Realizar la práctica No. 14 Aísla cepas para la producción de aminoácidos por métodos de fermentación.

Realizar la práctica No. 15 Aísla la cepa de levadura por digestión y analiza sus componentes.

Describir los niveles de estudio de la cinética de fermentación, las reacciones que se presentan en sus diferentes etapas y los productos que se pueden obtener mediante estos métodos, exponer sus comentarios ante grupo.

Intervenir ejemplificando, cuestionando o aportando ideas que enriquezcan la exposición que el docente lleve a cabo sobre el crecimiento exponencial de microrganismos.

Aplicar los métodos y formulas en ejercicios planteados por el docente para determinar la presencia de microrganismos.

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Elaborar esquemas o dibujos que interpreten las formas de reproducción de microrganismos, indicando tipo de microrganismo y sus etapas.

Representar gráficamente la expresión de fórmulas que reflejen el crecimiento de microrganismo, destacando las etapas que se presentan.

Prestar atención a la presentación que realice el docente sobre las técnicas que permiten calcular la cinética de fermentación en los procesos microbiológicos, posteriormente determina o elabora una listado del tipo de producto que se habrá de obtener mediante estas técnicas.

Realizar una investigación documental sobre el crecimiento de microrganismos y explicar ante el grupo cómo se forma una curva de crecimiento en base a los resultados que se presentan en un proceso microbiológico.

Realizar la practica No. 16 Elabora la curva de crecimiento para el estudio de un microrganismo por espectrofotometría.

Realizar ejercicios teórico-prácticos para medir el crecimiento microbiano en un proceso microbiológico, realiza la interpretación gráfica, las fórmulas y cálculos matemáticos empleados.

Participar en un debate donde el tema sea los factores que afectan el crecimiento de los microrganismos en un proceso microbiológico, elaborar tus propias conclusiones.

Realizar la práctica No. 17 Analiza el efecto de la temperatura sobre el crecimiento microbiano por recuento.

Realizar visitas a empresas para complementar y reforzar los conocimientos adquiridos en el aula y laboratorio.

Participar en un ejercicio guiado por el docente sobre las actividades desarrolladas por el grupo donde cada integrante valora lo que le ha parecido más interesante de sus compañeros de acuerdo a los experimentos realizados y opinar reflexivamente sobre su desempeño, actitud y actuación dentro del mismo.

Realizar la actividad de evaluación 2.1.1. Selecciona un microrganismo que cuente con las características específicas para la obtención de un producto biológico propuesto; considerando el material incluido en el apartado 9 “Materiales para el desarrollo de actividades de evaluación”.

Discutir en grupo el concepto de fermentación industrial y su aplicación en la obtención de

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productos alimenticios y de medicamentos.

Realizar dibujos de los tipos de reactores microbiológicos utilizados en las fermentaciones describiendo sus características físicas, función y capacidad de almacenamiento.

Realizar un esquema de diferentes tipos de fermentadores, señalando sus partes principales, la función de cada una de ellas y los criterios que se toman para definir el volumen del mismo.

Describir mediante hojas de rotafolio, cuales son los reactores para cultivo en superficie y cultivo sumergido, su interpretación gráfica y los productos que se pueden obtener por estos métodos.

Realizar una investigación documental que indique la importancia de la técnica de esterilización, los métodos existentes y su aplicación a nivel industrial y en el laboratorio.

Elaborar un resumen que describa los microrganismos empleados en los procesos de fermentación alcohólica y la producción de proteína unicelular a nivel industrial, indicar cuáles son los sustratos empleados y su formulación, presentarlo ante grupo mediante cuadro comparativo y hojas de rotafolio.

Describir la bioquímica de fermentación que se presenta en la obtención de bebidas alcohólicas y proteína unicelular, interpretarla con reacciones y graficas del crecimiento bacteriano.

Realizar una investigación documental sobre la producción industrial de alcohol, ácidos orgánicos y proteína unicelular, con la información recabada, elabora los diagramas de flujo de los procesos de cada uno y preséntalos en grupo.

Realizar la práctica No.18 Elabora cerveza en el laboratorio por fermentación alcohólica

Realizar la práctica No.19 Elabora yogur en el laboratorio por fermentación láctica

Realizar la actividad No. 2 Comprueba la acción de los microrganismos en la elaboración de yogurt.

Elaborar y contesta cuestionarios sobre los aspectos más relevantes de los procesos de obtención de alcohol, aminoácidos y proteína unicelular, compara sus resultados con los de sus compañeros.

Elaborar un resumen que describa los microrganismos empleados en los procesos de obtención de enzimas, antibióticos y productos lácteos a nivel industrial, indicar cuáles son

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los sustratos empleados y su formulación, presentarlo ante grupo mediante cuadro comparativo y hojas de rotafolio.

Describir la bioquímica de fermentación que se realiza en la obtención de enzimas, antibióticos y productos lácteos, interpretarla con reacciones y graficas del crecimiento bacteriano.

Realizar una investigación documental sobre la producción industrial de enzimas, antibióticos y productos lácteos con la información recabada, elabora los diagramas de flujo de los procesos de cada uno y preséntalos ante el grupo.

Elaborar y contesta cuestionarios sobre los aspectos más relevantes de los procesos de obtención de enzimas, antibióticos y productos lácteos, compara sus resultados con los de sus compañeros.

Realizar la práctica No. 20 Realiza el análisis microbiológico de productos lácteos mediante técnicas analíticas

Evaluar el desempeño, actitud y las habilidades de los compañeros de equipo al finalizar las prácticas previstas para esta actividad de evaluación.

Asistir a las visitas que se realicen a empresas para complementar y reforzar los conocimientos adquiridos en el aula y laboratorio.

Realizar la actividad de evaluación 2.2.1. Obtiene un producto de origen biológico con calidad e inocuidad; considerando el material incluido en el apartado 9 “Materiales para el desarrollo de actividades de evaluación”.

Participar en el cierre grupal de la unidad, planteando preguntas o dudas y elaborando una recopilación de los resultados de aprendizaje obtenidos.

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6. Prácticas/Ejercicios /Problemas/Actividades

Unidad de Aprendizaje: Preparación de microrganismos para los procesos microbiológicos industriales Número: 1

Práctica: Maneja el microscopio y autoclave de acuerdo a su instructivo de operación Número: 1

Propósito de la práctica: Manejar el microscopio compuesto y la autoclave mediante los procedimientos establecidos para identificar y cuantificar microrganismos así como la esterilización de las muestras y los materiales a emplear en los análisis y procesos microbiológicos.

Escenario: Laboratorio Duración 2 horas

Materiales, Herramientas, Instrumental, Maquinaria y Equipo

Desempeños

Agua destilada

Microscopio compuesto

Aceite de inmersión

Papel especial para limpieza

Muestras preparadas de microrganismos

Autoclave

Material diverso para esterilizar

Aplica las medidas de seguridad e higiene en el desarrollo de la práctica.

Prepara el equipo a emplear, los instrumentos y los materiales en las mesas de trabajo.

Procedimiento:

Recomendaciones para el cuidado del microscopio

Cuando se transporte el microscopio, se debe tomar el brazo con una mano y colocar la otra debajo de la base para sostenerlo manteniendo el microscopio de en posición vertical. En el caso de que la fuente de la luz no sea del tipo integrado, llevar primero el microscopio a la mesa del laboratorio y después regresar por la fuente de la luz no transportar ambas partes al mismo tiempo.

Mantener el microscopio por lo menos 15 cm dentro de la mesa de trabajo.

No manejar las lentes con los dedos, el sudor contiene ácidos grasosos y otras substancias que pueden opacarla. Para limpiar el sistema óptico utilizar papel para limpieza de lentes.

Limpia las lentes del microscopio antes y después de utilizarlo en clases.

No jugar con ningún componente del instrumento. Si el microscopio no parece funcionar en forma adecuada, notificarlo inmediatamente al profesor.

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No permitir que el reactivo químico entre en contacto con parte alguna del instrumento.

Usar papel especial para limpieza de lentes, cuando sea necesario quitar del microscopio aceite de inmersión.

Antes de guardar el microscopio, asegurarse siempre que el objetivo seco débil este en la posición de trabajo, es decir, en línea con el tubo del cuerpo.

Al desconectar el enchufe de la fuente de luz, no tirar del alambre, se debe sujetar firmemente el enchufe y luego desconectarlo de la toma.

Si el microscopio tiene una cubierta, asegurarse que cubra por completo el instrumento.

Manejo del microscopio

Limpia todos los lentes con papel especial.

Coloca el objetivo seco débil en posición de bajo del tubo del cuerpo del microscopio, sentirá un chasquido cuando haya quedado bien colocado.

Conecta la fuente de luz y encenderla.

Coloca una preparación sobre la platina del microscopio y asegurarse con las pinzas o sujetadores correspondientes.

Acomoda la porción de la preparación que se va a examinar en la apertura central de la platina.

Empleando el tornillo macrométrico, elevar la platina astas el tope, si el microscopio no tiene tope, observar lateralmente parta evitar que la lente entre en contacto directo la preparación.

Usando el objetivo seco débil (10 X), localizar el objetivo a observar con el tornillo macrométrico, cuando sea parcialmente visible, enfocar con el tornillo micrométrico.

Ajusta la fuente de luz, cerrar el diagrama y mover el tornillo del condensador hasta que el tornillo del diagrama se observe con mayor nitidez posible.

Girando el revólver colocar el objetivo seco fuerte (40 X) enfocar ligeramente con el tornillo micrométrico.

Dando un semigiro con el revólver colocar una gota de aceite de inmersión sobre la preparación. En seguida girar el revólver hasta que el objetivo de inmersión quede en su lugar.

Incrementa la iluminación abriendo el diagrama o elevando el condensador, al mismo tiempo enfocar con el tornillo micrométrico.

Anota el nombre de la preparación observada y el objetivo del lente utilizado

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Indicaciones para el uso correcto del autoclave

Conecta y espera a que se calienta el agua contenida en la autoclave.

Una vez logrado lo anterior se procede a depositar el material a esterilizar.

Se tapa la autoclave permitiendo que se salga todo el aire contenido a través de la válvula de seguridad, lo anterior se aprecia por la salida de un flujo continuo de vapor, posterior mente a la anterior se cierra la válvula y la tapa con todas las llaves que hay a su alrededor, se observa el indicador de presión y temperatura que se encuentra en la tapa y se deja llegar este a 15 libras o 110 °C o bien el No.1 debiendo permanecer así durante 15 – 20 minutos.

Pasado este tiempo se procede a desconectar la autoclave dejando que se enfrié observando el indicador que deberá descender totalmente.

Abre las llaves de la tapa y posteriormente la tapa de la autoclave.

Una vez abierta debe esperarse un tiempo para dejar enfriar el material contenido en la misma, y poderlo tomar para usarlo o conservarlo ya sea en refrigeración o bien a temperatura ambiente el material esterilizado no debe quedar expuesto al aire si no se encuentra cubierto con papel el cual no debe estar húmedo

Elabora un reporte de la práctica que incluya: presentación, esquemas y microrganismos observados, observaciones y conclusiones.

Uso obligatorio de guantes de seguridad

Uso obligatorio de protección ocular

Separa los residuos recuperables y dispone de los desechos biológicos contaminados y materiales utilizados peligrosos para el medio ambiente.

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Práctica: Prepara frotis por extensión de la muestra en portaobjetos Número: 2

Propósito de la práctica: Aplicar diferentes técnicas de preparación de frotis, mediante los procedimientos establecidos para la identificación morfología de los microrganismos usados en los procesos microbiológicos.



Desempeños

Agua destilada

Porta y cubreobjetos

Asa de cultivo

Mechero

Cera

Microscopio




Procedimiento

Preparación del frotis

Lava y seca varios portaobjetos y cubreobjetos.

Pasa por un mechero para remover la grasa presente, al usar un portaobjetos (los portaobjetos deben tomarse por las orillas para evitar el contacto con la grasa de las manos)

Coloca una gota de agua destilada en el centro del portaobjetos con el asa de cultivo previamente flameada.

Flamea el asa nuevamente y transferir a la gota de agua, una asada de los microrganismos a ser observados. Con un movimiento circular suave, emulsificar los microrganismos en la gota de agua; la gota se extiende a una capa delgada que debe abarcar un área aproximadamente igual al tamaño de cubreobjetos.

Seca al aire la capa y posteriormente fijar los microrganismos flameando el portaobjetos tres veces consecutivas.

Observa al microscopio el frotis preparado.

Preparación entre portaobjetos y cubreobjetos

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Prepara un frotis siguiendo los tres primeros pasos del proceso anterior

Coloca posteriormente un cubreobjetos, previamente flameado sobre la suspensión y observa al microscopio haciendo anotaciones.

Preparación de gota pendiente

Prepara un frotis sobre un cubreobjetos, donde se encuentra la preparación

Voltea el portaobjetos, de tal modo que el cubreobjetos quede en la parte superior, la gota pendiente queda en la excavación.

Observa al microscopio el movimiento de las bacterias.

Elabora un reporte de la práctica que incluya: una presentación, esquemas y microrganismos observados, observaciones y conclusiones.




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Práctica: Identifica las características generales de los protistas por observación en microscopio Número: 3

Propósito de la práctica: Identificar las diferentes formas y estructuras de protozoarios, algas, bacterias y virus de una muestra natural para determinar su composición en forma y estructura celular.



Desempeños

Cubreobjetos

Portaobjetos

Muestras biológicas

Agua con semillas de trigo contaminadas con moho

Muestra de agua con Protozoaríos, algas, cepas de coco y bacilos preparadas por el laboratorio.

Colorante azul de metileno

Microscopio

Aguja de disección

Asa y porta asa

Mechero



Procedimiento:

Toma una muestra de cada uno de los especímenes a observar colocándolos en un portaobjetos y cubriéndolo con un cubreobjetos.

Observa al microscopio primero a seco débil y hacer el esquema si es que con este aumento se logra distinguir adecuadamente las estructuras y características del espécimen.

Observa al microscopio al seco fuerte, si con el objetivo anterior no se obtiene el detalle deseado, observa y esquematiza nuevamente.

Observa al microscopio en objetivo de inmersión, si nuevamente no se logra lo anterior y se esquematiza nuevamente;

Realiza esquemas de los tres casos observados, poniendo en cada caso el aumento con el cual se logra y señala los nombres de las estructuras (auxiliarse con macrofotografías de libros).

Realiza la observación de las bacterias primeramente, fija la preparación mediante un calentamiento suave y posteriormente tiñe con azul de metileno y deja actuar al colorante durante tres minutos, lavando y deja escurrir para observarlo posteriormente tal y como se describe en los primeros 4 pasos.

Realiza un reporte de la práctica con esquemas.

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Elabora un reporte de la práctica que incluya: una presentación, esquemas observados observaciones y conclusiones.

Precaución, sustancia




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Práctica: Identifica bacterias por observación en microscopio Número: 4

Propósito de la práctica: Identificar diferentes tipos de bacterias o microrganismos mediante el uso del microscopio para su incorporación en las fermentaciones químicas y elaboración de productos.



Desempeños

Fenol.

Asa de siembra.

Cultivos de bacterias.

Mecheros de Bunsen.

Portaobjetos.

Cubreobjetos.

Aceite de inmersión.

Franela.

Microscopio óptico.


Forma equipos para la realización de la práctica.


Esteriliza el asa antes y después de usarse.

Limpia la mesa de laboratorio con un trozo de algodón empapado con solución de fenol al 1%.

Procedimiento:

Coloca los mecheros a los lados de las cajas de petri en el cultivo de bacterias.

Abre una caja de petri cerca de la flama y realiza un raspado en el asa de siembra.

Coloca la muestra en un portaobjetos

Realiza un frotis en el cubreobjetos y lo cubre.

Observa al microscopio en el objeto seco débil y enfoca.

Dibuja lo observado en su cuaderno de notas

Observa al microscopio con el objeto seco fuerte y enfoca


Coloca una gota de aceite de inmersión y enfocar con el objeto.

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Realiza los pasos anteriores con todas las muestras de cultivos de las que dispones.

Limpia la mesa con solución de fenol al 1% al terminar la práctica.

Elabora un reporte de la práctica que incluya: presentación, fundamento teórico, observaciones y conclusiones.

Precaución, sustancia tóxica




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Práctica: Realiza la tinción de hongos, bacterias y levaduras con colorantes para su observación al microscopio

Número: 5

Propósito de la práctica: Identificar diferentes tipos de microrganismos mediante técnicas de tinción para su uso en los procesos microbiológicos.



Desempeños

Portaobjetos

Cubreobjetos

Mechero de Bunsen

Asa de siembra

Pipetas


Parafina

Azul de metileno

Colorante de safranina

Cristal violeta

Cultivo de bacterias

Levaduras

Pulque

Frutas en descomposición

Microscopio óptico






Procedimiento


Abre una caja de petri cerca de la flama y realiza un raspado en el asa.

Coloca la muestra en un portaobjetos, se hará por triplicado.

Realiza un frotis en el cubreobjetos y lo cubre.

Agrega 3 gotas de colorante de safranina, por 5 minutos a uno de los frotis.

Agrega 3 gotas de colorante de azul de metileno después de 2 minutos.

Agrega 3 gotas de colorante de cristal de violeta después de 1 minuto.

Elimina el exceso de colorante mediante un lavado con un chorro muy fino y suave de agua en cada frotis para eliminar el exceso de colorante.

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Seca cada preparación a temperatura ambiente y lo coloca en un cubre objetos.

Observa al microscopio óptico con el objetivo seco débil y seco fuerte y aceite de inmersión y dibuja lo observado.

Realizar los mismos pasos para observar microrganismos en muestras de levadura, pulque y frutas en descomposición.


Elabora un reporte de la práctica que incluya tipo de microrganismos, observaciones y conclusiones.





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Práctica: Aplica técnicas de tinción diferenciales por medio de Tinción de Gram Número: 6

Propósito de la práctica: Identificar y diferenciará las bacterias patógenas de las no patógenas mediante la Tinción de Gram para su uso en los procesos microbiológicos y en la obtención de alimentos de origen biológico.



Desempeños

Portaobjetos

Cubreobjetos

Mecheros

Asa de siembra

Gradilla


Solución de cristal violeta

Lugol

Alcohol

Acetona

Sofranina

Cultivos de 18 a 24 hrs. de: − Bacilus subtilis − Escherichia coli − Micrococus luteus − Serratia marcescens − Staphylococcus aureus − Proteus vulgaris − Lactobacillus sp − Enterobacter sp − Pulque − Fruta en descomposición

Microscopio óptico






Procedimiento:


Abre el cultivo de bacillus subtilis cerca de la flama y realizar un raspado con el asa de siembra.

Coloca la muestra en un portaobjetos.

Realiza un frotis en el cubreobjetos.

Agrega 3 gotas de colorante de cristal de violeta después de 1 minuto moviendo suavemente el portaobjetos para favorecer el contacto del colorante y escurre el colorante.

Lava con agua destilada.

Agrega unas gotas de safranina y la dejar reposar por un minuto.

Lava con agua destilada.

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Agrega unas gotas de safranina y la dejar reposar por un minuto.

Escurre el colorante y lavar con agua destilada.

Coloca un cubre objeto.

Observa la preparación con objetivo de inmersión.

Realiza anotaciones de lo observado.

Realiza los mismos pasos con todos los cultivos.


Elabora un reporte de la práctica que incluya tipo de microrganismos, observaciones y conclusiones.





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Práctica: Identifica la estructura típica de una bacteria por medio de tinciones selectivas Número: 7

Propósito de la práctica: Identificar algunas estructuras bacterianas típicas por medio de tinciones selectivas para diferenciar de entre ellas sus partes y aplicaciones en los procesos microbiológicos.



Desempeños

Porta y cubre objetos

Asa bacteriológica

Pipeta

Colorantes

Colorante de Wright

Cristal violeta

Lugol

Alcohol – acetona

Safranina

Verde de malaquita

Microscopio

Mechero Puente y charola para tensión






Procedimiento:

Tinción de capsula

Método de Duquid.

Coloca con asa gota pequeña de tinta China en la superficie de un portaobjetos limpio, a un lado coloca una gota de agua del mismo tamaño, toma una asada de su muestra y suspéndala en la gota de agua, mezclándola con la tinta china.

Coloca sobre esta suspensión un cubreobjetos, teniendo cuidado de no dejar burbujas de aire, aplique una presión suave secando el exceso de líquido con una toalla de papel.

Observa su preparación al microscopio, la cápsula se observa como una zona brillante alrededor de la bacteria en in campo oscuro.

Variable al método de Duquid

Toma una asada de tinta china y una de muestra se mezclan para formar una emulsión uniforme.

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Extiende la muestra con otro portaobjetos colocando a 45°, sobre el primero coloca la extensión, se deja secar al aire y se adiciona metanol como fijador y cuando este seca se tiñe con cristal violeta.

Observa su preparación al microscopio, los microrganismos se ven de color azul con la cápsula transparente en un fondo oscuro.

Tinción de wright

Suspende una pequeña cantidad de muestra en una gota de agua colocada sobre el portaobjetos se mezcla perfectamente, se extiende con el asa y se deja secar al aire.

Adiciona unas gotas del colorante wrigth sobre el frotis y se deja secar.

Lava con agua abundante pero a baja presión para evitar el lavado de la muestra, se seca el exceso de agua.

Observa su preparación al microscopio, con esta técnica las cápsulas se tiñen de rosa y las bacterias de azul.

Tinción de esporas

Técnica de Gram

Hacer un frotis del microorganismo y fijarlo al calor, se somete después este frotis a la técnica de Gram común.

Observa al microscopio en donde las bacterias aparecen teñidas y las esporas solo se tiñen, en el contorno.

Técnica de Shiaffer y Fulton.

Realiza un frotis en forma usual fijando al mechero.

Cubre el frotis con verde de malaquita durante un minuto después de calentar a emisión de vapores durante 5 minutos teniendo precaución de que el colorante no hierva ni seque.

Lava la preparación con agua.

Cubre la preparación con safraniana y se deja durante 30 segundos después se lava con agua.

Seca y observa al microscopio, las bacterias se ven de color rojo y las esporas de color verde

Elaborar reporte de la práctica haciendo los esquemas de todas sus preparaciones indicando

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el nombre de cada una de ellas.





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Nombre del Alumno: Grupo:

Unidad de Aprendizaje 1: Preparación de microrganismos para los procesos microbiológicos industriales

Resultado de Aprendizaje: 1.2 Acondiciona los microrganismos mediante técnicas específicas para ser empleados en los procesos microbiológicos industriales.

Ejercicio No. 1: Lineamientos para el muestreo y transporte de alimentos durante su análisis microbiológico. (NMX-F-285-1977)

Instrucciones. Realiza la siguiente lectura con atención y elabora un diagrama del procedimiento que se debe atender para el muestreo y transporte de alimentos durante el análisis microbiológico Marco teórico: Debemos entender que para cada alimento o grupo de alimento particular existen diferentes directrices que permiten obtener muestras útiles para el análisis. Pueden establecerse sin embargo, las siguientes reglas generales.

Utilizar recipientes, bolsas y material, para la recolección. Para esto, hacer uso, según el caso, de autoclave a 121° durante 20 minutos, o de horno a 180° durante 30 minutos (o 170° durante 1 hora). No basta esterilizar el material; es necesario cubrirlo con papel de aluminio o papel de estraza resistente, para protegerlo de contaminación ulterior durante su manejo.

Al colectar la muestra, evitar contaminaciones del ambiente tales como polvo, tierra, saliva, descargas nasofaríngeas o de cualquier otra naturaleza. El recipiente o bolsa se debe abrir justamente lo necesario para introducir la muestra, y hecho esto volver a cubrirse o cerrarse, tanto con su tapa como con el papel que la protege. No es requisito el empleo de mechero de alcohol durante la maniobra.

Es esencial que el recipiente y los dispositivos empleados para extraer la muestra no sólo se encuentren estériles, sino además limpios, libres de substancias que pudieran afectar la viabilidad de los microrganismos.

Es recomendable identificar claramente mediante rótulo o etiqueta (indelebles) el recipiente, antes de colocar en él la muestra, a fin de evitar confusiones si se ha de obtener más de una.

En el informe o acta anexa se debe consignar toda la información pertinente que pudiera afectar la prueba o el significado del resultado, a fin de que el laboratorio lo tome en consideración al desarrollar el análisis e interpretar su resultado. Por ejemplo: la posibilidad de la presencia de algún conservador en el alimento, un olor o color desiguales, sus condiciones de conservación, temperatura, protección contra contaminantes, etc.

Si se trata de alimentos envasados, colectar las unidades requeridas de acuerdo con el propósito del análisis. Tomarlas al azar si se encuentran por ejemplo en cajas o situadas en estanterías; si es el caso de un producto de fabricación, obtener muestras sucesivas distribuidas a lo largo del período en el que se realice la inspección.

Si se trata de alimentos a granel, o de recipientes o piezas grandes de las que hay que retirar una porción, obtenerla de diferentes localidades. Si se estima de interés, conviene obtener muestras independientes que pudieran poner de manifiesto problemas distintos (no mezclar en el mismo recipiente por ejemplo, porciones que muestren alguna alteración, aún pequeña, con porciones regulares).

Transportar las muestras de alimentos perecederos o semi-imperecederos al laboratorio bajo refrigeración (2 a 8.5°C), o en congelación si se trata de alimentos congelados. Utilizar para el efecto hielo de agua o hielo seco respectivamente.

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Evitar que el agua de deshielo alcance la tapa de los envases o que de alguna manera contamine a los alimentos muestreados. Es recomendable el empleo de hielo contenido en bolsas de plástico impermeables para evitar estos inconvenientes, lo que además, facilita el acomodamiento de los diferentes envases dentro de la caja de transporte.

Toda medida que se tome para acortar el tiempo comprendido entre la recolección de las muestras y su entrega al laboratorio, contribuirá notoriamente a evitar falseamientos en la imagen microbiológica de un alimento al análisis. Los cambios que puede sufrir durante su transporte son tanto cualitativos como cuantitativos: pueden encontrarse cifras mayores a las originalmente presentes como resultado de la proliferación de un grupo particular de microorganismo, o menores si hay un efecto antagónico de otro grupo de gérmenes. Las bacterias patógenas pueden incluso morir, o llegar a encontrarse en tal desventaja con el resto de la flora, que no sea posible ponerlos de manifiesto con las técnicas de análisis utilizadas.

Es evidente que cada situación plantea problemas específicos en el muestreo. Se debe estimar sin embargo que la consideración de estas recomendaciones y las que se señalan para cada alimento, permitirán al estudiante seguir una metodología adecuada a los objetivos del muestreo para su control.

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Práctica: Prepara medios de cultivo, soluciones y diluciones de acuerdo al tipo de organismo a procesar

Número: 8

Propósito de la práctica: Formular y preparar medios de cultivo, soluciones y diluciones mediante los procedimientos y técnicas establecidas para emplearlos en la identificación de microrganismos presentes en un alimento mediante un análisis microbiológico.

Escenario: Laboratorio. Duración 4 horas


Desempeños

100 g de una muestra sólida de alimento contaminado

50 ml de una muestra de agua contaminada

Medio de cultivo, soluciones y colorantes

Agar nutritivo

Extracto de carne

Agar

Agua destila

Agua peptona

HCl 0.1N

NaOH 1.1N

10 Cajas Petri

8 Pipetas de 1 ml

1 Probeta

1 Matraz Erlenmeyer de 500 ml


Vaso de precipitados de 500 ml

3 Tubos de dilución con rosca

3 Frascos de dilución

1 Mechero



Prepara el equipo a emplear, los instrumentos, las herramientas y los materiales en las mesas de trabajo.

Procedimiento:

Preparación del agar nutritivo

Pesa 0.6 gr, de extracto de carne, 1.0 gr, de peptona y 3.0 grs. de agar

Añade los componentes a un matraz Erlenmeyer de 500 ml, conteniendo 200 ml, de agua destilada

Ajusta el pH a 7.2 con NaOH 0.1N (o HCK 0.1N)

Calienta hasta ebullición para conseguir la disolución completa; tan pronto como la ebullición empiece, debe retirarse el matraz del fuego para evitar que la solución se derrame.

Deja enfriar el agar antes de que solidifique

Protege la boca del matraz con un tapón de algodón y éste protégelo de la humedad del autoclave con papel aluminio.

Esteriliza en autoclave durante 20 minutos a 121°C.

Preparación de agua peptonada

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Papel Toalla

Papel aluminio

Algodón

Balanza

Estufa de incubación

Potenciómetro

Pesa 0.6 g de peptona y disuélvela en 600 ml, de agua destilada, contenida en un matraz Erlenmeyer de 1000 ml.

Ajusta el pH a 7

Protege la boca del matraz con un tapón de algodón y éste protégelo de la humedad de la autoclave con papel aluminio.

Esteriliza en autoclave a 121°C durante 20 minutos.

Preparación de las diluciones

Muestra sólida de alimento contaminado

Pesa 100 gramos de muestra y disolverla en 150 ml, de agua estéril.

Deja reposar la mezcla el tiempo suficiente para que la muestra que no se disolvió se precipite,

Con una pipeta tomar 1 ml, de la mezcla muestra-agua y verterlo en un tubo de dilución con rosca, conteniendo 1 ml. de agua peptonada.

Tapa el tubo y agítalo 25 veces para que la mezcla sea uniforme. Esta es la dilución 10-1

Transfiere con otra pipeta 1 ml, de la dilución 10-1 a un tubo contenido 9 ml, de agua peptonada.

Tapa el tubo y agítalo 25 veces para que la mezcla sea uniforme. Esta es la dilución 10-2

Preparación de agua

Transfiere con una pipeta 1 ml, de la dilución, conteniendo 99 ml de agua peptonada

Tapa el frasco y agítalo 25 veces para que la mezcla sea uniforme. Esta es una dilución 10-2

Transfiere con otra pipeta 1 ml, de la dilución a un frasco de dilución, conteniendo 99 ml, de agua.

Tapa el frasco y agitarlo 25 veces. Esta es la dilución 10-4

Transfiere con una tercera pipeta 1 ml, de la dilución 10-4 a un frasco de dilución conteniendo 99 ml, de agua peptonada.

Tapa el frasco y agitar 25 veces. Esta es la dilución 10-6

Nota: procediendo del mismo modo pueden obtenerse diluciones más altas

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Preparación de las placas

Aire

Vierte en cada una de dos cajas petri de 12 a 15 ml, de agar nutritivo y dejar que solidifique.

Expón las cajas al aire durante 15 minutos (alejadas del mechero).

Incuba las cajas invertidas a 37°C y examínalas a las 24 y a las 48 horas de incubación.

Reporta las observaciones.

Muestra de alimento

Vierte de 10 a 15 ml, de agar fundido y templado en cada caja petri y deja que solidifique.

Coloca 0.2 ml, de la dilución 10-2 de la muestra de alimento en el centro de la superficie del agar.

Con un extensor de vidrio previamente esterilizado con alcohol se extiende la muestra en forma suave y homogénea haciendo girar la varilla.

Realiza el mismo procedimiento con la dilución 10-3

Agua

Vierte de 10 a 15 ml, de agar fundido y templado en cada caja de petri y deja que solidifique.

Coloca 0.2 ml, de la dilución 10-4 de la muestra de agua contaminada en el centro de la superficie del agar.

Con un extensor de vidrio esterilizado, se extiende la muestra en forma homogénea.

Realiza el mismo procedimiento con la dilución 10-6. Nota: Las cajas de petri se incuban a 37°C y se examinan a las 24 y las 48 horas.

Elabora un reporte de la práctica que incluya: presentación, fundamento teórico, diagramas, observaciones y conclusiones.





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Práctica: Aísla y siembra microrganismos por la técnica de estría e inclusión Número: 9

Propósito de la práctica: Realizar el aislamiento de una bacteria mediante siembra de microrganismos y el procedimiento establecido para observar el desarrollo de su crecimiento en una cepa bacteriana.



Desempeños

Cepas de:

Eterobacterias

Staphylococcuss

Cándida Albicans

Placas de:

Gelosa simple

S- 110

Sabouraud

Tubos con:

Caldo nutritivo

Gelosa simple

18 Cajas de petri estériles. 16 Tubos de 100 X 10 mm estériles.

Asa y porta asa

6 Portaobjetos


Fenol al 10%

Algodón

Lápiz marcador 6 Mecheros

6 Microscopios óptico

6 Gradillas



Prepara el equipo a emplear, los instrumentos de medición, las herramientas y los materiales en las mesas de trabajo.

Procedimiento de siembra:

Flamea el asa hasta el rojo, dejarla enfriar y tomar una pequeña asada de cada una de las cepas, repetir este pasó para hacer frotis de todas las cepas y aplicar la técnica de Gram para su identificación. Nota: Puede colocar todas las muestras sobre un mismo portaobjetos para hacer una sola tinción, observarlas al microscopio con el objetivo de inmersión hacer sus esquemas correspondientes.

Toma el asa e incinera hasta el rojo dejando enfriar sin salirse de la zona de esterilidad del mechero y con el dedo meñique de la mano derecha destapar el tubo de donde se va a tomar la muestra o bien si se va a tomar esta de una caja con la mano izquierda y con los dedos índice y pulgar se levanta la tapa de la misma, se toma una asada de la muestra previamente seleccionada, se deja la caja en la mesa y con la misma mano se toma la nueva caja, para hacer la siembra de la muestra la cual se marca con el nombre de las bacterias que se va a resembrar, la fecha y el equipo.

Deposita la asada en un solo punto y se procede a extenderla siguiendo un movimiento de zig zag hasta poco menos de la mitad de la caja.

Incinera el asa y deja enfriar procediendo a hacer nuevas estrías girando la caja para cubrir una nueva superficie, se toca ligeramente una parte de las estrías cubriendo una

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parte del resto de la caja.

Incinerar nuevamente el asa, se gira la caja y se toca una pequeña porción de las estrías extendiendo el asa hasta cubrir la cuarta parte restante de la caja.

Incubar a 37 °C durante 24 - 48 Horas y si su procedimiento fue correcto deberá obtener y observarse colonias aisladas de bacterias en el último cuarto de la caja sembrado.

Siembra en tubo con medio líquido.

Toma la asada a partir de una muestra o medio de cultivo en condiciones de esterilidad (previa incineración de asa y su enfriamiento en la zona de seguridad) y posteriormente inducirla en el medio de cultivo en el cual se toma con la mano izquierda y se destapa con el dedo meñique de la mano derecha donde se encuentra el asa con el inoculo.

Siembra en medio sólido por picadura.

Desdoblar el asa y dejarla como una aguja, así se toma el inoculo y se siembra por picadura introduciendo el asa al interior del medio y describiendo una estría sobre la superficie.






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Práctica: Siembra de bacterias en medios de cultivo preparados en tubos 10

Propósito de la práctica: Realizar la siembra de microrganismos en medios de cultivo mediante procedimientos específicos y propondrá condiciones óptimas de desarrollo de los microrganismos para su identificación y uso en los procesos microbiológicos.



Desempeños

Mechero bunsen o similar

Asa de siembra

Tubos con cultivos bacterianos crecidos de: Escherichia coli, Salmonella enteritidis, Staphylococcus aureus.

1 Tubo con medio líquido estéril (caldo común): Luria Bertani (LB)

2 Tubos con medio sólido estéril (agar inclinado): TSI

4 placas LB agar

1 placa agar McConkey

1 placa agar Sabouraud.




Procedimiento:

Preparación de medios

Prepara un medio sólido en placa.

Pesa la cantidad de medio (si el preparado contiene agar debemos añadirlo a una concentración de 15 g/l.) y rehidratarlo con agua destilada en una botella.

Esteriliza la botella sin cerrar totalmente el tapón de rosca.

Saca del autoclave la botella, enroscar del todo el tapón e introducir en un baño a 40ºC por 30 minutos.

Distribuye el medio en las placas de Petri que están estériles dentro de una campana de flujo laminar o en las proximidades del mechero, flameando bien la boca de la botella para evitar las contaminaciones.

Deja que el medio solidifique.

Prepara un medio sólido en tubo (slant).

Pesa el medio que contenga agar y rehidrata con agua destilada en un matraz.

Funde el medio en un horno de microondas o en una placa caliente. El medio debe hervir hasta que se vuelva transparente.

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Distribuye rápidamente el medio en los tubos antes de que comience a solidificar. Para ello se empleará una pipeta y los tubos no se llenarán más de un tercio de su volumen, esterilízalo por 30 minutos.

Saca de la autoclave e inclina los tubos sobre el estante para obtener tubos con medio en Slant.

Prepara un medio líquido en tubo (caldo).

Pesa y rehidrata el medio.

Distribuye con una pipeta en los tubos (sin llenarlos más de 1/3 de su volumen), y llevarlo a esterilizar por 30 minutos.

Saca de la autoclave y dejar enfriar. Nota: Todos los medios se guardan en congelador a 4ºC.

Siembra (Marcar el material que está utilizando con el nombre del grupo).

Realizar la siembra, como sigue:

Siembra en medio líquido.

o Introduce el asa de siembra en el tubo con cultivo crecido y se toma un inóculo que se lleva al tubo estéril con medio líquido (agitándola en el seno del medio), tomando las precauciones mencionadas anteriormente.

Siembra en placa

o Divide la placa en tres partes, sembrar en cada tercio el inóculo tomado de los cultivos crecidos.

o Introduce el asa de siembra en el tubo con cultivo crecido y se toma una gota de inóculo que se extiende sobre el agar de la placa deslizando el asa suavemente por su superficie en zig-zag.

Siembra en agar inclinado

o Introduce el asa de siembra en el tubo con cultivo crecido y se toma un inóculo que se extiende sobre el agar inclinado deslizando el asa suavemente por su superficie en zig-zag. En el caso del medio TSI, la siembra se deberá realizar tanto en superficie (aerobios) como en la profundidad del agar (anaerobiosis).

Incubación

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Realiza la incubación de los medios sembrados a 37 °C hasta que haya habido crecimiento bacteriano.

Observación de resultados

Observa a simple vista el color y el borde de las colonias crecidas en el agar

Observa a simple vista el olor y la turbidez del medio

Nota: el olor y la turbidez en algunos casos suelen ser típicos de un determinado tipo de microorganismo y pueden servir de ayuda a la hora de su identificación.

Elabora un reporte de la práctica que incluya: presentación, fundamento teórico, ilustración de la evolución de los microrganismos en cada una de sus fases, observaciones y conclusiones,





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Práctica: Aplica técnicas de cultivo de microrganismos por diferentes técnicas de siembra Número: 11

Propósito de la práctica: Realizar las técnicas empleadas en el cultivo de microrganismos, mediante la aplicación de los procedimientos correspondientes para la identificación y cuantificación de su presencia en la calidad de un alimento mediante un análisis microbiológico.



Desempeños

Microorganismos cultivados en la práctica anterior

Caldo nutritivo

Agar nutritivo

Agua peptonada

2 vasos de precipitados de 125 ml

11 tubos de ensaye

4 cajas de Petri

1 tubo de cultivo

1 baño maría

Soporte y arillo metálico.

Gradilla

Mechero

Algodón

Estufa de cultivo

50 g. de algún alimento contaminado

Agar nutritivo

Agua peptonada

10 cajas de Petri

1 tubo de cultivo

6 Pipetas de 1 ml

1 Pipeta de 10 ml

1 Probeta

1 Extensor de vidrio




Procedimiento:

Técnicas de cultivo en medios líquidos

Siembra de caldo

Vierte la cantidad necesaria de caldo nutritivo en cada uno de tres tubos de ensaye, para ocupar las dos terceras partes de su volumen

Prepara una dilución 10-1 de la muestra de agua contaminada

Transfiere 1 ml, de la misma a cada uno de dos de los tubos, conteniendo caldo nutritivo

Realiza la transferencia aplicando la punta de la pipeta a la pared interna del tubo mientras se escurre el líquido.

Nota: El tercer tubo no se inocula para que posteriormente sea utilizado como testigo

Incuba los tubos a 30°C y examinar a las 24 y a las 48 horas de incubación.

Reporta las observaciones hechas comparando con el tubo testigo.

Técnicas de cultivo en medios sólidos por siembra en superficie

Siembra de agar inclinado

Vierte en dos tubos de ensaye la cantidad necesaria de agar nutritivo, para ocupar las dos terceras partes del tubo

Coloca en posición inclinada y mantener así hasta que el agar solidifique

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1 Asa de cultivo

Marcador de cera

Mechero

Licuadora

Estufa de cultivo

Inocula la superficie del agar con la algún microorganismo cultivado en la práctica anterior, cuando el medio se haya enfriado y solidificado

Realiza la inoculación moviendo suavemente el asa del cultivo sobre la superficie del agar en forma serpenteada, teniendo cuidado de no romper el agar.

Incuba los tubos a 30°C y examinar a las 24 horas y a las 48 horas de incubación

Reporta las observaciones hechas

Siembra por estrías:

Mezcla 50 g. de alimento contaminado con 450 ml, de agua peptonada

Licua la mezcla hasta que llega a ser completamente homogénea. Esta es una dilución de 10-1

Vierte 10 ml de agar fundido y dejar solidificar en cada una de las cuatro cajas de Petri, después llevar a cabo la inoculación aplicando las técnicas siguientes:

A). Técnica 1.

Coloca en cada una de dos de las cajas Petri 1 gota de la dilución 10-1, previamente preparada.

Coloca la gota en cada uno de los extremos de la caja

Extiende con el asa de cultivo previamente flameada, la gota de dilución, llevándola desde el punto A hasta el centro de la caja (Fig. 2A.), con un movimiento continuo sin separar el asa.

Gira la caja 180° (Fig. 2b.), y continuar el movimiento hasta alcanzar el punto final (Fig. 2c.). Este movimiento debe hacerse en forma suave.

Figura 2a Figura 2b Figura 2 c

A A

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B). Técnica 2.

Coloca en cada una de las dos cajas Petri restantes una gota de dilución 10-1 en uno de los extremos de la caja

Flamea el asa y extiende la gota en ese extremo, haciendo dos o tres estrías paralelas.

Flamea nuevamente el asa y realiza dos o tres estrías paralelas entre sí y perpendiculares a las primeras, arrastrando los mismos microrganismos de las estrías anteriores.

Repite el procedimiento dos veces más y en la última llevar las estrías hasta el centro de la caja en forma espiral, este movimiento debe ser suave para no romper la superficie del agar y debe hacerse como se indica en la figura 3.

Nota: Las cuatro cajas usadas en ambas técnicas se incuban a 30°C y se examinan a las 24 y a las 48

hrs. de incubación. Reportar las observaciones hechas, así como las diferencias que se noten entre los

resultados, empleando una técnica y la otra.

Fig. 3 Siembra por estrías. Técnica 2

Siembra por extensión en superficie:

Vierte de 10 a 15 ml, de agar fundido en cada una de dos cajas Petri y esperar hasta que el agar solidifique.

Coloca 0.2 ml, de la dilución que se preparó en 2.B en el centro de la superficie del agar.

Extiende la muestra con un extensor de vidrio doblado, en forma suave y homogénea; haciendo girar la varilla

Incuba las cajas de Petri a 30°C y examinar a las 24 y a las 48 horas de incubación


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Siembra por gota en superficie:

Marca dos segmentos iguales en las cajas de Petri, indicando la dilución a sembrar

Vierte de 10 a 15 ml, de agar fundido en ambas

Espera a que el agar solidifique.

Prepara una dilución 10-2 usando la dilución 10-1 que fue preparada en 2.B,

Pone dos gotas de la dilución 10-1 y dos de la dilución 10-2 en el segmento que les corresponde y se dejan secar

Incuba las cajas a 30°C y examinar a las 24 y 48 horas de incubación.


Técnicas de cultivo en medios sólidos por siembra en profundidad:

Vertido en placa:

En esta parte va a desarrollarse dos técnicas Técnica 1.

Vierte de 12 a 15 ml, de agar fundido en tres tubos de ensaye y dejar enfriar hasta 45°C

Transfiere una asada de los microrganismos cultivados en la práctica anterior al primer tubo. El inóculo y el agar deben quedar perfectamente mezclados.

Transfiere dos asadas de la mezcla inoculo-agar, del primero al segundo tubo y mezclar bien

Transfiere tres asadas de agar del segundo al tercer tubo y mezclar bien.

Vierte el tercer tubo en cada una de dos cajas de Petri, las cuales deben girarse en forma suave para que el agar se distribuya uniformemente

Técnica 2.

Vierte de 12 a 15 ml, de agar fundido enfriar hasta 45°C, se toma 1 ml, de la dilución 10-1 de la muestra de agua contaminada, que se preparó en 1.A, y es transferido al primer tubo.

Mezcla el agar y la muestra perfectamente.

Tomar con otra pipeta, 1 ml, de la mezcla del primer tubo, y transferir al segundo tubo, procurando mezclar bien

Transfiere con otra pipeta, 1 ml, de segundo al tercer tubo y mezclar bien

Vierte el contenido del segundo y tercer tubo en cada una de dos cajas de Petri, las

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cuales deben girarse suavemente para que el agar quede bien distribuido.

Incuba las cajas preparadas en ambas técnicas a 30°C y examinar a las 24 horas y a las 48 horas de incubación

Reporta las observaciones hechas, así como las diferencias que existan entre los resultados empleando una técnica y la otra; en esta parte es muy importante trabajar con rapidez para evitar que el agar se solidifique, al llevar a cabo las inoculaciones.

Siembra en profundidad

Vierte 1 ml, de dilución 10-1 preparada en 2.B en cada una de dos cajas Petri

Vierte posteriormente de 10 a 15 ml, de agar fundido y templado a una temperatura aproximada de 45°C

Mezcla el inoculo con el agar, haciendo girar la caja, de tal manera que se extienda al agar por toda la superficie

Incuba las cajas a 30°C y examina a las 24 horas y a las 48 horas de incubación

Reporta las observaciones hechas.

Elabora un reporte de la práctica que incluya: presentación, fundamento teórico, observaciones y conclusiones.





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Unidad de Aprendizaje: Obtención de productos mediante procesos microbiológicos industriales Número: 2

Práctica: Aplica técnicas de recuento de microrganismos por medio del cuenta colonias Número: 12

Propósito de la práctica: Aplicar técnicas de recuento de microrganismos presentes en una muestra mediante los procedimientos establecidos para determinar la calidad de la muestra de acuerdo a la cantidad presente de microrganismos.



Desempeños

50 grs. de algún alimento contaminado (carne, embutido, leche)

20 ml, de una muestra de agua o leche cruda

Agar nutritivo

Agua peptonada

Etileno (u otro solvente para grasas)

Azul de metileno

6 Cajas de Petri

7 Pipetas de 1 ml

1 Pipeta de 0.1 ml


1 Probeta


1 Asa de cultivo


Licuadora

Microscopio

Estufa de cultivo

Cuenta colonias




Procedimiento:

Recuento microscópico directo

Preparación del frotis teñido

Toma 0.01 ml de la muestra de leche cruda o agua y colócalos en un portaobjetos limpio y previamente flameado

Extiende la muestra en el portaobjetos, cubriendo un área aproximadamente igual a la de un cubreobjetos y dejar que la extensión se seque al aire

Determina el área de ésta una vez que la extensión haya secado, teniendo cuidado de no dañar la preparación.

Desengrasa el frotis con etileno

Tiñe el frotis por tinción simple, utilizando azul de metileno y una vez listo

Observa al microscopio utilizando el objetivo de aceite de inmersión.

Reporta en microrganismos/ ml de muestra

Método de conteo

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Cuenta el número de microrganismos observados en un campo microscópico, repitiendo esto en varios campos.

Calcula el área del objetivo. Esta área corresponde al área de cada campo microscópico (diámetro del objetivo 0.45 pulgadas)

Calcula el número de campos comprendido en el frotis empleado, dividiendo el área del mismo entre el área de un campo microscopio

Multiplica posteriormente el número de bacterias contadas por campo, por el número de campos comprendidos en el frotis empleado

Multiplica por 100 (ya que se utilizó como volumen 0.01 ml) para obtener el número de bacterias por mililitro.

Resumen de la técnica de conteo

Núm. de microorganismos = Microorganismos contados en cada uno por campo No. Total de campos contados

Núm. de campo en = área total del frotis__ el frotis área de cada campo Núm. de microorganismo = No. de microorganismos No. de campo en el en el frotis campo frotis

Núm. de microorganismos = Núm. de microorganismos en el frotis por ml, de muestra mililitros de muestra en el frotis

Recuento de Placa

Siembra en profundidad

Mezcla los 50 gr de alimento contaminado con 450 ml, de agua peptonada

Licua el tiempo suficiente para obtener una mezcla homogénea. Esta es una dilución 10-1

Prepara diluciones 10-3, 10-5 y 10-7 de la muestra, utilizando 99 ml de agua peptonada y 1 ml de la dilución anterior para cada caso.

Vierte 1 ml de cada dilución en cada una de tres cajas de Petri duplicadas (es decir, dos cajas por

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cada dilución).

Añade de 10 a 15 ml de agar a cada una de las cajas Petri y deja solidificar

Incuba a 37°C y examinar a las 24 horas y a las 48 horas, llevando a cabo el conteo de colonias.

Reporta los resultados obtenidos del conteo en colonias/gr de muestra.

Método de conteo

Elige una placa que contenga de 30 a 300 colonias

Coloca bajo el cuadriculado el cuentacolonias.

Cuenta las colonias por centímetro cuadrado, tomando posiciones representativas y distributivas como en la figura del Área cuadriculada de la Cuenta colonias.

Realiza el conteo tomando las colonias en uno de los cuadros menores, como se indica en la figura del segmento del área cuadriculada de la cuenta colonias; si la distribución en las cajas es muy densa, se considera entonces el área que representa este cuadrado.

1 2

4 3

Área cuadriculada del Cuenta colonias

A

5

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1 2

5

4 3

Segmento del área cuadriculada del cuenta colonias.

Aplica alguna de las siguientes fórmulas, de acuerdo con el tipo de resultados a reportar Colonias por = X colonias X cm2 de área Caja Petri cm2 Caja Petri Colonias por milímetro = X colonias 1 caja Petri_____ de dilución Caja Petri X ml de dilución Colonias por = X colonias___ 1 ml de dilución Gramo muestra ml de dilución X g. de muestra Elabora un reporte de la práctica que incluya: presentación, fundamento teórico, diagramas, observaciones y conclusiones.




A

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Práctica: Obtiene cultivos puros de microrganismos por aislamiento Número: 13

Propósito de la práctica: Obtener cultivos puros de microrganismos mediante los procedimientos establecidos para su posterior estudio y empleo en procesos microbiológicos.



Desempeños

Una muestra de 10 ml de aguas residuales

Una muestra de 10 ml de leche cruda

Cultivo de Microorganismos

Agar peptona

Agar glucosa

Agua peptonada

Agar SIM

Caldo rojo de metilo

Solución de -Naftol al 5%

Solución de KOH al 40%

Alcohol etílico

Cristal violeta

Lugol

Safranina


8 cajas de Petri

6 tubos de cultivo con rosca

2 pipetas de 10 ml

10 pipetas de 1 ml

1 extensor de vidrio

Mechero

8 tubos de ensaye

2 pipetas de 10 ml

3 pipetas de 1 ml




Procedimiento:


Prepara soluciones 10-1, 10-2 y 10-3 de ambas muestras, utilizando los tubos de cultivo

Vierte en cada una de las cuatro cajas de Petri de 12 a 15 ml de agar peptona

Vierte en otras cuatro de 12 a 15 ml de agar glucosa.

Inocula cuando los agares hayan solidificado, siguiendo el método de extensión en superficie

Incuba a 37°C durante 48 horas

Nota: Las cajas Petri conteniendo agar peptona con 1 ml de las diluciones 10-2 y 10-3 de aguas

residuales (dos cajas por dilución) y las cajas Petri conteniendo agar glucosa, con 1 ml de las

diluciones 10-2 y 10-3 de leche cruda (dos cajas por dilución). El agar peptona es el medio

específico para el crecimiento de P. vulgaris y el agar glucosa para el crecimiento de B.

subtilis.

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1 asa de cultivo

Mechero

Estufa de cultivo

Microscopio

Pruebas confirmativas.

Transcurridas las 48 horas de incubación se llevan a cabo las siguientes pruebas:

Tinción Gram

Preparar un frotis de cada colonia cultivada y teñir por el método Gram

Observar al microscopio y reportar las observaciones.

Pruebas de Voges-Proskauer

Verter en cada uno de los tubos de ensaye, la cantidad de caldo rojo de metilo necesaria para ocupar tres cuartas partes del volumen del tubo.

Transferir una azada del cultivo de P. vulgaris, que fue aislado a cada uno de los tubos

Incubar los tubos a 30°C durante 48 horas

Transferir 1 ml del contenido de los tubos incubados, transcurrido el tiempo de incubación, a cada uno de los tres tubos de ensaye

Añadir a dos de los tubos, 0.6 ml de la solución de -naftol y 0.2 ml de la solución de hidróxido de potasio y agitar bien. El tercer tubo se usa como testigo.

Nota: La formación de un color púrpura en un periodo de 2 a 4 horas, después de la incubación,

significa que la prueba es positiva.

Prueba de ácido sulfhídrico

Vierte en cada uno de tres tubos de ensaye la cantidad necesaria de agar SIM, para ocupar las tres cuartas partes del volumen del tubo

Incuba cada uno de dos de los tubos como se indica a continuación, cuando el medio haya solidificado

Toma una muestra de las colonias de P.vulgaris que se desarrollaron, utilizando un asa de cultivo recta previamente flameada

Inocula picando el agar a cierta profundidad con el alambre. El tercer tubo se usa como testigo

Incuba los tubos a 34°C durante 48 horas. La evidencia de la producción de ácido sulfhídrico, es la formación de una línea negra a lo largo de la región de inoculación. Si esto ocurre la prueba se

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considera positiva.






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Práctica: Aísla cepas para la producción de aminoácidos por métodos de fermentación Número: 14

Propósito de la práctica: Realizar el procedimiento para aislar de una cepa de aminoácidos mediante una muestra natural, para emplearse en la producción de aminoácidos de origen biológico.



Desempeños

Botellas con agua estéril

Pipetas estériles de 5 y 10 ml.

Cajas Petri estériles

Muestra de suelos tamizados

Tubos con casitona-glucosa, agar (casitona 5g/lt, glucosa 100g/lt, agar 20g/lt.

Medio de cultivo Czapack-agar-ninhidrina.

Matraces de 250 ml

Probetas

Baño María

Ac. Sulfúrico Conc.

Ac. Acético

Algodón

Fenol

Embudo.

Espátulas estériles

Papel filtro

NaNO3

K2 HPO4

MgSO4 7H2O

FeSO4 7h2O

Ninhidrina al 0.3%

Glucosa

Kl24 HPO4 .3H2O

Urea



Prepara el equipo, instrumentos y los materiales en las mesas de trabajo.

Procedimiento:

Fase I

Pesa 10g de suelo tamizado y suspenderlo en 90ml de agua estéril, agita y deja

sedimentar.

Toma una alícuota de 10ml y los pasa a una botella con 90ml de agua estéril, agita y

nuevamente deja sedimentar, y continúa haciendo diluciones 1:10, 1:100, 1:1000,

1:10000.

Toma de las tres últimas diluciones 1ml y lo coloca en el fondo de una caja Petri estéril y

agrega 15ml de Czapeck-agar-ninhidrina.

Homogeniza y deja solidificar e incuba a 28°-30°C anotando observaciones cada 24 horas

hasta la aparición de crecimiento.

Selecciona aquellas colonias que presenten un halo violeta o amarillo, que indicara la

cierta capacidad de producción de aminoácidos.

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Casitona Balanza granataria

Estufa de temperatura controlada

Autoclave

Centrífuga

Mechero

Cuba cromatográfica

Fotocolorímetro

Siembra las cepas seleccionadas en tubos con medios Casitona-glucosa-agar.

Preparación de medio Czapeck-agar-ninhidrina

Nombre Cantidad Nombre Cantidad

NaNO3 2.5g K2 HPO4 1g

MgSO4 7H2O 0.5g KCl 0.5G

FeSO4 7h2O 0.01G Agua destilada 1000ml

Mezcla todos los componentes en un matraz Erlenmeyer y esteriliza en autoclave a 15lb

de presión durante 15min.

Enfría a una temperatura de 40-45°C (lo más exacto posible), y adiciona la ninhidrina al

0.3% en condiciones asépticas y así estará lista para usarse.

Nota: si la ninhidrina se agrega cuando el medio tiene temperatura más alta se descompone (no debe tener color el medio de cultivo).

Fase II

Producción de aminoácidos en cultivo sumergido.

Utiliza el medio de cultivo compuesto por:

Compuesto Cantidad

Glucosa 100g/l

Kl24 HPO4 .3H2O 0.654g/l

KH2PO4 0.500g/l

MgSO4 . 7H2O 0.250g/l

MnSO4 . 7H2O 0.010g/l

FeSO4 . 7H2O 0.001 g/l

Urea 5 g/l

Casitona 5 g/l

Ph 7

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Prepara y distribuye en cantidades de 50 ml en matraces de 250ml y esteriliza en

autoclave a 15lb de presión, durante 15min

Siembra los medios con 1ml de la suspensión de agua estéril de un cultivo de 24 hrs. En

un tubo con medio inclinado de casitona-glucosa-agar, de la cepa de referencia y la cepa

aislada.

Incuba con agitación durante 24, 48, 72 y 96 hrs, (incluir un testigo sin ocular).

Fase III Identificación de los aminoácidos acumulados

Separa las células por centrifugación a 6000-7000 rpm. al final de los distintos periodos de

incubación,

Desecha el paquete celular y el sobrenadante se concentra por evaporación y este

concentrado se usa para las determinaciones.

Fase IV Identificación por cromatografía en papel.

Aplica las muestras evaporadas en cantidades pequeñas en papel para cromatografía

(Whatman #3), incluyendo aminoácidos testigos (alanina, valina y triptófano) como

testigos.

Coloca el Cromatograma en cámaras saturadas de solventes butanol-acético-agua (210-

60-250)

Cierra la cámara y dejar correr el tiempo necesario.

Seca el Cromatograma a 60°C aproximadamente durante 24Hrs.

Rocía para el revelado del Cromatograma con solución de ninhidrina al 0.2% en 95ml de

butanol + 5ml de ácido acético al 10%.

Calcula los R.F de los aminoácidos testigos y de los aminoácidos problema y se

comparan.

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Fase V

Elabora un reporte con la descripción completa desde el aislamiento del microorganismo

hasta la separación e identificación de los aminoácidos producidos incluyendo diagrama

del proceso.

Describe las reacciones que intervienen, presenta placas de cromatografía y anota

observaciones y conclusiones.




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Práctica: Aísla cepa de levadura por digestión y analiza sus componentes Número: 15

Propósito de la práctica: Realizar el procedimiento de aislamiento de microrganismos capaces de producir proteína unicelular mediante muestras naturales de tierra y frutos, para producir alimentos utilizables en la dieta del hombre y de los animales.



Desempeños

Medios de cultivo YPG

Muestra de levadura

Muestra de peptona

Muestra de sacarosa

Miel karo

Matraces de 250ml

Espátula

Vasos de precipitado

Pipetas volumétricas Microorganismos:Candida tropicalis

Mezcla digestora

Tubos Nessler

Aparato soxlher

Digestor Soxlher

Incubadora

Estufa de temperatura controlable

Mechero

Colorímetro Nessler

Reactivos :

Extracto de levadura

Peptona

Glucosa

Agar

KH2PO4

MgSO4 . 7H2O



Prepara el equipo, instrumentos de medición y los materiales en las mesas de trabajo.

Procedimiento:

Aislamiento de la cepa (método de imprenta)

Formulación del medio de cultivo YPG

Componentes Cantidad

Extracto de levadura 0.3%

Peptona 1.0%

Glucosa 2.0%

Agar 2.0%

Fase I

Propagación de levadura

Nota: En este punto se estudia la influencia de la fuente de nitrógeno y carbono para la

propagación, se emplea el siguiente medio base:

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ZnSO4 7H2O

Fe 2 (SO4)3 . 9H2O

Componente Cantidad Componente Cantidad

KH2PO4 0.1g MgSO4 . 7H2O 0.1g

ZnSO4 7H2O 0.1g Fe 2 (SO4)3 . 9H2O 0.01g

Agua 1000ml Ph 5.5

Agrega a este medio base las siguientes fuentes de carbono y nitrógeno:

Medio 1: peptona 5g, sacarosa 15g

Medio 2: peptona 5g, miel karo 15g.

Reparte en matraces esterilizados 50ml de esta solución y esteriliza a 15lb por 15min.

Incuba 3 matraces de cada medio con 1.0 de una suspensión de Candida Tropicalis e

incuba con agitación durante 24, 48, y 96 hrs., un matraz para cada tiempo.

Determina con estos cultivos peso seco, proteína total y lípidos.

Fase II

Determinación de proteína unicelular

Determinación de nitrógeno proteico: digestión por el método Kjendhal

− Pesa 25g de levadura seca y los coloca en un matraz de Kjeldahl.

− Adiciona 2 ml de mezcla digestora y los coloca en la estufa de digestión hasta que la

muestra presente un color azul verdoso y además no exista ningún residuo orgánico.

− Calienta 30min. Enfría y lleva con precaución aun volumen de 25 ml con agua hervida fría.

− Toma 2ml y determina nitrógeno por el método Nessler como se describe a continuación.

A .-Con las muestras digeridas determina nitrógeno colocando una alícuota de 2ml en un tubo de Klett

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B.- Agrega 5 ml de reactivo de Nessler, agita y leer inmediatamente al aparato equipado con filtro azul.

La lectura que se obtenga se interpolara en una gráfica tipo, determinada previamente con cantidades conocidas de nitrógeno en un rango de 0 a 40 microgramos.

Calcula la cantidad de nitrógeno y posteriormente la cantidad de proteína de acuerdo a la formula correspondiente.

Fase III

Elabora un reporte de la práctica que incluya fundamentos de los métodos empleados,

resultados obtenidos, formulas y cálculos realizados, observaciones y conclusiones.




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Práctica: Elabora la curva de crecimiento para el estudio de un microorganismo por espectrofotometría

Número: 16

Propósito de la práctica: Identificar las diferentes fases que caracterizan el desarrollo de una bacteria desde que nace hasta que muere mediante la elaboración de una curva de crecimiento logarítmica, para ver su comportamiento en un proceso microbiológico.



Desempeños

1 matraz Erlenmeyer

1 pipeta de 1 ml estéril

1 mechero

Algodón

Espectrofotómetro

Materia biológico:

Medio de E Coli: incubado 24 horas antes a 37°C

Medio mínimo para E Coli 350 ml




Procedimiento:

Aislamiento de la cepa( método de imprenta)

Agrega 100 ml de medio mínimo para E Coli en un matraz Erlenmeyer.

Toma con una pipeta estéril 1 ml de medio incubado 24 horas antes con E Coli e inocular

en el matraz con medio mínimo.

Toma la primera lectura en el espectrofotómetro a una longitud de onda de 540 nm

utilizando como blanco medio mínimo para E Coli que no contenga inoculo.

Después de inocular el matraz con el medio mínimo, hacer otra lectura inmediatamente.

Coloca el matraz en la estufa a 37°C

Realiza otras lecturas con los siguientes periodos de tiempo

Durante el transcurso de la primera hora tomar lecturas cada cuarto de hora.

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Transcurrida la primera hora tomar lecturas cada 24 horas hasta lograr ver

diferentes fases de crecimiento.

Notas: la muestra que se toma para hacer la lectura deberá desecharse, no se debe regresar

al matraz de donde se tomó, además la toma de la muestra se hará en condiciones estériles

cerca del mechero.

En caso de no terminar las lecturas en un solo día, colocar los matraces en refrigeración, para

evitar el crecimiento y al día siguiente proceder a incubar para seguir tomando las lecturas con

las cuales se deberá graficar la curva de crecimiento.

Elabora una gráfica de crecimiento en la cual se represente el comportamiento del proceso

realizado, así como sus fases ( fase lenta, fase de crecimiento, estacionaria, y de

descanso) relacionando el tiempo con el crecimiento del microorganismo.

Elabora un reporte de la práctica que incluya fundamentos del método empleado, resultados

obtenidos, graficas realizadas, observaciones y conclusiones.

Precaución, sustancia tóxica.

Uso obligatorio de guantes de seguridad.


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Práctica: Analiza el efecto de la temperatura sobre el crecimiento microbiano por recuento Número: 17

Propósito de la práctica: Determinar los factores que provocan efectos letales a los microrganismos en un proceso, mediante los procedimientos establecidos para identificar los daños que impiden que la bacteria se reproduzca y forme una colonia sobre un medio de cultivo adecuado en la obtención de un producto de calidad.



Desempeños

3 matraces con un cultivo de la bacteria problema.

1 placa de Petri de agar LB.

Micropipeta y puntas estériles.

Mechero Bunsen.

Baño termostático a 60ºC.




Procedimiento:

Nota: Disponer de tres matraces con un cultivo de la bacteria problema y de una placa de Petri

con agar LB.

Separa la placa en tres partes iguales con el marcador de vidrio y nombrar cada parte con

el tiempo de incubación a estudiar. Es decir 0, 15 y 30 minutos.

Toma, con una punta estéril, 25 ml de uno de los cultivos y extenderlos sobre la parte de la

superficie de la placa correspondiente al tiempo t=0.

Coloca los otros dos matraces en el baño de agua e incuba a 60ºC.

Toma a un tiempo determinado de 15 y 30 minutos 25 ml de muestra del matraz que

corresponda y los extiende sobre la parte de la placa correspondiente.

Incuba la placa a 37ºC durante una noche.

Realiza al día siguiente, un recuento de las colonias a los diferentes tiempos (a t=0 será

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imposible porque se tratará de un césped).

Elabora un reporte de la práctica que incluya fundamentos de los métodos empleados,

resultados obtenidos, formulas y cálculos realizados, observaciones y conclusiones.




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Práctica: Elabora cerveza en el laboratorio por fermentación alcohólica Número: 18

Propósito de la práctica: Realizar procesos de fermentación alcohólica de acuerdo con especificaciones técnicas para estudiar el papel de los microrganismos en la producción de alimentos.



Desempeños

2 tubos con harina de malta al 5%

Saccharomyces cerevisiae Aplica las medidas de seguridad e higiene en el desarrollo de la práctica.



Procedimiento:

Prepara en un vaso de precipitados una suspensión en agua de harina de malta al 5%. Es

necesario mantener la suspensión en agitación, ya que la harina no es perfectamente

soluble en agua.

Llena dos tubos de tapón de rosca prácticamente hasta el borde, de manera que se genere

una atmósfera microaerófila.

Incuba los dos tubos durante 1 hora a 75 °C para que se activen las amilasas y rompan el

almidón.

Esteriliza en autoclave a 121 °C durante 10 min para eliminar los posibles microrganismos

presentes y asegurar que la fermentación se debe únicamente a la levadura.

Enfría los tubos a temperatura ambiente, inocula uno de ellos con Saccharomyces

cerevisiae mientras que el otro tubo no se modifica en absoluto (tubo control). Nota: el

inóculo se prepara resuspendiendo 29 mg de levadura en 1 ml de solución salina estéril.

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Incuba los dos tubos a temperatura ambiente durante varios días. En función del inóculo

añadido varía el tiempo necesario para la producción de la cerveza.

Nota: Solamente en el tubo que contiene la levadura se producirá la fermentación

alcohólica, que se visualiza mediante la aparición de burbujas de CO2.

Nota: la cerveza así obtenida se puede filtrar y beber, aunque su sabor no es el de una

cerveza comercial, ya que no se le ha añadido lúpulo.

Realiza pruebas organolépticas a la cerveza obtenida y compara sus resultados con una

cerveza comercial elaborada, evaluando: Olor, textura, sabor grado de alcohol, color.

Elaborar un reporte de la práctica que incluya observaciones y conclusiones.




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Práctica: Elabora yogur en el laboratorio por fermentación láctica Número: 19

Propósito de la práctica: Realizar procesos de fermentación láctica de acuerdo con especificaciones técnicas para estudiar el papel de los microrganismos en la producción de alimentos.



Desempeños

2 tubos estériles con 5 ml de leche pasteurizada

yogur comercial

Asa de siembra

Incubadora con temperatura controlable 110°C Estuche para tinción de Gram Microscopio Mechero




Procedimiento:

Inocula uno de los tubos mediante el asa de siembra con el cultivo iniciador de la

fermentación procedente de un yogur comercial. El otro tubo no se inocula y queda como

control

Incuba los dos tubos durante 16 horas a 46-48 °C para favorecer el crecimiento de estas

bacterias, ya que son termófilas.

Nota: también se pueden incubar a 37 °C durante 24 horas.

Comprueba que se ha producido una fermentación láctica si la leche ha coagulado en el

tubo inoculado. En el tubo control no inoculado se mantienen las características iníciales:

la leche es líquida.

Confirma mediante la tinción de Gram la presencia de bacilos y cocos responsables de la

fermentación. En el tubo control no se observa ninguna bacteria.

Realiza pruebas organolépticas l producto obtenido y compara sus resultados con una

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yogur comercial, evaluando: Olor, textura, sabor, color.

Elaborar un reporte de la práctica que incluya observaciones y conclusiones.




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Nombre del Alumno: Grupo:

Unidad de Aprendizaje : Obtención de productos mediante procesos microbiológicos industriales

Resultado de Aprendizaje: 2.2 Utiliza los microrganismos acondicionados y evaluados para la obtención de productos biológicos de calidad.

Actividad No.2: Comprueba la acción de los microrganismos en la elaboración de yogurt

Objetivo: Comprobará la acción de las bacterias (Lactobacillus bulgaricus y Streptococcus thermophilus) en la elaboración de yoghurt.

Instrucciones. Formar 4 equipos para la realización de la actividad de tal forma que todos los equipos realizarán el mismo experimento, con la excepción de que dos no agregarán yoghurt a la leche. (Antes de realizar el experimento, medir el pH de la leche y del yoghurt). Procedimiento. 1. Calentar un litro de leche en una olla. 2. Retirar la olla del fuego, cuando la leche haya alcanzado una temperatura de aproximadamente 45ºC. 3. Incorporar el yogur y revolver hasta lograr una mezcla bien homogénea (uno de los grupos no agregará el yoghurt). 4. Vaciar el contenido de la olla en un termo o envolver la olla con un chal, con el fin de conservar la temperatura. Una vez transcurridas 12 horas desde que se comenzó el experimento, se comparan entre ambos experimentos las siguientes características y se anota lo que observo.

Textura Aroma Sabor pH leche (antes del experimento) pH yoghurt (antes del experimento)

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Medir el pH de cada experimento a los siguientes tiempos.

Tiempo Con yoghurt Sin yoghurt

5 minutos

30 minutos

6 horas

12 horas

Graficar os datos obtenidos tomando como referencia la siguiente gráfica: Ph

5 min. 30min. 6 horas 12 días Tiempo Después de realizado el experimento se compartirán los resultados entre ambos grupos.

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Práctica: Realiza el análisis microbiológico de productos lácteos mediante técnicas analíticas Número: 20

Propósito de la práctica: Determinar la calidad de alguna leche pasteurizada comercialmente, llevando a cabo el análisis microbiológico de algunos productos lácteos, para determinar su calidad.



Desempeños

Leche bronca 100 ml

Leche pasteurizada 50 ml

Helado

Queso

Mantequilla

Agar nutritivo

Endoagar

Agua peptonada

Azul de metileno 1:20000

1 Tubo de ensaye

1 Tubo de ensaye largo

9 Tubos de dilución


20 Pipetas de 1 ml

8 Pipetas de 10 ml

32 Cajas de Petri

1 Probeta

1 Vidrio de reloj

1 Termómetro

1 Vaso de precipitados

1 Asa de cultivo

1 Espátula

2 cuchillos




Procedimiento:

Esterilización de la leche bronca

Vierte 25 ml de la muestra de leche bronca en cada uno de dos frascos de dilución, uno de los cuales será el frasco piloto

Calienta a baño maría los dos frascos, utilizándole frasco piloto para controlar la temperatura por medio de un termómetro

Cuenta el tiempo hasta que se cumplan 30 minutos de calentamiento, cuando la leche contenido en el frasco piloto haya alcanzado una temperatura entre 62 y 63°C.

Enfría inmediatamente con agua helada Prueba de azul de metileno

Vierte 10 ml de la muestra de leche bronca en dos tubos de ensaye

Vierte 10 ml de la muestra de leche estéril contenida en el frasco que no se usó como piloto, en otros dos tubos de ensaye

Vierte en los últimos dos tubos 10 ml de la muestra de leche pasteurizada

Vierte en cada uno de estos 6 tubos de ensaye 1 ml de azul de metileno 1:2000

Mezclar el contenido de los tubos perfectamente bien y tapar cada uno con una tapón de algodón

Incubar los tubos a 37°C y observar la decoloración de la mezcla

Registra el color de la mezcla. Dependiendo del tiempo de decoloración, se puede determinar a

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1 Baño María

1 Soporte

1 Tela de asbesto

1 Mechero

Estufa de cultivo a 37°C

Estufa de cultivo a 32°C

Cuentacolonias

Microcopio

Licuadora

groso modo la cantidad de bacterias en la leche, y por lo tanto, la calidad de la misma, para ello usa la siguiente tabla.

RESULTADOS E INTERPRETACIÓN DE LA PRUEBA DE AZUL DE METILENO

TIEMPO DE

DECOLORACION

NO. DE BACTERIAS

POR MILIMETRO

CATEGORÍA DE LA

LECHE

+ de 4 hrs. - de 500 000 Excelente

+ de 2.5 hrs no + de 3000 000 Buena

+ de 1 hr. no + de 10 000 000 Regular

- de 1 hr. + de 10 000 000 Mala

Reportar los resultados obtenidos y establecer una comparación entre los diferentes tipos de leche

Determinación del contenido bacteriano de la leche

Prepara disoluciones 10-1, 10-2, y 10-3 de cada una de las tres muestras de leche (bronca, pasteurizada y estéril no usada como piloto) disponibles

Transfiere 1 ml de cada una de las disoluciones preparadas, a cada una de dos cajas Petri. Esto significa que den prepararse dos cajas Petri, por cada dilución de cada muestra

Vierte en cada una de las cajas de 12 a 15 ml de agar nutritivo fundido y templado.

Gira con un movimiento suave, de tal manera que la muestra quede distribuida uniformemente

Incuba las cajas a 37°C durante 48 hrs.

Lleva a cabo una vez transcurrida el tiempo de incubación, el conteo de las colonias presente, en aquellas cajas que contengan de 30 a 300 colonias

Reporta los resultados obtenidos y comparar el número de microrganismos presentes en los

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diferentes tipos de leche, así como los resultados obtenidos en este inciso con los obtenidos en el inciso 2

Determinación del contenido bacteriano en helado

Transfiere 20 g de helado a un tubo de ensaye largo mediante una espátula estéril

Funde el helado por inmersión del tubo de ensaye que lo contiene a baño maría a 45°C. El helado debe permanecer en el baño sólo hasta que se funda

Pesa aproximadamente 1 g de helado (usando un vidrio de reloj estéril y un mechero)

Prepara diluciones 10-2 y 10-4 del mismo

Transfiere 1 ml de cada una de las diluciones a cada una de dos cajas de Petri. Es decir, deben prepararse dos cajas por cada dilución

Vierte en cada una de las cajas de 12 a 15 ml de agar nutritivo fundido y templado

Gira las cajas con un movimiento suave, de tal manera que la muestra quede bien distribuida

Incuba las cajas a 32°C durante 48 horas.

Lleva a cabo el conteo de microrganismos, transcurrido el tiempo de incubación, seleccionado aquellas cajas que contengan entre 30 y 300 colonias.

Determinación del contenido en diferentes productos lácteos

Preparación de las cajas

Vierte de 12 a 15 ml de endoagar fundido y dejar que solidifique, en cada una de 10 cajas Petri

Leche

Coloca unas gotas de la muestra de leche bronca y sembrar por la técnica de estrías (método 2), en cada una de dos de las cajas de Petri preparadas en el inciso A.

Repite lo anterior utilizando las muestras de leche pasteurizada y leche estéril no usada como piloto.

Incuba las cajas a 37°C durante 48 hrs.

Observa si ha habido crecimiento de coliformes, una vez transcurrido el tiempo de incubación

Reporta las observaciones hechas y comparar los resultados obtenidos para las diferentes muestras de leche.

Reporta las observaciones hechas y comparar los resultados obtenidos para las diferentes muestras de leche.

Mantequilla

Obtiene la parte interna de una muestra de mantequilla de aproximadamente 1 g, con un cuchillo estéril

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Coloca en un tubo de ensaye estéril que contenga aproximadamente 9 ml de agua peptonada estéril

Coloca el tubo a baño maría a 38°C, hasta que la mantequilla se funda Agitar y transferir 1 ml de la mantequilla derretida a cada una de dos de las cajas Petri preparadas en el inciso A., y sembrar siguiendo la técnica de estrías, método 2.

Incuba las cajas a 37°C durante 48 horas

Observa si ha habido crecimiento de coliformes, transcurrido el tiempo de incubación.

Reporta las observaciones.

Queso

Obtiene la parte interna de una muestra de mantequilla de aproximadamente 10 g, con un cuchillo estéril

Coloca en una licuadora estéril y mezclar con 90 ml de agua peptonada estérol

Transfiere aproximadamente 1 ml de la mezcla a cada una de dos de las cajas Petri preparadas en el inciso A., sembrar siguiendo la técnica de estrías (método 2)

Incuba las cajas a 37°C durante 48 horas

Observa si ha habido crecimiento de coliformes, transcurrido el tiempo de incubación.

Reporta las observaciones. Elabora un reporte de la práctica que incluya: presentación, fundamento teórico, diagramas, observaciones y conclusiones.





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II. Guía de Evaluación del Módulo Análisis de procesos microbiológicos

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7. Descripción

La guía de evaluación es un documento que define el proceso de recolección y valoración de las evidencias requeridas por el módulo desarrollado y tiene el propósito de guiar en la evaluación de las competencias adquiridas por los alumnos, asociadas a los Resultados de Aprendizaje; en donde además, describe las técnicas y los instrumentos a utilizar y la ponderación de cada actividad de evaluación. Los Resultados de Aprendizaje se definen tomando como referentes: las competencias genéricas que va adquiriendo el alumno para desempeñarse en los ámbitos personal y profesional que le permitan convivir de manera armónica con el medio ambiente y la sociedad; las disciplinares, esenciales para que los alumnos puedan desempeñarse eficazmente en diversos ámbitos, desarrolladas en torno a áreas del conocimiento y las profesionales que le permitan un desempeño eficiente, autónomo, flexible y responsable de su ejercicio profesional y de actividades laborales específicas, en un entorno cambiante que exige la multifuncionalidad.

La importancia de la evaluación de competencias, bajo un enfoque de mejora continua, reside en que es un proceso por medio del cual se obtienen y analizan las evidencias del desempeño de un alumno con base en la guía de evaluación y rúbrica, para emitir un juicio que conduzca a tomar decisiones.

El Modelo de Evaluación se caracteriza porque es Confiable (que aplica el mismo juicio para todos los alumnos), Integral (involucra las dimensiones intelectual, social, afectiva, motriz y axiológica), Participativa (incluye autoevaluación, coevaluación y heteroevaluación), Transparente (congruente con los aprendizajes requeridos por la competencia), Válida (las evidencias deben corresponder a la guía de evaluación).

Evaluación de los Aprendizajes.

Durante el proceso de enseñanza - aprendizaje es importante considerar tres momentos de evaluación: diagnóstica, formativa y sumativa.

La evaluación diagnóstica nos permite establecer un punto de partida fundamentado en la detección de la situación en la que se encuentran nuestros alumnos. Permite también establecer vínculos socio-afectivos entre el docente y su grupo. El alumno a su vez podrá obtener información sobre los aspectos donde deberá hacer énfasis en su dedicación. El docente podrá identificar las características del grupo y orientar adecuadamente sus estrategias. En esta etapa pueden utilizarse mecanismos informales de recopilación de información.

La evaluación formativa se realiza durante todo el proceso de aprendizaje del alumno, en forma constante, ya sea al finalizar cada actividad de aprendizaje o en la integración de varias de éstas. Tiene como finalidad informar a los alumnos de sus avances con respecto a los aprendizajes que deben alcanzar y advertirle sobre dónde y en qué aspectos tiene debilidades o dificultades para poder regular sus procesos. Aquí se admiten errores, se identifican y se corrigen; es factible trabajar colaborativamente. Asimismo, el docente puede asumir nuevas estrategias que contribuyan a mejorar los resultados del grupo.

Finalmente, la evaluación sumativa es adoptada básicamente por una función social, ya que mediante ella se asume una acreditación, una promoción, un fracaso escolar, índices de deserción, etc., a través de criterios estandarizados y bien definidos. Las evidencias se elaboran en forma individual, puesto que se está asignando, convencionalmente, un criterio o valor. Manifiesta la síntesis de los logros obtenidos por ciclo o período escolar.

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Con respecto al responsable de llevar a cabo la evaluación, se distinguen tres categorías: la autoevaluación que se refiere a la valoración que hace el alumno sobre su propia actuación, lo que le permite reconocer sus posibilidades, limitaciones y cambios necesarios para mejorar su aprendizaje. Los roles de evaluador y evaluado coinciden en las mismas personas

La coevaluación en la que los alumnos se evalúan mutuamente, es decir, evaluadores y evaluados intercambian su papel alternativamente; los alumnos en conjunto, participan en la valoración de los aprendizajes logrados, ya sea por algunos de sus miembros o del grupo en su conjunto; La Coevaluación permite al alumno y al docente:

Identificar los logros personales y grupales

Fomentar la participación, reflexión y crítica constructiva ante situaciones de aprendizaje

Opinar sobre su actuación dentro del grupo

Desarrollar actitudes que se orienten hacia la integración del grupo

Mejorar su responsabilidad e identificación con el trabajo

Emitir juicios valorativos acerca de otros en un ambiente de libertad, compromiso y responsabilidad

La heteroevaluación que es el tipo de evaluación que se da cuando agentes no integrantes del proceso enseñanza-aprendizaje son los evaluadores, otorgando cierta objetividad por su no implicación.

Los planteles tienen la facultad de instrumentar estas modalidades de evaluación, de acuerdo con las condiciones particulares de su entorno, aun cuando de manera institucional se definen los criterios e indicadores para su aplicación.

Actividades de Evaluación

Los programas de estudio están conformados por Unidades de Aprendizaje (UA) que agrupan Resultados de Aprendizaje (RA) vinculados estrechamente y que requieren irse desarrollando paulatinamente. Dado que se establece un resultado, es necesario comprobar que efectivamente éste se ha alcanzado, de tal suerte que en la descripción de cada unidad se han definido las actividades de evaluación indispensables para evaluar los aprendizajes de cada uno de los RA que conforman las unidades.

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Esto no implica que no se puedan desarrollar y evaluar otras actividades planteadas por el docente, pero es importante no confundir con las actividades de aprendizaje que realiza constantemente el alumno para contribuir a que logre su aprendizaje y que, aunque se evalúen con fines formativos, no se registran formalmente en el Sistema de Administración Escolar SAE. El registro formal procede sólo para las actividades descritas en los programas y planes de evaluación.

De esta manera, los RA tienen asignada una actividad de evaluación, considerando que puede haber casos en que se incluirán dos o más RA en una sola actividad de evaluación, cuando ésta sea integradora; misma a la que se le ha determinado una ponderación con respecto a la Unidad a la cual pertenece. Ésta a su vez, tiene una ponderación que, sumada con el resto de Unidades, conforma el 100%. Es decir, para considerar que se ha adquirido la competencia correspondiente al módulo de que se trate, deberá ir acumulando dichos porcentajes a lo largo del período para estar en condiciones de acreditar el mismo. Cada una de estas ponderaciones dependerá de la relevancia que tenga la AE con respecto al RA y éste a su vez, con respecto a la Unidad de Aprendizaje. Estas ponderaciones las asignará el especialista diseñador del programa de estudios.

La ponderación que se asigna en cada una de las actividades queda asimismo establecida en la Tabla de ponderación, la cual está desarrollada en una hoja de cálculo que permite, tanto al alumno como al docente, ir observando y calculando los avances en términos de porcentaje, que se van alcanzando (ver apartado 7 de esta guía).

Esta tabla de ponderación contiene los Resultados de Aprendizaje y las Unidades a las cuales pertenecen. Asimismo indica, en la columna de actividades de evaluación, la codificación asignada a ésta desde el programa de estudios y que a su vez queda vinculada al Sistema de Evaluación Escolar SAE. Las columnas de aspectos a evaluar, corresponden al tipo de aprendizaje que se evalúa: C = conceptual; P = Procedimental y A = Actitudinal. Las siguientes tres columnas indican, en términos de porcentaje: la primera el peso específico asignado desde el programa de estudios para esa actividad; la segunda, peso logrado, es el nivel que el alumno alcanzó con base en las evidencias o desempeños demostrados; la tercera, peso acumulado, se refiere a la suma de los porcentajes alcanzados en las diversas actividades de evaluación y que deberá acumular a lo largo del ciclo escolar.

Otro elemento que complementa a la matriz de ponderación es la rúbrica o matriz de valoración, que establece los indicadores y criterios a considerar para evaluar, ya sea un producto, un desempeño o una actitud y la cual se explicará a continuación.

Una matriz de valoración o rúbrica es, como su nombre lo indica, una matriz de doble entrada en la cual se establecen, por un lado, los indicadores o aspectos específicos que se deben tomar en cuenta como mínimo indispensable para evaluar si se ha logrado el resultado de aprendizaje esperado y, por otro, los criterios o niveles de calidad o satisfacción alcanzados. En las celdas centrales se describen los criterios que se van a utilizar para evaluar esos indicadores, explicando cuáles son las características de cada uno.

Los criterios que se han establecido son: Excelente, en el cual, además de cumplir con los estándares o requisitos establecidos como necesarios en el logro del producto o desempeño, es propositivo, demuestra iniciativa y creatividad, o que va más allá de lo que se le solicita como mínimo, aportando elementos adicionales en pro del indicador; Suficiente, si cumple con los estándares o requisitos establecidos como necesarios para demostrar que se ha desempeñado adecuadamente en la actividad o elaboración del producto. Es en este nivel en el que podemos decir que se ha adquirido la competencia. Insuficiente, para cuando no cumple con los estándares o requisitos mínimos establecidos para el desempeño o producto.

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Evaluación mediante la matriz de valoración o rúbrica

Un punto medular en esta metodología es que al alumno se le proporcione el Plan de evaluación, integrado por la Tabla de ponderación y las Rúbricas, con el fin de que pueda conocer qué se le va a solicitar y cuáles serán las características y niveles de calidad que deberá cumplir para demostrar que ha logrado los resultados de aprendizaje esperados. Asimismo, él tiene la posibilidad de autorregular su tiempo y esfuerzo para recuperar los aprendizajes no logrados.

Como se plantea en los programas de estudio, en una sesión de clase previa a finalizar la unidad, el docente debe hacer una sesión de recapitulación con sus alumnos con el propósito de valorar si se lograron los resultados esperados; con esto se pretende que el alumno tenga la

oportunidad, en caso de no lograrlos, de rehacer su evidencia, realizar actividades adicionales o repetir su desempeño nuevamente, con el fin de recuperarse de inmediato y no esperar hasta que finalice el ciclo escolar acumulando deficiencias que lo pudiesen llevar a no lograr finalmente la competencia del módulo y, por ende, no aprobarlo.

La matriz de valoración o rúbrica tiene asignadas a su vez valoraciones para cada indicador a evaluar, con lo que el docente tendrá los elementos para evaluar objetivamente los productos o desempeños de sus alumnos. Dichas valoraciones están también vinculadas al SAE y a la matriz de ponderación. Cabe señalar que el docente no tendrá que realizar operaciones matemáticas para el registro de los resultados de sus alumnos, simplemente deberá marcar en cada celda de la rúbrica aquélla que más se acerca a lo que realizó el alumno, ya sea en una hoja de cálculo que emite el SAE o bien, a través de la Web.

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8. Matriz de Ponderación

UNIDAD RA ACTIVIDAD DE EVALUACIÓN

ASPECTOS A EVALUAR

% Peso Específi

co

% Peso Logrado

% Peso Acumul

ado C P A

1.

1.1 Identifica los microrganismos capaces de ser empleados en los

procesos microbiológicos industriales de acuerdo con su morfología y

estructura.

1.1.1 ▲ ▲ ▲ 15

1.2 Acondiciona los microrganismos mediante técnicas específicas

para ser empleados en los procesos microbiológicos industriales. 1.2.1 ▲ ▲ ▲ 25

40

2.

2.1 Determina el crecimiento de los microrganismos para su

aplicación en la obtención de productos biológicos. 2.1.1 ▲ ▲ ▲ 25

2.3 Utiliza los microrganismos acondicionados y evaluados para la

obtención de productos biológicos de calidad. 2.2.1 ▲ ▲ ▲ 35

% PESO PARA LA UNIDAD 60

PESO TOTAL DEL MÓDULO 100

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9. Materiales para el Desarrollo de Actividades de Evaluación

Unidad de Aprendizaje: 1 Preparación de microrganismos para los procesos microbiológicos industriales.

Resultado de Aprendizaje: 1.1 Identifica los microrganismos capaces de ser empleados en los procesos microbiológicos industriales de acuerdo con su morfología y estructura.

Actividad de Evaluación: 1.1.1 Determina a partir de su morfología y estructura los tipos de microrganismos potenciales para ser usados en la obtención de productos biológicos.

Objetivo: Determina el tipo de microrganismo presente en una muestra de origen biológico mediante los procedimientos y técnicas de análisis a fin de conocer sus características morfológicas y estructurales como base para su aplicación y uso en los procesos microbiológicos industriales.

Instrucciones:

El docente

Proporcionar a los alumnos una serie de cepas de microrganismos preparados para su identificación, el alumno se apoyara de las técnicas de identificación vistas en el programa.

Organiza equipos para la realización de la actividad

Nombrar un responsable por equipo.

El alumno:

Aplica las medidas de seguridad e higiene en el desarrollo de la actividad.

Considera la siguiente lista como referencia de los materiales de cualquier técnica a seguir justificando su elección.

Microscopio

Autoclave

Fenol

Asa de siembra


Asa de cultivo

Mechero

Cera

Parafina

Cristal violeta

Cultivo de bacterias

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Gradilla

Cultivos de: − Bacilus subtilis − Escherichia coli − Micrococus luteus − Lactobacillus sp − Enterobacter sp


Muestras biológicas

Colorante azul de metileno

Colorante de Wright

Cristal violeta

Levaduras

Pulque

Frutas en descomposición

Procedimiento a seguir: Realiza las operaciones de preparación y calibración de equipo y materiales a emplear para la identificación de los microrganismos de estudio, considerando:

Calibración y manejo de microscopio

Procedimiento del manejo de identificación de microrganismos autoclave

Realiza las operaciones de preparación en las muestras biológicas proporcionadas, considerando:

Acondicionamiento de la muestra para su estudio

Preparación de frotis para su observación en el microscopio

Realiza las operaciones de tinción de los microrganismos para su observación en el microscopio, considerando:

Aplicar técnicas de tinción:

Tinción de capsula ( Método de Duquid)

Tinción de WRIGHT

Técnica de Gram.

Técnica de Shiaffer y Fulton

Elabora un informe de la actividad y de los resultados obtenidos, que integre:

Carátula

Contenido

Fundamento teórico de las aplicaciones desarrolladas.

Diagramas de flujo de las técnicas experimentales.

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Reportar las características morfológicas y estructurales de los microrganismos en estudio

Uso de esquemas para la verificación y comparación de las estructuras identificadas de los microrganismos en estudio.

Bibliografía

Observaciones

Conclusiones.

Indicar de acuerdo a los resultados obtenidos, cuales son los microrganismos susceptibles de ser usados en los procesos microbiológicos para la obtención de alimentos u otros productos, elaborando un cuadro comparativo.

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Unidad de Aprendizaje: 1 Preparación de microrganismos para los procesos microbiológicos industriales.

Resultado de Aprendizaje: 1.2 Acondiciona los microrganismos mediante técnicas específicas para ser empleados en los procesos microbiológicos industriales.

Actividad de Evaluación: 1.2.1 Obtiene y prepara microrganismos para ser empleados en la obtención de productos biológicos.

Objetivo: Realizar el acondicionamiento de microrganismos obtenidos de muestras naturales mediante los procedimientos de aislamiento y selección para mantenerlo en condiciones favorables y aplicarlos en los procesos microbiológicos industriales en la obtención de productos.

Instrucciones:

El docente

Propone a los alumnos una serie de cepas naturales de microrganismos para su aislamiento, selección y acondicionamiento.


Nombra a un responsable por equipo.

El alumno:

Seguirá y se apoyara de las técnicas vistas en el programa.



Microscopio

100 g de una muestra sólida de alimento contaminado

50 ml de una muestra de agua contaminada

Agar nutritivo

Extracto de carne

Agua destila

Agua peptona

HCl 0.1N

3 Frascos para dilución

1 Mechero

Papel Toalla

Papel aluminio

Algodón

Balanza

Estufa de incubación

Potenciómetro

Cepas de: Eterobacterias

Tubos con cultivos bacterianos crecidos de: Escherichia coli, Salmonella enteritidis, Staphylococcus aureus.

1 Tubo con medio líquido estéril (caldo común): Luria Bertani (LB)

2 Tubos con medio sólido estéril (agar inclinado): TSI

4 placas LB agar

1 placa agar McConkey

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NaOH 1.1N

10 Cajas Petri

8 Pipetas de 1 ml

1 Probeta

20 cajas petri esterilizadas

Staphylococcuss Cándida Albicans

Placas de: Gelosa simple S- 110 Sabouraud

1 placa agar Sabouraud. 1 Matraz Erlenmeyer de 500 ml


Vaso de precipitados de 500 ml

3 Tubos de dilución con rosca

Gelosa simple

Caldo nutritivo Procedimiento a seguir: Realiza el muestreo de un microorganismo de una cepa preparada, considerando:

Materiales y equipos

Técnicas de muestreo microbiológico

Prepara los medios de cultivo, diluciones y soluciones para el cultivo del o los microrganismos identificados, considerando:

Tipo de solución o disolución

Homogéneas

Heterogéneas

Sucesivas

Esterilización y asepsia del área y materiales de trabajo.

Cantidad de medio de cultivo requerido.

Tipo de medio de cultivo a preparar

Formulación del medio de cultivo

Aplica los métodos y técnicas de aislamiento del microorganismo elegido o contenido en una cepa microbiana, considerando:

Técnicas de estría en placa.

Técnicas de vertido en placa.

Técnicas de extensión en placa con varilla de vidrio.

Enriquecimiento poblacional.

Diluciones en serie.

Micromanipulación.

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Aplica técnicas de siembra del microorganismo elegido o contenido en una cepa microbiana para su posterior estudio de crecimiento y su aplicación en un proceso microbiológico, considerando:

El tipo de microorganismo con base a sus requerimientos nutricionales

Las condiciones de siembra de acuerdo al tipo de microorganismo

Las condiciones de incubación de acuerdo al microorganismo

Elabora un informe de la actividad realizada, que integre:

Carátula

Resultados obtenidos con:

Fundamento teórico de las aplicaciones desarrolladas.

Diagramas de flujo de las técnicas realizadas.

Características morfológicas y estructurales del o los microrganismos acondicionados.

Esquemas y dibujos de los microrganismos acondicionados.

Justificación del uso de estos microrganismos acondicionados para ser empleados en procesos microbiológicos.

Observaciones y conclusiones.

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Unidad de Aprendizaje: 2 Obtención de productos mediante procesos microbiológicos industriales

Resultado de Aprendizaje: 2.1 Determina el crecimiento de los microrganismos para su aplicación en la obtención de productos biológicos.

Actividad de Evaluación: 2.1.1 Selecciona un microorganismo que cuente con las características específicas para la obtención de un producto biológico propuesto.

Objetivo: Determinar el uso de microrganismos acondicionados considerando características fisicoquímicas, de crecimiento y productividad de acuerdo con el producto a elaborar. Instrucciones El docente


Nombra un responsable por equipo.

Describe las características del producto a elaborar y propone para el desarrollo de la actividad, la obtención en el laboratorio de diferentes microrganismos capaces de emplearse en la obtención de productos.

Propone diferentes fuentes naturales para la obtención de microrganismos.

Propone diferentes medios de cultivo posibles de emplearse para el desarrollo o crecimiento de los microrganismos

Propone diferentes técnicas de aislamiento y selección de estos microrganismos.

El alumno


Selecciona un microorganismo que presente las características requeridas para en la obtención de un producto determinado.


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− Microscopio − 100 g de una muestra sólida

de alimento contaminado − 50 ml de una muestra de

agua contaminada − Agar nutritivo − Extracto de carne − Agua peptona − HCl 0.1N − NaOH 1.1N − 8 Pipetas de 1 ml − 1 Probeta − 20 cajas petri esterilizadas − 3 Tubos de dilución con

rosca

− 3 Frascos para dilución − 1 Mechero − Papel Toalla − Papel aluminio − Balanza − Estufa de incubación − Potenciómetro − Cepas de: Eterobacterias − Staphylococcuss, Cándida

Albicans − Placas de: Gelosa simple − S- 110 y Sabouraud. − Gelosa simple − Matraz Erlenmeyer de 500 y

1000 ml

− Tubos con cultivos bacterianos crecidos de: Escherichia coli, Salmonella enteritidis, Staphylococcus aureus.

− 1 Tubo con medio líquido estéril (caldo común): Luria Bertani (LB)

− 2 Tubos con medio sólido estéril (agar inclinado): TSI

− 4 placas LB agar, 1 de agar McConkey y 1 de agar Sabouraud.

− Caldo nutritivo − Vaso de precipitados de 500

Procedimiento a seguir:

Realiza procedimientos para la obtención de cultivos puros de los microrganismos o el microorganismo seleccionado para la producción del alimento propuesto, considerando:

Preparar materiales y equipos para la actividad experimental

Preparar los medios de cultivo de acuerdo a las necesidades del microorganismo, considerando:

− Formulación − Elección de nutrientes o fuentes de energía − Condiciones de desarrollo o crecimiento − Rendimiento del cultivo

Aplica técnicas de aislamiento y siembra del microorganismo para un cultivo puro.

Aplica los métodos de conservación y preservación de la cepa (cultivo puro) para el acondicionamiento del microorganismo en estudio, y de acuerdo al tipo de microorganismo, considera y aplica la técnica de:

Transferencia en serie

Transferencia en serie con aceite mineral

Conservación de esporas con suelo estéril

Liofilización y congelación

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Determina el crecimiento microbiano de la cepa o cultivo puro, mediante el análisis de la cinética de fermentación que presenta, indicando:

Formas de reproducción

Cálculos para medir su crecimiento

Factores que afectan su crecimiento

Técnicas para medir el crecimiento, considerando aplicar:

− Cuenta directa − Cuenta viable − Contador de células − Turbidimetrico − Consumo de nutrientes − Viscosidad

Comparación de resultados contra estándares preestablecidos.

Elabora un informe que describa la calidad del microorganismo seleccionado así como su aprobación para ser empleado en un proceso microbiológico en la obtención de productos, para lo cual puede tomar como base la siguiente estructura:

Caratula

Introducción

Resultados − Determinación del ciclo celular − Mencionar si es cultivo sincrónico o asincrónico − Justificar el tipo de cultivo empleado − Justificar la técnica de aislamiento usada para la obtención del cultivo puro − Interpretar por medio de graficas el crecimiento del microorganismo en medio líquido, así como sus fases. − Interpretar por medio de graficas el crecimiento microbiano en medio sólido − Describir la etapa de muerte del microorganismo − Describir los diferentes sistemas para detectar y medir el crecimiento de microrganismos. − Determinar la presencia de crecimiento microbiano equilibrado − Medida de la cinética de crecimiento de un cultivo discontinuo y continuo en caso de utilizarlo y su interpretación grafica − Describir los procesos de desarrollo matemáticos para medir el crecimiento de los microrganismos. − Describir la acción de los factores que afectan el crecimiento microbiano y su repercusión en el rendimiento del mismo.

Conclusiones y observaciones − Conclusiones sobre la elección del microorganismo obtenido para ser usado en la obtención de productos alimenticios o medicamentos.

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Unidad de Aprendizaje: 2 Obtención de productos mediante procesos microbiológicos industriales

Resultado de Aprendizaje: 2.2 Utiliza los microrganismos acondicionados y evaluados para la obtención de productos biológicos de calidad.

Actividad de Evaluación: 2.2.1 Obtiene un producto de origen biológico con calidad e inocuidad.

Objetivo: Emplea microrganismos específicos mediante los procedimientos y técnicas microbiológicas para la obtención de productos alimenticios. El docente

Propone un listado de los productos a obtener a nivel laboratorio así como los microrganismos que se utilizaran para cada fin.

Propone diferentes fuentes de obtención de microrganismos o proporciona cepas de microrganismos acondicionados.


Nombra un responsable por equipo.

El alumno:


Aplica técnicas de obtención de microorganismo así como técnicas de inoculación de los mismos para su aplicación directa en el proceso en caso de contar con cepas específicas.

Prepara el material y equipo a emplear en los procesos de identificación del microorganismo.

Determina las reacciones y los cálculos matemáticos para la estimación del rendimiento y productividad del producto a obtener.

Realiza el proceso de elaboración del producto deseado con el empleo del microorganismo seleccionado.

Determina la calidad del producto obtenido.

Procedimiento a seguir:

Fase I (realizar esta fase si no cuenta con una cepa de un microorganismo previamente identificado, de lo contrario pasar a la fase II) Identifica a partir de diversas muestras naturales los microrganismos a emplear en la elaboración del producto deseado, considerando:

Tipo de microorganismo, morfología y estructura.

Técnicas de identificación de los microrganismos posibles de ser usados.

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Acondiciona los microrganismos mediante técnicas específicas, considerando:

Las técnicas de muestreo del microorganismo desde su fuente de origen.

Los métodos y técnicas de aislamiento y selección de dicho microorganismo.

El tipo de medio de cultivo requerido para el tipo de microorganismo determinado.

La técnica de cultivo empleada.

Las condiciones de esterilización y asepsia de los medios de cultivo, técnicas empleadas y materiales usados.

Fase II Analiza el comportamiento del microorganismo en un medio de cultivo específico que determine la evolución de crecimiento y productividad del mismo para su aplicación en la obtención de un producto deseado, considerando:

El tipo de medio de cultivo

El rendimiento del medio de cultivo

Las técnicas de conservación de las cepas microbianas

Análisis de la cinética de fermentación que presenta el microorganismo en el medio empleado y sus métodos para su medición.

Expresiones matemáticas para medir el crecimiento microbiano.

Los factores que afectan la velocidad de crecimiento.

Interpretación del crecimiento para su uso en la obtención de productos.

Elabora productos mediante el empleo de los microrganismos acondicionados y evaluados, considerando:

Maquinaria y equipo

Sustratos utilizados

Microorganismos empleados

Los tipos de fermentadores a emplear

Bioquímica de la fermentación

Los cálculos matemáticos estimados

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Los factores que afectan el proceso de fermentación

Pruebas analíticas aplicadas para determinar la calidad del producto obtenido.

− Métodos físicos. − Métodos químicos. − Métodos inmunológicos. − Recuento de microrganismos

Elabora un informe de acuerdo a la siguiente estructura;

Caratula

Introducción

Resultados

− Diagrama de flujo del proceso − Descripción de las técnicas de análisis de calidad aplicadas durante el proceso. − Descripción de las variables presentadas en el proceso − Cantidad de producto obtenido en base a los cálculos matemáticos realizados − Interpretación grafica de la cinética de fermentación y sus reacciones − Descripción de las pruebas analíticas finales y su comparación contra parámetros de referencia.

Conclusiones y observaciones

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10. Matriz de Valoración o Rúbrica

MATRIZ DE VALORACIÓN O RÚBRICA

Siglema: APMI-02 Nombre del Módulo:

Análisis de procesos microbiológicos Nombre del Alumno:

Docente evaluador: Grupo: Fecha:

Resultado de Aprendizaje:

1.1 Identifica los microrganismos capaces de ser empleados en los procesos microbiológicos industriales de acuerdo con su morfología y estructura.

Actividad de evaluación:

1.1.1 Determina a partir de su morfología y estructura los tipos de microrganismos potenciales para ser usados en la obtención de productos biológicos.

INDICADORES % C R I T E R I O S

Excelente Suficiente Insuficiente

Preparación y

calibración de

equipo y materiales

25

Realiza las operaciones de preparación y acondicionamiento de materiales, para ello considera:

El tipo de proceso a emplear y las condiciones de esterilización y asepsia de las mismas.

El tipo de la muestra a analizar.

Hace referencia con estándares establecidos.

Además muestra iniciativa al investigar y proponer métodos auxiliares para la esterilización y asepsia aplicables a las prácticas de este tipo, para ello elabora un esquema señalando las medidas de seguridad a seguir.

Realiza las operaciones de preparación y acondicionamiento de materiales, para ello considera:

El tipo de proceso a emplear y las condiciones de esterilización y asepsia de las mismas.

El tipo de la muestra a analizar.

Hace referencia con estándares establecidos.

Realiza las operaciones de preparación y acondicionamiento de materiales omitiendo las técnicas de esterilización y asepsia al área de trabajo ocasionando contaminación.

Tinción de

microrganismos 45

Realiza los procedimientos en estricto orden para la tinción de microrganismos:

Prepara los frotis de acuerdo con

Realiza los procedimientos en estricto orden para la tinción de microrganismos:

Prepara los frotis de acuerdo con

Realiza parcialmente los procedimientos para la tinción de microrganismos:

Realiza los frotis de muestra

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las muestras de microrganismos a estudiar.

Maneja el microscopio en diferentes fases para la observación de microrganismos.

Aplicar técnicas de tinción a cada muestra de acuerdo al tipo de microrganismo observado.

Clasifica los microrganismos observados de acuerdo a su reacción con las soluciones coloridas.

Además propone técnicas de tinción con el uso de diferentes colorantes, y elabora diagramas de flujo para cada técnica aplicada.

las muestras de microrganismos a estudiar.

Maneja el microscopio en diferentes fases para la observación de microrganismos.

Aplicar técnicas de tinción a cada muestra de acuerdo al tipo de microrganismo observado.

Clasifica los microrganismos observados de acuerdo a su reacción con las soluciones coloridas.

omitiendo procedimientos establecidos.

Carece de conocimientos para el manejo del microscopio lo que dificulta su observación.

Omite algunos pasos en la tinción de microrganismos ocasionando confusión en su identificación.

Elaboración del

informe 30

Integra en el informe las actividades y resultados obtenidos de acuerdo con lo propuesto. Incluye un cuadro comparativo con las características morfológicas y estructurales de cada uno de los microrganismos en estudio y su comparación contra estándares de referencia. La redacción cumple con una secuencia lógica, es clara y cuida la ortografía. Entrega en el tiempo establecido. Enfatiza sobre los microrganismos que se identificaron y su posible uso en la elaboración de productos medicinales y alimenticios, justifica con fundamentos científico-teóricos los resultados obtenidos.

Integra en el informe las actividades y resultados obtenidos de acuerdo con lo propuesto. Incluye un cuadro comparativo con las características morfológicas y estructurales de cada uno de los microrganismos en estudio y su comparación contra estándares de referencia. La redacción cumple con una secuencia lógica, es clara y cuida la ortografía. Entrega en el tiempo establecido.

Integra en el informe escasas actividades y resultados obtenidos. Incluye el cuadro comparativo con mínimas características estructurales de los microrganismos en estudio. La redacción es confusa y presenta abundantes faltas ortográficas. La entrega se realizó fuera de tiempo.

100

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1.2 Acondiciona los microrganismos mediante técnicas específicas para ser empleados en los procesos microbiológicos industriales


1.2.1 Obtiene y prepara microrganismos para ser empleados en la obtención de productos biológicos.



Preparación de los

medios de cultivo

(AUTOEVALUACIÓN)

5

Realiza las operaciones de preparación de medios de cultivo:

Prepara el material y equipo apto para el acondicionamiento del microrganismo seleccionado.

Formula los medios de cultivo de acuerdo a las características nutritivas del microrganismo en estudio y considera los procedimientos para cada uno de los medios de cultivo.

Esteriliza los medios de cultivo de acuerdo a las especificaciones de uso de cada microrganismo.

Además por iniciativa propia aplica técnicas de ensayo - error para la efectividad del cultivo y elabora diagramas de flujo para su elaboración indicando medidas de seguridad, justificando las formulas nutritivas propuestas.


Prepara el material y equipo apto para el acondicionamiento del microrganismo seleccionado.

Formula los medios de cultivo de acuerdo a las características nutritivas del microrganismo en estudio y considera los procedimientos para cada uno de los medios de cultivo.

Esteriliza los medios de cultivo de acuerdo a las especificaciones de uso de cada microrganismo.


Prepara el material y equipo omitiendo su esterilización.

Formula los medios de cultivo sin considerar las características nutritivas del microrganismo de estudio.

Prepara los medios de cultivo omitiendo su esterilización de acuerdo a las especificaciones de uso de cada microrganismo.

Aislamiento y

selección de

microrganismos

40

Realiza las operaciones para el aislamiento de microrganismos de una cepa microbiana:

Aplica las técnicas de esterilización de acuerdo con las especificaciones.

Realiza las operaciones de selección de

Realiza las operaciones para el aislamiento de microrganismos de una cepa microbiana:

Aplica las técnicas de esterilización de acuerdo con las

Realiza las operaciones para el aislamiento de microrganismos de una cepa microbiana omitiendo técnicas de esterilización para el desarrollo,

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los microrganismos aislados de acuerdo a los procedimientos establecidos.

Plantea alternativas para llevar a cabo las determinaciones y solucionar problemas que se le presente definiendo un curso de acción con pasos específicos, considerando puntos de vista de otras personas de manera reflexiva. Reflexiona sobre los procedimientos y realiza adecuaciones en los pasos para simplificar las etapas del mismo ahorrando tiempo entre una determinación y otra.

especificaciones de la técnica. Realiza las operaciones de selección de los microrganismos aislados de acuerdo a los procedimientos establecidos.

Plantea alternativas para llevar a cabo las determinaciones y solucionar problemas que se le presente definiendo un curso de acción con pasos específicos, considerando puntos de vista de otras personas de manera reflexiva

ocasionando contaminación y errores en los resultados.

Aplicación de

técnicas de siembra 30

Realiza las operaciones para la siembra de microrganismos:

Elije, de acuerdo a especificaciones y requerimientos del microrganismo, la cepa microbiana para un medio de cultivo específico.

Aplica técnicas de esterilización para su desarrollo.

Realiza las operaciones para incubar al microrganismo de acuerdo a sus requerimientos nutricionales.

Elabora diagramas de flujo para la realización de las actividades de siembra, indicando medidas de seguridad.

Pone en juego sus conocimientos al proponer soluciones factibles a problemas que se presentan en el desarrollo de la actividad de siembra.

Realiza las operaciones para la siembra de microrganismos:

Elije, de acuerdo a especificaciones y requerimientos del microrganismo, la cepa microbiana para un medio de cultivo específico.

Aplica técnicas de esterilización para su desarrollo.

Realiza las operaciones para incubar al microrganismo de acuerdo a sus requerimientos nutricionales.

Elabora diagramas de flujo para la realización de las actividades de siembra, indicando medidas de seguridad.

Realiza las operaciones para la siembra de microrganismos de una cepa microbiana a un medio de cultivo específico, omitiendo técnicas de esterilización ocasionando contaminación y errores en los resultados. Carece de conocimientos para incubar al microrganismo según sus requerimientos nutricionales.

Elaboración de

informe 25

Presenta los resultados obtenidos de acuerdo con lo propuesto y estos expresan de forma clara las características morfológicas y estructurales de cada uno de los microrganismos en estudio. Integra el informe de acuerdo a la estructura

Presenta los resultados obtenidos de acuerdo con lo propuesto y estos expresan de forma clara las características morfológicas y estructurales de cada uno de los microrganismos en estudio.

Presenta parcialmente los resultados por las cuestiones de contaminación, los temas no logran establecer una secuencia lógica y presenta considerables faltas ortográficas. Omite

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solicitada, cumple con una secuencia lógica de lo realizado, su redacción es clara, no presenta faltas ortográficas. La entrega se realiza en tiempo. Describe la problemática a la que se enfrentó durante el desarrollo de la práctica y las alternativas de solución tomadas por el equipo.

Integra el informe de acuerdo a la estructura solicitada, cumple con una secuencia lógica de lo realizado, su redacción es clara y cuida la ortografía. La entrega se realiza en tiempo.

expresar las características morfológicas y estructurales de cada microrganismo lo que refleja desconocimientos para la incubación del microrganismo.. La entrega se realiza fuera de tiempo.

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2.1 Determina el crecimiento de los microrganismos para su aplicación en la obtención de productos biológicos.


2.1.1 Selecciona un microrganismo que cuente con las características específicas para la obtención de un producto biológico propuesto. (HETEROEVALUACIÓN)



Obtención de

cultivos puros 20

Realiza los procedimientos en estricto orden para la obtención de cultivos puros:

Esteriliza los materiales y área de trabajo

Prepara los medios de cultivo a utilizar y aplica técnicas para determinar su rendimiento.

Aplica técnicas de aislamiento y siembra del microrganismo.

Esteriliza e incuba el cultivo puro de acuerdo a sus requerimientos.

Demuestra conocimiento, habilidades y eficacia al aplicar los procedimientos metodológicos en la práctica, además elabora el diagrama de flujo de la obtención del cultivo puro indicando medidas de seguridad.

Realiza los procedimientos en estricto orden para la obtención de cultivos puros:

Esteriliza los materiales y área de trabajo.

Prepara los medios de cultivo a utilizar y aplica técnicas para determinar su rendimiento.

Aplica técnicas de aislamiento y siembra del microrganismo.

Esteriliza e incuba el cultivo puro de acuerdo a sus requerimientos.

Realiza los procedimientos para la obtención de cultivos puros:

Esteriliza los materiales y omite acondicionar el área de trabajo ocasionando contaminaciones.

Prepara los medios de cultivo omitiendo el cálculo de su rendimiento.

Carece de conocimientos para realizar la siembra del microrganismo y la correcta incubación del cultivo.

Conservación y

preservación de la

cepa microbiana

20

Logra el crecimiento microbiano de la cepa, a través de:

Preparar los materiales para su desarrollo.

Determinar el tiempo de conservación y preservación en base al microrganismo a desarrollar.

Logra el crecimiento microbiano de la cepa, a través de:

Prepara los materiales para su desarrollo.

Determina el tiempo de conservación y preservación en base al microrganismo a

Logra bajo crecimiento microbiano de la cepa, ya que:

Prepara algunos de los materiales necesarios para realizar la actividad, el tiempo determinado para la conservación y preservación

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Aplicar técnicas de conservación y preservación de cepas microbianas de acuerdo a los procedimientos establecidos.

Guardar las cepas de acuerdo a sus características de cultivo y aplicación.

Cuantifica e integra para su comprobación fórmulas que determinan las cantidades obtenidas.

Además logra transmitir a sus compañeros de equipo las prioridades y requerimientos que implica el proceso.

desarrollar.

Aplica técnicas de conservación y preservación de cepas microbianas de acuerdo a los procedimientos establecidos.

Guarda las cepas de acuerdo a sus características de cultivo y aplicación.

Cuantifica e integra para su comprobación fórmulas que determinan las cantidades obtenidas.

no corresponde al microrganismo a desarrollar.

Omite realizar procedimientos relevantes de las técnicas establecidas.

Carece de conocimientos para el almacenaje de las cepas de acuerdo a sus características de cultivo y aplicación.

Análisis de la

cinética de

fermentación

40

Determina la cinética de fermentación del proceso, a través de:

Calcular el crecimiento microbiano mediante el consumo de nutrientes y fórmulas matemáticas.

Identificar y solucionar la acción que presentan los factores que interfieren para su crecimiento.

Medir la cinética de fermentación mediante los procedimientos y cálculos matemáticos establecidos.

Determinar el rendimiento del microrganismo y su escalamiento en los procesos microbiológicos por medios matemáticos.

Justificar y proponer soluciones las variaciones que se presentan en cada etapa de la cinética de fermentación.

Determina la cinética de fermentación del proceso, a través de:

Calcular el crecimiento microbiano mediante el consumo de nutrientes y fórmulas matemáticas.

Identificar y solucionar la acción que presentan los factores que interfieren para su crecimiento.

Medir la cinética de fermentación mediante los procedimientos y cálculos matemáticos establecidos.

Determinar el rendimiento del microrganismo y su escalamiento en los procesos microbiológicos por medios matemáticos.

Determina variaciones en la cinética de fermentación del proceso, ya que:

Carece de conocimientos para determina el crecimiento microbiano y su interpretación matemática.

Identifica solo algunas propiedades de los factores que interfieren para su crecimiento.

Aplica de forma errónea los procedimientos y cálculos matemáticos para medir la cinética de fermentación.

Elaboración del

informe 20

Integra el informe con los resultados obtenidos y estos expresan de forma clara el desarrollo de la cinética de fermentación del y las propiedades biológicas del microrganismo acondicionado para ser usado en la obtención de productos. Elabora esquemas, reacciones y dibujos de

Integra el informe con los resultados obtenidos y estos expresan de forma clara el desarrollo de la cinética de fermentación del y las propiedades biológicas del microrganismo acondicionado para ser usado en la obtención de

Integra el informe los resultados obtenidos y estos expresan de forma deficiente el desarrollo de la cinética de fermentación del microrganismo en estudio y sus propiedades biológicas para ser usado en la obtención de

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la actividad realizada; su redacción es clara, no presenta faltas ortográficas y cumple con una secuencia lógica. La entrega de las evidencias se realiza en el tiempo acordado. Demuestra habilidad para manejarse con los miembros del grupo estableciendo lazos de comunicación y compromiso que se reflejen en los resultados.

productos. Elabora esquemas, reacciones y dibujos de la actividad realizada; su redacción es clara, no presenta faltas ortográficas y cumple con una secuencia lógica La entrega de las evidencias se realiza en el tiempo acordado.

productos. Su redacción es confusa, presenta faltas ortográficas. La entrega de las evidencias se realizó en tiempo acordado.

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2.2 Utiliza los microrganismos acondicionados y evaluados para la obtención de productos biológicos de calidad.


2.2.1 Obtiene un producto de origen biológico con calidad e inocuidad.



Obtención del

microrganismo puro 20

Realiza los procedimientos en estricto orden para la obtención de microrganismos:

Aplica medidas de seguridad e higiene en el desarrollo de las actividades realizadas.

Elabora diagramas de flujo para cada técnica aplicada.

Prepara los materiales y equipos a emplearse para la identificación de microrganismos.

Aplica técnicas de aislamiento y selección para la obtención de microrganismos puros.

Acondiciona los microrganismos para los procesos de siembra y crecimiento.

Representa de forma esquemática las características morfológicas y estructurales de los microrganismos.

Realiza los procedimientos en estricto orden para la obtención de microrganismos:

Prepara los materiales y equipos a emplearse para la identificación de microrganismos.

Aplica técnicas de aislamiento y selección para la obtención de microrganismos puros.

Representa de forma esquemática las características morfológicas y estructurales de los microrganismos.

Aplica medidas de seguridad e higiene en el desarrollo de las actividades realizadas.

Realiza los procedimientos para la obtención de microrganismos:

Prepara solo algunos de los materiales y equipos para el desarrollo de actividades.

Realiza la identificación de microrganismos careciendo de conocimientos en la aplicación de las técnicas de tinción.

Carece de conocimientos para la aplicación de técnicas de aislamiento y selección de microrganismos y la obtención del cultivo puro.

Estimación del

rendimiento y

productividad

20

Estima el rendimiento y productividad de los microrganismos a obtener, a través de:

Realizar cálculos matemáticos para determinar el crecimiento microbiano

Estima el rendimiento y productividad de los microrganismos a obtener, a través de:

Realizar cálculos matemáticos para determinar el crecimiento

Estima de forma errónea el rendimiento y productividad a obtener, ya que:

Realiza cálculos matemáticos incorrectos para determinar el

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y su interpretación gráfica mediante el consumo de nutrientes.

Identificar las variables que afectan el crecimiento, justifica y propone soluciones en cada etapa.

Lleva a cabo el proceso de cinética de fermentación y los procedimientos para calcular el rendimiento del producto a obtener.

Registra datos y los manipula para obtener los resultados.

Elabora presentaciones tanto gráficas como matemáticas para la interpretación del rendimiento y productividad del microrganismo y las documenta con fundamentos teóricos.

microbiano y su interpretación grafica mediante el consumo de nutrientes.

Identificar las variables que afectan el crecimiento, justifica y propone soluciones en cada etapa.

Lleva a cabo el proceso de cinética de fermentación y los procedimientos para calcular el rendimiento del producto a obtener.

Registra datos y los manipula para obtener los resultados.

crecimiento microbiano.

Omite la presencia de factores que interfieren en el crecimiento ocasionando cálculos erróneos.

Aplica de forma errónea los procedimientos y cálculos matemáticos para medir la cinética de fermentación.

Obtención de

productos de origen

biológico.

40

Realiza los procedimientos para la obtención de productos mediante microrganismos aplicando:

Medidas en seguridad e higiene en cada etapa del proceso.

Los procedimientos específicos para la obtención del producto elegido.

Los procedimientos específicos para el manejo y cuidado del microrganismo usado en el proceso.

Las técnicas de esterilización y asepsia indicadas en cada etapa del proceso.

Las técnicas de análisis para verificar la calidad del proceso y producto y compara resultados con estándares prestablecidos.

Verifica los rendimientos reales contra teóricos.

Reconoce las repercusiones biológicas, económicas y sociales del daño


Medidas en seguridad e higiene en cada etapa del proceso.

Los procedimientos específicos para la obtención del producto elegido.

Los procedimientos específicos para el manejo y cuidado del microrganismo usado en el proceso.

Las técnicas de esterilización y asepsia indicadas en cada etapa del proceso.

Las técnicas de análisis para verificar la calidad del proceso y producto y compara resultados con estándares prestablecidos.

Verifica los rendimientos reales contra teóricos


Algunas etapas de los procedimientos para la obtención del producto elegido, omitiendo procedimientos para el manejo y cuidado del microrganismo.

Carece de referencias para determinar la calidad del producto y su comparación.

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ambiental ocasionado por los procesos realizados y propone acciones de disminución de contaminantes.

Elaboración de

informe 20

Elabora el informe de acuerdo a la estructura solicitada, describe en él las características de calidad obtenidas en el producto y muestra comparativas del producto obtenido contra estándares de referencia; incluye diagramas de flujo de cada etapa y presenta resultados de productividad y rendimiento. Su redacción es clara, no presenta faltas ortográficas y cumple con una secuencia lógica. La entrega de las evidencias se realiza en el tiempo acordado. Presenta un apartado sobre la normatividad de calidad e inocuidad de estos productos para su consumo.

Elabora el informe de acuerdo a la estructura solicitada, describe en él las características de calidad obtenidas en el producto y muestra comparativas del producto obtenido contra estándares de referencia; incluye diagramas de flujo de cada etapa y presenta resultados de productividad y rendimiento. Su redacción es clara, no presenta faltas ortográficas y cumple con una secuencia lógica. La entrega de las evidencias se realiza en el tiempo acordado.

Elabora el informe omitiendo partes de la estructura solicitada, describe las características de calidad obtenidas en el producto y sus características de calidad difieren a las solicitadas y a los estándares de referencia. Omite la presentación de los resultados de productividad y rendimiento Su redacción es confusa y presenta faltas ortográficas. La entrega se realiza fuera de tiempo.

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