8/3/2018 Carátula de Trabajo

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Dudas o sugerencias sobre este sistema: feriadelasciencias@cch.unam.mx © 2018 Escuela Nacional Colegio de Ciencias y Humanidades, Hecho en México, Comité Organizador

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Resumen.

La Drosophila melanogaster, denominada la “mosca de fruta” se utiliza comúnmente

como modelo de estudio en las investigaciones científicas relacionadas con la

genética y la genómica, esto se debe a su fácil cultivo y ciclo de vida relativamente

corto que le permite tener tres generaciones cada treinta días. Este modelo se basa

en importantes investigaciones que llevaron a Morgan a ganar el premio nobel de

medicina y fisiología en 1933, así como en la actualidad Michael Rosbash que en

2017 ha conseguido el premio nobel de medicina por descubrir los mecanismos

moleculares que controlan el ritmo circadiano, es decir, el reloj biológico de los

organismos.

Teniendo en cuenta investigaciones previas, el objetivo de este trabajo es conocer las

características morfológicas de la mosca de la fruta, Drosophila melanogaster, su

cultivo y manejo; con el fin de inducir una mutación exógena con luz ultravioleta en

una cepa de yellow-white-forked. Todo esto con ayuda de nuestra asesora externa

procedente de la Facultad de Estudios Superiores Iztacala, que nos proporcionó el

espacio de trabajo, conocimiento acerca de la genética de las Drosophilas

melanogaster y las técnicas de cultivo de las mismas.

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La genética es una parte de la biología que ha tomado una gran importancia en

ámbitos como la medicina, la industria y el conocimiento de los procesos hereditarios

en los sistemas vivos. Desde acontecimientos importantes como el estudio de las

leyes de herencia por Gregor Mendel, después donde Albrecht Kossel descubrió las

5 bases nitrogenadas (adenina, citosina, guanina, timina y uracilo), pasando por la

teoría cromosómica de Morgan, también el gran trabajo que hicieron Watson y Crick

con la ayuda de Rosalind Franklin y Maurice Wilkins al descubrir la estructura de doble

hélice del ADN.

Pero no todo se limita a sólo esos acontecimientos sino a muchos más. Una parte

importante de la genética que hay que entender, son las mutaciones; ya lo decía

Hermann Müller: “Es posible influir artificialmente en la mutación … no es un dios

inalcanzable que nos gasta bromas desde una ciudadela inexpugnable en el plasma

germinal”. 1

La síntesis moderna ha demostrado que las grandes mutaciones no representan la

fuerza transformadora de la evolución. Sin embargo, la evolución no podría tener lugar

sin la existencia de alteraciones genéticas de algún tipo. Por lo cual la investigación

se centra en investigar los procesos de mutaciones, que ocurren en la mosca de la

fruta Drosophila melanogaster y su cepa mutante yellow white fork. T. H. Morgan con

la mosca Drosophila melanogaster; especie la cual convirtió en una especie de “mina

de oro” y en unos de los mejores modelos de estudio para entender la herencia por

sus notables característica: pequeña, fácil de criar en laboratorio, tolera muy bien las

experiencias de mutación y cruzamiento, se reproduce todo el año sin interrupción,

por lo que hay una nueva generación cada 12 días; el macho y la hembra son fáciles

de diferenciar; posee 4 cromosomas. En resumen, un animal ideal para el estudio de

la herencia.

Por lo que se hizo la tarea de realizar un experimento con la mosca de fruta, en donde

se trabajó en inducir alguna mutación con luz ultravioleta (hv) a una línea yellow-white-

forked y observar cambios en su fenotipo, con el fin de conocer y entender de una

1 Una de las frases de Müller que posteriormente le hicieron ganar el Premio Nóbel de la Paz. Vease: 50 genetic ideas you really need to know, trad. Española de Santiago Madero, edit. Barcelona, España, p. 26.

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mejor manera el efecto de un agente mutágeno, que se abordó en la unidad de

variación genética.

ANTECEDENTES Y MARCO TEÓRICO:

Las mutaciones aportan la evidencia definitiva de que el DNA es el material genético.

Cuando un cambio en la secuencia del DNA causa una alteración en una proteína,

podemos concluir que el DNA codifica esa proteína. Es más, un cambio

correspondiente en el fenotipo de un organismo nos puede permitir la identificación

de la función de esa proteína. La existencia de muchas mutaciones en un gen permite

comparar muchas formas de variantes de una proteína, y el análisis detallado puede

utilizarse para identificar las regiones de la proteína responsable de una función

determinada, enzimática o de otro tipo.

Todos los organismos sufren un determinado número de mutaciones como resultado

de las funciones celulares normales o de interacciones al azar con el entorno. Se les

llama mutaciones espontáneas, y la velocidad con la cual se producen

características de cada organismo en particular.

La aparición de mutaciones puede incrementarse mediante el tratamiento con ciertos

compuestos. Se les llama mutágenos, y los cambios que causan se denomina

mutaciones inducidas. La mayoría de los mutágenos modifica una base

determinada del DNA o se incorpora en el ácido nucleico. La potencia de un mutágeno

se determina a partir de la medida en que aumenta la tasa de mutaciones por encima

del valor basal. Con el uso de mutágenos, es posible inducir muchos cambios en

cualquier gen. La posibilidad de mutaciones de reversión se debe seguir o cumplir

con ciertas características:

● Una mutación puntual puede revertirse mediante el restablecimiento de la

secuencia original o la aparición de una mutación compensatoria en otro lugar

del gen.

● Una inserción puede revertirse mediante la deleción de la secuencia insertada.

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● Una deleción de una secuencia no puede revertirse en ausencia de algún

mecanismo que restablezca la secuencia perdida. 2

Las mutaciones que inactivan un gen se llaman mutaciones primarias o directas. Sus

efectos son revertidos por retromutaciones, que son de dos tipos: reversiones

verdaderas y reversión de segundo sitio.

Una reversión exacta de la mutación original se llama reversión verdadera. Así, si un

par A-T fue reemplazado por un par C-G en la mutación original, otra mutación que

restablezca el par A-T regenerará exactamente la secuencia original.

El segundo tipo de retromutación, la reversión de segundo sitio puede ocurrir en

cualquier lugar del gen, y sus efectos compensan los de la primera mutación. Una

mutación directa produce cualquier cambio que altera la función de un producto

génico, mientras que una retromutación debe restablecer la función original del

producto alterado.

Puede ocurrir también que las mutaciones en otros genes permitan sortear los efectos

de la mutación en el gen original. Este efecto se llama mutación supresora. Un locus

en el cual una mutación suprime el efecto de una mutación en otro locus se llama

supresor. Por ejemplo, una mutación puntual puede causar la sustitución de un

aminoácido en un polipéptido, mientras que una segunda mutación en el gen de un

tRNA puede hacer que está reconozca el codón mutado, y que como resultado inserte

el aminoácido original en la traducción.

Las transversiones son más raras que las transiciones, ya que requieren el

apareamiento temporal entre dos purinas o entre dos pirimidinas, lo que altera el

diámetro del dúplex de DNA. Sin embargo, una causa de transversión es un de

desplazamiento de un protón seguido por una rotación de 180° de la base alrededor

del enlace glucosídico.

Durante mucho tiempo se creyó que las mutaciones puntuales eran la principal forma

de cambio de los genes individuales. Sin embargo, sabemos ahora que las

inserciones de secuencias cortas son bastante frecuentes. Algunos mutágenos, como

2 Vease: Genes Fundamentados (2012)., Krebs, J., Goldstein, E., & Kilpatrick Lewin,

S. Ed. Médica Panamericana. México, pp. 19, 22

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los agentes intercalantes, pueden causar inserción o la deleción de un solo par de

bases. Un agente intercalante se inserta entre dos pares de bases adyacentes en el

DNA de cadena doble, por lo que el dúplex se distorsiona y la DNA polimerasa puede

saltear o agregar una base durante la replicación. Si esto ocurre en la secuencia

codificante de un gen, se produce una mutación por corrimiento del marco de lectura.

A menudo, las inserciones son producidas por elementos de transposición, que son

secuencias de DNA con la capacidad de moverse desde un sitio a otro. Una inserción

dentro de una región codificante generalmente suprime la actividad del gen.

Cualquier par de bases del DNA puede mutar. Una mutación puntual cambia

solamente un par de bases y puede estar causada por dos tipos de eventos:

● Una modificación química del DNA que cambia directamente una base por otra

diferente.

● Un error durante la replicación del DNA que hace que se inserte una base

equivocada en un polinucleótido.

Las mutaciones puntuales pueden dividirse en dos tipos, dependiendo de la

naturaleza de la sustitución de bases:

● La clase más común es la transición producida por la sustitución de una

pirimidina por otra, o de una purina por otra. Esto reemplaza a un par C-G por

un par A-T o viceversa.

● La clase menos frecuente es la transversión, en la cual una purina es

reemplazada por una pirimidina o viceversa, por lo que un par A-T se

transforma en T-A o en C-G.3

Las transiciones también pueden estar causadas por el apareamiento erróneo de

bases, cuando bases no complementarias se aparean en lugar de hacerlo con el

esquema habitual de Watson y Crick. El apareamiento erróneo de bases

generalmente ocurre como una aberración producida por la incorporación al DNA de

una base anormal, que tiene propiedades de apareamiento flexible.

Sabiendo con claridad lo que son las mutaciones y de qué manera intervienen

podemos continuar con el objeto de estudio (Drosophila melanogaster).

3 Vease: Genes Fundamentados (2012)., Krebs, J., Goldstein, E., & Kilpatrick Lewin,

S. Ed. Médica Panamericana. México, pp. 20

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A.H. Sturtevant, C.B. Bridges y H. J. Müller establecieron la genética de Drosophila y

la linealidad de los genes, las duplicaciones, inversiones, translocaciones, alelos

múltiples, pleiotropía, herencia poligenética, entre otros

El nombre Drosophila proviene del griego “amor al rocío” y melanogaster, por la

“barriga oscura” en el macho. Ocasionalmente poliniza cereales, y se le conoce

también como mosca del vinagre, de la manzana, del vino o de la salmuera. Se

alimenta de bacterias y levaduras que crecen en restos vegetales. El sexo

determinado por la proporción de los autosomas a los cromosomas sexuales X, ya

que él Y es sexualmente (neutro).

Este díptero es un organismo eucariota pluricelular con cuatro pares de cromosomas:

Los sexuales que son los Y (submetacéntrico) y el uno (X) que es acrocéntrico. Los

cromosomas dos y tres (metacéntricos), cada uno con un brazo derecho (R) e

izquierdo (L), y el cromosoma cuatro, pequeño y con apariencia de punto.

El científico británico William Bateson (1861-1926), uno de los cuatro investigadores

que redescubrieron en 1900 las leyes de Mendel; y el que inventó el termino genética,

observó que en plantas y animales algunas estructuras aparecen y desaparecen

súbitamente, en 1915 un estudiante de Morgan, Calvin Bridges, observó una mutación

en Drosophila en la que la mosquita parece tener cuatro alas, (la mosquita es de la

familia de los dípteros , 2 alas y no cuatro como las mariposas y libélulas); Bridges

llamó a esa mutación bithorax4

A partir de ese momento muchos laboratorios se dieron a la tarea de trabajar, e

investigar las mutaciones en este pequeño organismo, que posee muchas virtudes

que se ven más adelante.

El ciclo tiene una secuencia de eventos bajo estricto control de expresión génica.

Puede durar desde 10 días a 25 +- 2 centígrados y 65% de humedad relativa (HR)

hasta 2 semanas a 21 grados. Inicia con la oviposición donde una hembra puede

depositar entre 600 a 800 huevos en sus 40-60 días de vida. El huevo de Drosophila

mide menos de medio milímetro de largo, tiene apariencia traslúcida y presente 2

4 Sampedro, J. (2002). Deconstruyendo a Darwin. Ed. Crítica. Madrid, España.

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micrópilos que le permiten respirar y flotar en los jugos de frutas fermentadas donde

es ovopositado.

Teniendo claras dichas bases de la mutación se continuará explicando a detalle el

objeto de estudio (Drosophila melanogaster). Tomando en cuenta su ciclo de vida,

morfología e incluso las variantes que pueden existir. A pesar de ello a lo largo de

esta investigación solamente se tomarán en cuenta las silvestres (+++/+++ o +++/Y)

y la trimutante yellow-white-forked (ywf / ywf o ywf / Y).

El ciclo de vida de la Drosophila

melanogaster posee una gran

ventaja para la investigación

científica, ya que con este

organismo presenta varios estados

de desarrollo que pueden ser

expuestos a diversos tratamientos

experimentales (Fig.1).

Figura 1. Ciclo de vida de Drosophila

melanogaster. Imagen tomada de http://webs.ucm.es/info/genetica/grupod/Genenzima/ciclovid.htm

El huevo de Drosophila mide menos de medio milímetro de largo, tiene apariencia

translúcida y presenta dos micrópilos que le permite respirar y flotar en los jugos de

frutas fermentadas donde es ovopositado (Fig 1.1).

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Figura 1.1 Embrión de la Drosophila melanogaster. Fotografía tomada de

https://es.wikipedia.org/wiki/Embriogénesis_en_Drosophila#/media/File:DrosophilaKutikula.jpg

Del huevo eclosiona la larva que pasa por tres estadios: primero (24hrs), segundo

(48hrs) y tercero (72hrs). Durante la fase larvaria la ingesta de alimento es continua,

llegando a consumir de 3 a 5 veces su peso, incrementando de 0.5 a 0.2 mg (Fig.

1.2).

Figura 1.2 Larva de la Drosophila melanogaster. Fotografía tomada de

https://www.treknature.com/gallery/photo87571.htm

La pupa es considerada la fase reorganizativa del ciclo de la Drosophila, durante el

cual la mayoría de las estructuras larvarias son destruidas y las estructuras adultas

se desarrollan a partir de tejidos embrionarios llamados anlagen. La fase de la pupa

tarda alrededor de 4 días a 25°C (Fig 1.3)

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Figura 1.3 Pupa de Drosophila melanogaster. Fotografía tomada de

https://www.irbbarcelona.org/es/news/descubren-en-drosophila-el-mecanismo-que-regula-la-produccion-de-

hormonas-esteroides

Cinco días más tarde emerge el imago: una mosca con apariencia de adulto que no

volverá a cambiar físicamente y que es la fase reproductiva del ciclo. Sin embargo,

emerge del pupario, la mosca tiene un cuerpo alargado de color blanquecino y las

alas están enrolladas en el dorso. En unos minutos, expandirá el exoesqueleto para

que se endurezca al contacto con el aire y cambie a un color sepia; además, circulará

hemolinfa hacia las venas de las alas para extenderlas y dejar que sequen hasta

adquirir su consistencia rígida (Fig 1.4).

Figura 1.4 Drosophila melanogaster en su etapa adulta. Fotografía tomada de http://naukas.com/2010/10/06/la-

evolucion-suavecita-y-las-moscas-aceleradas/

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La morfología de la Drosophila melanogaster está compuesta por un variado número

de caracteres que son parte fundamental en la estructura de su sistema; entre sus

características principales se hacen presente las aristas, antena, ojo, ocelos, húmero,

mesonoto, escutelo, ala, palpo, probóscide, cuello, mesopleura, coxa 1,

esternopleura, ptenopleura, coxa 2, hipopleura, coxa 3, metanoto, halterio, abdomen,

setas dorsales, entre otros aspectos. Es necesario destacar las diferencias

morfológicas que se da entre hembras y machos en el abdomen expresadas en el

siguiente cuadro comparativo:

Figura 1.5 Anatomía de la Drosophila melanogaster. Fotografía tomada de

http://www.bioscripts.net/zoowiki/temas/30C/imagen_10.JPG

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Figura 1.6 Ejemplo de la tri mutante (ywf). Fotografía tomada de https://3.bp.blogspot.com/_8-

X6eYWO41g/TEI4nmmgzbI/AAAAAAAAEK0/gXaKZoi6s_I/s1600/Drosophila+melanogaster+salvatge.jpg

SEXO

Macho Hembra

- 7 Tergitos

- Halterio

- Espiráculo

- 5 Esternitos

- Pene

- Arco genital

- Placa anal

- Tonalidad del abdomen más

oscuro

- 8 Tergitos

- Halterio

- Espiráculo

- Esternitos

- Placa vaginal

- Placa anal

- Tonalidad del abdomen más claro

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Materiales y métodos.

Materiales para la elaboración de la sustancia conservadora:

• 1 L de agua corriente.

• 5 mL de una solución de ácidos propiónico: ortofosfórico (10.1) como

bactericida.

• 5 ml de Nipagín (Tegosept) al 12% como fungistático (12 y aforados a 100 ml

de solución con alcohol al 96%).

• Diluir la solución de ácidos en un poco de agua y agitar; añadir el Nipagin y

agitar. Añadir el resto del agua. Conservar en envase ámbar.

• Incubadoras a 25 ° C +/- 2 ° C.

• Frascos cremeros de 240 ml, esterilizados en calor húmedo a 20 atmósferas

por 20 min (autoclave u olla exprés). Marcarlos con los datos

correspondientes: cepa de Drosophila, fecha de cultivo, responsable de la

siembra.

• 1 caja de 125 gr de hojuelas de papa Maggi®.

• 1 balanza granataria.

MUTANTES CON MÚLTIPLES ALELOS

Ejemplares Características

Silvestre (+/+) Cuerpo Sepia, ojos rojos y alas de borde

continuo y más largas que el cuerpo

Vestigial (vg/vg) Alas pequeñas y atrofiadas

Beaded Serratia (Bd / +) Alas con borde “aserrado”

Curly (Cy) Alas “curvas o rizadas”

Multiple wing hairs (mwh/mwh) Tricomas (pelos) múltiples en el ala

Miniature (m/m) Alas “miniatura” del tamaño del cuerpo

ebony (e/e) Cuerpo color ébano

Yellow (y/y). Yellow-white-forked

(ywf)

Cuerpo amarillo, ojos blancos, setas

dorsales curvas.

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• Abatelenguas o espátula para pesar las hojuelas de papa.

• 1 probeta de 1000 ml, 2 pipetas de 10 ml y vasos de precipitado para

preparar la solución conservadora.

• Tapones para frascos de hule espuma (denso como el que se usa para usar

cojines) lavados con detergente enjuagados abundantemente o de algodón

con gaza que puede esterilizarse varias veces.

• 1 pedazo de neopreno (como el que se usa para mover el “ratón” de la

computadora).

• Cultivos de Drosophila melanogaster con 11-12 días de edad (contados

desde el trasvase de siembra)5.

Técnica de trasvasado

Instrucciones para una persona diestra:

• Poner el frasco con medio “nuevo” a la izquierda- tapón limpio y el frasco de

cultivo “viejo” que se va a trasvasar* a la derecha sobre neopreno

• Retirar el tapón del frasco entre “nuevo” vacía. Dar un ligero golpe al frasco de

cultivo “viejo” sobre el neopreno evitando que las moscas se atasquen en el

medio, - retirar el tapón “viejo” y colocarlo boca arriba aun –a continuación,

voltear el frasco “viejo” colocarlo boca a boca con el frasco “nuevo”.

Manteniendo las bocas de los frascos juntas con la ayuda de las manos,

golpear suavemente sobre el neopreno para que un número suficiente de

moscas pase del cultivo “viejo” al frasco con medio “nuevo”. Si el medio de

cultivo “viejo” está muy liquido – empieza a moverse, evitar que pase al

“nuevo”.

• Golpear con suavidad el frasco “nuevo” para que las moscas no vuelen,

separar los frascos, y taparlos de inmediato con sus respectivos tapones

5 Esta es la elaboración de la solución conservadora por profesoras de la licenciatura de biología de FES Iztacala. Véase Drosophila Melanogaster un modelo experimental, edit. México: Facultad de Estudios Superiores Iztacala, pp. 16,17

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• Incubar a 25° +- 2°C y 60% humedad relativa (HR) hasta la emergencia de los

imagos, es decir, 10 días aproximadamente.6

OBJETIVO

• Conocer las características morfológicas de la mosca de la fruta, Drosophila

melanogaster, su cultivo y manejo; con el fin de inducir una mutación

(reversión) con un agente mutágeno (rayos UV) en una línea de yellow-white-

forked.

JUSTIFICACIÓN

• En este semestre en la clase de biología abordamos los principales tipos de

mutación y su papel en la variación de los organismos, posteriormente y a partir

de una visita guiada al laboratorio de Genética Toxicológica de la FES Iztacala

despertó nuestro interés por conocer el trabajo con mosquitas mutantes y cómo

se cultivan (silvestres y mutantes), y así mediante donación de cultivos de

silvestres y mutantes empezar a trabajar.

HIPÓTESIS.

• Si a la cepa trimutante ywf de Drosophila melanogaster, la exponemos a luz

ultravioleta con una longitud de onda de 365 nm por 3 minutos y en vista de

que son mutaciones recesivas entonces se verán alteradas en sus

características morfológicas con la posibilidad de obtener revertantes.

• Así mismo si tenemos una línea silvestre (+/+) de Drosophila melanogaster, y

la exponemos a luz ultravioleta con una longitud de onda de 365 nm por 3

minutos y en vista de que son mutaciones recesivas entonces se verán

alteradas en sus características morfológicas con la posibilidad de obtener

revertantes.

6 La técnica de trasvasado que se utiliza comúnmente para el cultivo de Drosophilas Melanogaster. Véase Drosophila Melanogaster un modelo experimental, edit. México: Facultad de Estudios Superiores Iztacala, p. 18

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DESARROLLO.

Calendarización de actividades.

Noviembre 2017 Diciembre 2017 Enero 2018 Diciembre 2018

• Inicio de planeación del

proyecto.

• Primera visita de asesoramiento a

FES Iztacala. Entrega de las

dos cepas.

• Accidente y contratiempo en el primer conjunto de

Drosophila melanogaster a

causa de mortalidad

poblacional.

• Segunda entrega de dos cepas de

Drosophila melanogaster.

• Primer trasvase de las Drosophilas melanogaster en

el medio de propagación.

• Segundo trasvase de las Drosophilas

melanogaster (+/+)

• Se realizó la compra de los

materiales para la elaboración de la

solución conservadora.

• Día de planeación acerca del trabajo de investigación

o Planeación de

visita a Ciudad Universitaria.

o Obtención de

información acerca de las mutaciones.

o Se pospuso el

trasvase de las cepas de

Drosophila melanogaster y se arreglaron detalles de la investigación.

o Se encontró anomalías en los

cultivos que tenía a su

disposición el equipo.

o Suspensión de

actividades del equipo.

o Último trasvase del año de cepas de

Drosophila melanogaster.

(Se trasvasaron

dos cultivos por precaución).

▪ Se retoma las

actividades para la

elaboración de proyecto.

▪ Día de trasvase

general, para la propagación.

▪ Se realiza la

radiación con luz ultravioleta.

➢ Primera revisión de

ejemplares a través de microscopios estereoscópicos.

➢ Segunda revisión de

ejemplares a través de microscopios estereoscópicos.

➢ Tercera revisión de

ejemplares a través de microscopios estereoscópicos

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Figura 1.7

Figura 1.8

Figura 1.9

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Figura 2.0

Figura 2.1

Figura 2.2

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Figura 2.3

Resultados.

Drosophilas Melanogaster radiadas con rayos UV.

Generaciones Ejemplares Silvestres (+/+) Ejemplares yellow-white-forked (ywf)

1 23-Nov 2017

13-Dic 2017

11-Ene 2018

Nuestras observaciones no

encontraron cambios visibles en los

ejemplares por lo cual se entiende que

no hubo mutación.

Figura 2.4 Revisión de ejemplares

Ninguno de los 3 marcadores tuvo

modificaciones visibles en las Drosophilas

radiadas, por lo tanto, no se encontró

mutación.

Figura 2.5 Revisión de ejemplares

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Análisis de resultados.

Basándose en el objetivo el cual consiste principalmente en inducir una mutación (en

la Drosophila melanogaster) existió una pequeña variación en las yellow white forked

esta trimutante, es llamada de este modo ya que presenta tres marcadores recesivos,

los cuales son caracteres fenotípicos de nuestra muestra de estudio. Es decir, tiene

un marcador “y” el cual indica que su cuerpo es de una tonalidad amarilla; por otro

lado, el marcador “w” nos hace referencia al color de los ojos los cuales son blancos,

finalmente el marcador “f” nos señala que tienen setas dorsales curvas). Analizando

los resultados obtenidos nos dimos cuenta que en la muestra de las silvestres (+/+)

no hubo cambio, sin embargo en la trimutante nos percatamos de una alteración en

una de sus alas, la cual sobrepasaba la media, con esto hacemos referencia a que

una de ellas tenía mayor tamaño, por otro lado en una segunda muestra notamos que

una de ellas con contenía el marcador “f”, vimos que a diferencia de la población esta

no contenía las setas curvas, sino que llegaba a parecerse a las setas de una

silvestre, es decir que surgió una regresión en dicho marcador. Como sabemos una

mutación generalmente no se muestra en su totalidad, muchas veces solamente se

presenta en una pequeña proporción.

Del 2 al 28-Nov.

2017.

Del 3 al 11-Dic.

2017.

Nuestras observaciones nuevamente

nos rectificaron la inexistencia de

cambio en las Drosophilas

melanogaster (+/+).

2 frascos no tuvieron ninguna alteración, sin

embargo 1 de ellos que contaba con 34

ejemplares si la tuvieron en 2 casos. Uno de

ellos es el tamaño de una de las alas que

supera la media y el otro caso es que el

marcado f que hace referencia a las setas

dorsales de la parte superior de la espalda no

tenía la forma de tenedor hacia arriba, sino

estaba en un sentido contrario (abajo) así

como las Drosophilas melanogaster (+/+).

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Las Drosophilas melanogaster ywf muestran una tonalidad más clara cuando nacen,

además de mostrar un instinto de supervivencia cuando estas se encuentran en las

pupas cuando estuvieron siendo analizadas por nosotros ya que existe la hipótesis

que los movimientos que realizamos con el material de estudio probablemente llevaba

a nuestros ejemplares ywf a hacer lo posible por salir de la pupa.

Figura 2.6 Ejemplar ywf recién nacida.

A lo largo del desarrollo de la actividad experimental se utilizó variedades de

materiales; ya sea de laboratorio como soluciones, probetas, vasos de precipitado,

agitadores, etc. así como materiales caseros.

A continuación, un listado de todo el material utilizado en la investigación:

● Para todos los trasvases se utilizó:

○ 22 frascos vacíos y estériles de Café Olé®.

○ 18 gasas.

○ 18 ligas elásticas.

○ 2 cajas de 125 gramos de puré de papa Maggi® (5 gramos por

cada frasco).

○ 1 L de solución conservadora (20 ml por cada frasco de solución

conservadora).

○ 4 paquetes de algodón.

○ 1 pipeta de vidrio graduada de 10 ml.

○ 1 probeta de 20 ml.

○ 1 embudo.

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○ 1 balanza granataria.

● Para la creación de la solución conservadora se utilizó:

○ 1 probeta de plástico de 2000 ml.

○ 1 pipeta de vidrio graduada de 10 ml.

○ 1 vaso de precipitado de 500 ml.

○ 1 vaso de precipitado de 250 ml.

○ 1 vaso de precipitado de 150 ml.

○ 1 vaso de precipitado de 50 ml.

○ 1 probeta de 10 ml.

○ 1 probeta de 50 ml.

○ 1 probeta de 5ml.

○ 1 L de agua de la llave.

○ 1 envase de ámbar (envase de caguama).

○ 40 gramos de Nipagín (Tegosept), del cual se utilizaron 12

gramos.

○ 100 ml de alcohol al 96%.

○ 5 ml de ácido propiónico.

• Instrumentos usados:

o 1 paquete de palillos.

o 4 microscopios estereoscópicos.

o 1 lampara de luz ultravioleta de 365 nanómetros.

o 1 estufa de laboratorio a 25°C +-2.

A lo largo de la investigación, la bata de laboratorio fue fundamental y un requisito.

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Conclusiones

Con base en las hipótesis ya establecidas encontramos que en una trimutante (ywf)

el marcador “f” (forked el cual se caracteriza por tener setas dorsales curvas) tuvo una

reversión ya que originalmente deberían ser curvas, sin embargo, se presentaron

como setas dorsales normales asimilándose de este modo a las de las silvestres (+/+).

Por lo tanto, llegamos a la conclusión de que una de nuestras hipótesis se cumplió,

ya que una mosca de la cepa de las yellow-white-forked, tuvo una reversión que afectó

una característica fenotípica, en este caso de setas dorsales curvas (f) a setas

dorsales normales.

También se comprobó que para obtener una mutación se necesita afectar a un

número alto poblacional y/o generaciones para suscitarse la mutación que afecta a

un fenotipo en algún ejemplar de Drosophila melanogaster, en especial si este posee

caracteres genéticos dominantes como es el caso de la silvestre (+/+).

Se aprendió la técnica de cultivo de la Drosophila melanogaster, su morfología, su

ciclo de vida, sus alelos y el método de inducción de una mutación exógena, en este

caso con luz UV de 365 nanómetros de longitud de onda.

Se sugiere que la investigación se podría extender con el estudio de mutaciones a

Drosophilas melanogaster (+/+) a características fenotípicas recesivas como por

ejemplo yellow, white, forked, etc.

“Todos somos unos genios, pero si juzgas a un pez por su habilidad de escalar un

árbol vivirá su vida entera creyendo que es estúpido”. Albert Einstein.

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Cibergrafía

http://flybase.org/

http://www.bbc.com/mundo/noticias-41512082