GUÍA PARA PRÁCTICAS DE LABORATORIO - … · Con la pipeta poner 1 o 2 gotas de suero fisiológico...

Facultad de Ciencias de la Salud

Facultad de Ciencias de la Salud| Guía para Prácticas de Laboratorio

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MEV- 430 - PARASITOLOGÍA Y ENFERMEDADES PARASITARIAS

GUÍA PARA PRÁCTICAS DE LABORATORIO

MEDICINA VETERINARIA Y

ZOOTECNIA



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Presentación

La presente Guía para Prácticas de Laboratorio ha sido desarrollada para que los

estudiantes de la asignatura de Parasitología y Enfermedades Parasitarias

dispongan de la información necesaria para la realización de las prácticas

correspondientes de acuerdo a los temas, objetivos y resultados de aprendizaje

definidos. En este documento se incluye el proceso en el laboratorio de

experimentación e investigación, con los respectivos recursos y resultados

esperados, para que el estudiante pueda desarrollar su práctica-taller y la

elaboración de sus respectivos informes o cualquier otra evidencia de aprendizaje,

que serán evaluadas con las rúbricas que constan en los anexos.

La Guía presenta una secuencia donde se especifica cada sesión de prácticas en

laboratorio con su respectivo proceso didáctico y formativo.



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1.- OBJETIVO

Introducir a los estudiantes en los métodos de identificación laboratorial de Parasitología.

2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS

Adquirirás las siguientes habilidades:

1. Realizar un acercamiento a los métodos de diagnóstico parasitológico.

2. Comprender los procedimientos de bioseguridad, asepsia y

resguardando el material del laboratorio.

Y se detallan los resultados o productos esperados de la práctica

- Los estudiantes deben conocer los procedimientos y reglas dentro del laboratorio

- ninguno

4.- ACTIVIDAD FORMATIVA

Prerrequisitos: Antes de la presente práctica los estudiantes fueron instruidos sobre su comportamiento dentro del laboratorio. Deben conocer de microscopía. Descripción de la actividad:

1. Se procederá a establecer normas y lineamientos a seguir durante todo el

semestre.

2. Se dividirán los grupos de laboratorio y los horarios de prácticas.

ASIGNATURA: PARASITOLOGÍA Y ENFERMEDADES PARASITARIAS

SIGLA: Mev430 PARALELO: 1 – 2 - 3 PERIODO: 2018 - 1

Fecha: 28/09/2017 PRÁCTICA No: 1

SESIONES: 4

TEMA: Introducción al laboratorio de

Parasitología

3.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS



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5.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

- Bowman D., (2011), Georgis Parasitología para veterinarios, (ed.9)

Madrid, España.Elsevier - Cordero del Campillo M.( 2009) Parasitología Veterinaria (Edicion 9) - Quiroz, (2011) LIBRO PARASITOLOGIA Y ENFERMEDADES PARASITARIAS DE

ANIMALES DOMESTICOS .Limusa. - WEYBRIDGE. LABORATORIO CENTRAL VETERINARIO, (2012) MANUAL DE

TECNICAS DE PARASITOLOGIA VETERINARIA, (Edición 2) GRAN EDITORIALACRIBIA

- F Ibarra, J Figueroa, H Quiroz - UNAM (2011) Parasitología Veterinaria (Volumen II) Helmintos, México DF, México."Editorial Acribia, S.A.

- Vargas, J., Vega J., Forero E., Cortés J. (2010) PARASITOLOGÍA VETERINARIA. FUNDAMENTOS Y PRÁCTICAS.

6.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS

Está práctica no será evaluada.



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1.- OBJETIVO

Desarrolla pericia en el procesamiento de muestras parasitológicas e identificación de parásitos.



3. Realizar el procesamiento de muestras fecales por medio de métodos

de observación directa.

4. Aplicar secuencialmente los pasos para la identificación de parásitos por

observación directa.


- Extensión de heces en portaobjetos teñido con lugol

Equipos de laboratorio: - 16 Microscopios.

Materiales: - 16Placas - 16Palillos - 16 Pipetas - Papel toalla - Heces frescas

Reactivos: - 30 ml Lugol - 50 ml Alcohol - 200 ml Suero fisiológico o agua destilada


SIGLA: Mev430 PARALELO: 1 – 2 - 3 PERIODO: 2018- 1


SESIONES: 4

TEMA: Observación directa y

observación de Protozoos




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Prerrequisitos: Antes de la presente práctica los estudiantes ya reconocen las estructuras parasitarias principales. Generalidades de la Parasitología

Descripción de la actividad:

3. Tomar con un palillo una cantidad de heces del tamaño de la cabeza un alfiler.

4. Colocar las heces en el centro de un portaobjetos.

5. Con la pipeta poner 1 o 2 gotas de suero fisiológico o agua destilada y disolver.

6. Disolver y extender las heces a lo largo del portaobjetos teniendo en cuenta que

se pueda ver a través de él.

7. Colocar 1 gota de lugol sobre la muestra y esparcirla completamente.

8. Observar bajo el microscópico

9. Las placas estarán colocadas en los microscopios.









La evaluación será durante la práctica tomando en cuenta los siguientes aspectos:

- Uniforme y Materiales

- Desarrollo de la Práctica

- Limpieza y Orden

Formato básico:



7

PRACTICA_1___________________

PARALELO________

CATEGORIA 4 Excelente 3 Bueno 2 Regular 1 por mejorar NOTA

Uniforme y

Materiales

Llevan uniforme Tienen todos los materiales

Llevan uniforme Les falta uno de los materiales

Lle+van uniforme Les falta más de dos materiales

Llevan uniforme Les falta los materiales

Desarrollo de la

Práctica

Realizó todos los pasos adecuadamente según las instrucciones del profesor, y obtuvo los resultados esperados

Realizó la mayoría los pasos según las instrucciones del profesor, no obtuvo los resultados esperados

No realizó los pasos según las instrucciones del profesor, no obtuvo los resultados esperados

No realizaron la práctica

Limpieza y

Orden

El espacio para la práctica está correctamente preparado. Durante la práctica su espacio se mantuvo limpio y ordenado. Después de la practica el laboratorio quedo completamente limpio y ordenado

El espacio para la práctica no estuvo correctamente preparado. Durante la práctica su espacio se mantuvo limpio y ordenado. Después de la practica el laboratorio quedo completamente limpio y ordenado

El espacio para la práctica no estuvo correctamente preparado. Durante la práctica su espacio no se mantuvo limpio y ordenado. Después de la practica el laboratorio quedo completamente limpio y ordenado

El espacio para la práctica no estuvo correctamente preparado. Durante la práctica su espacio no se mantuvo limpio y ordenado. Después de la practica el laboratorio no quedo completamente limpio y ordenado

Además se incluyen formatos, plantillas, modelos, u otros, necesarios para la realización

de la tarea.



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1.- OBJETIVO

Desarrolla pericia en el procesamiento de muestras parasitológicas e identificación de parásitos por métodos de flotación



1. Realizar el procesamiento de muestras fecales por medio de

métodos de flotación.

2. Aplicar secuencialmente los pasos para la identificación de protozoos

en heces fecales.


- Observación de protozoos u otras formas parasitarias


Materiales: - 16 Placas - 16 Palillos - 16 Pipetas - Papel toalla - Heces frescas - 16 Tubos de ensayo - 32 Vasos para muestras de orina - 32 Gasas




SESIONES: 4

TEMA: Método de flotación en

glucosa (sin centrífuga)




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Reactivos: - 30ml Lugol - 50ml Alcohol - 200ml Agua destilada - 320ml Solución saturada de glucosa


Prerrequisitos: Antes de la presente práctica los estudiantes ya reconocen las estructuras parasitarias de protozoos, huevos y larvas de nemátodos. Protozoos y nemátodos


1. Pesar un gramo de heces fecales.

2. Colocar en un vaso y disolver en 20ml de solución de glucosa

3. Filtrar con doble gasa

4. Llenar un tubo de ensayo completamente, hasta obtener el borde convexo.

5. Colocar sobre el tubo un portaobjetos y dejar reposar por 20 a 30 minutos.

6. Retirar el portaobjetos

10. Observar bajo el microscópico.














10

- Limpieza y Orden

Formato básico:

PRACTICA_1___________________

PARALELO________


Uniforme y

Materiales



Llevan uniforme Les falta más de dos materiales


Desarrollo de la

Práctica





Limpieza y

Orden






de la tarea.



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1.- OBJETIVO

Desarrolla pericia en el procesamiento de muestras parasitológicas e identificación de parásitos por métodos de flotación



1. Realizar el procesamiento de muestras fecales por medio de métodos de

flotación.

2. Aplicar secuencialmente los pasos para la identificación de protozoos en

heces fecales.


- Observación de protozoos u otras formas parasitarias

Equipos de laboratorio: - 16 Microscopios. - 1 Centrífuga

Materiales: - 16 Placas - 16 Palillos - 16 Asa metálica - 1 Rollo Papel toalla - Heces frescas - 16 Tubos de ensayo - 32 Vasos para muestras de orina




SESIONES: 4

TEMA: Método de flotación en

glucosa (con centrífuga)




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- Gasas Reactivos:

- 30ml Lugol - 50ml Alcohol - 100ml Agua destilada - 320ml Solución saturada de glucosa





2. Colocar en un vaso y disolver en 20ml de solución de glucosa.


4. Llenar un tubo de ensayo y tapar

5. Colocar en centrifugación por 20 minutos

6. Retirar el sobrenadante con un asa.

7. Colocar en un portaobjetos y teñir con lugol













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- Limpieza y Orden

Formato básico:

PRACTICA_1___________________

PARALELO________


Uniforme y

Materiales



Lle+van uniforme Les falta más de dos materiales


Desarrollo de la

Práctica





Limpieza y

Orden






de la tarea.



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1.- OBJETIVO

Desarrolla pericia en el procesamiento de muestras parasitológicas e identificación de hemoparásitos.



1. Realizar el procesamiento de muestras sanguíneas para el diagnóstico de

hemoparásitos.

2. Aplicar secuencialmente los pasos para realizar y teñir adecuadamente un

frotis sanguíneo.


- Observación de hemoparásitos.


Materiales: - 16 Placas - 16 Pipetas - 1 rollo de Papel toalla - Sangre fresca

Reactivos: - 30ml Reactivo de Giemsa - 50ml Alcohol - 300ml Agua destilada




SESIONES: 4

TEMA: Frotis sanguíneo y observación de

hematozoarios




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1. Colocar una gota de sangre en el extremo de la placa.

2. Poner otra placa a 45° y dejar que la gota se extienda en el borde por

capilaridad.

3. Hacer el frotis aplicando la misma presión.

4. Dejar secar el frotis

5. Teñir con el reactivo de Giemsa.

6. Lavar con agua corriente.





Madrid, España. Elsevier - Cordero del Campillo M.( 2009) Parasitología Veterinaria (Edición 9) - Quiroz, (2011) LIBRO PARASITOLOGIA Y ENFERMEDADES PARASITARIAS DE

ANIMALES DOMESTICOS. Limusa. - WEYBRIDGE. LABORATORIO CENTRAL VETERINARIO, (2012) MANUAL DE


- F Ibarra, J Figueroa, H Quiroz - UNAM (2011) Parasitología Veterinaria (Volumen II) Helmintos, México DF, México.Editorial Acribia, S.A.






- Limpieza y Orden

Formato básico:



16

PRACTICA_1___________________

PARALELO________


Uniforme y

Materiales





Desarrollo de la

Práctica





Limpieza y

Orden






de la tarea.



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1.- OBJETIVO

Desarrolla pericia en el procesamiento de muestras parasitológicas e identificación de parásitos por métodos de Flotación.




flotación

4. Aplicar secuencialmente los pasos para la identificación de nemátodos y

cestodos en heces fecales.


- Observación de huevos y formas larvarias de parásitos.


Materiales: - 16 Placas - 16 Palillos - 16 Pipetas - 1 rollo de Papel toalla - Heces frescas - 16 Tubos de ensayo - 32 Vasos para muestras de orina - 32 Gasas

Reactivos: - 30ml Lugol - 30ml Alcohol




SESIONES: 4

TEMA: Método de Willis




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- 200ml Agua destilada - 200ml Solución salina (331g de Cloruro de sodio (NaCl) en 1000 cc de agua

destilada)





2. Colocar en un vaso y disolver en 20ml de solución salina.


4. Llenar un tubo de ensayo y tapar.

5. Centrifugar por 20 minutos.

6. Retirar el sobrenadante y colocar en el portaobjetos.

7. Teñir con lugol













- Limpieza y Orden



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Formato básico:

PRACTICA_1___________________

PARALELO________


Uniforme y

Materiales





Desarrollo de la

Práctica





Limpieza y

Orden






de la tarea.



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1.- OBJETIVO

Desarrolla pericia en el procesamiento de muestras parasitológicas e identificación de parásitos por métodos de sedimentación




sedimentación

2. Aplicar secuencialmente los pasos para la identificación de nemátodos y

cestodos en heces fecales.


- Observación de huevos y formas larvarias de parásitos.



Reactivos: - 30ml Lugol - 30ml Alcohol - 200ml Agua destilada - 200ml Solución salina


SIGLA: Mev430 PARALELO: 1 – 2 - 3 PERIODO: 2018- 1

Fecha: 16/1012017 PRÁCTICA No: 7

SESIONES: 4

TEMA: Método de sedimentación en

solución salina.




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2. Colocar en un vaso y disolver en 20ml de solución salina.



5. Centrifugar por 20 minutos.

6. Retirar el sedimento y colocar en el portaobjetos.

7. Teñir con lugol













- Limpieza y Orden

Formato básico:



22

PRACTICA_1___________________

PARALELO________


Uniforme y

Materiales





Desarrollo de la

Práctica





Limpieza y

Orden






de la tarea.



23

1.- OBJETIVO

Desarrolla pericia para la identificación de parásitos por medio de la técnica de sulfato de zinc.



1. Identificar distintas formas parasitarias de los nemátodos

2. Diferenciar la morfología entre los diferentes nemátodos


- Identificación y observación de Nemátodos



Reactivos: - 30ml Lugol - 30ml Alcohol


SIGLA: Mev430 PARALELO: 1 - 2 PERIODO: 2014 - 2




SESIONES: 4

TEMA: Método de Sulfato de Zinc,

Observación de nematodos




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- 200ml Agua destilada - 200ml Sulfato de Zinc (Solución al 33%)





2. Colocar en un vaso y disolver en 20ml de agua destilada.



5. Centrifugar por 1 minuto a 2500rpm

6. Descartar el sobrenadante

7. Llenar el tubo con Solución de Sulfato de Zinc.


9. Retirar el sobrenadante y colocar en el portaobjetos.

10. Teñir con lugol














25



- Limpieza y Orden

Formato básico:

PRACTICA_1___________________

PARALELO________


Uniforme y

Materiales





Desarrollo de la

Práctica





Limpieza y

Orden






de la tarea.



26

1.- OBJETIVO

Desarrolla pericia para la identificación de Strongylus spp.



13. Identificar distintas formas larvarias del Strongylus spp.

14. Diferenciar la morfología entre formas larvarias del Strongylus spp.


- Identificación de Strongylus spp.

Equipos de laboratorio:

- 16 Microscopios - Incubadora.

Materiales: - Caja de Placas de Strongylus spp. - 3 Botellas de plástico de 1 litro - 12 Ligas elásticas - 12 Gasas - 24 Guantes de latex - 1 Rollo de Papel toalla - Suero fisiológico - Heces de cerdo o caballo





SESIONES: 4

TEMA: Método de Baerman y

observación de Strongylus spp.




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Prerrequisitos: Antes de la presente práctica los estudiantes ya reconocen las estructuras parasitarias de Cestodos


1. Cortar la botella de plástico de tal manera que la parte de arriba pueda

colocarse en forma de embudo sobre la parte de abajo.

2. Colocar en el embudo una gasa de tal forma que cuelgue y dos gasas más

colocadas como una red.

3. En la parte de abajo colocar 60 ml de suero fisiológico.

4. Sobre la red de gasa colocar la cantidad de heces.

5. Tapar con un guante abierto y fijar con la ligas.

6. Colocar a 37,8°C en la incubadora.

7. Observar cada día el suero fisiológico y efectuar la recuperación de larvas.













- Limpieza y Orden

Formato básico:

PARALELO________



28

PRACTICA_1___________________


Uniforme y

Materiales





Desarrollo de la

Práctica





Limpieza y

Orden






de la tarea.



29

1.- OBJETIVO

Desarrolla pericia para la identificación de Enterobius spp.



15. Identificar distintas formas parasitarias de Enterobius spp.

16. Diferenciar la morfología entre los diferentes Enterobius spp.


- Identificación de Enterobius spp.


Materiales: - Caja de Placas de Enterobius spp. - Placas portaobjetos - Cinta Scotch - 1 Rollo de Papel toalla


Prerrequisitos: Antes de la presente práctica los estudiantes ya reconocen las estructuras parasitarias de Nemátodos.




SESIONES: 4

TEMA: Método de Cinta Scotch

(Graham)




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1. Se coloca 2 o 3 cm de cinta Scotch en la parte perianal y alrededor del ano del

animal (Caballo)

2. Se pone la cinta sobre un portaobjetos y se lleva al laboratorio.

3. Se observa la placa en el laboratorio.













- Limpieza y Orden

Formato básico:

PRACTICA_1___________________

PARALELO________


Uniforme y

Materiales





Desarrollo de la

Práctica

Realizó todos los pasos adecuadamente según las instrucciones del profesor, y obtuvo

Realizó la mayoría los pasos según las instrucciones del profesor, no obtuvo los

No realizó los pasos según las instrucciones del profesor, no obtuvo los




31

los resultados esperados

resultados esperados

resultados esperados

Limpieza y

Orden






de la tarea.

1.- OBJETIVO

Desarrolla pericia para la identificación de parásitos por medio de la técnica de Stoll.




SIGLA: Mev430 PARALELO: 1 – 2 – 3 PERIODO: 20168- 1


SESIONES: 4

TEMA: Método de Hidroxido de

Sodio (stoll)



32

3. Identificar distintas formas parasitarias de los nemátodos

4. Diferenciar la morfología entre los diferentes nemátodos


- Identificación y observación de Nemátodos


Materiales: - 16 Placas - 16 Palillos - 16 Pipetas - 1 rollo de Papel toalla - Heces frescas - 16 Tubos de ensayo - Perlas de Vidrio

Reactivos: - 30ml Lugol - 30ml Alcohol - 200ml Agua destilada - 200ml Solución de Hidróxido de Sodio al 0,1%




1. Colocar en un tubo 5,6 ml de Hidróxido de sodio

2. Completar hasta 6ml con la cantidad de heces necesarias

3. Agregar las perlas de vidrio y agitar vigorosamente

4. Con la pipeta retirar el sobrenadante de la solución rápidamente.

5. Observar al microscopio.






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- Limpieza y Orden

Formato básico:

PRACTICA_1___________________

PARALELO________


Uniforme y

Materiales





Desarrollo de la

Práctica





Limpieza y

Orden

El espacio para la práctica está correctamente preparado. Durante la práctica su espacio se mantuvo limpio y ordenado. Después de la practica el

El espacio para la práctica no estuvo correctamente preparado. Durante la práctica su espacio se mantuvo limpio y ordenado. Después de la

El espacio para la práctica no estuvo correctamente preparado. Durante la práctica su espacio no se mantuvo limpio y ordenado. Después de la




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laboratorio quedo completamente limpio y ordenado

practica el laboratorio quedo completamente limpio y ordenado

practica el laboratorio quedo completamente limpio y ordenado


de la tarea.

1.- OBJETIVO

Desarrolla pericia para la identificación de parásitos por medio de la técnica de Stoll.



5. Identificar distintas formas parasitarias de los Céstodos.

6. Diferenciar la morfología entre los diferentes Céstodos.


- Identificación y observación de Céstodos.


Materiales: - 16 Placas


SIGLA: Mev430 PARALELO: 1 – 2 – 3 PERIODO: 20168- 1


SESIONES: 4

TEMA: Método de Formól Eter

(Ritchie) y observación de céstodos




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- 16 Palillos - 16 Pipetas - 1 rollo de Papel toalla - Heces frescas - 16 Tubos de ensayo - 32 Vasos para muestras de orina - 32 Gasas

Reactivos: - 30ml Lugol - 30ml Alcohol - 200ml Agua destilada - 200ml Éter - 200ml Formol


Prerrequisitos: Antes de la presente práctica los estudiantes ya reconocen las estructuras parasitarias de céstodos. Céstodos. Descripción de la actividad:

1. Colocar en un vaso y disolver en 10ml de formol.



4. Centrifugar por 2 minutos a 1500rpm

5. Descartar el sobrenadante

6. Llenar el tubo con formol hasta la mitad y completar hasta 20ml con éter.

7. Homogenizar


9. Descartar el sobrenadante.

10. Colocar el sedimento en el portaobjetos

11. Teñir con lugol






ANIMALES DOMESTICOS. Limusa.



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- WEYBRIDGE. LABORATORIO CENTRAL VETERINARIO, (2012) MANUAL DE TECNICAS DE PARASITOLOGIA VETERINARIA, (Edición 2) GRAN EDITORIALACRIBIA







- Limpieza y Orden

Formato básico:

PRACTICA_1___________________

PARALELO________


Uniforme y

Materiales





Desarrollo de la

Práctica





Limpieza y

Orden







37


de la tarea.

1.- OBJETIVO

Desarrolla pericia para la identificación de parásitos por medio de la técnica de Dennis.



7. Identificar distintas formas parasitarias de los tremátodos

8. Diferenciar la morfología entre los diferentes tremátodos


- Identificación y observación de Tremátodos

Equipos de laboratorio: - 16 Microscopios. - 1 Centrífuga - 1 Estereomicroscópio

Materiales: - 16 Placas - 16 Palillos - 16 Pipetas - 1 rollo de Papel toalla - Heces frescas - 16 Tubos de ensayo - 32 Vasos para muestras de orina


SIGLA: Mev430 PARALELO: 1 – 2 – 3 PERIODO: 2018 - 1


SESIONES: 4

TEMA: Método para Fasciola

hepática (Dennis)




38

- 32 Gasas - 3 Malla metálica - 3 Probeta 50cc - 3 Embudo de vidrio - 3 Caja petri

Reactivos: - 30ml Lugol - 30ml Alcohol - 200ml Agua destilada - 200ml Solución detergente 5%




1. Pesar 2g de materia fecal 2. Colocarlos en un recipiente o mortero con capacidad de 100 cc. 3. Agregar 25 cc de solución detergente* 4. Mezclar con un agitador sin formar espuma 5. Colocar una malla metálica ( No.80 ) en un embudo 6. Filtrar la suspensión en un tubo de 50 cc 7. Lavar con solución detergente el recipiente que contenía la muestra 8. Filtrar el lavado y agregarlo al tubo de 50 cc 9. Adicionar solución detergente al sedimento de la malla hasta llenar el tubo 10. Dejar en reposo el tubo por tiempo de 5 a 10 minutos 11. Eliminar las ¾ partes del sobrenadante del líquido. 12. Lavar el embudo con solución detergente y agregarla al tubo 13. Llenar el tubo hasta el reborde con solución detergente 14. Dejar en reposo durante 10 minutos 15. Eliminar el sobrenadante del tubo, dejando 2 a 3 cc del sedimento 16. Agregar 1 a 2 gotas de Lugol y dejar en reposo de 2 a 5 minutos 17. Verter el contenido en una caja de petri 18. Mirar al esteromicroscopio y contar los huevos de Fasciola hepática 19. El número de huevos se divide por 2 y se expresa Huevos por gramo



Madrid, España. Elsevier - Cordero del Campillo M.( 2009) Parasitología Veterinaria (Edición 9)



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- Quiroz, (2011) LIBRO PARASITOLOGIA Y ENFERMEDADES PARASITARIAS DE ANIMALES DOMESTICOS. Limusa.

- WEYBRIDGE. LABORATORIO CENTRAL VETERINARIO, (2012) MANUAL DE TECNICAS DE PARASITOLOGIA VETERINARIA, (Edición 2) GRAN EDITORIALACRIBIA







- Limpieza y Orden

Formato básico:

PRACTICA_1___________________

PARALELO________


Uniforme y

Materiales





Desarrollo de la

Práctica





Limpieza y

Orden



El espacio para la práctica no estuvo correctamente preparado. Durante la práctica su espacio no se mantuvo limpio y ordenado. Después de la practica el laboratorio quedo completamente limpio y




40

ordenado


de la tarea.


de la tarea.

1.- OBJETIVO

Desarrolla pericia para la identificación de Ácaros y otros artrópodos



9. Identificar distintas formas parasitarias de los artrópodos

10. Diferenciar la morfología entre los diferentes artrópodos


- Identificación y observación de artrópodos



SIGLA: Mev430 PARALELO: 1 – 2 – 3 PERIODO: 2018 - 1


SESIONES: 4

TEMA: Raspado cutáneo,

Observación de Artrópodos




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Materiales: - 16 Placas - 6 bisturíes - 1 rollo de Papel toalla - Tijeras

Reactivos: - 30ml Azul de metileno - 30ml Alcohol - 30ml de aceite de vaselina


Prerrequisitos: Antes de la presente práctica los estudiantes ya reconocen las estructuras parasitarias de artrópodos y sus distintas especies Artrópodos


1. Quitar el filo al bisturí

2. Colocar aceite de vaselina en el bisturí

3. Cortar el pelo del animal en el área afectada.

4. Realizar el raspado cutáneo en ángulo de 45° sobre la piel del animal, hasta

que exista sangrado capilar.

5. Colocar la muestra en un portaobjetos y teñir con azul de metileno













42




- Limpieza y Orden

Formato básico:

PRACTICA_1___________________

PARALELO________


Uniforme y

Materiales





Desarrollo de la

Práctica





Limpieza y

Orden






de la tarea.



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