UNIVERSIDAD NACIONAL PEDRO RUÍZ GALLO

LAMBAYEQUE“Facultad de Ciencias Biológicas”

GUÍA DE FISIOLOGÍA VEGETAL

CURSO: FISIOLOGÍA VEGETAL

DOCENTE: Dr. Walter Díaz Pinillos

ALUMNO: Villalta Tapia, Anthony

PRACTICA 02

FACTORES QUE AFECTAN LA VELOCIDAD DE DIFUSIÓN

I.- OBJETIVOS

Se evaluaran los factores que intervienen en la velocidad de difusión:

Lambayeque, 25 Marzo del 2015

A. TEMPERATURA

B. CONCENTRACIÓN

C. TAMAÑO Y MASA DE LA PARTÍCULA

II.- MATERIALES

1. DIDACTICOS

Guía de prácticas. Apuntes de clase.

2. DE LABORATORIO

Balanza analítica. Calentador. Vaso de precipitación. Varilla de vidrio. Láminas de colapís. Termómetro. Agar agar. Tubos de ensayo de 0.5 x

15cm. Pipetas (10ml). Corchos. Etiquetas. Gradillas. Refrigeradora. Colorantes: eosina, fucsina

ácida, rodamina y rojo de congo.

Regla milimetrada.

La difusión consiste en el movimiento neto de moléculas de un punto a otro debido a su movimiento cinético azaroso en el aire o líquido. La velocidad con que ocurre la difusión depende de varios factores, entre los cuales está el tamaño y la concentración de las partículas a difundir, así como también la temperatura y presión del medio en el que difunden las partículas.

Obsérvese que las moléculas de colorante (en A) difunden hacia la derecha, mientras que las de agua (en B) difunden hacia la izquierda. El resultado final es una distribución uniforme de ambos tipos de moléculas.

UTILIZACIÓN DE COLORANTES Y UNA BATERIA DE TUBOS PARA RELIZAR LAS EXPERIENCIAS SIGUIENTES

COLORANTES

EXPERIENCIA Nº 02: EFECTO DE LA TEMPERATURA

Tome dos tubos con colapez al 25% agregue tres ml de eosina al 0.01M utilizando una pipeta terminal de 10ml. Coloque uno de los tubos en el refrigerador a 4ºC; deje el otro sobre la mesa a temperatura ambiente.Se recomienda diferenciar los tubos colocándoles etiquetas en el tercio superior anotándose el experimento y el colorante.Tape el tubo con un corcho.

Debe tenerse en cuenta que este colorante tiene su propia pipeta.Mida la distancia a que se difunde el colorante en ambos tubos, haciendo las lecturas siempre a la misma hora en los intervalos indicados. Anote la temperatura del interior del refrigerador y del ambiente de la mesa. Con los valores obtenidos calcule el coeficiente de temperatura para 10ºC. Utilice para esto:

Dónde:K1 = Lo que difundió a menor

temperatura.

K2 = Lo que difundió a mayor temperatura.

T2 = La temperatura mayor en grados Kelvin.

T1 = La temperatura menor en grados Kelvin.

Q10 = Coeficiente de temperatura, es el número de veces que aumenta la velocidad del proceso por cada 10 grados de aumento de temperatura.

ESQUEMAS

K2

K1Q10 = )(

10T2 – T1

TUBO A TEMPERATURA AMBIENTE 25°C

TUBO A 4°C

TRATAMIENTO TEMPERATURA Distancia en mm después de:

1 día 2 días 3 días 4 días Q10Mesa 25 ºC 0.04m

m0.7mm

1,2mm

1,4m20.62

Refrigerador 4 ºC 0.01mm

0.5mm

0,4mm

0,5mm

RESULTADOS:

DISCUSION:

En la experiencia se determinó que la temperatura influye en el tiempo de difusión, ya que el tubo que se dejó al medio ambiente se difundió más rápido que el tubo que se dejó en el frigider a una Tº de 4ºC, a la vez se pudo comprobar que el soluto de mayor temperatura se difundió en menor tiempo y mayor velocidad. Mientras tanto el soluto que estaba en menor temperatura se difundió en mayor tiempo y menor velocidad.

EXPERIENCIA Nº 03: EFECTO DE LA CONCENTRACION

Tome dos tubos de ensayo con el colapez y trabaje similar a lo anterior; en un tubo agregue con su respectiva pipeta 5ml de Eosina al 0,01M y al otro tubo agregue el mismo colorante pero al 0,001M.Compare la distancia recorrida por la eosina en los dos tubos durante una semana día a día.

RESULTADOS

DISOLUCION

Distancia en mm después de:

1 día 2 días 3 días 4 días 5 días 6 días 7 díasConcentrada

0.3mm

0.4mm

8 mm 11 mm

15 mm

20 mm

Diluida 0.2mm

0.6mm

10 mm

13 mm

17 mm

22 mm

ESQUEMAS:

2 días 4 días 5 días

Concentrada 1.1 1.3 1.5

Diluida 1.1 1.1 1.4

0.10.30.50.70.91.11.31.5

EFECTO DE LA CONCETRACION

CEN

TIM

ETRO

S

DISCUSION:Pudimos comprobar que cuando el colorante se encuentra en una concentración menor, la difusión es más rápida

EXPERIENCIA Nº 04: EFECTO DE LA MASA Y TAMAÑO DE LA PARTICULA

Procesa como en lo anterior. Tome cuatro tubos con colapis y agregue a cada uno 3ml del colorante respectivo:

COLORANTE CONCENTRACION

PESO MOLECULAR

CON SUS PIPETAS

RESPECTIVAS(10 ML.)

Rojo congo 0.01M 697 “Rodamina 0.01M 479 “Eosina 0.01M 624 “Fucsina acida 0.01M 586 “

Utilizando regla milimetrada e invirtiendo los tubos mida la difusión del colorante día a día durante una semana. Tenga cuidado de tapar bien los tubos con los corchos.

Tome atención en la medida del primer día

Utilice la ecuación de First para el cálculo teórico de la difusión:

Dónde:

d= Distancia recorrida.

a= Factor de proporcionalidad: Distancia del Primer día.

t = Tiempo en días

RESULTADOS

COLORANTE

Distancia en mm después de:1 día 2 días 3 días 4 días

Medida

Calculada

Medida

Calculada

Medida

Calculada

Rojo Congo 0.5mm 0.3mm

0.4mm 0.6mm

1.02mm 0.9 1.8mm

Rodamina 0.5mm1.2mm

1.7mm 1.8mm

3mm 1.9 3.8mm

Eosina 0.2mm 0.5mm

0.7mm 1.2mm

2mm 1.3 2.6mm

d = a. √t

Fucsina ácida

0.01mm

1.1mm

1.6mm 1.5mm

2.6 1.6 3.2mm

ESQUEMAS:

DISCUSION:

En la experiencia se puede afirmar que a mayor masa la difusión de las partículas es menor y más lenta.

Grafique en papel milimetrado, con la distancia en la ordenada y el tiempo en la abscisa. Utilice un color para cada colorante.

Cuestionario:

1.¿Por qué el rojo de Congo se comportó de manera diferente de los demás colorantes?

Porque, en este caso este colorante nota una gran reducción tanto en el peso y tamaño de la muestra aplicada, en donde podemos percibir que habido una baja producción de presión debido a un déficit en la difusión.

Rojo Congo Rodamina Eosina Fucsina ácida

2.¿Por qué se utilizaron colorantes con igual concentración molar y no al mismo porcentaje?

Porque aquí podemos notar con una mayor precisión, que al utilizar diferentes colorantes a la misma concentración se pudo determinar, cuales influyeron más o actuaron en proporciones favorables con respecto a la velocidad de difusión.

PRACTICA N° 03

OSMOSIS

I. OBJETIVOS:

Demostración de la osmosisMedición de la presión osmóticaDemostración de la presión de turgenciaEvaluar la actividad osmótica de la partícula

II. MATERIALES:

DIDÁCTICOS

Guía de prácticas

Apuntes de clase

Textos

DE LABORATORIO

soportes

Balanza analítica

papel celofán

probetas

capilar de vidrio o.5cm diámetro

tubos de ensayo

deposito con agua pura

varillas de vidrio

hilo

termómetros

tijeras

regla milimetrada

grifo de agua

refrigeradora

lápiz cristalográfico

cuchillo

solución de sacarosa

almidón

BIOLÓGICOS

Láminas de intestino de ave o de mamífero

Jugo de naranja

Zanahorias

EXPERIENCIA N°5: DEMOSTRACIÓN DE LA OSMOSIS MEDIANTE EL OSMÓMETRO

coloque una solución de sacarosa 1.0 M en una bolsa de celofán, atándola con hilo en el extremo de un capilar de vidrio de 0.5cm. de diámetro, justo a nivel del tapón de seguridad del tubo capilar, eliminando las burbujas de dicha bolsa.

Corte el remanente de celofán por encima de la atadura.

Se recomienda que el tubo no presione al fondo de la bolsa de celofán.

Lave la parte externa de la bolsa con agua corriente muy rápidamente y sumérgela en un depósito con un litro de agua pura hasta el nivel de la atadura y sujete el capilar verticalmente, usando un soporte universal.

Anote con lápiz cristalográfico el primer nivel de la solución en el capilar y minutos antes de terminar la práctica anote la altura del segundo nivel y el tiempo utilizado.

La solución de sacarosa 1.0 M debe prepararse de 1.0 litro y servirse en las bolsas de celofán con probeta graduada de 100cc., anotándose el gasto de la solución.

Anote el gasto de agua pura.

Anote la temperatura en grados centígrados de la solución de sacarosa.

La bolsa se elabora con papel celofán de 17cm x 17cm

Calcule la presión osmótica de la solución de sacarosa utilizando la fórmula:

PO=TRIC

Dónde:

PO=presión osmótica dada en atmosferas

T=temperatura en grados kelvin

R=constante 0.082

I= constante de ionización, para la sacarosa = 1

C=concentración molar. En este caso es 1.0 Molar

ESQUEMAS:

RESULTADOS:

PO=TRIC

PO= (293k°) (0.082) (1) (1)

1er nivel de

la solución en el capilar

2do nivel de

la solución en el capilar

tiempo

volumen de la solución en la bolsa

lo que se

gastó de

agua pura

temperatura de la solución

en grados kelvin

[M] de la

solución

presión osmótica

0 10ml52%

70 min.

9.5ml100%

5ml 24°C 1M 24.354atm

PO=24.026 atmosferas

DISCUSIÓN:

Se puede afirmar que la presión de turgencia es la presión que se ejerce como consecuencia de la osmosis.

Asimismo la pared celular ejerce presión sobre la membrana y cuando

estas presiones se igualan se dice que la célula esta turgente.

EXPERIENCIA N°6: PRESIÓN OSMÓTICA FINAL POR CAMBIO DE VOLUMEN

Si en la experiencia anterior la bolsa es una célula artificial elástica el agua que ingresa por osmosis da lugar a que el soluto (sacarosa) se desconcentre, habrá entonces al final del proceso osmótico una presión osmótica final.

Calcule la presión osmótica final en dicho proceso utilizando la fórmula:

V1P1=V2P2

DONDE:

V1= volumen inicial de la solución en la célula artificial expresado siempre con el 100%

V2= volumen final de la solución en la célula artificial expresado siempre por encima del 100%

P1=presión osmótica inicial

P2= presión osmótica final

RESULTADOS:

V1P1=V2P2

100% X 24,354 = 152.6X P2 70ml 100%

P2 = 100 X 24,354 20ml x

152.6

X= 28,57%

P2 =15,96 Atmosferas V2= 100% +28,57% = 128,5%

DISCUSIÓN:

Se puede concluir que el paso del solvente agua desde una zona de menor presión osmótica a otra de mayor presión osmótica, a través de una membrana semipermeable.

De la experiencia realizada se puedo apreciar que la presión osmótica es más baja que la inicial esto se debería a que hay ingreso de agua, con lo cual la célula gana agua y trata de equilibrar la concentración de soluto, para estar a presiones iguales llamada turgente.

EXPERIENCIA N° 7: INVESTIGACIÓN DE LA PRESIÓN OSMÓTICA MEDIANTE LA CONGELACIÓN

Tome 10cc de jugo de naranja madura, puede ser naranja o uva en una probeta de 50cc. O vaso de precipitados y coloque dentro de la solución un termómetro. Luego poner todo el sistema dentro de la nevera de la refrigeradora hasta que el jugo vegetal congele, anotando su punto crioscopico.

Calcule la presión osmótica de dicho jugo vegetal con la fórmula:

PO= 22.4 x ∆1,86

Dónde:

PO= presión osmótica dada en atmosferas.

22.4= constante

1.86 = constante

∆= punto crioscopico del jugo del vegetal

ESQUEMAS:

JUGO DE NARANJA 5°c

RESULTADOS:

PO=22.4 x ∆1,86

PO=22.4 x22.51.86

PO= 26.5 atmosferas

DISCUSION:

De los datos obtenidos podemos decir que la presión sube ya que los átomos tienen menor movilidad y por ende menor energía cinética.

EXPERIENCIA N°8: PRESIÓN DE TURGENCIA

Atar fuertemente con hilo una pequeña lamina de intestino de ave o de mamífero sobre la boca de un tubo de vidrio pequeño que contenga totalmente una solución 1Molar de sacarosa, evitando así mismo la formación de burbujas.

La lámina de intestino debe ser de 4cm x 4cm. Después de atar corte el remanente

Sumergir dicho tubo en otro más grande que contenga agua pura.

ESQUEMA

DISCUSION

Durante la experiencia se puede observar que el agua ingresa al buche porque hay mayor concentración de soluto y también se puede decir que en el buche representa una membrana semipermeable en este experimento.

EXPERIENCIAN°9: ACTIVIDAD OSMÓTICA DE LA PARTÍCULA

Tome dos zanahorias grandes y haga un hueco cónico de una profundidad de 3 a 4cm. En el corazón de cada una de ellas, dejando paredes delgadas pero intactas. llene la cavidad duna de las zanahorias con cristales de sacarosa y la otra con almidón.

Mantenga las zanahorias verticalmente en un soporte durante el experimento. Anote las observaciones después de varias horas, un día varios días.

ESQUEMA:

RESULTADOS:

TIEMPO ZANAHORIA CON SACAROSA ZANAHORIA CON ALMIDÓN

Una hora Actividad osmótica(exósmosis) No hay actividad osmótica; presenta osmosis inactiva.

Un día Aumento de actividad osmótica Sin cambiosDos días La zanahoria se ha deshidratado

completamente, debido a la actividad osmótica de las partículas de la sacarosa.

Sin cambios

DISCUSIÓN

La mayor actividad osmótica de la sacarosa se debe a la concentración y la presión osmótica es alta y sus moléculas son más pequeñas, en comparación con las moléculas del almidón que son de mayor tamaño

PRACTICA N° 04

PLASMOLISIS

I. Objetivos:

a. Demostración de la plasmólisis

b. Detectar las plasmólisis incipientes

c. Calcular la presión osmótica del Tejido vegetal.

II. INTRODUCCIÓN.

La osmosis es el movimiento de agua a través de una membrana

selectivamente permeable (permeable al agua pero no a los solutos).

El movimiento en este caso está referido al agua, que se moverá

desde una solución de menor concentración de solutos hacia el

compartimiento con mayor concentración de solutos.

En las células por tener una membrana semipermeable se registra

flujo de agua por osmosis.

Tanto la difusión como la osmosis son pasivos (no requieren gasto de

energía) y se registra un flujo neto hasta que el sistema alcanza

equilibrio, una vez alcanzado las moléculas continúan moviéndose,

pero el flujo es igual en todos los sentidos.

El contenido celular tiene generalmente varios tipos de solutos, los

cuales disminuyen la energía libre del agua en ese sistema. Así si

ubicamos una célula en agua destilada o en una solución de menor

concentración de solutos respecto a la osmolaridad celular, el agua

tenderá a ingresar a la célula; se dice en este caso que la solución es

HIPOTÓNICA respecto al contenido celular.

En el caso inverso, si ubicamos una célula en una solución

HIPERTÓNICA (de mayor concentración de solutos) el agua tenderá

a salir. Por último si la concentración de solutos de la solución es igual

a la existente en el interior celular, el flujo neto será cero y la célula

mantendrá su contenido de agua original., en este último caso se dice

que la solución es ISOTÓNICA.

En el caso de las células que no tienen pared celular, al sumergirlas

en una solución hipotónica se produce CITÓLISIS, y si se ubican en

una solución hipertónica el volumen celular disminuye visiblemente

produciéndose CRENACIÓN.

En el caso de las células vegetales, no se produce CITÓLISIS ni

CRENACIÓN, ya que por fuera de la membrana plasmática, existe

una estructura rígida, capaz de soportar cierto nivel de presión y que

no cambia su volumen, aún cuando sí ocurra esto con su contenido.

Cuando una célula vegetal se sumerge en una solución hipotónica la

célula absorbe agua; pero no aumenta su volumen sino que el

contenido celular ejerce una mayor presión (presión de turgencia) y la

pared celular opone una presión en sentido opuesto (presión de

pared) , por ello la célula no se deforma. Es importante indicar que

normalmente las células vegetales se encuentran en este estado, es

decir turgentes.

Al ubicar una célula vegetal en una solución hipertónica, ésta perderá

agua, el contenido celular dejará de ejercer presión de turgencia y se

separará de la pared celular. Este estado se conoce como

PLASMÓLISIS

Las células vegetales normalmente se encuentran túrgentes, al

sumergirlas en una solución isotónica pierden agua, hasta que la

presión de turgencia (y en consecuencia también la presión de pared)

se hace cero. Este estado se conoce como PLASMÓLISIS

INCIPIENTE. Es difícil una célula en particular, de no contar con

instrumental relativamente sofisticado; sin embargo tejido se

considera que se encuentra en el punto de plasmólisis incipiente

cuando un 50% de las células se encuentran túrgidas y un 50%

muestran signos de plasmólisis. Esto se puede observar al

microscopio, sin embargo es difícil la observación al no existir algún

contraste entre el protoplasma y la cavidad definida por la pared

celular. Facilita la observación el trabajar con células con cloroplastos,

como la Elodea; o bien con células que contengan pigmentos en sus

vacuolas, como las que se encuentran en la epidermis foliar de

Tradescantia virginiana o Zebrina péndula, de pecíolos de

betarraga (Beta vulgaris), o de catafilo de cebolla morada (Allium

cepa)

III. MATERIALES.

3.1 Didácticos.

Guía de prácticas.

Apuntes de clase.

Textos.

3.2 De Laboratorio.

Probetas graduadas Etiquetas Varillas de vidrio Soluciones de sacarosa Balanza analítica Porta Objetos Espátulas Laminas Portaobjetos

Laminas

Cubreobjetos

Placas Petri

Lápiz cristalográfico

3.3 Biológicos.

Hojas de tradescantia Catáfilas de cebolla

IV. EXPERIENCIAS:

EXPERIENCIA Nº 10:

Prepare soluciones de sacarosa con las siguientes molaridades:

0.10; 0.15; 0.20; 0.25; 0.30; 0.35; 0.40; 0.45 y 0.50 y a un

volumen de 20ml c/u.

Colóquelas en placas Petri anotando en ellas las respectivas

concentraciones utilizando etiquetas.

Sumerja varios pedacitos de epidermis pigmentada, puede ser

de tradescantia.

Tenga cuidado de que el tejido este siempre en buen contacto

con la disolución.

Después de 5 o 10 minutos observe al microscopio poniendo

una gota de la solución respectiva sobre la muestra y anote con

cual molaridad hay por lo menos un 30% de las células

plasmolizadas.

Detecte la plasmólisis incipiente y anote la concentración de la

solución que causa dicha plasmólisis.

Esquemas:

Resultados:

PRACTICA N° 08

NUTRICION MINERAL

I. OBJETIVOS:

Sé utilizaran plantitas de maíz en una solución nutritiva completa y en soluciones en las cuales se omita cada vez un elemento. Al final del experimento, por comparación del crecimiento de la parte aérea y de las raíces plantas de cada tratamiento, se estudiara el efecto de la deficiencia de cada uno de los elementos en el desarrollo de las plantas, y se realizar observaciones visuales de los síntomas que aparecen.

En este experimento solamente se incluyen aquellas deficiencias que más fácil y rápidamente pueden hacerse aparecer con soluciones nutritivas incompletas. En el caso de otros elementos hay ocasiones en que pequeñísimas cantidades, que se encuentran en forma de impurezas en los reactivos usados, o las reservas en las semillas empleadas, son suficientes para un desarrollo prácticamente normal de las plantitas, al menos por algún tiempo.

MATERIALES:

DIDÁCTICOS: Guía de prácticas, apuntes de clase, textos.

DE LABORATORIO

Matraces Agua destilada Frasco ámbar con tapa de madera

Lejía Frasco de suero Etiquetas Solución madre o stock

Cloruro de calcio al 0.2% Regla milimetrada Soluciones nutritivas Sulfato de cobre Carbonato de calcio sacabocados

Pipetas Baguetas Horno Tubos de ensayo Algodón Cloruro de sodio al 2% Balanza analítica Fenolftaleína Hidróxido de sodio gradillas

BIOLÓGICOS: Plantas tiernas de maíz

EXPERIMENTO N°22: DEMOSTRACIÓN DE LA NECESIDAD DEL ELEMENTO PARA EL DESARROLLO DE LA PLANTA

Prepare medio litro de cada una de las soluciones que se indica luego procesa en la forma siguiente: llene matraces aforados con capacidad de un litro o frascos de suero hasta la cuarta parte con agua destilada. Para cada tipo de solución nutritiva agregue las cantidades necesarias para las disoluciones madres (las cifras en el cuadro son mililitros de disolución stock para medio litro de la solución nutritiva).complete volumen a medio litro y mezcle.

Llene los frascos de cultivo (frascos ámbar de ½ litro)hasta unos cuatro centímetros más debajo de la boca entre plántulas previamente germinadas escojan las que tengan raíces por lo menos 10cm de largo. Procure que las plantas que van en u mismo frasco sean del mismo tamaño. Fije dos plantitas por medio de un poco de algodón en cada ranura de la tapa de madera y coloque estas cuidadosamente en los frascos, sin dañar las raíces.

Las raíces debieron ser lavadas cuidadosamente con agua de grifo exclusivamente a nivel de la raíz para eliminar la tierra adosada. A si mismo los frascos de preparación de la solución como los de cultivo debieron ser lavados escrupulosamente utilizando lejía y enjuagados fuertemente.

Incluya en la serie un frasco con agua destilada y otro con agua de grifo. Coloque los frascos en un lugar con suficiente luz, preferiblemente en un invernadero.

Agregue de vez en cuando agua destilada para que el nivel de la solución se mantenga constante. Agite con una bagueta limpia todos los frascos día a día con la finalidad de oxigenar el medio líquido. Los frascos deben ser identificados con etiquetas. Haga el seguimiento después de 5 días. Anote la apariencia de las plantitas en cada tratamiento; obsérvese especialmente si existen síntomas visibles de deficiencia.

Cuando haya anotado las características visibles de dichas deficiencias después de dos semanas separa el vástago (parte aérea) de las raíces y mida el largo del tallo junto con las hojas, y de la raíz más larga. Seque las raíces con papel absorbente y péselas, lo mismo que el vástago; trabaje rápidamente. Calcule el promedio de las medidas de las dos plántulas de cada frasco. Si por alguna razón una plantita presenta diferencias notorias con las demás del mismo frasco, descártela sin embargo, es de esperar que se presenten pequeñas variaciones entre ellas.

Junte el material de las dos plántulas de cada tratamiento y ponga los vástagos y las raíces separadamente en bolsa de papel, seque el material a 105°c durante un día. Efectué las pesadas después de que las muestras se hayan enfriado. Anote los resultados de

todos los tratamientos y calcule también el porcentaje, tomando como base los datos obtenidos en las plantitas que crecieron en la solución completa.

CULTIVO EN SOLUCIONES NUTRITIVAS

TABLA N°1 SOLUCIONES STOCK

SÍMBOLO COMPUESTO MOLAR GR/LT.SOLA Ca(NO3)4H2O 1M 236B KNO3 1M 101C MgSO47H2O 1M 247D KH2PO4 1M 136E Ca(H2PO4)22H2O 0.01M 2.7F K2SO4 0.6M 87G CaSO42H2O 0.01M 1.7I MicronutrienteJ Fe- EDTA 10

*MICRONUTRIENTE

MnCl24H2O _____________1.81gH3BO3 _________________2.86gZnSO47H2O _____________0.10gCuSO4 5H2O ____________0.10gH2NO4H2O ______________0.10gH2O agua destilada _______1.000g

TABLA 2: SOLUCIONES NUTRITIVAS

Ml de solución stock por 0.5lt de solución nutritiva

Símbolo de la solución nut.

A B C D E F G I J

1.completa 2.5 2.5 2.5 0.5 - - - 0.5 0.52.sin K 3.7

5- 1 - 25 - - 0.5 0.5

3.sin P 3.7 - 1 0.5 - 10 - 0.5 0.5

54.sin Ca - 7.5 1 - - - - 0.5 0.55.sin N - - 0.25 - 25 10 100 0.5 0.56.sin Fe 2.5 2.5 1 0.5 - - - 0.5 -7. sin micro nut.

2.5 2.5 1 0.5 - - - - 0.5

RESULTADOS:

Tratamiento Peso fresco(g)Plantas enteras

% Peso seco(g)Plantas enteras

%

1.completa 44.25 100 0.435 1002.sin K 55.01 115.36 0.565 1293.sin P 52.75 119.2 0.27 624.sin Ca 47.25 106.8 0.22 50.55.sin N 42 94.9 0.165 37.96.sin Fe 40.5 91.5 0.135 317.sin micro nut

32 72.3 0.135 31

Haga una breve descripción de los síntomas visibles de las deficiencias observadas en cada tratamiento.

DISCUSIÓN

De la observado se puede decir que ciertos elementos químicos hacer crecer demasiado la raíz, por ende también aumentan de peso, por el contrario algunos elementos hacen desarrollar el vástago, en tanto que otros inhiben el crecimiento de la raíz como se muestra en los resultados en la tabla.

Sin N: las hojas inferiores más o menos secas o quemadas, la planta tiene un color verde oscuro o claro, hojas amarillas, tallos cortos y delgados.

Sin K: hojas moteadas o cloróticas, con manchones grandes o pequeños de tejido muerto, presenta tallos delgados.

Sin Ca: las yemas terminales mueren, después de la aparición de distorsiones en punta o bases de las hojas jóvenes.

Sin FE: hojas jóvenes cloróticas, las venas principales típicamente verdes, los tallos son cortos y delgados.

CUESTIONARIO

1. ¿cómo coincidieron los síntomas visibles de las deficiencias que aparecieron en este experimento con los generalmente descritos?

Si coincidieron ya que las hojas frágiles, quebradizas, talos cortos, delgados en este experimento.

2. cite varias razones que explique porque la falta de fosforo no tuvo efecto más notorio en este experimento.El maíz es una planta que utiliza muy poca cantidad de dicho elemento o no lo utiliza.Ya que puede ser que en la semilla tenga reservas suficientes como para mantener a la planta con dicho nutriente.

PRACTICA N° 09

PERDIDA DE AGUA

I. OBJETOS:

Demostrar la medición de la transpiración usando diferentes métodos.

Mostrar la magnitud transpiratoria de plantas de distintos ambientes.

Evaluar la influencia de estructuras vegetales sobre la transpiración.

Demostrar la gutacion.

II. MATERIALES

DIDÁCTICOS

Guía de practicas Apuntes de clase textos

DE LABORATORIO

Balanza analítica Algodón Bolsas de polietileno . Etiquetas Vaselina

Baldes Potometro Calentador Agua Termómetro Cloruro de cobalto Campana de vidrio Papel filtro Tubos de ensayo Ácido acético Aceite Estufa Gradillas Baguetas soluciones nutritivas Cuchillo

BIOLÓGICOS

Plantas de diferentes ambientes Plantas jóvenes Plantas semileñosas o herbáceas Tubérculos de papa

EXPERIMENTO N°1: PESADA DE MACETA

Regar una maceta y dejar escurrir y luego envolverla con bolsa de polietileno, dejando libre solo la parte aérea de la planta.

Pesar, siendo este el peso inicial. A las 48horas. Volver a pesar, siendo este el peso final.

Establecer la diferencia

ESQUEMAS

RESULTADOS

Se observó que la planta ha perdido agua y en la parte que estaba con la bolsa de polietileno se ha producido vapor ósea a transpirado.

EXPERIMENTO N°2: PESADA DE HOJA

Pesar una hoja cada 10 minutos cuatro veces.

La hoja debe estar expuesta a la luz solar en cada intervalo

Al arrancar la hoja debe untarse goma o vaselina en la herida.

RESULTADOS

En la primera pesada peso 14,845g

En la segunda pesada 13,660g

En la tercera pesada 13,180g

En la cuarta pesada 12,850g

DISCUSION

Se pude decir que es notable la pérdida de agua en las hojas cuando se la expone a la luz solar lo cual acelera la deshidratación de la hoja.

EXPERIMENTO N° 3: TRANSPIRACIÓN DE PLANTAS DE DISTINTOS AMBIENTES

Utiliza tres plantas: una xerofita, una mesófita y una hidrofita. Péselas y al as 48 horas vuélvalas a pesar.

Establezca las diferencias en porcentaje.

ESQUEMAS

RESULTADOS

Plantas Peso inicial Peso final Diferencia (%)xerofita 67,190g 100% 48,585g 27.29Mesófita 19,670g 100% 17,340g 11.85Hidrofita 225g 100% 28,87 87.17

DISCUSIÓN

De la experiencia se puede concluir que las plantas hidrofita su masa presenta mayor cantidad de agua, en comparación con una planta xerofita que necesita mínima cantidad de agua para poder vivir.

Su respiración es más intensa que en las plantas tanto mesófitas como en xerofitas, en cambio las mesófitas utilizan el agua para refrigerar sus hojas y mantener su presión constante.

EXPERIMENTO N°4: ESTRUCTURAS PROTECTORAS CONTRA LA TRANSPIRACIÓN

Utilizar Agave y tubérculo de papa

A un trozo de agave quitar la cutícula y al otro dejarlo con cutícula

A un tubérculo de papa quitarle la capa de súber y al otro dejarlo con esta cubierta

Pesar y a las 48 horas. Volverlas a pesar

ESQUEMAS

RESULTADOS

Vegetal P1 P2 DI

Agave Sin cutícula 65,845g 46,895 18.95g

Con cutícula

54,155g 48,590 5.565g

Papa Sin cascara 200g 178.128 21.872g

Con cascara

230g 229.965 0.035g

DISCUSIÓN

Se puede apreciar que la cutícula es una parte muy importante de las plantas, ya que no permite la perdida de agua en ambientes desfavorables, o es mínima la cantidad de agua que se pierde como se demostró con la papa con cascara.

PRÁCTICA DE LABORATORIO Nº 11:

“FACTORES QUE INFLUYEN EN LAS REACCIONES

ENZIMATICAS.”

1. OBJETIVOS

Evaluar los efectos de la concentración de enzima, de

substrato, de temperatura y de inhibidores.

2. MATERIALES

2.1 DIDACTICOS

Guía de practicas

Apuntes de clase

Textos

2.2 DE LA BORATORIO

- Balanzas - Probetas graduadas

- Morteros - Tamiz

- Cuchillo - Vaso de vidrio

- Balones de 250 ml - Pipetas

- Baño María - Agua destilada

- Termómetro - Agua destilada

- Sistemas de mangueras con - Agua de grifo

tubos y tapones - Sulfato de cobre

Tubos de ensayo - Etiquetas y

gradillas

2.3 BIOLOGICOS

Coliflor, brocoli o papa.

EXPERIMENTO Nº 39: EFECTO DE LA CONCENTRACIÓN

DE ENZIMA (CATALASA)

Triturar 250g de espinaca, utilizando un mortero y agregar

poco a poco agua destilada no más de 500ml.

Obtener un extracto utilizando un tamiz (cedazo) y un vaso

de vidrio.

Utilizar cuatro balones de 250cc, para

mezclar el extracto (enzima catalasa) y peróxido de

hidrógeno (agua oxigenada).

El primer balón contendrá 5ml de extracto más 2ml de

peróxido de hidrógeno.

El segundo balón debe contener 10ml de extracto y 2ml de

peróxido de hidrógeno.

El tercer balón con 15ml de extracto más 2ml de peróxido

de hidrógeno.

El cuarto balón se mezclará 20ml de extracto con 2ml de

peróxido de

hidrógeno.

Cada balón debe ser herméticamente taponado.

Cada balón debe ser agitado para que se pueda formar el

complejo enzima-sustrato y cuyo producto (O2) se canalice

por un sistema de mangueras y tubos hacia una probeta de

100ml que inicialmente estará totalmente lleno de agua y

dentro de un balde también con agua.

La velocidad de la actividad catalítica se puede medir por el

volumen de oxígeno molecular desprendido y acumulado

en la probeta graduada por cada 10 minutos.

RESULTADOS

EFECTOS DE LA CONCENTRACIÓN DE ENZIMA

EXTRACTO

(CATALASA)

H2O2

(SUBSTRATO

)

O2

PRODUCIDO

(ml)

5ml 2 ml 11 ml

10ml 2 ml 13 ml

15ml 2 ml 22 ml

20ml 2 ml 24 ml

DISCUSIÓN

En la práctica realizada se puede observar que se ha

producido O2 (gaseoso), esto se ve por la presencia de

burbujas; es decir que la enzima catalasa ha actuado sobre el

sustrato (H2O2) desdoblándolo en CO2 y H2O y conforme

aumenta la concentración de la enzima catalasa; aumenta la

cantidad de oxígeno producido, también se puede observar

que a pesar de que en el primer tubo hay menos cantidad de

catalasa, esta enzima ha actuado sobre el H2O2 generando

oxígeno aunque en menor cantidad.

La función de la catalasa es de vital importancia en las

células, ya que el peróxido de hidrógeno ataca a las células y

les causa lesiones celulares (es nocivo, como un tóxico para

las células).

La catalasa se encuentra tanto en tejidos vegetales (patata,

zanahoria, lechuga, etc.) como en tejidos animales (carne,

pescado, etc.) produciendo la siguiente reacción química:

H2O2 (agua oxigenada) H2O + ½ O2

(gaseoso)

Es decir, la enzima descompone el peróxido de hidrógeno o

agua oxigenada en agua y oxígeno gaseoso, que se

desprenderá en forma de burbujas en un medio acuoso.

EXPERIMENTO Nº 40: EFECTO DE LA CONCENTRACIÓN

DE SUBSTRATO

Utilizar cuatro balones de 250ml y proceder como en el caso

anterior, pero mezclar diferentes cantidades de substrato y

extracto de la siguiente manera:

Balón 1: 10ml de extracto más 1ml de H2O2

Balón 2: 10ml de extracto más 2ml de H2O2

Balón 3: 10ml de extracto más 3ml de H2O2

EXTRACTO

(CATALASA)

H2O2

(SUBSTRATO

)

O2

PRODUCIDO

(ml)

10ml 1 ml 6 ml

10ml 2 ml 15 ml

10ml 3 ml 23 ml

10ml 4 ml 25 ml

DISCUSIÓN

En la realización de esta práctica se ha demostrado que al

aumentar la concentración de sustrato, aumenta también la

formación de oxígeno en la reacción de la enzima catalasa

observándose en el primer tubo menor producción de oxígeno

debido que hay una menor cantidad de H2O2.

El uso de esta enzima permite alargar la vida útil de zumos de

cítricos, cerveza y vino ya que, al degradar el agua oxigenada

(un agente oxidante) en sustancias no reactivas (agua y

oxígeno) se inhiben las reacciones oxidativas sin problemas

secundarios.

EXPERIMENTO Nº 41: EFECTO DE LA TEMPERATURA

Servir 10ml de extracto obtenido a partir de inflorescencia de

espinaca en un tubo de ensayo y calentarlo a 70º c/30

minutos utilizando baño maría y termómetro.

Luego mezclar el extracto previamente calentado con 2ml de

H2O2 dentro de un balón de 250ml y proceder como en

anteriores experimentos.

EXTRACTO H

2O2

O2 DESPRENDIDO

(ml)

10 ml 2ml

DISCUSIÒN

La propiedad de desnaturalización que tienen las proteínas y

que consiste en la pérdida de su estructura terciaria

(tridimensional), lo que afecta su función. La enzima catalasa,

al igual que otras proteínas, se puede desnaturalizar al

exponerla a altas temperaturas. Al perder su estructura se

perderá también la función, por lo que no podrá descomponer

el agua oxigenada.

PRACTICA N 12

FOTOSÍNTESIS

I. OBJETIVOS

-Extraer los pigmentos fotosintéticos y separarlos mediante técnicas cromatografía.-Poner de manifiesto la presencia de clorofila-demostrar la necesidad de luz para la fotosíntesis -lograr la sustitución del magnesio por otros elementos

II. MATERIALES

A. DIDÁCTICOS

guía de practicas Apuntes de clase textos

B. DE LABORATORIO

- balanza -gradillas -morteros -regla milimetrada -Placas petri -lápiz -espátulas -etiquetas -embudos -tijeras -hilo -sulfato de cobre -soporte de embudos -ácido acético -proyector -agua destilada -Lámpara U.V. -papel filtro -vasos -papel watman n° 1 -pipetas -tubos -baguetas -solventes: etanol, acetona, éter, cloroformo, y toluol

C. BIOLÓGICOS

hojas de espinaca hojas de maíz

EXPERIMENTO N°43:

SEPARACIÓN DE PIGMENTOS VEGETALES POR CROMATOGRAFÍA SOBRE PAPEL

lavar la hojas de espinaca, retirar los nervios y ponerlas en un mortero, junto con alcohol y una pequeña cantidad de carbonato de calcio (que evite la degradación de los pigmentos fotosintéticos

triturar la mezcla hasta que las hojas se decoloren y hasta que el disolvente adquiere un verde intenso

filtrar con un embudo y papel filtro colocar el filtrado en una placa petri y sobre ella poner un

rectángulo de papel whatman N° 1 de unos 15cm, de ancho x 10 cm. De alto doblado en V para q se mantenga en pie sobre la placa petri

dejar asi el montaje y esperar unas horas. Los pigmentos de separaran según su absorción

debe utilizarse 5g d hoja de espinaca y no más de 100ml de etanol agregando silica-gel para triturar

ESQUEMAS

CUESTIONARIO:

1. ¿POR QUÉ LOS PIGMENTOS SE

SEPARAN EN EL PAPEL CROMATOGRAFICO?

El extracto de pigmentos es arrastrado por un disolvente orgánico que avanza por el papel al ser absorbido por capilaridad, de modo que cada pigmento se separa de los demás según su mayor o menor solubilidad en el disolvente y la diferente atracción por el sustrato (las más solubles se desplazaran a mayor velocidad, pues acompañaran más fácilmente al disolvente a medida que este asciende, las menos solubles avanzaran menos en el papel filtro).

2. ¿SI SE UTILIZAN OTROS SOLVENTES EL CROMATOGRAMA SERÍA IGUAL O DIFERENTE?

Sería diferente debido a la existencia de solventes polares y no polares. Con el etanol se extraen los compuestos polares y con el éter se extraen los componentes no polares debido a que componentes polares (etanol) disuelven compuestos polares

(aminoácidos) y componentes no polares (éter) disuelven componentes no polares(carotenos y vitaminas liposolubles).

3. ¿CUÁLES SON LAS DIFERENCIAS QUÍMICAS Y FÍSICAS DE LOS PIGMENTOS QUE OBSERVO EN ESTA EXPERIENCIA?

La clorofila a es un complejo magnesio-porfirínico compuesto por un tetra pirrol cíclico (I a IV) que posee un anillo de cíclopentanora (V) fusionado. Los cuatro átomos de N de los anillos pirríticos están coordinados con un átomo de magnesio formando un complejo glanar estable. La molécula de clorofila posee, además, una cadena terpenoide constituida por el alcohol fitol, que se encuentra esterificando a un residuo de propionato, sustituyente de uno de los anillos pirrilicos (IV). Este alcohol de cadena larga, compuesto de cuatro unidades de isopreno, confiere a la molécula de clorofila la característica de ser altamente hidrofóbica. La clorofila b difiere de la clorofila a en que contiene como sustituyente un grupo formilo (-CHO) en vez de mitilo (-CH3) en el anillo pirrólico II.

Los carotenoides son tetraterpenoides, compuestos de 40 átomos de carbono formados por ocho unidades isoprenoides unidas de forma que la secuencia se invierte en el centro de la molécula.

Propiedades físico-químicas

Los carotenoides son compuestos lipídicos, aunque existen algunas excepciones, por lo que son insolubles en agua y solubles en disolventes orgánicos como acetona, metanol, éter dietílico, hexano, cloroformo, etc.

EXPERIMENTO N° 44: NECESIDAD DE LUZ PARA LA FOTOSÍNTESIS

Observar el color del extracto restante con luz emitida por lámpara ultravioleta o un proyector

CUESTIONARIO:

1.- ¿CUÁLES SON LOS PIGMENTOS FOTOSINTÉTICOS QUE POSEEN FLUORESCENCIA Y PORQUE?

Clorofila A y B y los pigmentos accesorios. Cuando una molécula de clorofila capta un fotón de luz, un electrón pasa de su estado basal a otro excitado, de mayor nivel energético. Este estado excitado de la clorofila es estable por muy poco tiempo (10-9 seg.) e inmediatamente pueden suceder una de estas tres transiciones: transferir la energía a otra molécula de clorofila y así sucesivamente hasta que se alcanza el centro de reacción del fotosistema correspondiente (PSI o PSII).; retornar a su nivel básico emitiendo la energía en forma de calor y no emitiendo ningún tipo de fotón, o en lugar de volver a su estado básico emitiendo calor emitir un fotón de mayor longitud de onda que la absorbida en un proceso que se conoce como fluorescencia (Lambers et al. 1998). Cualquiera de estas tres transiciones tiene como consecuencia la disipación de la energía absorbida. La mayor parte de la fluorescencia que es emitida por la clorofila proviene de la clorofila a del PSII. La cantidad de fluorescencia emitida es una forma de medida de la eficiencia de la transferencia de los electrones; ésta incrementa si la transferencia o el proceso fotoquímico está limitado por algún factor o en condiciones de luz excesiva, produciéndose una sobrecarga de electrones excitados cuyo destino puede ser muy dañino para la propia célula.

EXPERIMENTO N° 46: SUSTITUCIÓN DEL MAGNESIO (MG)

Diluía el extracto alcohólico crudo con alcohol etílico de 95% hasta que colocado en un tubo de ensayo aparezca un verde claro, bien transparente. Con esta disolución haga las siguientes mezclas:

1. 5ml del extracto + 1ml H2O (control)2. 5ml del extracto + 1ml de acido acético glacial3. 5ml del extracto + 1ml de sulfato de cobre al 5%

ESQUEMAS

RESULTADOS

Tubo

Después de varias horas coloración

1

23

EXPERIMENTO N° 47: PRODUCCIÓN DE OXIGENO POR LA FOTOSÍNTESIS

Llenar un tubo de ensayo con solución de bicarbonato de sodio concentrado que contiene una hoja de una monocotiledónea C4(maíz). Sumergir todo este sistema dentro de un depósito que contiene la misma solución. El tubo con la hoja de maíz debe ser introducido en posición invertida

ESQUEMAS

PRÁCTICA Nº 13: “RESPIRACIÓN”

I. OBJETIVOS :

Demostrar la medición de la transpiración usando diferentes

métodos.

Demostrar la magnitud transpiratoria de plantas de distintos

ambientes.

Evaluar la influencia de estructuras vegetales sobre la

transpiración.

Demostrar la gustación.

II. INTRODUCCION:

La respiración es un proceso necesario en todos los seres vivos. La

respiración permite a las células producir la energía necesaria para

que los seres vivos puedan realizar sus funciones vitales (crecer,

reproducirse, transportar nutrientes, defenderse, etc.). Mediante la

respiración los seres vivos también expulsan las substancias de

desecho de las células. Al respirar los seres vivos consumen oxígeno y

expulsan dióxido de carbono (CO2).

Al igual que los animales, las plantas respiran. La respiración en las

plantas consiste en el intercambio de gases entre la planta y la

atmósfera. Las plantas toman oxígeno de la atmósfera y utilizan las

reservas de hidratos de carbono para expulsar dióxido de carbono y

agua en forma de vapor a la atmósfera. .

Este proceso se realiza a través de unas aberturas de las hojas y de

las partes verdes de las planta, llamadas estomas, y de otra serie de

aberturas en la corteza de tallos, llamados lenticelas, o raíces (pelos

radicales). La respiración en las plantas sería una especie de proceso

contrario al de la fotosíntesis: En la fotosíntesis la planta obtiene

dióxido de carbono y expulsa oxígeno; en la respiración la planta

toma oxígeno y desprende dióxido de carbono.

Las plantas necesitan de la clorofila para realizar la fotosíntesis, por

eso muchos árboles que pierden las hojas en invierno dejan de

realizar esta función. Sin embargo las plantas siguen respirando tanto

en invierno como en otras épocas.

Mientras que la fotosíntesis solamente se realiza por el día, la

respiración se lleva a cabo tanto por el día como por la noche. La

respiración de las plantas produce la transpiración o pérdida del agua.

Cuando falta agua en la atmósfera las plantas tienen la capacidad de

cerrar los estomas para no perder agua.

La oxidación de la glucosa es el proceso fuente de energía en la

mayoría de las células. Una proporción significativa de la energía

contenida en la molécula vuelve a fijarse en los enlaces fosfato de las

moléculas de ATP.

La primera fase en la degradación de la glucosa es la glucólisis que se

efectúa en el citoplasma de la célula. La segunda es la respiración

aeróbica, que requiere oxígeno y que en organismos eucarióticos,

tiene lugar en las mitocondrias. La respiración comprende el ciclo de

Krebs y el transporte terminal de electrones acoplado al proceso de

fosforilación oxidativa.

También es posible calcular el rendimiento energético global de la

oxidación de la glucosa, la cual puede dar como resultado un máximo

de 38 moléculas de ATP, esta actividad de la glicólisis y la de la

respiración son reguladas teniendo en cuenta las necesidades

energéticas de la célula. Cada célula debe producir energía química

utilizable para llevar a cabo sus procesos que requieran de ella y que

son necesarios para su actividad o sobrevivencia.

En el proceso fotosintético se rompe la molécula de agua, actividad

dependiente de la energía, que origina la elevación de los hidrógenos

a un nivel energético más alto. La Respiración consiste en el proceso

inverso, es decir, la obtención celular de energía a partir de ruptura

de este azúcar.

En la obtención celular de energía además de los carbohidratos,

grasas y en algunos casos proteínas. Estos compuestos participan

luego de su desdoblamiento en fragmentos pequeños que son

introducidos en el mecanismo de las reacciones de la respiración en

las cuales son oxidados con obtención de energía.

El proceso global de la respiración consiste en que la glucosa es

desdoblada mediante el consumo de O2 a dióxido de carbono y agua

con la liberación simultanea de energía. La expresión para este

evento global corresponde entonces a: Y se liberan 675Kcal por mole

de Glucosa.

En las células de todos los organismos heterótrofos y autótrofos se

lleva a cabo el desdoblamiento de la glucosa en forma aerobia, es

decir, mediante el consumo de oxígeno, de ahí su designación como

organismos aerobios. Pero hay diferentes grupos de microorganismos

y en algunos tejidos de plantas superiores en los que tal

desdoblamiento se lleva a cabo en ausencia de oxígeno, organismos

anaerobios. También se encuentran grupos de organismos para los

cuales el átomo de oxígeno es toxico, en este caso el desdoblamiento

se lleva a cabo por medio de otro átomo aceptor final de electrones,

estos son los anaerobios obligados.

III. MATERIALES

A. Didácticos

Guía de prácticas

Apuntes de clase

Textos

B. De laboratorio

Manómetro simple. Macetas.

Hidróxido de sodio Horno.

Azul de metileno Cajas de oscuridad.

Termos. Matraces.

Termómetros. Vasos beaker

Algodón. Pipetas.

Tarros de 1000cc con tapas. Fungicida.

Cuchillo. Baldes pequeños.

C. Biológicos

Semilla de frijol y maíz. Tubérculos de papa.

IV. PROCEDIMIENTO

EXPERIENCIA Nº 51: DEMOSTRACION DE LA RESPIRACION POR

EL METODO DEL MANOMETRO SIMPLE.

Poner a respirar semillas de frijol de un matraz de 250 ml que

contiene hidróxido de sodio concentrado. Colocar 10 semillas

teniendo cuidado que no se mojen las semillas con dicha solución.

ESQUEMAS

RESULTADOS

Luego de 2 a 24 horas se observara que el azul de metileno, q se

encuentra en el tubo de ensayo, ha disminuido.

DISCUSIÓN

Al igual que con las mediciones de fotosíntesis, las de respiración se

basan fundamentalmente en cuantificar el intercambio gaseoso por

los métodos tradicionales. Se puede también medir la producción de

calor o la pérdida de peso seco en estructuras definidas.

En nuestra experiencia observamos que el recipiente que contiene

azul de metileno a variado, por que al momento que las semillas

respiran el hidrosxido de sodio hace que el azul de metileno suba

hacia el tubo.

EXPERIENCIA Nº 52: DESPRENDIMIENTO DE CALOR POR LA

RESPIRACION

Poner en imbibición 50g de semillas de frijoles por un tiempo de 2

horas. Luego introducirlas en un termo de 500 ml de capacitación.

Colocar dentro de termo un termómetro y taparlo con algodón. Como

blanco utilizar otro termo con termómetro pero sin semilla y taponarlo

con algodón para medir las variaciones de temperatura.

Las semillas deben previamente ser tratadas con fungicida.

RESULTADOS

Después de 4 a 24 horas el termómetro, por efecto del calor, tanto en

el termo con semillas que el vacío, ha aumentado la temperatura

siendo la temperatura del termo con semillas mas elevada que en el

termómetro que esta en el termo vacío.

DISCUSIÓN

La intensidad de la respiración en las plantas varía enormemente

según la especie, tipo y edad del tejido y condiciones ambientales.

Entre estas últimas destaca la temperatura, que, por la naturaleza

bioquímica del proceso, es decisiva y generalmente limitante; la

presencia de O2 que llega a ser determinante del camino metabólico

por su participación directa en el proceso; el agua, que provee las

condiciones de hidratación adecuadas a la acción enzimática, y

muchos otros de menor importancia.

EXPERIENCIA Nº 53: ACCIÓN TOXICA DE LA RESPIRACIÓN

FERMENTATIVA

Almacenar tubérculos de papa dentro de un tarro de 1000 ml de

volumen que fue remplazado por bolsa de polietileno, y cerrar

herméticamente.

ESQUEMAS

RESULTADOS

Al sacra las papas de las bolsas y cortarlas por la mitad observamos

una mancha negra o marrón que nos da muestra de la acción de la

fermentación.

EXPERIENCIA Nº 54: DISMINUCION DE LA MATERIASECA POR

LA RESPIRACION

En oscuridad cultivar 50g de semilla de maíz y después de 10 días

extraer totalmente el material vegetal y volver a tomar su peso seco.

Obtener el peso seco de las semillas cultivadas poniendo a secar 50g

de semillas a 115 ºC por 24 horas en el hormo.

RESULTADOS

El peso de la semilla después de ser cultivada ha disminuido por

acción de la respiración.

DISCUSIÓN

Pérdidas de materia seca por respiración de únicamente 2 a 6 por

ciento.

La pérdida por respiración se debe principalmente a la

descomposición de los carbohidratos solubles, los cuales son

aproximadamente 100 por ciento digeribles. Por lo tanto, tales

pérdidas reducirán sustancialmente la calidad del heno. Las pérdidas

durante el curado no pueden ser eliminadas, pero cortar el heno con

un clima bueno seco reducirá considerablemente las pérdidas por

respiración.