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EFECTO DE LOS MÉTODOS DE DESHIDRATACIÓN DE LODOS DE DEPURADORA SOBRE LA PRESENCIA DE HUEVOS DE HELMINTOS.

PRESENCIA Y VIABILIDAD EN PLANTAS DE COMPOSTAJE

EFFECT OF SEWAGE SLUDGE DEWATERING METHODS ON HELMINTH EGGS PRESENCE. PRESENCE AND VIABILITY IN COMPOSTING PLANTS

Autores:

Juan Luis Martínez Muro, Ldo. en Farmacia* Víctor Manuel Nieto Asencio, Biólogo*

Ana Emilia López Valero, Lda. CC. Ambientales Jose Juan Morenilla Martínez, Dr. Ingeniero industrial**

Ignacio Bernácer Bonora, Licenciado en Farmacia** José Mª Santos Asensi, Ingeniero Industrial**

*PROAGUAS COSTABLANCA, S.A. Avda. Orihuela, 39, 03007, Alicante. Tel. 965 11 13 76

**ENTIDAD DE SANEAMIENTO DE AGUAS. C/ Álvaro de Bazán, nº 10 Entl., 46010 Valencia. Tel. 963 604 555.

RESUMEN Se presentan los resultados de dos estudios analíticos sobre presencia de huevos de

helmintos parásitos en lodos de depuradora. En uno se determina el efecto de los procesos de deshidratación, analizándose muestras de lodo espesado, lodo deshidratado y agua de escurrido. Se concluye que el uso de centrífugas es el método más seguro para evitar que los huevos pasen al escurrido. Por su parte los filtros banda presentan la inclusión de fuerzas efectivas en la eliminación de un alto porcentaje de los huevos, por lo que también evitan en gran medida que los huevos pasen al agua de escurrido. En las eras de secado se observa que los huevos acaban atravesando el lecho en gran número, apareciendo en las aguas de escurrido (hasta 42 huevos/L); la completa deshidratación mediante eras de secado es efectiva en la eliminación de huevos de helminto. En un segundo estudio se analiza la presencia y viabilidad de huevos de helmintos en compost de lodo de depuradoras. Del análisis de varias muestras, únicamente se detectó un huevo de helminto tras la incubación de la muestra, que no desarrolló larva en su interior, por lo que se consideró no viable. Se concluye que los métodos de determinación de la viabilidad deben seguir estudiándose.

Palabras clave: lodos de depuradora, huevos de helminto, viabilidad, deshidratación lodos, compost.

ABSTRACT

The results of two analytic studies about the presence of parasitic helminth eggs in sewage sludge are presented. One of them tries to determine the effect of different dewatering processes, analysing thickened sludge, dewatered sludge and drain water. In conclusion, the use of centrifuge separators is the best method to avoid draining eggs. The band filter press is another effective system in the elimination of a high percentage of eggs, and furthermore reduces the egg draining. We have observed eggs going through the drying beds and we have found a lot of them in drained water (up to 42 eggs/L); total dewatering by means of drying beds is effective in the elimination of helminth eggs. In a second study we have analysed the presence and viability of helminth eggs in composted sewage sludge. From many samples only one egg was detected after incubation, but was not considered viable because it did not develop a larvae inside. In conclusion, the methods for determining the viability must be ongoing.

Key words: sewage sludge, helminth eggs, viability, sludge dewatering, compost.

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1 INTRODUCCIÓN Los helmintos son organismos metazoarios invertebrados, de vida libre o parasitaria.

Comúnmente se conocen como vermes o gusanos, pero la multitud de morfologías, tamaños y formas de vida existentes los convierten en un grupo heterogéneo, de difícil estudio en su conjunto.

Se reconocen cuatro phylum o grupos de helmintos: Nematoda (o nematodos),

Nematomorpha (o gordiáceos) , Platyhelmintes (o platelmintos: trematodos y cestodos) y Acanthocephala (o acantocéfalos).

Todos los platelmintos, algunos nematodos y raramente algún acantocéfalo son parásitos

intestinales de vertebrados, incluso del hombre, cuyos huevos excretados en las heces de animales “urbanos”, pueden llegar, a través de la red de saneamiento hasta las depuradoras de aguas residuales.

Así pues, si el proceso depurativo es adecuado, los huevos de helminto se eliminarán del

agua y pasarán a los lodos. Dependiendo de la resistencia de sus cubiertas y del tratamiento al que se somete el lodo, sólo una porción de estos huevos sobrevivirá y mantendrá su viabilidad como elementos infectivos.

Por otra parte la existencia de normativas en otros países que regulan la presencia de huevos

de helmintos en los fangos con destino agrícola, indica un creciente interés que podría provocar su inclusión en la futura normativa europea. Ello unido al continuo interés y esfuerzo del conjunto de la Comunidad Valenciana y concretamente de la provincia de Alicante por reutilizar el máximo volumen de aguas residuales depuradas y de reciclar los biosólidos en agricultura, hace más interesante, si cabe, las labores de estudio e investigación en este campo.

Desde hace tres años PROAGUAS COSTABLANCA, S.A. ha realizado para la ENTIDAD

DE SANEAMIENTO DE AGUAS dos estudios de presencia de huevos de helminto y viabilidad de los mismos en fangos de depuradoras de la provincia de Alicante, habiéndose obtenido importantes conclusiones sobre ello y dando lugar a nuevas dudas e inquietudes que han originado nuevas líneas de investigación.

2 OBJETIVOS

En primer lugar se trata de continuar con los análisis de presencia de huevos en lodos de depuradora, lo que permite mejorar los métodos de ensayo, así como mantener una vigilancia sobre la seguridad, en cuanto al contenido de huevos de parásitos, de los lodos producidos en las EDAR.

Por otro lado, los objetivos específicos del presente estudio van en dos líneas:

a) Por un lado se pretende evaluar la eficiencia de los diferentes métodos de deshidratación para extraer los huevos de helminto con el lodo, así como su capacidad de destrucción de los mismos durante el proceso. En este estudio se pretende relacionar el número de huevos encontrados en el fango deshidratado con respecto al fango previo a su deshidratación, en función de la tecnología empleada, viendo, además la presencia de huevos en el drenaje del sistema de deshidratación utilizado. Los sistemas a evaluar son el de filtro banda, centrífuga y era de secado.

b) Por otro lado se estudia la presencia y viabilidad de huevos de helmintos en lodos

compostados. Las principales dificultades que pueden surgir para realizar estudios

3

de viabilidad de huevos de helmintos son: por un lado, el bajo número de helmintos parásitos presentes en países desarrollados y por otro, la toxicidad de los reactivos usados y la inhibición del desarrollo larvario que la materia orgánica provoca, así como las interferencias que provocan en la observación microscópica la presencia de multitud de otros elementos de tamaños similares. Por lo tanto el principal objetivo perseguido en este tipo de estudios es el mejor aislamiento y purificación posible de los huevos de helmintos presentes en los lodos.

3 DESCRIPCIÓN DE LAS INSTALACIONES

Para la consecución de los objetivos planteados se ha requerido la colaboración de diversas estaciones de depuración de aguas residuales (EDAR).

Para el estudio de presencia de huevos de helminto en lodos de depuradora sometidos a

diferentes sistemas de deshidratación se han seleccionado 6 EDAR de la provincia de Alicante. Para el estudio de presencia y viabilidad de huevos de helminto en lodos compostados se han seleccionado dos plantas de compostaje de lodos, una en la provincia de Alicante y otra en la provincia de Valencia.

A continuación se describen brevemente las instalaciones.

3.1 EDARs con sistema de deshidratación mediante centrífugas La EDAR nº 1 sirve a una población de 41.075 he, con un caudal medio de 8.553 m3/día,

predominantemente de carácter urbano. En la planta se realiza una depuración mediante tratamiento biológico convencional de

fangos activados, con eliminación de nitrógeno y canal de cloración posterior. Consta de las siguientes etapas: pretratamiento, homogeneización, decantación primaria, reactor biológico y decantador secundario.

Con respecto al tratamiento de lodos, la estabilización de los mismos se realiza en

digestores aerobios. Posteriormente, y tras un proceso de espesamiento por gravedad, los fangos son deshidratados mediante centrífugas.

La EDAR nº 2 sirve a una población de 110.267 he, con un caudal medio de 19.294 m3/día,

de carácter urbano e industrial. En la planta se realiza una depuración mediante tratamiento biológico convencional de

fangos activados y tratamiento físico-químico. Consta de las siguientes etapas: pretratamiento, tratamiento físico-químico, decantación primaria, reactor biológico y decantador secundario.

La estabilización de los fangos se realiza en digestores anaerobios tras ser espesados tanto

por gravedad como por flotación y haber sufrido un proceso de tamizado. Finalmente se deshidratan mecánicamente mediante centrífugas. Actualmente ya tiene en funcionamiento el secado térmico de los lodos.

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3.2 EDARs con sistema de deshidratación mediante filtro banda La EDAR nº 3 sirve a una población de 22.793 he, con un caudal medio de 2.179 m3/día, de

carácter urbano principalmente. Se realiza un tratamiento biológico mediante fangos activados, sistema convencional.

Consta de las siguientes etapas: pretratamiento, tanque de homogeneización, decantación primaria, cuba de aireación, decantación secundaria, filtración y desinfección mediante ultravioletas.

Tratamiento de fangos mediante digestión aerobia, espesamiento y deshidratación mecánica

con filtros banda. Estabilización posterior mediante compostaje. La EDAR nº 4 sirve a una población de 5.615 he. Recibe un caudal medio de 526 m3/día,

de carácter urbano y un pequeño porcentaje industrial. En la planta se realiza un tratamiento mediante una doble etapa biológica. Consta de los

siguientes procesos: pretratamiento, decantación-digestión, filtro percolador, reactor biológico y decantación secundaria.

El fango pasa a deshidratación tras una digestión anaerobia en frío producida en el

decantador-digestor. La deshidratación se realiza tanto por filtro banda como por eras de secado, aunque estas últimas están cada vez más en desuso.

3.3 EDARs con sistema de deshidratación mediante eras de secado

La EDAR nº 5 sirve a una población de 1.892 he, con un caudal medio de 158 m3/día, de carácter predominantemente urbano.

En la planta se realiza una depuración mediante tratamiento biológico con sistema de

aireación prolongada. Consta de las siguientes etapas: pretratamiento, cuba de aireación y decantador secundario.

El fango es espesado por gravedad y deshidratado mediante eras de secado. La EDAR nº 6 sirve a una población de 2.086 he, con un caudal medio de 180 m3/día, de

carácter predominantemente urbano. En la planta se realiza una depuración mediante tratamiento biológico con sistema de

aireación prolongada. Consta de las siguientes etapas: pretratamiento, cuba de aireación y decantador secundario.

El fango es espesado por gravedad y deshidratado mediante eras de secado..

3.4 Plantas de Compostaje La PC nº 1 esta compuesta por 4 canales de 80 m de longitud. En la parte inicial se

introduce el lodo deshidratado de la propia EDAR nº 3, mezclado con el material soporte, aserrín y paja. Una volteadora se encarga de remover las pilas para conseguir la homogeneización y el avance por el canal. El tiempo de residencia total del compost en el canal es de aproximadamente 40 días. Transcurrido este tiempo se extrae el compost por el otro extremo del canal y se acumula en pilas hasta su uso, lo que supone su periodo de maduración.

La PC nº 2 está compuesta por 20 canales de 75 m de longitud. En la parte inicial se

introducen los lodos de dos EDARs diferentes (A y B) mezclados con aserrín y experimentalmente con diversos restos vegetales. Una volteadora se encarga de remover las pilas para conseguir la homogeneización y el avance de la mezcla, que en 2-3 semanas se extrae por el otro extremo del canal, llevándose a pilas de maduración.

4 METODOLOGÍA DE TRABAJO 4.1 Estudio de presencia de huevos de helminto en fangos de depuradora.

La metodología de trabajo es la siguiente: Se realiza un muestreo mensual (hasta 3 muestreos) de fango previo a deshidratación, fango

deshidratado y otra muestra de escurrido del sistema de deshidratación utilizado. De todas ellas se realizan tres extracciones en las que se cuantifican los huevos de helmintos encontrados.

Muestras seleccionadas: Fangos deshidratados con centrífuga Consideraremos en nuestro estudio las EDAR nº 1 y 2, ambas con centrífugas para la

deshidratación de los lodos. Detalles de la toma de muestras de fango digerido, deshidratado y escurrido de la EDAR nº

1.

Detalles de la toma de muestras de fango digerido, deshidratado y escurrido de la EDAR nº 2.

5

Fangos deshidratados con filtro de banda Consideraremos en nuestro estudio las EDAR nº 3 y 4. Detalles de la toma de muestras de fango digerido, deshidratado y escurrido de la EDAR nº

3.

Detalles de la toma de muestras de fango digerido, deshidratado y escurrido de la EDAR nº

4.

Fangos deshidratados mediante eras de secado Consideraremos en nuestro estudio las EDAR nº 5 y 6. Detalles de la toma de muestras de fango espesado, deshidratado y escurrido de la EDAR nº

5.

Detalles de la toma de muestras de fango espesado, deshidratado y escurrido de la EDAR nº

6.

6

7

4.2 Estudio de presencia y viabilidad de huevos de helmintos en las plantas de compostaje

Existen estudios que indican que los reactivos utilizados en la extracción, e incubación de huevos de helminto desde los lodos de depuradora pueden resultar tóxicos o modificar la viabilidad de los mismos (Ayres, R.M., 1991). Estudios más recientes (Nelson Kl, 2001) han evaluado diversos reactivos y métodos de extracción e incubación con huevos de Ascaris extraídos de cerdos infectados, demostrando que se mantiene la viabilidad de los mismos por encima del 80 % pese a la utilización de los reactivos de extracción y flotación habituales. No obstante, en nuestro estudio se opta por la utilización de la modificación expuesta más adelante.

La temperatura influye en la embriogénesis de los huevos. Estudios previos (Gaspard P.,

1996) han mostrado que temperaturas de incubación de entre 25-30ºC y tiempos de incubación de aproximadamente 20 días son suficientes para que maduren el 100% de los huevos.

El estudio ha consistido en observar la presencia y viabilidad de los huevos presentes en las

muestras de los lodos analizados. La metodología de trabajo es la siguiente: Se toma una muestra bimensual (hasta 3 muestras) de fango antes del compostaje y tras el

proceso de compostaje. Se realizan tres extracciones en las que se cuantifican el número de huevos de helmintos presentes. Posteriormente se procesa la muestra para después incubarla durante 20 días a 30ºC (Gaspard y col.). Terminada la incubación se determinan los huevos embrionados mediante extracción y cuantificación. Los huevos que alcancen el estadío larvario son considerados viables.

4.3 Métodos analíticos empleados

4.3.1 Concentración de huevos de helminto. Método Baillinger modificado. Reconocido por la OMS y mejorado

(Gaspard & Schwartzbrod, 1995).

• Tomar 100 mL de fango digerido o espesado en un vaso de 500 mL (20 mL en caso de fango seco o compostado). Añadir 200-300 ml de agua destilada. Añadir 8-10 gotas de Triton-X-100. Agitar durante 30 minutos. Determinar el peso de la muestra (M) y su contenido en materia seca en g/g de lodo (K).

• Filtrar la suspensión en tamiz de 1 mm. Se deja sedimentar el filtrado durante al menos 24 horas.

• Eliminar el sobrenadante por decantación y recoger los 100 ml aproximados de sedimento. Centrifigar a 3.500 rpm durante 15 minutos. Desechar el sobrenadante de nuevo por decantación y conservar el sedimento con los huevos.

• Para la desorción y purificación, añadir a los tubos de centrífuga con un volumen S de sedimento, 2S de tampón acetato-acético y agitar bien. Añadir 6S de éter dietílico (en campana), tapar y agitar vigorosamente. Se formará una emulsión.

8

• Centrifugar a 3.500 rpm durante 15 minutos. Se forma una distribución en 4 fases, éter superior, tapón lipófilo intermedio (que se pega a la pared del tubo), fase acuosa inferior y sedimento con los huevos. Retirar cuidadosamente el tapón lipófilo por decantación con la ayuda de una varilla. Decantar la fase etérea, tapón y fase acuosa en un sólo movimiento, con cuidado de no verter el sedimento. Este sedimento tendrá un volumen de 1-3 ml (S’) y es una forma en que podemos guardar en frío hasta el momento de la observación microscópica. Si el tapón lipófilo resulta muy grueso, el sedimento se aprecia muy pastoso y/o el éter dietílico aparece con color intenso puede indicar que no se ha purificado suficiente, repetir todo el proceso de desorción-purificación.

• El sedimento se resuspende en 5 volúmenes de solución saturada de Sulfato de zinc (al 33%). Se transfieren todos los sedimentos resuspendidos a un mismo tubo (Si es posible). Si el volumen es mayor que un tubo, o si el sedimento es grande, centrifugar a 2700 rpm durante 10 minutos y tomar los 10 mL superficiales de cada tubo en uno sólo. Se mide el volumen de producto final (X).

• Una porción del producto (1 mL aprox.) se transfiere a una cámara McMaster, utilizando una pipeta automática, con cuidado de que no se formen burbujas. Dejar reposar la cámara llena sobre una superficie plana durante 5 minutos. Observar al microscopio utilizando el objetivo de 100 aumentos para contar los huevos.

Método Baillinger para agua residual

• Colocar 1 litro para efluente crudo o parcialmente tratado o 10 litros para efluentes, en un vaso de precipitados o un balde de 10 litros, respectivamente.

• Sedimentar, al menos 1 o 2 horas: de hecho habitualmente se deja 24 horas. • El líquido sobrenadante se retira cuidadosamente con un sifón y se tira sin agitar el

sedimento. • Se saca el sedimento (100-200 mL) del recipiente y se lleva a tubos de centrífuga.

Luego se lavan las paredes con 25-50 mL de detergente. Todo el material recuperado se centrífuga a 3.000 rpm durante 15 minutos. Se desecha el sobrenadante.

• Se agrega una solución amortiguadora aceto-acética (pH 4,5) a un volumen igual al del sedimento y se agita la mezcla.

• Se agrega éter a un volumen equivalente al doble del de la solución amortiguadora y se agita durante 10 minutos.

• Se centrífuga la mezcla a 3.000 rpm durante 15 minutos. Se retira el líquido sobrenadante y se vuelve a suspender el sedimento con unos 5 mL (por lo general, se necesita un volumen cinco veces mayor que el del sedimento para resuspensión) de una solución saturada de sulfato de zinc (33%, densidad relativa 1,18). Se mide el volumen (V) del producto.

• Se transfieren todos los sedimentos resuspendidos a un mismo tubo (Si es posible). Si el volumen es mayor que un tubo, o si el sedimento es grande, centrifugar a 2700 rpm durante 10 minutos y tomar los 10 mL superficiales de cada tubo en uno sólo. Se mide el volumen de producto final (X).

• Una porción del producto (1 mL aprox.) se transfiere a una cámara McMaster, utilizando una pipeta automática, con cuidado de que no se formen burbujas. Dejar reposar la cámara llena sobre una superficie plana durante 5 minutos. Observar al microscopio utilizando el objetivo de 100 aumentos para contar los huevos.

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En ambos métodos, la identificación de formas parásitas se basa principalmente en aspectos morfológicos de los huevos hallados. El estudio de estos huevos se complica por las alteraciones que pueden afectar a aspectos útiles para su clasificación, como la forma, el color, la textura del contenido, etc. A todo ello hay que añadir la similitud morfológica existente entre huevos de especies próximas, razón por la que en algunos grupos sólo se pueda llegara la clasificación de los huevos hasta el nivel de familia.

4.3.2 Viabilidad de los huevos de helmintos.

Para el estudio de la viabilidad de huevos de helmintos en lodos se han comparado métodos

de incubación, para que los huevos se desarrollen aeróbicamente desde el estado unicelular hasta la etapa larvaria, cuyas diferencias estriban, básicamanete, en la preparación de la muestra previa a la incubación. El método más apto logrado es el siguiente:

Tamizado-Incubación (Gaspard y col., 1997). Con modificaciones entre paréntesis.

• Pesar X gramos de muestra (apróx. 10g de materia seca). • Filtrar con malla metálica de 1mm, ayudado de 1 L de agua de lavado. • Tamizar en tamiz de 100 micras de poro. Lavar con 10 L de agua destilada para eluir

los huevos adsorbidos en la materia orgánica. • Recuperar el filtrado, que contiene huevos de helminto de tamaño menor a 100

micras, en bidón y dejar sedimentar mínimo 3 horas. • Recoger el sedimento (Realizar al menos un lavado de las paredes del bidón y del

tamiz con tritón X-100 al 10/00 para separar los huevos adheridos a las paredes y a la materia orgánica) y tamizar en tamiz de 20 micras de poro (este paso se ha eliminado, por introducir excesivas dificultades y errores).

• Resuspender lo retenido en el filtro con agua destilada (no es necesario, pues no se utiliza el tamiz de 20 μm, los huevos han pasado el tamiz de 100 μm).

• Incubar en estufa la suspensión durante 20 dias a 30ºC con flujo continuo de aire. • Extracción y recuento de huevos de helminto en estado larvario mediante el método

de Bailenger descrito anteriormente.

5 RESULTADOS Y DISCUSIÓN 5.1 Estudio de presencia de huevos de helminto en fangos de depuradora.

5.1.1 Observaciones realizadas Se han encontrado huevos de helminto en todas las muestras analizadas de fango tanto

previo a deshidratación como deshidratado, a excepción de la muestra de fango deshidratado procedente de la EDAR nº 6 del día 2 de Agosto, dónde no se ha encontrado ningún huevo de helminto, hecho que se justifica por la elevada sequedad del fango (92,82% MS), además obtenida mediante radiación solar, la cual destruye la mayoría de estructuras parasitarias.

Los huevos de helminto observados pertenecen a los grupos Cestodos y Nematodos, sobre

todo de estos últimos, no habiéndose observado huevo alguno de Trematodo. Otros estudios (Schwartzbrod et. al. 1986; Stien, 1989; PROAGUAS, 2003) confirmaron la elevada proporción de huevos de Nematodos encontrados en lodos de depuración y el débil aislamiento de Cestodos. Además, cabe resaltar que se ha detectado, también, estructuras parásitas de protozoos (ooquistes y

quistes), nematodos de vida libre (huevos y adultos) y artrópodos (huevos de ácaros especialmente).

Encontramos huevos pertenecientes a las Superfamilias Ascaridoidea (Ascaris sp., Toxocara

sp., Parascaris sp. y Toxascaris sp.), Heterakoidea (Ascaridia sp.), Oxyuroidea (Enterobius sp.), Trichostrongyloidea (Trychostrongylus sp.), Ancylostomatoidea, Rhabditoidea y Trichinelloidea (Trichuris sp., Trichosomoides sp. y Capillaria sp.) dentro de los de la Clase Nematoda y huevos de la Superfamilia Hymenolepidoidea (Hymenolepis sp.) y un único huevo de Dipylidium caninum dentro de los de la Clase Cestoda. A continuación se muestran ejemplos de los géneros observados.

Hemos de tener en cuenta que en la observación microscópica se ve muy dificultada por la

presencia de multitud de huevos de difícil o dudosa clasificación, ya sea de especies de vida libre (como por ejemplo Rhabditoidea) que habitan los fangos, ácaros y artefactos varios de tamaños y formas coincidentes con las superfamilias Trichostrongyloidea y Ancylostomatoidea. Es por ello que se decide incluir en la cuantificación de huevos encontrados en las muestras, únicamente los clasificados inequívocamente como de parásitos de mamíferos, que consideramos los grupos Ascáridos (Ascaridoidea y Heterakoidea), Trichúridos (Trichinelloidea), Oxiúridos (Oxyuroidea) y Cestodos (Hymenolepidoidea y Dipylidium sp.).

Parascaris sp. 90 x80 Ascaris sp. 60 x 47 μm Toxocara sp. 90 x 80 μm

Toxascaris sp. 90 x 65 μm Ascaridia sp. 68 x 50 μm Enterobius sp. 50 x 27 μm

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La distribución de los diferentes tipos de helmintos en cada EDAR y en cada fase del

proceso de deshidratación se muestra en las tres gráficas adjuntas. Como vemos, no existe una correlación generalizada que indique que un tipo de huevo se

reduzca más que otro dependiendo del tipo de sistema de deshidratación. Sin embargo resulta llamativo observar en alguna EDAR cierta conservación de las proporciones entre tipos de huevos, independientemente del tipo de muestra y de la fecha de muestreo. Esto resulta especialmente evidente en las EDAR nº 1 y 2. Únicamente podemos comentar que en 2 de los 3 muestreos de la EDAR nº 5 parece que en las eras de secado se retienen los Trichúridos más que otros huevos.

Trichuris sp. 65 x 30 μm Trichosomoides sp. 65x40 μm Capillaria sp. 50 x 32 μm

Dipylidium sp. 90 x 85 μm Hymenolepis sp. 75 x 73μm

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DISTRIBUCIÓN POR TIPOS DE HELMITOS EN LAS MUESTRAS DE EDAR CON CENTRÍFUGA

0%

20%

40%

60%

80%

100%

ED

AR

1 FD

E25

/5/0

4

ED

AR

1 FD

H25

/5/0

4

ED

AR

1 FD

E19

/8/0

5

ED

AR

1 FD

H19

/8/0

5

ED

AR

1 FD

E21

/9/0

4

ED

AR

2 FD

E8/

6/04

ED

AR

2 FD

H8/

6/04

ED

AR

2 FD

E10

/2/0

5

ED

AR

2 FD

H10

/2/0

5

ED

AR

2 FD

E30

/3/0

5

ED

AR

2 FD

H30

/3/0

5

Ascáridos Trichúridos Cestodos Oxiúridos

DISTRIBUCIÓN POR TIPOS DE HELMINTOS EN LAS MUESTRAS DE EDAR CON FILTRO BANDA

0%

20%

40%

60%

80%

100%

ED

AR

3 FD

E7/

5/04

ED

AR

3 FD

H7/

5/04

ED

AR

3 FD

E30

/6/0

4

ED

AR

3 FD

H30

/6/0

4

ED

AR

3 FD

E7/

9/04

ED

AR

3 FD

H7/

9/04

ED

AR

4 FD

E17

/5/0

4

ED

AR

4 FD

H17

/5/0

4

ED

AR

4 FD

E31

/1/0

5

ED

AR

4 FD

H31

/1/0

5

ED

AR

4 FD

E18

/2/0

5

ED

AR

4 FD

H18

/2/0

5Ascáridos Trichúridos Cestodos Oxiúridos

DISTRIBUCIÓN POR TIPOS DE HELMINTOS EN LAS MUESTRAS DE LAS EDAR CON ERAS DE SECADO

0%

20%

40%

60%

80%

100%

ED

AR

5 FE

12/7

/04

ED

AR

5 FD

H12

/7/0

4

ED

AR

5 FE

10/3

/05

ED

AR

5 FD

H10

/3/0

5

ED

AR

5 E

SC

10/3

/05

ED

AR

5 FE

8/4/

05

ED

AR

5 FD

H8/

4/05

ED

AR

5 E

SC

8/4/

05

ED

AR

6 FE

2/8/

04

ED

AR

6 FD

H2/

8/04

ED

AR

6 FE

18/1

1/04

ED

AR

6 FD

H18

/11/

04

ED

AR

6 E

SC

18/1

1/04

ED

AR

6 FE

3/2/

05

ED

AR

6 FD

H3/

2/05

ED

AR

6 E

SC

3/2/

05

Ascáridos Trichúridos Cestodos Oxiúridos

12

13

5.1.2 Evaluación métodos de deshidratación Debido a las dificultad de identificación inequívoca comentada y a la variabilidad que esto

introduce en los resultados, no se van a considerar en la expresión de los mismos, aquéllos adscritos tanto al Tipo Rhabditoidea como Ancylostomatoidea y Trychostrongyloidea.

Tabla 1. Cuantificación del Nº de huevos por Kg de Materia Seca de las muestras procedentes de la deshidratación mediante Centrífuga. Cuantificación sin incluir los huevos de Tipo Ancylostomatoidea-Trychostrongyloidea, Tipo Rabditoidea y No Identificados.

EDAR con Centrífuga Fecha de muestreo nº 1

25/05/04 nº 1

18/08/04 nº 1

21/09/04 nº 2

08/06/04 nº 2

10/02/05 nº 2

30/03/05 ESPESADO (Huevos/Kg MS) 9.804 3.736 7.423 2.554 9.612 9.255

DESHIDRATADO (Huevos/Kg MS) 10.106 5.510 13.877 2.133 5.602 6.670 ESCURRIDO (Huevos/Kg MS) 0 0 0 0 0 20 ESCURRIDO (Huevos/Litro) 0 0 0 0 0 0,1

%Reducción Nºhuevos/Kg MS 0% 0% 0% 17% 42% 28% %Recuperación Nºhuevos/Kg MS 0% 0% 0% 0% 0% 0,2%

% Reducción Huevos: % huevos eliminados tras el proceso de deshidratación. % Recuperación Huevos: % huevos que recirculan a cabecera de planta.

Tabla 2. Cuantificación del Nº de huevos por Kg de Materia Seca de las muestras procedentes de la deshidratación mediante Filtros Banda. Cuantificación sin incluir los huevos de Tipo Ancylostomatoidea-Trychostrongyloidea, Tipo Rabditoidea y No Identificados.

EDAR con Filtro Banda Fecha de muestreo nº 3

07/05/04 nº 3

28/06/04 nº 3

07/09/04 nº 4

17/05/04 nº 4

31/01/05 nº 4

18/02/05 ESPESADO (Huevos/Kg MS) 8.999 2.480 8.569 351 1.118 1.204

DESHIDRATADO (Huevos/Kg MS) 1.237 952 1.803 0 240 255 ESCURRIDO (Huevos/Kg MS) 0 0 0 0 132 15 ESCURRIDO (Huevos/Litro) 0 0 0 0 0,25 0,1

%Reducción Nºhuevos/Kg MS 86% 62% 79% 100% 79% 79% %Recuperación Nºhuevos/Kg MS 0% 0% 0% 0% 7,5% 1,3%

% Reducción Huevos: % huevos eliminados del lodo tras el proceso de deshidratación. % Recuperación Huevos: % huevos que recirculan a cabecera de planta.

Tabla 3. Cuantificación del Nº de huevos por Kg de Materia Seca de las muestras procedentes de la deshidratación mediante Eras de Secado. Cuantificación sin incluir los huevos de Tipo Ancylostomatoidea-Trychostrongyloidea, Tipo Rabditoidea y No Identificados.

EDAR con Eras de Secado Fecha de muestreo

nº 5 12/07/04

nº 5 10/03/05

nº 5 08/04/05

nº 6 02/08/04

nº 6 18/11/04

nº 6 03/02/05

ESPESADO (Huevos/Kg MS) 18.245 22.575 14.639 12.136 3.166 6.259 DESHIDRATADO (Huevos/Kg MS) 3.946 12.175 8.174 0 110 2.876

ESCURRIDO (Huevos/Kg MS) 0 5.000 4.230 93 104 581 ESCURRIDO (Huevos/Litro) 0 5,5 42 1,9 6,6 3,6

%Reducción Nºhuevos/Kg MS 78% 46% 44% 100% 97% 54% %Recuperación Nºhuevos/Kg MS 0% 22% 42% 0,8% 3,3% 9,3%

% Reducción Huevos: % huevos eliminados tras el proceso de deshidratación. % Recuperación Huevos: % huevos que recirculan a cabecera de planta.

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En líneas generales se observan reducciones importantes del número de huevos de helmintos presentes en los lodos deshidratados mediante filtros banda y mediante eras de secado. Sin embargo prácticamente no se observa reducción del nº de huevos en aquellos lodos deshidratados mediante centrífugas. En los lodos deshidratados de la EDAR nº 4 (filtro banda) hay alguna muestra que presenta una menor reducción de huevos comparativamente con la EDAR nº 3, también con filtro banda, incluso aparecen más huevos en el escurrido. La explicación radica en el peor funcionamiento del filtro de esta depuradora , habiéndose observado el desborde de fango por las telas, (quizá por una deficiente limpieza de estas durante el proceso), que lógicamente acaba en el escurrido.

Los resultados obtenidos en los lodos deshidratados mediante eras de secado son bastante

coherentes. La elevada reducción de huevos observada en las muestras de la EDAR nº 6 con respecto a las de la EDAR nº 5 radican en el elevado grado de sequedad de las muestras de la nº 6, del orden del 90 % en las dos primeras y del 20 % en la última, frente a valores de sequedad en las muestras de la nº 5, entre el 9 % y el 42 %. Ya es sabido que la deshidratación y la radiación ultravioleta afecta a estas estructuras parasitarias.

En cuanto a la deshidratación mediante centrífugas, en la EDAR nº 1 no se observa ninguna

reducción de huevos y en la nº 2 se produce una reducción entre el 26 % y el 55 %, reducciones menores que las observadas en los fangos deshidratados mediante filtros banda. Quizás el tratamiento mecánico más traumático y más drástico sea el ofrecido por el filtro banda y puede ser una explicación para la reducción observada. Al fin y al cabo para la concentración y extracción de huevos en laboratorio también se utilizan procesos de centrifugación, semejantes a los que ocurren en una decantadora centrífuga para deshidratación de lodos.

En el caso del escurrido, se han hallado huevos de helminto sólo en algunas muestras de

cada uno de los tratamientos de deshidratación objeto de estudio, también de todas las especies observadas en los lodos. Por otra parte apenas se recuperan huevos en los escurridos procedentes de las deshidrataciones mecánicas (filtro banda y centrífugas). Sin embargo en el escurrido de la deshidratación mediante eras se recupera mayor cantidad de huevos.

Tras el proceso de deshidratación mediante Filtros Banda se produce una reducción en el

número de huevos de helmintos que oscila entre el 62% (EDAR nº 3: 28/06/04) y el 79% (EDAR nº 4: 31/01/05), valores muy superiores a los que obtenemos mediante los otros métodos de deshidratación objeto de este estudio. En el caso de la muestra de la EDAR nº 4 del día 17 de Mayo, se produce una reducción total del número de huevos tras el proceso de deshidratación, hecho que puede tener explicación en el deficiente volumen de muestra analizada ya que únicamente se pudo obtener para la extracción 2,5 L de escurrido.

Como puede apreciarse en la tabla 1, a diferencia de lo que ocurre tanto con el Filtro Banda

como con la Era de Secado, el proceso de deshidratación mediante Centrífuga apenas reduce la carga parasitaria del lodo en un 20-40 % (EDAR nº 2) o no la reduce en absoluto (EDAR nº 1), recuperándose la totalidad de los huevos del helminto en el fango deshidratado.

Esta variación de resultados en función de la planta de estudio, hace pensar en la

introducción de variables en el proceso que afectan a los resultados, como es el efecto del polielectrolito empleado en cada EDAR (tipo y cantidad) sobre nuestro método de extracción, las posibles variables del propio mecanismo de centrifugación (velocidad diferencial) en cada caso y el correcto funcionamiento de la centrífuga.

15

Con el proceso de deshidratación mediante Era de Secado, la reducción de huevos de helminto presentes en el fango deshidratado oscila entre el 50 y el 100% con respecto al espesado previo a la deshidratación, resultados similares a los obtenidos mediante el uso de Filtro Banda. A diferencia de los dos métodos de deshidratación expuestos anteriormente, mediante el uso de Era de Secado no se produce abrasión ni agresión alguna del fango, produciéndose únicamente una larga exposición solar y la consiguiente deshidratación del fango por lo que los posibles huevos de helminto que no se hayan recirculado a cabecera de planta con el agua de filtrado, son expuestos a altas temperaturas y consiguiente desecación y eliminación. Los porcentajes de realimentación a cabecera de planta oscilan entre el 4 y el 40% de huevos de helminto con morfología conservada y susceptibles de ser viables.

5.2 Estudio de presencia y viabilidad de huevos de helmintos en las plantas de compostaje

5.2.1 Planta de compostaje PC nº 1

Tras el proceso de tamizado e incubado del fango deshidratado, la recuperación de huevos

de helminto totales se reduce al 11% en el 1er muestreo (105 huevos/KgMS), al 15% en el 2º (265 huevos/KgMS) y al 43% en el 3º (2.250 huevos/KgMS), con respecto a la cuantificación inicial (952, 1.803 y 5.226 huevos/KgMS respectivamente).

En el fango deshidratado se observan huevos de helminto de las Familias Ascarididae ,

Trichinelloidea e Hymenilepididae y huevos clasificados como de Tipo Rhabditoidea gen.sp. y Tipo Ancylostomatoidea gen.sp., en las muestras tanto cuantificadas inicialmente como en las procesadas e incubadas, con porcentajes de recuperación similares en cada caso, pudiendo considerar representativos los datos obtenidos para el estudio de viabilidad.

En el compost analizado, únicamente se han observado huevos de Tipo Ancylostomatoidea

y Rhabditoidea tanto en el cuantificado inicialmente como en el tamizado e incubado, obteniéndose un porcentaje de recuperación de huevos totales tras la incubación del 28%. Considerando la proporción del tipo de huevo recuperado y, englobando Tipo Rhabditoidea y Tipo Ancylostomatoidea dentro del mismo grupo por su dificultad de diferenciación, obtenemos que el 100% de los huevos observados, en ambos casos, son del tipo Rhabditoide-Ancylostomatoide.

El proceso de compostado elimina el 100% de los huevos de helminto presentes en el lodo

deshidratado. Se observa un incremento del número de huevos de Tipo Rhabditoidea en el compost procedente del fin del túnel de compostaje, dato que concuerdan con los resultados obtenidos en el anterior estudio realizado por PROAGUAS COSTABLANCA (2003), en el que se justificó como una contaminación externa de nematodos, supuestamente de vida libre, procedente del material de soporte (mezcla de paja y serrín), y una contaminación cruzada probablemente producida por la propia máquina volteadora o por la pala de carga de fango deshidratado y descarga del compost.

Los datos obtenidos se muestran en las tablas siguientes:

16

Tabla 4 Concentraciones de huevos de helmintos encontradas en el fango de entrada (deshidratado) de la PC nº 1, en los tres muestreos realizados.

30/06/04 Deshidratado Deshidratado INCUBADO Nº huevos / Kg MS % % Viables Nº huevos / Kg MS % % Viables

Ascaris sp. 762 80 0 - - - Trichuris sp 190 20 0 105 100 0

TOTAL 952 100 0 105 100 0 07/09/04

Deshidratado Deshidratado INCUBADO Nº huevos / Kg MS % % Viables Nº huevos / Kg MS % % Viables

Ascaris sp. 180 10 0 132,5 50 0 Toxocara sp. 180 10 0 - - - Ascaridia sp. 180 10 0 - - - Trichuris sp 721 40 0 132,5 50 0 H. diminuta 542 30 0 - - -

TOTAL 1.803 100 0 265 100 0 17/11/04

Deshidratado Deshidratado INCUBADO Nº huevos / Kg MS % % Viables Nº huevos / Kg MS % % Viables

Ascaris sp. 747 14,3 0 698 31 0 Toxocara sp. 105 2 0 135 6 0 Ascaridia sp. 962 18,4 0 - - - Trichuris sp 3.094 59,2 0 428 19 0

T. crassicauda - - - 135 6 100 H. diminuta 318 6,1 0 854 38 0

TOTAL 5.226 100 0 2.250 100 6,25

Como hemos comentado, los resultados referidos a las muestras de compost no presentan presencia de huevos inequívocamente parásitos, únicamente de huevos encuadrados en los tipos citados como “Tipo Ancylostomatoidea gen. sp.” y “Tipo Rhabditoidea gen. sp.”.

De la misma manera, en la cuantificación de nº de huevos totales por Kg de materia seca de

todas las muestras, no se han tenido en cuenta los huevos pertenecientes a los Tipo Ancylostomatoide y Rhabditoide gen. sp. Se han mantenido los porcentajes en función de las Familias pero no se ha considerado el número de huevos rhabditoides y ancylostomatoides en el recuento final.

Se han considerado viables tanto los huevos blastomerados o larvados, como los huevos de

Hymenolepis sp. que presentan morfología conservada debido a la imposibilidad de valorar su viabilidad mediante este método.

5.2.2 Planta de compostaje PC nº 2

Tanto en el fango deshidratado de la EDAR A (Digestión aerobia) como en el fango

deshidratado de la EDAR B (Digestión anaerobia), se observan huevos de helminto de las Familias Ascarididae , Trichinelloidea e Hymenilepididae y huevos clasificados como de Tipo Rhabditoidea gen.sp. y Tipo Ancylostomatoidea gen.sp., en las muestras tanto cuantificadas inicialmente como

17

en las procesadas e incubadas, con porcentajes de recuperación similares en cada caso, pudiendo considerar representativos los datos obtenidos para el estudio de viabilidad.

En el compost analizado, únicamente se ha observado huevos de la Familia Ascarididae y

Trichinelloidea en la muestra de compost del día 22 de diciembre previo a la incubación, así como un huevo de la Familia Ascarididae en el compost tamizado e incubado del mismo día, obteniéndose un porcentaje de recuperación de huevos totales tras la incubación del 33% y un porcentaje de eliminación de huevos con respecto al deshidratado del 99%.

El proceso de compostado prácticamente elimina el 100% de los huevos de helminto

presentes en el lodo. No se observa un incremento del número de huevos de Tipo Rhabditoidea y Ancylostomatoidea en el compost procedente del fin del túnel de compostaje, hecho que sí se da en el compost procedente de la PC nº 1, en la que se justificó como una contaminación externa procedente del material de soporte (paja y serrín). En el caso de la PC nº 2, el material de soporte utilizado es el polvo de serrín y experimentalmente cascarilla de arroz, materiales, que por sus características, proporcionan una mayor superficie específica y es más biodegradable que la paja, lo que puede propiciar la mejor estabilización del lodo.

Los datos obtenidos se muestran en las tablas siguientes:

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Tabla 5 Concentraciones de huevos de helmintos encontradas en el fango de entrada (deshidratado) de la PC nº 2 .

EDAR A 01/10/04

Deshidratado Deshidratado INCUBADO Nº huevos / Kg MS % % Viables Nº huevos / Kg MS % % Viables

Ascaris sp. 1.107 25 0 4.139 40 0 Toxocara sp. 310 7 0 828 8 0 Ascaridia sp. 155 3,5 0 207 2 0 Trichuris sp 841 19 0 2.380 23 0

Capillaria sp. 376 8,5 0 207 2 0 H. diminuta 1.639 37 0 2.586 25 0

TOTAL 4.428 100 0 10.347 100 0 EDAR B 01/10/04

Deshidratado Deshidratado INCUBADO Nº huevos / Kg MS % % Viables Nº huevos / Kg MS % % Viables

Ascaris sp. 6.007 74 0 12.854 92 0 Toxocara sp. 81 1 0 140 1 0 Parascaris sp. 162 2 0 - - 0

Trichuris sp 1.380 17 0 419 3 0 H. diminuta 487 6 0 559 4 0

TOTAL 8.117 100 0 13.972 100 0 EDAR A 21/12/04

Deshidratado Deshidratado INCUBADO Nº huevos / Kg MS % % Viables Nº huevos / Kg MS % % Viables

Ascaris sp. 2.125 30 0 926 21 15,4 Toxocara sp. 638 9 11 221 5 33,3 Parascaris sp. 142 2 0 - - - Ascaridia sp. - - - 66 1,5 0 Trichuris sp 850 12 0 1.058 24 6,6

Capillaria sp. 71 1 0 66 1,5 0 H. diminuta 2.692 38 0 1941 44 0

H. nana 496 7 0 66 1,5 0 Dipylidium - - - 66 1,5 0 Oxiúrido 71 1 0 - - - TOTAL 7.083 100 1 4.410 100 6,4

EDAR B 21/12/04

Deshidratado Deshidratado INCUBADO Nº huevos / Kg MS % % Viables Nº huevos / Kg MS % % Viables

Ascaris sp. 2.010 34 0 81 45 10 Toxocara sp. 296 5 0 - - - Parascaris sp. 59 1 0 - - - Ascaridia sp. 59 1 0 4 2 0 Trichuris sp 828 14 7,7 25 14 0

Capillaria sp. 59 1 0 - - - H. diminuta 2.602 44 0 71 39 0

TOTAL 5.913 100 1 181 100 4,1

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Tabla 6 Concentraciones de huevos de helmintos encontradas en el fango de entrada (deshidratado) de la PC nº 2. Continuación.

EDAR A 04/03/05

Deshidratado Deshidratado INCUBADO Nº huevos / Kg MS % % Viables Nº huevos / Kg MS % % Viables

Ascaris sp. 2.324 32 0 1.558 33 31 Toxocara sp. 944 13 0 - - - Parascaris sp. - - - 118 2,5 0

Trichuris sp 654 9 0 850 18 0 Capillaria sp. 73 1 0 118 2,5 0 H. diminuta 3.267 45 0 2.077 44 0

TOTAL 7.262 100 0 4.720 100 10,3 EDAR B 04/03/05

Deshidratado Deshidratado INCUBADO Nº huevos / Kg MS % % Viables Nº huevos / Kg MS % % Viables

Ascaris sp. 1.980 57 0 2.069 67 0 Parascaris sp. 69 2 0 - - - Ascaridia sp. - - - 124 4 0 Trichuris sp 313 9 0 679 22 0 H. diminuta 1.111 32 0 216 7 0

TOTAL 3.473 100 0 3.088 100 0

Como ya se ha comentado, en la cuantificación del Nº de huevos totales por Kg de M.S. no

se han considerado los huevos pertenecientes al Tipo Rhabditoidea y Tipo Ancylostomatoidea. Tampoco se han considerado para el cálculo de los porcentajes en función de las Familias.

Tras el periodo de incubación del fango deshidratado, como se observa en la tabla, se

obtienen unos porcentajes de huevos viables (blastomerados o larvados) que oscilan entre el 12% y el 59% en los pertenecientes a la Familia Ascarididae y entre el 0% y el 41% en huevos pertenecientes a la Familia Trichinelloidea, en el fango deshidratado tanto procedente de la EDAR A, como de la EDAR B. Cómo se menciona anteriormente, se han considerado viables tanto los huevos blastomerados o larvados, como los huevos de Hymenolepis sp. que presentan morfología conservada debido a la imposibilidad de valorar su viabilidad mediante este método.

Los porcentajes de viabilidad en fango deshidratado varían en función del proceso de

digestión empleado, obteniendo porcentajes de viabilidad mas bajos en caso de proceder de la EDAR B (Digestión anaerobia) que si proceden de la de EDAR A (Digestión aerobia). Esto concuerda con los resultados obtenidos en el anterior estudio (Proaguas, 2003) en el que la digestión aerobia mostraba relativa ineficacia en la eliminación de huevos de helmintos, tal como muestran otros estudios (Gaspard, et al., 1996). En dicho estudio, tras la digestión anaerobia no se observaba una reducción significativa del contenido de huevos de helminto (-13%) pero sí de su viabilidad (-100%) con respecto al fango espesado. Por el contrario, los valores de huevos viables que se obtuvieron tras el proceso de digestión aerobia y deshidratación (filtro banda), nos indican la menor pérdida de viabilidad de huevos de helminto tras el proceso de digestión aeróbica (-36% máximo, en muestras de fango digerido y deshidratado tras 28 días de incubación).

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6 CONCLUSIONES

1. Se produce una reducción importante del número de huevos de helmintos presentes en los lodos deshidratados mediante filtros banda (62-79%) y eras de secado (44-100%). Es mucho menor la reducción del nº de huevos de helmintos en los lodos deshidratados mediante centrífugas (0% en EDAR nº 1, 17-42% en EDAR nº 2). La elevada reducción de huevos de helmintos observada en los lodos deshidratados mediante eras de secado es debida a la deshidratación elevada y al efecto de los rayos ultravioleta. La reducción aumenta conforme aumenta la sequedad de la muestra.

2. Resulta de gran importancia la correcta realización de la deshidratación para la mayor eliminación de huevos de helminto, en especial con el sistema de filtro banda, cuyo buen funcionamiento debe ser controlado para evitar eventualidades como la observada en la EDAR nº 4.

3. En líneas generales apenas se recuperan huevos de helmintos en los escurridos procedentes de las deshidrataciones mecánicas (filtro banda y centrífuga), aunque por distintas razones. Se demuestra la efectividad en la rotura de huevos de los filtros banda y la eficiencia en la sedimentación de los mismos mediante centrífuga. En los escurridos procedentes de la deshidratación mediante eras de secado se recupera mayor cantidad de huevos.

4. El proceso de compostaje de la PC nº 1 elimina el 100 % de los huevos de helminto presentes en el lodo deshidratado. Se observa un incremento del número de huevos de tipo Rhabditoide en el compost procedente del final del canal de compostaje, dato que concuerda con los resultados obtenidos en el anterior estudio realizado por PROAGUAS COSTABLANCA (2003). El proceso de compostaje de PC nº 2 prácticamente ha eliminado el 100 % de los huevos de helminto. Por lo tanto, los sistemas de compostaje se demuestran como una tecnología altamente eficaz en la reducción de huevos de helminto.

5. Los métodos de aislamiento de huevos de helmintos mediante tamizado resultan muy dificultosos operacionalmente, así como muy pobres en la eliminación de la materia orgánica, y por lo tanto no facilitan la posterior incubación.

6. En posteriores estudios debe incluirse la utilización de algún reactivo de extracción previo al tamizado e incubación, que mejore la eliminación de la materia orgánica, pues se ha demostrado que durante la incubación se produce una mayor reducción en la cuantificación de huevos que en la viabilidad de los mismos

7. Por último, destacar que la correcta utilización agrícola de los lodos de depuradora tratados,

supone un importante beneficio para las cosechas y los suelos, sin suponer un riesgo sanitario relevante, dado la mínima presencia de huevos viables. La seguridad del empleo de compost es superior al de los lodos deshidratados.

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7 BIBLIOGRAFÍA

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