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VARIACIÓN POBLACIONAL DE BACTERIAS LÁCTICAS DURANTE LA FERMENTACIÓN ALCOHÓLICA EN VINOS DE MENDOZA. VENDIMIAS 2015 Y 2016 Bioq. Adriana Telechea de Juez Lic. René Alberto Juez

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VARIACIÓN POBLACIONAL DE BACTERIAS LÁCTICAS DURANTE LA

FERMENTACIÓN ALCOHÓLICA EN VINOS DE MENDOZA. VENDIMIAS 2015 Y 2016

Bioq. Adriana Telechea de Juez Lic. René Alberto Juez

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“Variación poblacional de bacterias lácticas durante la fermentación alcohólica en vinos de Mendoza. Vendimias 2015 y 2016”

Director: Adriana del Valle Telechea

Codirector: René Alberto Juez

Investigador: Alicia Natalia Lombardo

Becarios alumnos: ◦ Daiana Viviano

◦ Matías Agustín Turri

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OBJETIVOS:

Determinar la cinética poblacional de las BAL durante la vinificación

Conocer los población de las BAL presentes en nuestro medio

Formación de Recursos Humanos

Realizar aportes a la industria enológica, dando a conocer nuestros resultados

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INVESTIGACIÓN UMAZA 2015

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En resumen:

Conocer la evolución de estas poblaciones microbianas durante una fermentación alcohólica controlada, para posteriormente destacar las posibles desviaciones de esta dinámica poblacional, que pueden acarrear alteraciones perjudiciales para la calidad final del vino.

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Nutrientes

pH

Aireación

Humedad

Precipitaciones

Otras

Prácticas culturales

Interacciones

Temperatura

Prácticas de fertilización

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Levaduras

Bacterias Lácticas y Acéticas

Otros microorganismos

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UVA

VINO

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Evolución de levaduras y los principales géneros de bacterias lácticas y acéticas durante las fermentaciones alcohólica y

maloláctica y durante el almacenamiento o crianza del vino. (Fuente: Esta gráfica ha sido adaptada a partir de la publicada por Krieger, 2005)

Referencias

Bacterias lácticas

Levaduras

Bacterias acéticas

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Microorganismos del vino

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Picadura láctica

Aminas biógenas

Carbamato de etilo

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BACTERIAS LÁCTICAS

(BAL)

Bacilos

cocobacilos cocos

Gram positivos

Lactobacillus Pediococcus Leuconostoc Oenococcus

Efectos benéficos e indeseables

en la industria

Homofermentativas

Heterofermentativas

Catalasa negativa

Anaerobias

Anaerobias facultativas

Microaerófilas

Fermentación maloláctica

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Hábitat

Se encuentran de forma natural en:

Uvas

Hojas

Suelo

Tienen la capacidad de crecer en ambientes diversos, incluido el mosto de uva y el vino

Superficie de la maquinaria de la bodega

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Morfología (formas)

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Pediococcus

cocos agrupados en parejas o

tetradas, nunca forman cadenas

Leuconostoc Oenococcus

cocos o cocobacilos

agrupados en parejas y, más

frecuentemente, en cadenas

Lactobacillus

forma de bacilos o bastoncillos

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Otras características:

Son Gram positivas

Catalasas negativas: No poseen la enzima catalasa, capaz de descomponer el peróxido de hidrógeno en agua y oxígeno. Por lo tanto, nos indica que no pueden poseer metabolismo oxidativo

No esporuladas

No tienen flagelos, por lo que son inmóviles

Anaerobias facultativas y además microaerófilas

Temperatura óptima de crecimiento 20°C - 30°C

Fermentadoras de azúcares

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Metabolismo de las bacterias lácticas frente a los azúcares

Azúcares fermentables

Bacterias Lácticas

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Factores que influyen negativamente sobre la población láctica:

Temperatura baja

Alto grado alcohólico

Elevada acidez (Oenococcus oeni es el más resistente)

Alta dosis de anhídrido sulfuroso (acción inhibitoria sobre las enzimas citoplasmáticas, parando el crecimiento bacteriano)

Falta de nutrientes nitrogenados

Presencia de ciertos ácidos grasos sintetizados por las levaduras: ácidos grasos de cadena media como, hexanoico, octanoico, decanoico y dodecanoico

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Otros factores que influyen negativamente sobre la población láctica:

Interacciones con otros microorganismos

Sinergismo y antagonismos entre las diferentes especies de lácticas

Clarificación de mostos y vinos

Termovinificación

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MUESTRAS

Petit Verdot 10 muestras

Malbec 1 21 muestras

Malbec 2 10 muestras

Malbec 3 5 muestras

Malbec 4 4 muestras

Día cero y hasta día 18

Día cero y hasta día 33

Día cero

y hasta

día 8

Día cero y hasta día 8 Día cero

y hasta día 25

Valle de Uco (Mza)

Luján de Cuyo (Mza)

METODOLOGÍA

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ALGORITMO DE TRABAJO

PRUEBA DE LA CATALASA EXAMEN MICROSCÓPICO

COLORACIÓN DE GRAM

EXAMEN MACROSCÓPICO Y

RECUENTO DE COLONIAS

SIEMBRA EN

MRS + ZUMO DE TOMATE + NATAMICINA

ESTUDIO DE LOS CULTIVOS

Incubación

10 días a 30 ± 2 ºC en bolsa anaerobia

M E T O D O L O G Í A

“Var

iaci

ón p

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ias

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endi

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15 y

201

6”

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10-1 10-2 10-3

Muestra Nº …..

1 mL

muestra

9 mL de

SF estéril

0,1 mL de cada dilución.

Distribuir varias gotitas en

distintos puntos de la placa

Siembra

masiva

Incubar en anaerobiosis

a 28ºC por 5 días aprox.

Homogeneizar

bien la muestra ESQUEMA DE

MÉTODO DE SIEMBRA

MUESTRA

CAJA CON PLACAS

PARA INCUBAR

EN ANAEROBIOSIS

PLACAS CON

MEDIO DE CULTIVO

PIPETA (estéril)

SOBRE PARA

GENERAR ANAEROBIOSIS

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Medio de cultivo MEDIO PARA EL RECUENTO DE LACTOBACTERIAS M.R.S. + zumo de tomate (o de manzana) • Glucosa 20 g • Peptona 10 g • Extracto de vacuno 8 g • Extracto de levadura 4 g • Fosfato dihidrógeno potásico (KH2PO4) 2 g • Acetato de sodio . 3H2O 5 g • Citrato de amonio 2 g • Sulfato de magnesio . 6H2O 0,2 g • Sulfato de manganeso . 4H2O 0,05 g • Tween 80 1 mL • Agar agar 12 g • Agua destilada csp 1000 mL • Zumo de tomate (también de manzana o de uva) 200 mL • Agregar 100 mg/L de natamicina (pimaricina) para inhibir el crecimiento de levaduras, después de tenerlo en autoclave, justo antes del uso

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RESOLUCIÓN OIV/OENO 206/2010 ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO DE VINOS Y MOSTOS -REVISIÓN DE LA RESOLUCIÓN OENO 8/95

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IDENTIFICACIÓN

PRUEBAS MORFOLÓGICAS

PRUEBAS BIOQUÍMICAS

PRUEBAS MOLECULARES

GENÉTICAS OTRAS

EXÁMENES MACROSCÓPICOS y

MICROSCÓPICOS DE LAS COLONIAS

(morfología, agrupación/disposición

y respuesta al Gram)

Prueba de la catalasa

Fermentación de azúcares

Pruebas de alta complejidad

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TIPOS DE COLONIAS

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TIPOS DE COLONIAS

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PRUEBAS MORFOLÓGICAS

EXÁMENES MACROSCÓPICOS y

MICROSCÓPICOS DE LAS COLONIAS

(morfología, agrupación/disposición

y respuesta al Gram)

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PRUEBAS MORFOLÓGICAS

PRUEBAS BIOQUÍMICAS

Prueba de la catalasa

-

+

EXÁMENES MICROSCÓPICOS

(morfología, agrupación/disposición

y respuesta al Gram)

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PRUEBAS BIOQUÍMICAS

Fermentación de azúcares

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PRUEBAS BIOQUÍMICAS

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RESULTADOS

Dilución 1:10 (siembra masiva)

Fecha Recuento (UFC/mL)

7/4/15 3,30E+04

8/4/15 1,72E+04

9/4/15 5,04E+04

10/4/15 5,50E+03

11/4/15 4,10E+04

14/4/15 1,50E+03

15/4/15 2,80E+03

23/4/15 1,00E+05

Dilución 1:100 (filtración por

membrana)

Fecha Recuento (UFC/mL)

7/4/15 3,80E+03

8/4/15 2,05E+04

9/4/15 3,08E+04

10/4/15 2,95E+04

11/4/15 2,11E+04

14/4/15 4,00E+02

15/4/15 4,60E+03

23/4/15 1,00E+05

Dilución 1:10 (filtración por

membrana)

Fecha Recuento (UFC/mL)

7/4/15 1,00E+05

8/4/15 5,56E+03

9/4/15 1,00E+05

10/4/15 1,00E+05

11/4/15 1,00E+05

14/4/15 3,00E+01

15/4/15 4,80E+03

23/4/15 1,00E+05

Petit Verdot 2015

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RESULTADOS

Fecha

Recuento

(UFC/mL)

11/3/15 7,00E+03

12/3/15 1,60E+04

13/3/15 3,90E+04

14/3/15 1,60E+04

16/3/15 1,20E+03

17/3/15 1,90E+03

18/3/15 5,00E+02

19/3/15 1,40E+03

20/3/15 2,10E+03

21/3/15 2,80E+03

22/3/15 1,80E+03

23/3/15 9,00E+02

25/3/15 8,00E+02

28/3/15 1,20E+03

30/3/15 1,60E+03

31/3/15 1,80E+03

1/4/15 4,00E+03

2/4/15 4,00E+03

6/4/15 1,60E+04

8/4/15 4,70E+04

13/4/15 1,00E+05

Malbec 1 2015

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RESULTADOS

Tiempo UFC/mL

Día 1 3 x 103

Día 3 2 x 103

Día 4 0

Día 5 2 x 103

Día 13 2 x 104

Día 15 2 x 103

Día 17 8 x 103

Día 20 5 x 103

Día 21 7 x 103

Día 25 4 x 104

Malbec 2

Malbec 2 2016

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RESULTADOS

Tiempo UFC/mL

Día 1 1 x 104

Día 3 2 x 104

Día 4 3 x 104

Día 5 3 x 104

Día 8 1 x 105

Malbec 3

Malbec 3 2016

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RESULTADOS

Tiempo UFC/mL

Día 1 1 x 106

Día 2 2 x 106

Día 5 5 x 102

Día 8 0

Malbec 4

Malbec 4 2016

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El trabajo se pudo llevar a cabo sin mayores complicaciones.

La metodología usada fue conveniente, pero muy básica a modo de inicio de la investigación.

Los resultados no fueron semejantes, en términos de recuento, comparando las cosechas 2015 y 2016. En el caso de la primera, los valores fueron similares entre sí, pero se presentaron en diferentes momentos del proceso, para las 2 variedades estudiadas. En tanto, para la última, se observaron distintos valores en el inicio para cada uno, con oscilaciones en valores cercanos para uno, ascendentes para otro y descendentes para el otro.

Las variaciones observadas pueden corresponderse a las características climáticas tan diferentes de un año y otro (se muestra en la gráfica siguiente).

Es necesario continuar con el estudio comparativo entre variedades de uvas/vinos, de diferentes zonas vitivinícolas de la provincia, y con mayor número de muestras. Así como, tipificar las especies microbianas involucradas para obtener resultados más concluyentes.

CONCLUSIONES

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Obtener muestras de diferentes zonas vitivinícolas y de diferentes variedades

Tipificar las distintas especies de bacterias que se aíslan de nuestros vinos

Determinar el movimiento de las distintas poblaciones de BAL durante el proceso de vinificación

Hacer ensayos para conocer interacciones entre las distintas especies y los otros microorganismos del vino

……………

TAREAS PENDIENTES

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Contactos: Bioq. Adriana Telechea de Juez – [email protected] Lic. René Alberto Juez - [email protected]