2008 - Atlas de protistas y metazoos presentes en fangos activos

Organizado por: Dpto Microbiología (Universidad de Sevilla) y Asociación Científica Grupo Bioindicación Sevilla, en el ámbito del Primer Congreso Hispano-Francés de Protistología. Cofinanciado por: Consejería de Innovación, Ciencia y Empresa. (Junta de Andalucía) Patrocinado por: EMASESA, DAM Y TECNOLOGÍA DEL AGUA Con la colaboración de: Facultad de Informática, IZASA , COSELA, Y SURCIS ISBN: En trámite

Jornada Internacional de Tratamiento y

Reutilización en Aguas Residuales.

Papel de los Protistas

SEVILLA, 5 DE JUNIO 2008

GRUPO BIOINDICACION SEVILLA

JORNADA INTERNACIONAL DE TRATAMIENTO Y REUTILIZACIÓN DE AGUAS RESIDUALES. PAPEL DE LOS PROTISTAS.JUNIO 2008. SEVILLA.

Jornada Internacional de Tratamiento y Reutilización en Aguas

Residuales. Papel de los Protistas.

The Role of Protists on Wastewater Treatment and Reuse

Actividades de la mañana (Español):

10:30 Recepción. Visita CITIUS (Centro de Investigación Tecnológica e

innovación).

11:30-12:00 Apertura de las Jornadas. Micororganismos y Fango activo. Dª.

Arantcha Figueredo. Dpto de Producción. Gestión Integral de Aguas Costa de

Huelva. (GIAHSA).

Lugar de celebración: Salón de grados de la Escuela Técnica Superior de

Ingeniería Informática.

12:30-13:00 Taxonomía de protistas en Aguas Residuales. Sra. Dª. Blanca Pérez-

Uz. Departamento de Microbiología III. Facultad de Biología. Universidad

Complutense de Madrid.

13:00-13:30 Estructura de las comunidades de protistas en EDAR con sistemas

biológicos de eliminación de nitrógeno. Sra Dª Susana Serrano. Departamento de

Microbiología III. Facultad de Biología. Universidad Complutense de Madrid.

Turno de preguntas. Modera. Srª. Dª. Pilar Calvo. Departamento de Microbiología III.

Facultad de Biología. Universidad Complutense de Madrid.

Actividades de la tarde (Ingles): SESSION III. Ecology and biotechnology of free-

living protists.

15:00-17:30

Metagenómica, una aproximación potente para el estudio de las comunidades

microbianas. Sra. Dª. Purificación López. Unite d´Ecologie Systematique et Evolution.

Universidad de Paris-Sur.

Seguimiento de protistas presentes en aguas residuales, mediante

metodologías de procesamiento de imagen. Sr D. Antonio Luís Pereira do Amaral.

Institute for Biotechnology and Bioengineering. Unversidade do Minho.



Caracterización microscópica de los flóculos de fangos activados, generados en

una planta piloto con sistema de eliminación de nitrógeno. Sra Dª Lucía Arregui.

Departamento de Microbiología III. Facultad de Biología. Universidad Complutense de

Madrid.

Participan con documentación:

• GBS

Atlas de protistas y micrometazoos presentes en fangos activos.

Autores de texto: GBS (Laura Isac, Eva Rodríguez [SEAFSA], Lola Salas [Itsmo'94] y

Natividad Fernández [UTE SAV-DAM-PRIDESA]), del Grupo Nematología y Recursos

Naturales de la Universidad de Sevilla (RNM-310) y Andrés Zornoza (UTE AVSA-

EGEVASA).

Autores de fotografías: GBS, Andrés Zornoza, AYMA, Paolo Madoni (Università di

Parma, Italia), Edward Mitchell (University of Alaska Anchorage, Estados Unidos), Eva

Narbona, Álvaro Gómez (The Natural History Museum, Londres, Reino Unido) y José

Suárez (Canal de Isabel II, Madrid).

• Andres Zornoza: AVSA-EGEVASA-EPSAR

Control de procesos de cloración en EDAR, mediante el seguimiento de los

protistas.

• Hydrolab

Análisis de Bioindicación: Una herramienta imprescindible para el control de las

estaciones depuradoras.

Páginas web asociadas:

Alan Warren: http://ciliateguide.myspecies.info/

Amoeba proteus:

http://bioweb.uwlax.edu/zoolab/Table_of_Contents/Lab-02/A._proteus/a._proteus.htm

Ayma, Agua y Medio ambiente:

http://personal.telefonica.terra.es/web/ayma/atlas_p.htm

Ciliate Data Base: http://research.plattsburgh.edu/Ciliates/

Ciliates: http://www.ucmp.berkeley.edu/protista/ciliata/ciliatalh.html



Participan con documentación:

ATLAS DE PROTISTAS Y METAZOOS PRESENTES EN EL FANGO ACTIVO.

Autores de texto: GBS (Laura Isac, Eva Rodríguez [SEAFSA], Lola Salas [Itsmo'94] y Natividad Fernández

[UTE SAV-DAM-PRIDESA]), del Grupo Nematología y Recursos Naturales de la Universidad de Sevilla

(RNM-310) y Andrés Zornoza (UTE AVSA-EGEVASA).

Autores de fotografías: GBS, Andrés Zornoza, AYMA, Paolo Madoni (Università di Parma, Italia), Edward

Mitchell (University of Alaska Anchorage, Estados Unidos), Eva Narbona, Álvaro Gómez (The Natural History

Museum, Londres, Reino Unido) y José Suárez (Canal de Isabel II, Madrid) .

ÍNDICE

- Tabla I: Listado de especies, asignación a los grupos de protistas tradicionalmente conocidos y denominación

de éstas en cuanto a su relación con el flóculo y hábitos alimenticios.

- Tabla II: Listado de especies recogidas y su asignación a grupo (denominación vernacular)

- Láminas fotográficas:

PROTISTAS

PROTISTAS FLAGELADOS

o EUGLÉNIDOS

o BODÓNIDOS

o COANOFLAGELADOS

o VOLVÓCIDOS

PROTISTAS AMEBOIDES

o AMEBAS DESNUDAS

o AMEBAS TESTÁCEAS

o ACTINÓPODOS

PROTISTAS ALVEOLADOS

o HETEROTRICOS

o ESPIROTRICOS: HIPOTRICOS Y ESTICOTRICOS

o LITOSTOMADOS: HAPTÓRIDOS Y PLEUROSTOMÁTIDOS



o FILOFARÍNGEOS Y SUCTORES

o NASOFÓREOS

o COLPÓDEOS

o PROSTOMADOS

o OLIGOHIMENÓFOROS

METAZOOS

ROTÍFEROS

GASTROTRICOS

NEMATODOS

ANÉLIDOS

TARDÍGRADOS

OTRAS OBSERVACIONES: ALGAS, ESTRUCTURAS DE RESISTENCIA, ETC.

- Bibliografía

- Agradecimientos



Tabla I: Listado de especies, asignación a los grupos de protistas tradicionalmente conocidos y denominación

de éstas en cuanto a su relación con el flóculo y hábitos alimenticios.

* ubicación incierta, organismo poco frecuente en fangos activos

GRUPOS DE PROTISTAS PRESENTES EN FANGOS ACTIVOS

FLAGELADOS

ZOOFLAGELADOS Bodo saltans, Pequeños flagelados sin identificar, Coanoflagelados Pequeños flagelados

EUGLENOFITOS Euglena sp., Entosiphon sp., Peranema sp. Grandes flagelados

RIZÓPODOS

AMEBOIDES Mayorella sp., Familia Amoebidae Amebas desnudas

AMEBAS TESTÁCEAS

Euglypha sp., Euglypha alveolata, Trinema sp., Arcella sp., Arcella hemisphaerica, Arcella vulgaris, Arcella gibbosa, Arcella arenaria, Arcella discoides, Pyxidicula sp., Hyalosphenia papilio, Hyalosphenia elegans, Difflugia elegans, Difflugia bacillifera, Centropyxis sp., Centropyxis aculeata

Amebas testáceas

ACTINÓPODOS

HELIOZOOS Actinosphaerium sp., Actinophrys sp. Heliozoos

CILIADOS

ESPIROTRICOS

Spirostomum sp., Spirostomum teres, Blepharisma sp. Nadadores

Euplotes sp., Euplotes aediculatus, Euplotes affinis, Euplotes patella, Euplotes moebiusi, Aspidisca cicada, Aspidisca sp., Aspidisca lynceus, Holosticha sp., Oxytricha sp., Parurosoma sp., Stylonychia sp., Stylonychia mytilus-complex

Reptantes

Stentor sp. Sésiles

HOLOTRICOS

Colpoda ecaudata, Prorodon teres*, Plagiocampa sp.*, Holophrya sp.*, Paramecium caudatum, Complejo Paramecium aurelia-complex, Paramecium bursaria, Uronema sp., Uronema nigricans, Cinetochilum margaritaceum, Cyclidium sp., Tetrahymena sp., Colpidium sp.

Nadadores

Acineria uncinata, Chilodonella uncinata, Gastronauta membranaceus, Trochilia minuta, Drepanomonas sp.

Reptantes

Paradileptus sp., Spathidium sp., Perispira sp.*, Litonotus sp., Litonotus fasciola, Litonotus crystallinus, Litonotus cygnus, Litonotus lamella, Coleps hirtus

Carnívoros

PERITRICOS

Complejo Vorticella convallaria, Vorticella gracilis (Complejo V. convallaria), Vorticella picta, Vorticella campanula, Complejo Vorticella infusionum, Complejo Vorticella microstoma, V. alpestris (Complejo V. microstoma), Complejo Vorticella aquadulcis, Vorticella striata (Complejo V. aquadulcis), Carchesium sp., Epistylis sp., Epistylis chrysemydis, Epistylis plicatilis, Epistylis entzii, Epistylis procumbens (sinónimo de E. rotans), Campanella umbellaria, Zoothamnium sp., Opercularia sp., Opercularia microdiscum, Opercularia articulata, Opercularia minima, Opercularia solitaria (O. hebes), Vaginicola sp., Thuricola kellicottiana

Sésiles

SUCTORES

Podophrya sp., Podophrya fixa, Metacineta mystacina, Acineta sp., Tokophrya sp., Tokophrya infusionum, Tokophrya quadripartita, Tokophrya lemnarum, Periacineta sp.

Sésiles (carnívoros)



Tabla II: Listado de especies recogidas y su asignación a grupo (denominación vernacular).

PROTISTAS

GRUPO: PROTISTAS FLAGELADOS

EUGLÉNIDOS Euglena sp., Entosiphon sp., Peranema sp.

BODÓNIDOS Bodo saltans, Pequeños flagelados

COANOFLAGELADOS Coanoflagelados

GRUPO: PROTISTAS AMEBOIDES

AMEBAS DESNUDAS Mayorella sp., Familia Amoebidae

AMEBAS TESTÁCEAS (con filópodos) Euglypha sp., Euglypha alveolata, Trinema sp.

AMEBAS TESTÁCEAS (Incertae sedis) Arcella sp., Arcella hemisphaerica, Arcella vulgaris, Arcella gibbosa, Arcella arenaria, Arcella discoides, Pyxidicula sp., Hyalosphenia papilio, Hyalosphenia elegans, Difflugia elegans, Difflugia bacillifera, Centropyxis sp., Centropyxis aculeata

ACTINÓPODOS Actinosphaerium sp., Actinophrys sp.

GRUPO: PROTISTAS ALVEOLADOS

HETEROTRICOS Stentor sp., Spirostomum sp., Spirostomum teres, Blepharisma sp.

ESPIROTRICOS: HIPOTRICOS Y ESTICOTRICOS

Hipotricos: Euplotes sp., Euplotes aediculatus, Euplotes affinis, Euplotes patella, Euplotes moebiusi, Aspidisca cicada, Aspidisca sp., Aspidisca lynceus

Esticotricos: Holosticha sp., Oxytricha sp., Parurosoma sp., Stylonychia sp., Stylonychia mytilus-complex

LITOSTOMADOS Haptóridos: Paradileptus sp., Spathidium sp., Perispira sp.

Pleurostomátidos: Litonotus sp., Litonotus fasciola, Litonotus crystallinus, Litonotus cygnus, Litonotus lamella, Acineria uncinata

FILOFARÍNGEOS Y SUCTORES Filofaríngeos: Chilodonella uncinata, Gastronauta membranaceus, Trochilia minuta

Suctores: Podophrya sp., Podophrya fixa, Metacineta mystacina, Acineta sp., Tokophrya sp., Tokophrya infusionum, Tokophrya quadripartita, Tokophrya lemnarum, Periacineta sp.

NASOFÓREOS Drepanomonas sp.

COLPÓDEOS Colpoda ecaudata

PROSTOMADOS Coleps hirtus, Prorodon teres, Plagiocampa sp., Holophrya sp.

OLIGOHIMENÓFOROS Paramecium caudatum, Paramecium aurelia-complex, Paramecium bursaria, Uronema sp., Uronema nigricans, Cinetochilum margaritaceum, Cyclidium sp., Tetrahymena sp., Colpidium sp.

Oligohimenóforos peritricos Complejo Vorticella convallaria, Vorticella gracilis (Complejo V. convallaria), Vorticella picta, Vorticella campanula, Complejo Vorticella infusionum, Complejo Vorticella microstoma, V. alpestris (Complejo V. microstoma), Complejo Vorticella aquadulcis, Vorticella striata (Complejo V. aquadulcis), Carchesium sp., Epistylis sp., Epistylis chrysemydis, Epistylis plicatilis, Epistylis entzii, Epistylis procumbens (sinónimo de E. rotans), Campanella umbellaria, Zoothamnium sp., Opercularia sp., Opercularia microdiscum, Opercularia articulata, Opercularia minima, Opercularia solitaria (O. hebes), Vaginicola sp., Thuricola kellicottiana

METAZOOS

ROTÍFEROS Rotaria sp., Philodina sp., Lecane sp., Testudinella sp., Cephalodella sp.

GASTROTRICOS Gastrotrico

NEMATODOS Nematodo

OLIGOQUETOS Aelosoma variegatum

ARTRÓPODOS Copépodo y ácaro

TARDÍGRADOS Tardígrado



PROTISTAS

■ GRUPO PROTISTAS FLAGELADOS:

o EUGLÉNIDOS

► PHYLUM Euglenozoa Cavalier-Smith, 1981. CLASE Euglenoidea Bütschli, 1884. ORDEN Euglenida

Bütschli, 1884.

Euglena sp. (grandes flagelados) SUBORDEN Euglenina Bütschli, 1884. FAMILIA Euglenidae. GÉNERO Euglena Ehrenberg, 1830. Célula fusiforme y flexible con extremo anterior redondeado y posterior redondeado (normalmente); con plastos verdes, uno o ningún flagelo. Movimiento por rotación helicoidal o deslizamiento. Tamaño: 25-200 µm. Asociados a carga orgánica diluida. Poco frecuentes en fangos activos, habituales en lagunajes, filtros percoladores y biodiscos. (A) 400X, contraste de fases. In vivo. (B) 600X, campo claro. In vivo.



Peranema sp. (grandes flagelados) SUBORDEN Heteronematina Leedale, 1967. FAMILIA Heteronematidae. GÉNERO Peranema Dujardin, 1841. Célula alargada, con un flagelo que apunta hacia el sentido del movimiento y extremo oscilante; el otro flagelo se adhiere al cuerpo. Núcleo central y una vacuola contráctil anterior. Tamaño: 40-70 µm. No suele ser abundante en fangos maduros, tan sólo en las fases iniciales de colonización. Si aparece en sistemas maduros indica alteraciones en la operación del reactor. Carga orgánica débil en el reactor. No obstante, compatible con buenos rendimientos en la depuración. (A) 400X, campo claro. In vivo. (B) 400X, contraste de fases. In vivo.

B

Entosiphon sp. (grandes flagelados) SUBORDEN Heteronematina Leedale, 1967. FAMILIA Heteronematidae. GÉNERO Entosiphon Stein, 1878. Costillas longitudinales visibles. Dos flagelos. Tamaño: 20-25 µm. Asociados a condiciones de baja carga. 400X, contraste de fases. In vivo.

A



o BODÓNIDOS

► PHYLUM EUGLENOZOA Cavalier-Smith, 1981. CLASE Kinetoplastida Honigberg, 1963.

Pequeños flagelados, sin identificar. Tamaño: 5-12 µm. Aparecen en las fases iniciales de colonización de un fango activo. No obstante, si aparecen en fangos de cierta madurez indican un empeoramiento en el estado de depuración del sistema. 400X, campo claro. In vivo.

Bodo saltans. (pequeños flagelados) ORDEN Kinetoplastea Honigberg, 1963. SUBORDEN Bodonina Hollande, 1952. FAMILIA Bodonidae Bütschli, 1887. GÉNERO Bodo Ehrenberg, 1830. Células pequeñas, ovoides o arriñonadas con dos flagelos de distinta logitud. Tamaño: 5-10 µm. Indicadores de deficiencias de oxígeno, sobrecargas, cambios bruscos en las condiciones físico-químicas del agua residual y tóxicos. 400X, campo claro. In vivo.



o COANOFLAGELADOS

► FLAGELADOS Incertae sedis

CLASE Choanoflagellata Kent, 1880

Coanoflagelados. ORDEN Choanoflagellida Kent, 1880. Células de pequeño tamaño (8-60 µm) dotadas de un collar transparente que rodea al flagelo único. Nadadores libres o fijos al sustrato; a veces coloniales. Algunos de ellos están asociados a salobridad alta. En general, buenos indicadores del proceso. 400X, contraste de fases. In vivo. [Detalle de coanoflagelados, campo claro, 1000X].



■ GRUPO PROTISTAS AMEBOIDES:

o AMEBAS DESNUDAS.

► AMEBAS RAMICRISTATES. ORDEN Euamoebida Lepsi, 1960.

Amebas desnudas presentes en el fango activado. Son células desnudas que cambian continuamente de forma. La morfología de los pseudópodos y el tipo de desplazamiento son específicos de la especie. En la célula se distingue una capa exterior delgada y translúcida llamada ectoplasma y otra más gruesa, con gránulos y menos translúcida llamada endoplasma. Organismos poco frecuentes en los tratamientos biológicos bajo condiciones estables de funcionamiento, aunque sí pueden aparecer abundantemente en estadíos de colonización del reactor y en situaciones de sobrecarga orgánica. En general, asociados a bajos rendimientos depuradores. A elevadas densidades pueden implicar la entrada a planta de vertidos difícilmente degradables. FAMILIA Paramoebidae Poche, 1913. GÉNERO Mayorella Schaeffer, 1926. (A) Mayorella sp. 400X, contraste de fases. In vivo. Obsérvense los lobópodos digitiformes de este género. FAMILIA Amoebidae Ehrenberg, 1838. Amebas desnudas con lobópodos anchos. (B) Ameba en escisión binaria. 400X, contraste de fases. In vivo. (C) 600X, campo claro. In vivo. (D) 100X, campo claro. Detalle de ameba desnuda teñida con Nigrosina.

B

C

A

D



o AMEBAS TESTÁCEAS

► AMEBAS TESTÁCEAS CON FILÓPODOS. ORDEN Euglyphida Copeland, 1956.

Trinema sp. (amebas testáceas) FAMILIA Trinematidae Hoogenraad y de Groot, 1940. GÉNERO Trinema Dujardin, 1841. Testa transparente, elipsoidal, redondeada u oval en sección transversal; opérculo subterminal o ventral, redondeado u oval e invaginado. Escamas redondeadas en líneas regulares y entre ellas otras de tamaño más pequeño. Organismos de pequeño tamaño, generalmente inferior a 100 µm. Pseudópodos tipo filópodo. Muy poco frecuente en fangos activos. 693X, campo claro.

Euglypha sp. (amebas testáceas) FAMILIA Euglyphidae Wallich, 1864. GÉNERO Euglypha Dujardin, 1841. Presentan testa alargada, ovoide o piriforme, dotada de pequeñas escamas ovoides organizadas en filas. Si presentan espinas, éstas son pequeñas y dispersas por la superficie. Pseudópodos tipo filópodo. Tamaño: 45-100 µm de largo. Asociados a bajas concentraciones de sólidos en el reactor y a buenas calidades del efluente. (A) 400X, campo claro. (B) Testa vacía de Euglypha alveolata, probablemente. 600X, campo claro.

A B



► AMEBAS TESTÁCEAS Incertae sedis. ORDEN Arcellinida Kent, 1880.

SUBORDEN Arcellina Haeckel, 1894. FAMILIA Arcellidae Ehrenberg, 1843. GÉNERO Arcella Ehrenberg, 1832. Se caracterizan por la presencia de testa circular, con opérculo central e invaginado y a veces rodeado de una línea o círculo de poros; testa quitinosa compuesta por subunidades muy pequeñas, incolora o amarillenta cuando el organismo es joven (cuerpo celular visible) y más oscura cuando el organismo envejece. Tamaño: 45-200 µm. En general, asociadas a buenos rendimientos en depuración, baja carga orgánica, altos tiempos de retención celular, buena oxigenación y condiciones de nitrificación en el reactor, cuando se presentan a elevadas densidades. Durante el periodo de verano, cuando las temperaturas son altas, se observan mayores desarrollos de éstas. OBSERVACIONES. Dentro de este género existen tres especies similares en cuanto a su aspecto frecuentes en fangos activos: A. vulgaris, A. hemisphaerica y A. discoides. La principal diferencia estriba en la vista de perfil de cada una de ellas: en forma de "casco" (A. vulgaris: diámetro 100-150 µm; altura: 50-80 µm), con forma semiesférica (A. hemisphaerica: diámetro 30-70 µm; altura: 25-40 µm) y muy aplanada (A. discoides: diámetro 90-150 µm; altura: 25-30 µm). A. gibbosa: se caracteriza por presentar una testa con "abolladuras"; sus dimensiones son 70-120 µm (diámetro) y 50-75 µm de altura. (A) Lobópodo emergiendo de Arcella sp. y sobre ella Pyxidicula sp. 400X, contraste de fases. (B) 1000X, campo claro. (C) Detalle de Arcella teñida con Nigrosina. 400X, campo claro. (D) 400X, campo claro. Probablemente B y D se traten de testas vacías.

B

C D

A



Arcella gibbosa. (ameba testácea) 200X, campo claro. In vivo. Vista oral y detalle con vista de perfil.

Arcella hemisphaerica. (ameba testácea) 1000X, campo claro. In vivo.

Arcella vulgaris. (ameba testácea) 200X, campo claro. In vivo.



Arcella discoides. (ameba testácea) (A) 440X, campo claro. (B) 440X, campo claro.

Pyxidicula sp. (ameba testácea) 400X, campo claro. In vivo. SUBORDEN Arcellina Haeckel, 1894. FAMILIA Arcellidae Ehrenberg, 1843. GÉNERO Pyxidicula Ehrenberg, 1838. Testácea muy pequeña y transparente. Puede pasar desapercibida en un visu general. En vista de perfil, presenta forma de "cuenco". Tamaño: 15-20 µm. En general, indicativa de una depuración correcta.

A B



Arcella arenaria. (ameba testácea) SUBORDEN Arcellina Haeckel, 1894. FAMILIA Arcellidae Ehrenberg, 1843. GÉNERO Arcella Ehrenberg, 1832. Testa de diámetro 60-90 µm, de color amarillento y pseudostoma semicircular rodeado de pequeños poros. Poco frecuente en fangos activos. (A) Organismo multinucleado. 275X, campo claro. (B) Vista oral de A. arenaria. 275X, campo claro. (C) Región oral. 1100X, campo claro. (D) Vista aboral en la que se muestran las crestas características. 275X, campo claro. Fijación en glutaraldehído al 2%.

A B

C D



Hyalosphenia papilio e Hyalosphenia elegans. (amebas testáceas) H. papilio presenta testa en forma de "botella" con una longitud de 100-140 µm. El cuerpo celular no rellena completamente la testa. Puede presentar zooclorelas. Longitud de 100-140 µm. H. elegans presenta testa con forma de "botella", transparente y color amarillento-padusco; dotada de pliegues grandes, planos e irregulares. Longitud 90-110 µm. (A) H. papilio. 440X, campo claro. (B) H. papilio con pseudópodo (tipo lobópodo) visible junto a una diatomea. 220X, campo claro. (C) H. elegans. 440X, campo claro. Detalle de la vista de perfil (570X, campo claro). Poco frecuentes en fangos activos.

A B

C

Hyalosphenia spp. (ameba testácea) SUBORDEN Difflugina. FAMILIA Hyalospheniidae Schultze, 1877. GÉNERO Hyalosphenia Stein, 1859. Presenta testa translúcida sin material externo, aplanada, ovoide o en forma de "frasco" y con opérculo terminal en forma de huso. H. elegans y H. papilio. 400X, contraste de fases. Agua y glicerol. Sin fijación.



Centropyxis sp. (ameba testácea) SUBORDEN Difflugina. FAMILIA Centropyxidae Bonnet y Thomas, 1960. GÉNERO Centropyxis Stein, 1857. Organismos con testa aglutinada circular, ovoide o discoide, más ancha posterior que anteriormente; con opérculo excéntrico ventral, que suele presentar prolongaciones a modo de espinas (aunque no en todas las especies). Su identificación a nivel de especie se realiza en función del número de espinas, de la localización de éstas, del tamaño y de la forma corporal. Indicadores de buena calidad de depuración. (A) 400X, campo claro. (B) Vista de perfil. 100X, campo claro. (C) 400X, campo claro.

Difflugia spp. (ameba testácea) SUBORDEN Difflugina. FAMILIA Difflugiidae Wallich, 1864. GÉNERO Difflugia LeClerc, 1815. Especies con testa aglutinada compuesta de partículas minerales o diatomeas (A), muy opaca, con forma redondeada u oval en sección transversal. La composición, forma y tamaño de la testa son importantes en la determinación a nivel de especie. Asociados a bajas concentraciones de sólidos y buenas calidades del efluente. (A) Difflugia elegans presenta testa piriforme, muy granulosa, con uno o dos ápices terminales de forma variable y longitud aproximada 90 µm. 693X, campo claro. (B) Difflugia bacillifera presenta testa en forma de "botella", muy densa (en algunas ocasiones diatomeas) y tamaño aproximado 120-180 µm. 275X, campo claro.

A

B

A

B C



Centropyxis aculeata (ameba testácea) Testa de tamaño y forma variables. Diámetro 100-200 µm. Presenta entre 2 y 8 espinas en la parte posterior, con aparición o no de espinas en la parte anterior. (A) 440X, campo claro. (B) Vista de perfil. 440X, campo claro. (C) 400X, contraste de fases.

C

A

B



o ACTINÓPODOS

► PHYLUM HELIOZOA. ORDEN Centrohelida Kühn, 1926. Familia Actinophryidae Claus, 1874.

GÉNERO Actinosphaerium Stein, 1857. Cuerpo celular esférico con amplio ectoplasma muy vacuolizado y rodeado de pseudópodos. Presenta varios núcleos. (A) Actinosphaerium sp. con diatomeas en su interior. 400X, campo claro. (B) Detalle de Actinosphaerium sp. con ectoplasma muy vacuolizado. 100X, contraste de fases. Heliozoos en fangos activos. Organismos de cuerpo celular esférico, transparente, dotado de pseudópodos largos y finos llamados axopodios que le confieren aspecto estrellado. Tamaño: 20-60 µm. Con escaso significado sobre el estado de depuración, son habituales en procesos de fangos activos que funcionan a bajas cargas y reducidas concentraciones de sólidos en suspensión. (C) Heliozoo en división. 100X, campo claro.

GÉNERO Actinophrys Ehrenberg, 1830. (heliozoo) Actinophrys sp. y Arcella sp. en muestra de fango activo procedente de un sistema de tratamiento de aireación prolongada. Obsérvese en el interior de la testa a un ciliado (→) consumiendo los restos en descomposición (bacterias) de la ameba. 400X, campo claro. In vivo.

A B

A. Zornoza C



■ GRUPO PROTISTAS ALVEOLADOS:

PHYLUM Ciliophora Doflein, 1901.

o HETEROTRICOS

►SUBPHYLUM Postciliodesmatophora Gerassimova y Seravin, 1976. CLASE Heterotrichea Stein, 1859.

Stentor sp. (sésil) ORDEN Heterotrichida Stein, 1859. FAMILIA Stentoridae Carus, 1863. GÉNERO Stentor Oken, 1815. Núcleo celular en forma de collar de cuentas, vermiforme o elipsoidal; pigmentos en gránulos que les confieren color verde-azulado; pueden presentar algas en simbiosis; corona ciliar rodeando el área peristomática (ZAM). Tienen capacidad de extenderse y de adquirir la forma de trompeta característica (anclada por su parte posterior al sustrato), con un volumen 4 veces mayor que la forma contraída (sin anclar al sustrato). Tamaño: 200 µm-2 mm (depende de la especie). Poco frecuente en fangos activos, tan sólo presente en sistemas de fangos activos que funcionan a muy bajas cargas másicas. Presente frecuentemente en sistemas de lagunaje. (A), (C) y (D) Stentor sp. anclado al sustrato. (B) Stentor sp. en su forma contraída, antes de fijarse al sustrato.

A

B C

D



Spirostomum sp. (nadador) ORDEN Heterotrichida Stein, 1859. Familia Spirostomidae Stein, 1867. GÉNERO Spirostomum Ehrenberg, 1833. Cuerpo normalmente esbelto, más largo que ancho y de forma cilíndrica. Peristoma rodeado por una zona adoral de membranelas (ZAM) con longitud dependiente de la especie. Macronúcleo ovalado o en forma de collar de cuentas, vacuola contráctil terminal. Tamaño: 200 µm-2 mm (depende de la especie). Indican baja concentración de sólidos en el reactor y aguas residuales poco cargadas. (A) 400X, campo claro. In vivo. (B) 400X, campo claro. Fijación con lugol. (C) 600X, campo claro. In vivo.

Spirostomum teres (nadador) Macronúcleo ovalado, vacuola contráctil terminal. La ZAM alcanza 1/2 longitud del cuerpo. Tamaño: 200-400 µm. Tolera poco el amonio. Presente en sistemas con influentes poco concentrados. 200X, contraste de fases. In vivo.

A C B



Blepharisma sp. (nadador) ORDEN Heterotrichida Stein, 1859. FAMILIA Blepharismidae Jankowski en Small y Lynn, 1985. GÉNERO Blepharisma Perty, 1849. Cuerpo aplanado lateralmente y coloración rojiza. Revestimiento de cilios regular y completo. Zona adoral de membranelas dispuesta próxima al margen izquierdo del cuerpo celular. Macronúcleo compuesto por dos nódulos. Vacuola contráctil terminal. Tamaño: 150-300 µm. Poco frecuente en fangos activos, asociado a condiciones de mala oxigenación. 400X, campo claro. In vivo.



o ESPIROTRICOS (HIPOTRICOS)

►SUBPHYLLUM Intramacronucleata Lynn, 1996. CLASE Spirotrichea Bütschli, 1889. SUBCLASE

Hypotrichia Stein, 1859.

Euplotes sp. (reptante) ORDEN Euplotida Small y Lynn, 1985. SUBORDEN Euplotina Small y Lynn, 1985. FAMILIA Euplotidae Eherenberg, 1838. GÉNERO Euplotes. Cuerpo aplanado dorsoventralmente. Campo peristomático y zona adoral de membranelas a veces cercanas a la zona de cirros transversos. La vista de perfil, permite observar bien los cirros ventrales. Nota: el género Euplotes se distingue del género Aspidisca por su mayor tamaño y por su zona adoral de membranelas (ZAM) muy desarrollada (foto inferior). Tamaño: 80-150 µm. Por lor general buen bioindicador, asociado a efluentes de buena calidad. Presentes en sistemas que reciben aguas poco cargadas. 400X, campo claro. In vivo.

ZAM



Euplotes aediculatus. (reptante) Tamaño 105-165 µm. Requiere la aplicación de técnicas de impregnación argéntica para una identificación precisa. 100X, contraste de fases. In vivo.

Euplotes affinis. (reptante) Tamaño 40-70 µm. Superficie dorsal con costillas. 600X, campo claro. In vivo.

Euplotes patella. (reptante) Tamaño 90-120 µm. Requiere la aplicación de técnicas de impregnación argéntica para una identificación precisa. 100X, contraste de fases. In vivo.



4

Aspidisca cicada (sinónimo de Aspidisca costata) (reptante) ORDEN Euplotida Small y Lynn, 1985. SUBORDEN Euplotina Small y Lynn, 1985. FAMILIA Aspidiscidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Aspidisca Ehrenberg, 1831. Cuerpo redondeado con costillas en el lado dorsal y cirros en el lado ventral. Son característicos los cirros transversos que emplea para desplazarse como si fueran “patas”. Tamaño: 25-40 µm En general característico de condiciones de estabilidad en el sistema y por tanto de buena eficacia en la depuración. 400X, campo claro. In vivo.

Euplotes moebiusi. (reptante) Dimensiones similares a E. affinis, pero no presenta costillas en su superficie dorsal. (A) 400X, contraste de fases. In vivo. (B) 400X, campo claro. In vivo.

A

B



Aspidisca lynceus. (reptante) Superficie dorsal lisa (sin crestas), aunque puede desarrollar una espina ante la presencia de depredadores en el medio. Tamaño: 35-50 µm. Buen biondicador. Nota: este organismo puede desarrollar una espina en la zona dorsal cuando se siente amenazado por depredadores. Por esta razón se la había considerado como una especie distinta, A. turrita.

400X, campo claro. In vivo.

Aspidisca sp. en proceso de división binaria (estadíos finales). 400X, campo claro. In vivo.



o ESPIROTRICOS (ESTICOTRICOS)

►SUBPHYLLUM Intramacronucleata Lynn, 1996. CLASE Spirotrichea Bütschli, 1889. SUBCLASE

Stichotrichia Small y Lynn, 1985.

Holosticha sp. (reptante) ORDEN Urostylida Jankowski, 1979. FAMILIA Urostylidae Bütschli, 1889. GÉNERO Holosticha Wrzesniowski, 1877. Cuerpo ovalado. ZAM de longitud aproximada 1/4 del cuerpo. Dos hileras de cirros ventrales largos y finos. Cirros caudales más largos y finos. Tamaño: 200 µm. Poco frecuente en sistemas de fangos activos. 400X, contraste de fases. In vivo.

Oxytricha sp. (reptante) ORDEN Sporadotrichida Fauré- Fremiet, 1961. FAMILIA Oxytrichidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Oxytricha Bory de St. Vincent en Lamouroux, Bory de St. Vincent y Deslongchamps, 1824. Cuerpo elipsoidal con extremo posterior redondeado. Cirros marginales derechos e izquierdos en dos filas que se juntan en el extremo posterior. Núcleo dispuesto en dos porciones. ZAM bien desarrollada en la zona anterior. Tamaño: Dependiente de la especie, así p.ej. O. setigera (60-80 µm) y O. fallax (130-180 µm). Buen biondicador, al ser característico de fangos estabilizados. 600X, contraste de fases. In vivo.



Parurosoma sp. (reptante?) ORDEN Sporadotrichida Fauré- Fremiet, 1961. FAMILIA Oxytrichidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Parurosoma von Gelei, 1954. Forma corporal alargada, con revestimiento de cilios regular. Presenta una elongación posterior a modo de cola. Poco frecuente en fangos activos. 600X, campo claro. In vivo.

Stylonychia sp. (reptante) ORDEN Sporadotrichida Fauré- Fremiet, 1961. FAMILIA Oxytrichidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Stylonychia Ehrenberg, 1830. Región anterior más ancha que la posterior. Zona oral muy desarrollada. Ciliación similar a la de Oxytricha sp., se diferencia de ésta en la presencia de tres largos cilios caudales. Dentro de este género existen tres especies S. mytilus, S. putrina y S. vorax. Se diferencian, básicamente: S. mytilus (tamaño 100-300 µm; peristoma sobresale marcadamente a la izda, 3 largos cirros caudales que se destacan en el extremo de varios cilios, dos cirros transversos dechos en el extremo posterior); S. putrina (tamaño 125-145 µm; 8 cirros frontales, 5 ventrales, 5 transversos y 3 caudales); S. vorax (tamaño 85-120 µm; forma elipsoidal). 400X, campo claro. In vivo.



Stylonychia mytilus-complex (reptante) 100X, contraste de fases.

Stylonychia sp. (reptante) 400X, contraste de fases.



o LITOSTOMADOS: HAPTÓRIDOS Y PLEUROSTOMÁTIDOS

► SUBPHYLLUM Intramacronucleata Lynn, 1996. CLASE Litostomatea Small y Lynn, 1981.

SUBCLASE Haptoria Corliss, 1974.

HAPTÓRIDOS

Paradileptus sp. (carnívoro?) ORDEN Haptorida Corliss, 1974. FAMILIA Tracheliidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Paralideptus Wenrich, 1929. Cuerpo redondeado con una elongación similar a una trompa, en la que se encuentra la boca. Tamaño: 100 µm (aproximadamente). 600X, campo claro. In vivo.

Spathidium sp. (carnívoro) ORDEN Haptorida Corliss, 1974. FAMILIA Spathidiidae Kahl en Doflein y Reichenow, 1929. GÉNERO Spathidium Dujardin, 1841. Citoplasma con granulaciones y a veces zooclorelas; macronúcleo ovoide o acintado (depende de la sp.); vacuola contráctil; citostoma en el extremo anterior, que presenta distinto aspecto según la sp. (truncado oblicuamente, más aplanado...). Tamaño: 40-300 µm (depende de la sp.). Poco frecuente en fangos activos. 400X, contraste de fases. In vivo.

Perispira sp. (carnívoro?) ORDEN Haptorida Corliss, 1974. FAMILIA Spathidiidae Kahl en Doflein y Reichenow, 1929. GÉNERO Perispira Stein, 1859. Cuerpo elipsoidal con estriación cortical en espiral. Citostoma apical. Macronúcleo en “C”; una sola vacuola terminal; Tamaño: 60-100 µm. Poco frecuente en fangos activos. 400X, contraste de fases. In vivo.



PLEUROSTOMÁTIDOS

Litonotus sp. (carnívoro) ORDEN Pleurostomatida Schewiakoff, 1896. FAMILIA Litonotidae Kent, 1882. GÉNERO Litonotus Wresniowski, 1870. Cuerpo fusiforme, aplanado lateralmente. Citostoma ventral alargado. Ciliación somática diferente a ambos lados del cuerpo; 2 macronúcleos y un micronúcleo. Tamaño: 80-100 µm. Asociado a estabilidad ecológica si aparece a bajas densidades. A elevadas densidades poblacionales indica deterioro del sistema. Típico de edades de fango elevadas y bajas cargas, así como fangos de mala sedimentabilidad. (A) 400X, campo claro. In vivo. (B) 400X, campo claro. Tinción Verde de metileno para núcleos.

A B

Litonotus fasciola (carnívoro) Tamaño: 100 µm de largo. Presente a medias cargas. 600X, campo claro. In vivo.



Litonotus crystallinus. (carnívoro) Es característico en este organismo la presencia de "costillas" situadas longitudinalmente. 100X, campo claro. In vivo.

Litonotus cygnus. (carnívoro) Fácilmente reconocible por su forma alargada y probóscide extensible. 100X, contraste de fases. In vivo.

Litonotus lamella. (carnívoro) Forma lanceolada con la parte anterior inclinada ligeramente hacia el lado dorsal. Tamaño: 200 µm de largo. Relacionado positivamente con el índice volumétrico de fango y con la concentración de amoníaco en el influente. (A) 400X, campo claro. In vivo. (B) 100X, contraste de fases. In vivo.

A

B



Acineria uncinata (reptante) ORDEN Pleurostomatida Schewiakoff, 1896. FAMILIA Litonotidae Kent, 1882. GÉNERO Acineria Dujardin, 1841. Forma corporal lanceolada con una pequeña torsión del extremo anterior hacia el lado izdo. Dos macronúcleos en la parte media y una vacuola contráctil en el polo posterior. Tamaño: 30-60 µm de longitud. Presente en sistemas de media y alta carga, indica abundante presencia de bacterias libres o depuración insuficiente. Algunos autores asocian su presencia a meses cálidos del año; toleran largos periodos de ausencia de oxígeno, característico de sistemas de eliminación de nutrientes. Asociado postivamente con el índice volumétrico de fangos. (A) 1000X, campo claro. Fijación con lugol. (B) 400X, contraste de fases. In vivo. (C) 400X, contraste de fases. In vivo. Nota: Puede confundirse in vivo con la especie Trachelophyllum pusillum, por lo que es necesario recurrir a técnicas de impregnación argéntica para efectuar su correcta identificación.

A

C B



o FILOFARÍNGEOS

► SUBPHYLLUM Intramacronucleata Lynn, 1996. CLASE Phyllopharyngea Puytorac et al., 1974.

SUBCLASE Phyllopharyngia Puytorac et al., 1974.

FILOFARÍNGEOS (Chilodonélidos) Cuerpo celular aplanado dorsoventralmente y ciliación somática localizada principalmente en la región ventral. Aparato citofaríngeo patente (nasa). Tamaño: 25-70 µm 400X, campo claro B

Chilodonella uncinata. (reptante) ORDEN Chlamydodontida Deroux, 1976. FAMILIA Chilodonellidae Deroux, 1970. GÉNERO Chilodonella Strand, 1928. Cuerpo celular aplanado ventralmente y ciliación somática localizada principalmente en dicha región ventral. Organismo característico por un “pico” sobresaliente del cuerpo celular (parte anterior-izquierda) y por presentar aspecto de "gorra" si se encuentra de perfil. Es característica también la forma de "coma" de la nasa faríngea (→). Tamaño: 25-70 µm Indicador de bajo tiempo de residencia de fangos. Presente en sistemas no nitrificantes y con abundancia de bacterias filamentosas. (A) 400X, contraste de fases. (B) 400X, campo claro.

A B



Gastronauta membranaceus. (reptante) ORDEN Chlamydodontina Deroux, 1976. FAMILIA Gastronautidae Deroux, 1994. Género Gastronauta Bütschli, 1889. Cuerpo ovalado, aplanado dorsoventralmente y ciliación somática prácticamente limitada a la zona ventral. Las estrías longitudinales derechas se curvan en la parte anterior celular hacia el lado izquierdo de la célula. Macronúcleo grande en la mitad posterior del cuerpo. Tamaño: 50-70 µm. Poco frecuente en fangos activos. 400X, contraste de fases. In vivo.

Trochilia minuta (reptante) ORDEN Dysteriida Deroux, 1976. FAMILIA Dysteriidae Claparède y Lachmann, 1858. GÉNERO Trochilia Dujardin, 1841. Cuerpo con forma elipsoidal, se caracteriza por presentar una prominencia a forma de espina en el polo posterior (→). Ciliación somática en el lado ventral. Nasa faríngea patente. Dos vacuolas contráctiles, una anterior y otra posterior. Tamaño: 20-25 µm 400X, contraste de fases.



o SUCTORES

► SUBPHYLLUM Intramacronucleata Lynn, 1996. CLASE Phyllopharyngea Puytorac et al., 1974.

SUBCLASE Suctoria Claparède y Lachmann, 1858.

Distinción entre los 3 grandes grupos de suctores presentes en el fango activo: ¤ Acineta sp.: Forma ovalada o triangular. Lóriga exterior comprimida lateralmente. Tentáculos agrupados en dos fascículos que tienen su origen en dos protuberancias anteriores. Macronúcleo esférico u ovoide. ¤ Podophrya sp.: Forma esférica u ovoide. No existe lóriga. Tentáculos distribuidos por toda la superficie del cuerpo. Macronúcleo esférico. ¤ Tokophrya sp.: Forma piriforme o cónica. Sin lóriga. Presenta uno, dos o cuatro fascículos de tentáculos dispuestos en la región anterior del ciliado. Macronúcleo esférico. Indicadores de edades avanzadas de fango. Al ser los últimos eslabones de la cadena alimentaria, indican estabilidad ecológica. (A) y (C). Distintos tipos morfológicos de suctores (forma corporal y agrupación de los fascículos). (B) Detalle de suctor depredando a otro ciliado.

Podophrya sp. (carnívoro) ORDEN Exogenida Collin, 1913. FAMILIA Podophryidae Haeckel, 1866. GÉNERO Podophrya Ehrenberg, 1838. Forma esférica, no presentan lóriga y tentáculos distribuidos por toda la superficie del cuerpo. Longitud del pedúnculo variable. Presentes en sistemas con elevados tiempos de retención celular. 400X, campo claro. In vivo.

B

C A



Podophrya fixa. (carnívoro) ORDEN Exogenida Collin, 1913. FAMILIA Podophryidae Haeckel, 1866. GÉNERO Podophrya Ehrenberg, 1838. Fascículos terminados en botón repartidos por toda la superficie corporal; una sola vacuola contráctil; nunca presentan lóriga; macronúcleo esférico. Pedúnculo poco más largo que el cuerpo y estriado transversalmente. Tamaño: 50-70 µm. Elevados tiempos de retención celular. 600X, campo claro. In vivo.

Metacineta mystacina (carnívoro) 400X, contraste de fases. In vivo. ORDEN Exogenida. FAMILIA Metacinetidae. GÉNERO Metacineta. Haces en fascículos en cada uno de los extremos hexagonales de la lóriga. Ésta es semitransparente, pudiéndose apreciar el citoplasma en su interior. No presenta pedúnculo. Tamaño: 60-100 µm.

Acineta sp. (carnívoro) ORDEN Endogenida Collin, 1912. FAMILIA Acinetidae Stein, 1859. GÉNERO Acineta Ehrenberg, 1833. Presencia de lóriga, de difícil observación, puesto que el cuerpo celular abarca prácticamente todo el espacio. Tamaño: Longitud 25-300 µm y anchura 30-70 µm. 400X, contraste de fases. In vivo.



Tokophrya sp. (carnívoro) ORDEN Endogenida Collin, 1912. FAMILIA Tokohryidae Jankowski en Small y Lynn, 1985. GÉNERO Tokophrya Bütschli, 1889. Macronúcleo central; tentáculos agrupados en uno, dos o cuatro fascículos. Ausencia de lóriga; fascículos de tentáculos. Tamaño: 40-60 µm. Alta edad de fangos. 400X, campo claro. In vivo.

Tokophrya infusionum. (carnívoro) Cuerpo piramidal con pedúnculo corto. Tentáculos agrupados en 2-4 haces. 400X, contraste de fases. In vivo.

Tokophrya quadripartita. (carnívoro) Cuerpo piramidal con pedúnculo de longitud 2-4 veces la del cuerpo celular. Tentáculos repartidos en cuatro haces. 400X, campo claro. In vivo.



Periacineta sp. (carnívoro) ORDEN Evaginogenida Jankowski en Corliss, 1979. FAMILIA Discophryidae Collin, 1912. GÉNERO Periacineta Collin, 1909. Forma variable. Más estrecha en la base. Pedúnculo corto. Presenta una hendidura anterior en el cuerpo donde se agrupan dos pares de tentáculos retráctiles, terminados en botón, móviles continuamente. Tamaño: 80-150 µm. Alta edad de fangos, bajas cargas másicas en el reactor. 600X, contraste de fases. In vivo.

Tokophrya lemnarum. (carnívoro) Cuerpo esférico con pedúnculo largo. Tentáculos atravesados por un fino canal. 100X, contraste de fases. In vivo.



o NASOFÓREOS

► SUBPHYLLUM Intramacronucleata Lynn, 1996. CLASE Nassophorea Small y Lynn, 1981.

Depranomonas sp. (reptante) ORDEN Microthoracida Jankowski, 1967. FAMILIA Microthoracidae Wrzesniowski, 1870. GÉNERO Drepanomonas Fresenius, 1858. Cuerpo ligeramente aplanado por la zona ventral; zona dorsal abombada y con surcos. Citostoma en una depresión en la zona media del cuerpo. Tamaño: 18-35 µm. Poco abundante en sistemas de fangos activos, se le asocia a procesos con edades de fango no muy altas y no nitrificantes. 1000X, campo claro.



o COLPÓDEOS

► SUBPHYLLUM Intramacronucleata Lynn, 1996. CLASE Colpodea Small y Lynn, 1981.

Colpoda sp. (probablemente C. ecaudata) (nadador) ORDEN Colpodida Puytorac et al., 1974. FAMILIA Colpodidae Bory de St. Vincent, 1826. GÉNERO Colpoda Müller, 1773. Cuerpo celular con forma elipsoidal-arriñonada, con vestíbulo densamente ciliado que crea corrientes para su alimentación. En la zona señalada en la microfotografía se encuentran los pequeños nucleolos que forman el macronúcleo, claves para determinar la especie. Nota: la forma de este organismo se percibe mejor en el recuadro superior derecho.

Tamaño: inferior a 40 µm. Presente a cargas medias; asociado a niveles altos de hierro.

1000X, contraste de fases. [Detalle 400X].



• PROSTOMADOS

► SUBPHYLLUM Intramacronucleata Lynn, 1996. CLASE Prostomatea Schewiakoff, 1896.

Prorodon teres. (nadador) ORDEN Prorodontida Corliss, 1974. FAMILIA Prorodontidae Kent, 1881. GÉNERO Prorodon Ehrenberg, 1833. Cuerpo cilíndrico. Nada describiendo círculos y girando alrededor de su eje longitudinal. Macronúcleo elíptico. Vacuola contráctil terminal. Tamaño: 80-200 µm. Tolera amplios márgenes de salinidad. 600X, contraste de fases. In vivo.

Coleps hirtus. (carnívoro) ORDEN Prorodontida Corliss, 1974. FAMILIA Colepidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Coleps Nitzsch, 1827. Célula en forma de barril con aspecto espinoso por la presencia de placas calcáreas que recubren el cuerpo. Característico por los cambios de dirección bruscos de su movimiento. Tamaño: 55-65 µm. Asociado a niveles bajos de carga orgánica, alto contenido en nitrógeno y bajo en amonio, condiciones de nitrificación-desnitricación. (A) y (B) 400X, campo claro. (C) 100X, campo claro; fijación con lugol.

B

A

C



Plagiocampa sp. (nadador) ORDEN Prorodontida Corliss, 1974. FAMILIA Plagiocampidae Kahl, 1926. GÉNERO Plagiocampa Schewiakoff, 1892. Cuerpo ovoide, con forma de huso o cilíndrico. Boca en el polo anterior situada en una hendidura. Macronúcleo dispuesto en una única porción. Vacuola terminal contráctil. Cilio caudal largo. Tamaño: 40-80 µm. 400X, contraste de fases.

Holophrya sp. (nadador) ORDEN Prorodontida Corliss, 1974. FAMILIA Holophrydae Perty, 1852. GÉNERO Holophrya Ehrenberg, 1831. Forma ovalada, casi redonda. Película celular con campos hexagonales, de cada uno de los cuales sale un cilio. Macronúcleo elíptico o esférico. Vacuola contráctil en el extremo posterior. Tamaño: 80-180 µm. 600X, campo claro. In vivo.



o OLIGOHIMENÓFOROS

► SUBPHYLLUM Intramacronucleata Lynn, 1996. CLASE Olygohymenophorea Puytorac et al., 1974.

SUBCLASE Peniculia Corliss, 1956 (Fauré-Fremiet).

Paramecium caudatum. (nadador) ORDEN Peniculida Fauré-Fremiet en Corliss, 1956. SUBORDEN Parameciina Jankowski en Small y Lynn, 1985. FAMILIA Parameciidae Dujardin, 1840. GÉNERO Paramecium O.F. Müller, 1773. Cuerpo celular en forma de suela. Dos vacuolas pulsátiles estrelladas; cilios caudales más largos que el resto de cilios somáticos; macronúcleo ovoide y un único micronúcleo. Depresión que se extiende desde el extremo anterior hasta el vestíbulo oral. Tamaño: 180-300 µm. Presencia esporádica en fangos en formación y en sistemas con carga alta. Más frecuente en filtros percoladores y biodiscos. 400X, campo claro. In vivo.

Paramecium aurelia- complex. (nadador) Amplia depresión oral; se distingue de P. caudatum en que el extremo final de P. aurelia es más redondeado y en el tamaño. Tamaño: 120-180 µm. No es un buen indicador de las condiciones ambientales del sistema, pues aparece ante situaciones de inestabilidad. 400X, contraste de fases. In vivo.



► SUBPHYLLUM Intramacronucleata Lynn, 1996. CLASE Oligohymenophorea Puytorac et al., 1974.

SUBCLASE Scuticociliatia Small, 1967.

Uronema nigricans en conjugación. (nadador) Abertura oral en la mitad anterior del cuerpo. La membrana paroral presenta una forma típica de gancho. Largo cilio caudal. Tamaño: 25-50 µm. La conjugación entre los protozoos permite el intercambio de material genético, creando nuevos clones con capacidad adaptativa a situaciones diferentes. 400X, contraste de fases. In vivo.

Cinetochilum margaritaceum. (nadador) ORDEN Philasterida Small, 1967. FAMILIA Cinetochilidae Perty, 1852. GÉNERO Cinetochilum Perty, 1849. Célula ovoide con surcos marcados en la inserción de las cinetias. Área oral grande posterior. Presenta varios cilios caudales más largos; vacuola contráctil posterior en posición opuesta al área oral. Movimientos muy rápidos seguidos de paradas “en seco”. Tamaño: 15-45 µm. Indicador de calidad mediocre del estado del sistema. Presencia asociada a condiciones de nitrificación en el reactor. Agua residual poco cargada. 400X, contraste de fases. In vivo.

Paramecium bursaria. (nadador) Cuerpo celular ovalado. La presencia de zooclorelas simbiontes en esta especie le aportan el color verdoso característico. Tamaño: 90-150 µm. 100X, campo claro. In vivo.



Cyclidium sp. (nadador) ORDEN Pleuronematida Fauré-Fremiet en Corliss, 1956. FAMILIA Cyclidiidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Cyclidium O.F. Müller, 1786. Cuerpo ovoide con extremo anterior truncado y sin ciliación en dicha zona anterior. Membrana paroral muy desarrollada en la zona derecha (resaltada en la foto). Cilio caudal bastante sobresaliente. Tamaño: 15-40 µm. Primeras fases de colonización, en periodos de carga fuerte o en sistemas con tiempos de residencia de fango cortos. 400X, contraste de fases. In vivo.



► SUBPHYLLUM Intramacronucleata Lynn, 1996. Clase Olygohymenophorea Puytorac et al., 1974.

Subclase Hymenostomatia Delage y Hérouard, 1896.

Tetrahymena sp. (nadador) ORDEN Hymenostomatida Delage y Hérouard, 1896. SUBORDEN Tetrahymenina Fauré-Fremiet en Corliss, 1956. FAMILIA Tetrahymenidae Corliss, 1952. GÉNERO Tetrahymena Furgason, 1940. Cuerpo piriforme. Pequeña abertura oral situada en el tercio anterior de la célula. Vacuola pulsátil en el extremo posterior. Macronúcleo esférico. Tamaño: 25-90 µm. Primeros estadíos de formación flocular. Asociado también a cargas orgánicas muy altas y escasa oxigenación, así como bajas edades de fango. Ligado a alteraciones del proceso (inducidas en algunos casos por la llegada de vertidos industriales) y bajos rendimientos depuradores. 1500X, campo claro. Tinción de vacuolas digestivas.

Colpidium sp. (nadador) ORDEN Hymenostomatida Delage y Hérouard, 1896. SUBORDEN Tetrahymenina Fauré-Fremiet en Corliss, 1956. FAMILIA Turaniellidae Didier, 1971. GÉNERO Colpidium Tamaño y formas variables: redondeada, ovalada, alargada, cilíndrica, arriñonada. Citostoma pequeño, triangular, situado a 1/4 del polo anterior. Macronúcleo esférico, micronúcleo; vacuola contráctil. Tamaño: 50-155 µm (depende de la sp.). Frecuente en aguas muy contaminadas. Presente en las primeras fases de colonización del fango. Ineficiencia biológica de la depuración. 400X, campo claro.



OLIGOHIMENÓFOROS-PERITRICOS

► SUBPHYLLUM Intramacronucleata Lynn, 1996. CLASE Olygohymenophorea Puytorac et al., 1974.

SUBCLASE Peritrichia Stein, 1859.

Los ciliados Oligohimenóforos-Peritricos habituales en sistemas de aguas residuales se caracterizan

por ser formas vegetativas (zooides) sésiles, desprovistas de ciliación somática, solitarias o coloniales.

Presentan pedúnculos de fijación contráctiles o rígidos y con embudo bucal patente con ciliación oral

peristomial e infundibular.

Estos ciliados presentan escisión binaria, gemación o formación de larvas móviles. Las larvas móviles

o larvas trocóforas son nadadoras gracias a la presencia de cilios somáticos dispuestos en una banda posterior,

señalada en la secuencia "formación de larvas telotrocas" (→). Cuando las condiciones ambientales cambian se

producen larvas trocóforas móviles, que emitirán de nuevo un pedúnculo en un nicho ecológico apropiado. Si

las condiciones ambientales son muy desfavorables se observan procesos de conjugación y de enquistamiento.

ESCISIÓN (400X)

GEMACIÓN DIVISIÓN BINARIA FORMACIÓN DE LARVAS TELOTROCAS

A B

A

A

B

C

Gemación: (A) 400X, campo claro. Escisión binaria: (A) Estadíos tempranos de la división binaria. 400X, contraste de fases. (B) 400X, campo claro. (C) 400X, contraste de fases. Formación de larvas telotrocas: (A) Primeros estadíos de la formación de larvas telotrocas. 400X, contraste de fases. (B) Larva telotroca móvil. Con una flecha se resalta la ciliación desarrollada para la natación (banda trocal). 400X, contraste de fases.

CONDICIONES AMBIENTALES ADVERSAS Proceso de conjugación en ciliado peritrico en el que se observa al macroconjugante y al microconjugante (señalado en la fotografía). 400X, contraste de fases.



Complejo Vorticella convallaria. (sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1933. FAMILIA Vorticellidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Vorticella Linnaeus, 1767. Forma acampanada y labio peristomial de anchura igual o superior a la del zooide. Pedúnculo fino y alargado (100-500 µm). Macronúcleo en "J" y vacuola contráctil en el tercio anterior de la célula. Tamaño: 30-120 µm. Se presenta como organismo dominante en reactores biológicos que funcionan de forma estable. (A) 600X, campo claro. (B) 400X, contraste de fases. (C) 400X, campo claro. (D) "Pseudocolonia". 100X, contraste de fases.

Vorticella gracilis (Complejo V. convallaria).

ORDEN Sessilida Kahl, 1933. FAMILIA Vorticellidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Vorticella Linnaeus, 1767. Cuerpo alargado con forma de "campana" estrecha, inclinado hacia un lado de forma característica. Macronúcleo en "J", longitudinal. Disco peristomial plano y elevado oblicuamente. Tamaño: 50-70µm (largo), 25-35 µm (ancho). 600X, campo claro. In vivo.

A

B

C

D



Vorticella picta (sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1933. FAMILIA Vorticellidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Vorticella Linnaeus, 1767. Reborde peristomático en forma de corazón volcado hacia la derecha. Cuerpo muy translúcido. La ciliación peristomial a menudo es ocultada por el labio peristomial (muy desarrollado). Dos vacuolas contráctiles en el tercio superior de la célula. Tamaño: 41-63 µm (largo) y 20-37 µm (ancho) (zooide). Diámetro aprox. del labio 45 µm. Poco frecuente en fangos activos. 400X, contraste de fases. In vivo.



Vorticella campanula. (sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1933. FAMILIA Vorticellidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Vorticella Linnaeus, 1767. Zooide con forma de campana invertida muy ancha. Posee mayores dimensiones que V. convallaria, tanto en el grosor del pedúnculo, como corporales. Pedúnculo con granulación en el espasmonema. Tamaño: 50-157 µm (zooide); 35-100 µm anchura peristomial; 250-350 µm largo del pedúnculo. Asociado a bajas cargas orgánicas en el reactor. [Detalle de estriación de la película. Microscopía electrónica (x10.330) (The Natural History Museum, Londres, Reino Unido)] 400X, contraste de fases. In vivo.

Complejo Vorticella infusionum. (sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1933. FAMILIA Vorticellidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Vorticella Linnaeus, 1767. Célula piriforme con el diámetro del área peristomial menor que el del zooide. Núcleo en forma de herradura situado transversal respecto al cuerpo. 30-45 líneas argirófilas transversales. Tamaño: 45-60 µm. 400X, contraste de fases. In vivo.



Complejo Vorticella microstoma. (sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1933. FAMILIA Vorticellidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Vorticella Linnaeus, 1767. Constricción en zona anterior del peristoma de menor anchura que el cuerpo; pedúnculo fino de aproximadamente 6 veces la longitud del cuerpo. Macronúcleo en "C". Vacuola contráctil junto al infundíbulo, debajo del labio peristomial. Tamaño: 35-83 µm. Es un organismo polisaprobio, pero puede desarrollarse en sistemas que trabajan con influentes a caudal alto y baja carga orgánica. Asociada a efluentes de baja calidad y a bajos valores de oxígeno disuelto en el reactor. Habitual en el proceso de fangos activos, aunque también es observada en las etapas iniciales de puesta en marcha de un reactor. (A) 400X, campo claro. In vivo. (B) 100X, contraste de fases. In vivo.

A

B

Vorticella alpestris, Complejo Vorticella microstoma. (sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1933. FAMILIA Vorticellidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Vorticella Linnaeus, 1767. Cuerpo constreñido, con diámetro de labio peristomal similar (algo inferior) a la anchura del cuerpo. Vacuola en zona central. Macronúcleo en "J", longitudinal. Película claramente estriada. Tamaño: 35-45 µm de largo, 20 µm ancho. 600X, contraste de fases. In vivo.



Complejo Vorticella aquadulcis (sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1933. FAMILIA Vorticellidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Vorticella Linnaeus, 1767. Cuerpo piriforme con labio peristomial de diámetro inferior al del zooide. El núcleo se sitúa muy cerca de la región peristomial. Presenta menos de 30 líneas argirófilas transversales. Se distingue de V. infusionum en el número de líneas argirófilas y en sus dimensiones (inferiores en V. aquadulcis). Tamaño: 30-45 µm. Es una de las vorticellas más pequeñas. Necesita experiencia en la tarea de identificación. 400X, contraste de fases. In vivo.

Vorticella striata, Complejo V. aquadulcis (sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1933. FAMILIA Vorticellidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Vorticella Linnaeus, 1767. Similar a V. microstoma, pero se diferencia de ésta en la estriación lateral, más marcada, y en la presencia de un macronúcleo transversal rodeando el infundíbulo. Tamaño: 20-50 µm. 15-40 µm de anchura peristomial. 20-300 µm largo peduncular. Asociada con la mala calidad del efluente y con disminuciones en el rendimiento del proceso. 600X, contraste de fases. In vivo.



Carchesium sp. (colonial sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1935. FAMILIA Vorticellidae Ehrenberg, 1838. GÉNERO Carchesium Ehrenberg, 1830. Tamaño: 30-60 µm (zooide). Zooide con reborde peristomático marcado. Ciliado colonial con capacidad contráctil de cada ramificación, gracias a la presencia de espasmonema discontinuo. Contracción en espiral de la colonia. Asociados a sistemas de alta calidad biológica y buena oxigenación. (A) y (B) 100x, campo claro. (C) Detalle de microconjugante en esta especie al microscopio electrónico (x 2.300) (The Natural History Museum, Londres, Reino Unido).

B

C

A



Epistylis sp. (colonial sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1933. FAMILIA Epistilyidae Kahl, 1933. GÉNERO Epistylis Ehrenberg, 1830. Ciliado colonial de pedúnculo ramificado sin capacidad contráctil (sin mionema). Los zooides presentan labio peristomial. Tamaño: 70-90 µm (zooide); colonias hasta 2-3 mm. Presentes frecuentemente en sistema de fangos activos que trabajan a medias cargas. (A) 100X, campo claro. (B) 600X, campo claro. (C) Individuos de Epistylis sp., uno con el labio peristomial visible (decha) y el otro con el labio retraído (izda). 400x, campo claro. (D) 400X, campo claro. (E) Detalle de Epistylis sp. al microscopio electrónico (X 1.620) (The Natural History Museum, Londres, Reino Unido). (F) Zooides "replegados" en colonia de Epistylis. 400X, campo claro.

F

C A B

D E



Epistylis chrysemydis. (colonial sésil) Organismos que forman colonias de importantes dimensiones. Zooides de tamaño considerable (140-220 µm) con corona ciliar característica, formada por un doble abultamiento. Pedúnculo hueco. Indicador de buena oxigenación en el reactor y efluentes de calidad. 100X, campo claro. In vivo.

Epistylis entzii. (colonial sésil) Similar a E. plicatilis se diferencia de ésta en el disco peristomial convexo. Indicador de buenas calidades en la depuración. 100X, campo claro. In vivo.

Epistylis plicatilis. (colonial sésil) Ramificación dicotómica, pedúnculo no hueco, zooide con forma de mazo y macronúcleo con forma de herradura situado transversal al cuerpo en el tercio superior. Presente en fangos maduros. Resistente a vertidos industriales. Asociado a efluentes de mediocre calidad. 100X, campo claro. In vivo.



Formación de telotroco en individuo del género Epistylis. Obsérvese la ciliación somática desarrollada en la zona posterior del zooide (→) o banda trocal.

Campanella umbellaria. (colonial sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1933. FAMILIA Epistylidae Kahl, 1933. GÉNERO Campanella Goldfuss, 1820.

Peritrico colonial de grandísimas dimensiones. Disco peristomial con ciliación oral dispuesta en tres espirales. Tamaño: 150-250 µm (zooide). Asociado a medias cargas en el reactor. 100X, campo claro. In vivo. Detalle del peristoma de Campanella sp. al microscópio electrónico (X1.600) (The Natural History Museum, Londres, Reino Unido).

Epistylis procumbens (sinónimo de E. rotans) (colonial sésil) Zooides de forma acampanada y peristoma arqueado. Macronúcleo en "C" situado próximo a la parte superior del zooide. Pedúnculo estriado longitudinalmente y segmentado. Tamaño: 70-100 µm (zooide). 100X, contraste de fases. In vivo.



Zoothamnium sp. (colonial sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1933. FAMILIA Zoothamniidae Sommer, 1951. GÉNERO Zoothamnium Bory de St. Vincent, 1826. Ciliado colonial con el espasmonema unido entre sí. Movimiento contráctil de la colonia simultáneo. Tamaño: 50-250 µm. Asociado a buenos rendimientos de la depuración biológica. Bajas cargas másicas en el reactor. (A) 600X, campo claro. In vivo. (B) 400x, campo claro.

A

B



Opercularia sp. (colonial sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1933. FAMILIA Operculariidae Fauré-Fremiet en Corliss, 1979. GÉNERO Opercularia Goldfuss, 1820. Individuos de la colonia no contráctiles; estrechamiento en la parte superior del cuerpo sin forma de embudo. Presencia de opérculo y ausencia de labio peristomial. A nivel especie, el pedúnculo es una característica diferenciadora. Tamaño: 45-50 µm (zooide). Asociado a oxigenación insuficiente y choques de carga en el reactor. Si su presencia es masiva indica condiciones cambiantes en el reactor; si la colonización del fango es casi exclusiva, indica la entrada de influentes industriales a planta. 400X, campo claro. In vivo. [Detalle: opérculo. 400X, contraste de fases.]

Opercularia microdiscum. (colonial sésil) Zooides de 70-90 µm, cilíndricos y con infundíbulos muy desarrollados. Opérculo de aproximadamente 1/5 la anchura del cuerpo. Pedúnculo estriado pero no segmentado. Colonias grandes, de hasta 0,5 mm. Presentes a elevadas cargas másicas. 100X, campo claro. In vivo. [Detalle de zooide 400X, contraste de fases].

A. Zornoza



Opercularia solitaria (posiblemente O. hebes) (sésil) 400X, campo claro. In vivo.

Opercularia minima. (colonial sésil) Zooides de 35-40 µm de largo y pedúnculos más cortos que el zooide. Colonias de 4-5 individuos. 400X, campo claro.

Opercularia articulata (colonial sésil) Macronúcleo en forma de "salchicha" en posición central. Pedúnculo muy grueso. 100X, contraste de fases. In vivo.



Vaginicola sp. (sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1935. FAMILIA Vaginicoliidae de Fromentel, 1874. GÉNERO Vaginicola Lamarck, 1816. Este organismo presenta el extremo posterior fijado a la base de un caparazón llamado lóriga de aspecto alargado y cilíndrico que es la estructura que se fija al sustrato. Una misma lóriga puede albergar a uno o dos individuos con capacidad contráctil, que se sujetan al caparazón mediante un corto pedúnculo. Los individuos pueden albergar en su citoplasma varias zooclorelas. Tamaño: 55-70 µm. Buenos rendimientos en la depuración; asociado a bajas cargas másicas y altos tiempos de retención. Nitrificación, alta concentración de oxígeno. Observado en plantas que reciben influentes con elevadas conductividades. (A) y (C) 400X, contraste de fases. (B) Lórigas vacías. 100x, campo claro. (D) 400X, campo claro.

A

B

D

C



Thuricola kellicottiana (sésil) ORDEN Sessilida Kahl, 1935. FAMILIA Vaginicoliidae de Fromentel, 1874. GÉNERO Thuricola Kent, 1881. Organismo rodeado de lóriga de la que emergen uno o dos individuos con cuerpo celular estrechado en la base. Ausencia de zooclorelas, presencia de "tapadera" en la lóriga y de pedúnculo en el anclaje del organismo a dicha lóriga. Tamaño: 200-290 µm. Buenos rendimientos en la depuración; asociado a bajas cargas másicas y altos tiempos de retención celular. (A) 100X, contraste de fases. In vivo. (B) Detalle del pedúnculo. (C) 400X, campo claro. In vivo. (D) Detalle de la "tapadera". 1000X, contraste de fases.

A B

C D



METAZOOS

GRUPO Metazoa. PHYLUM Rotifera.

Variedad de rotíferos presentes en el fango activo. (A) 1000X, campo claro. (B) 400X, campo claro. (C) 100X, contraste de fases. (D) 600X, campo claro. (E) 100X, campo claro. (F) 400X, campo claro.

B

C

E D

F

A



Philodina sp. (metazoo) CLASE Bdelloidea. ORDEN Bdelloida. FAMILIA Philodinidae.GÉNERO Philodina. Dos manchas oculares; cutícula torácica fina y lisa y 4 dedos en el pie. Tamaño: 100-500 µm. La presencia de Philodina en los sistemas de depuración biológica está condicionada por la edad del fango que deberá ser alta y la carga débil (condiciones características de la aireación prolongada). 600X, campo claro. In vivo.

Rotaria sp. (metazoo) CLASE Bdelloidea. ORDEN Bdelloidea. FAMILIA Philodinidae. GÉNERO Rotaria. Pie con 5-6 elementos y 3 dedos. Estructura bucal en forma alargada; dos manchas oculares en zona dorsal. Tamaño: 250-1.000 µm. Elevadas edades de fango, buena calidad del agua tratada. (A) 100X y (B) 150X. Campo claro. In vivo.

A

B



Lecane sp. (metazoo) CLASE Monogonta. ORDEN Ploimida. FAMILIA Lecanidae. GÉNERO Lecane. Pie corto con 1-2 dedos (para sujeción). Su aspecto es globoso o redondeado. Tamaño: 200-300 µm. Procesos muy estabilizados; en número controlado indican eficiencia en la depuración. (A) 200X y (B) 400X. Campo claro. In vivo.

Testudinella sp. (metazoo) CLASE Monogonta. ORDEN Flosculariacea. FAMILIA Testudinellidae. GÉNERO Testudinella.. Forma corporal redondeada, globosa. Pie móvil, con penacho de cilios en el estremo. Dos ojos. Musculatura longitudinal estriada. Tamaño: 70-140 µm. No aparece, generalmente, en fangos activos; sí en sistemas de lagunaje. 100X, contraste de fases. In vivo.

A

B



GRUPO Metazoa. PHYLUM Gastrotricha.

Cephalodella sp. (metazoo) CLASE Monogonta. ORDEN Ploimida. FAMILIA Notommatidae. GÉNERO Cephalodella.. Hendiduras longitudinales que separan las placas del caparazón. Órgano natatorio en posición oblicua. Alrededor de la boca presenta un penacho de cilios rígidos. Tamaño: 150-300 µm. Estados de edad de fangos avanzados. (A) 200X, contraste de fases. In vivo. (B) 400X, campo claro. In vivo.

Gastrotrico. (metazoo) ORDEN Chaetonotida. SUBORDEN Paucitubulatina. FAMILIA Chaetonotidae. GÉNERO Chaetonus. Cuerpo cubierto por pelos. Dos prolongaciones muy características en la zona caudal con forma de dedos o espinas. Tamaño: 70-500 µm. Edades avanzadas de fango. 400X, contraste de fases. In vivo.



GRUPO Metazoos. PHYLUM Nematoda.

Nematodos en el fango activo. (metazoos) Nematodos inmersos en el flóculo (A y B) y libres en los espacios interfloculares (C y D). Gusano plano de importante tamaño (0,5-2 mm).

Indicadores de elevada edad de fangos.

100X, campo claro. In vivo.

B

D

A

C



GRUPO Metazoo. PHYLUM Annelida.

Aelosoma variegatum. (metazoos) CLASE Oligochaeta. FAMILIA Aelosomatidae. ESPECIE: Aelosoma variegatum. Vacuolas de color rojo; quetas dorsales agrupadas en penachos de 3 o 4. Gusano de gran tamaño rodeado de quetas. Tamaño: 1,5-4 mm. Presentes en sistemas biológicos que funcionan con altas edades de fango. 100X, campo claro. In vivo.



Tubo seminífero de anélido. El tubo seminífero de los anélidos tiene una estructura quitinosa, que los hace muy resistentes a la degradación; por lo tanto, perduran durante bastante tiempo en el fango activado, una vez desaparecida la población de anélidos. Tamaño: 250 µm de largo (aproximadamente). (A) 200X. Campo claro. Tinción con cristal violeta. (B) 400X. Campo claro. In vivo.

Quetas de aelosoma. Las quetas son restos persistentes de los anélidos, pueden confundirse con bacterias filamentosas. 400X, contraste de fases. In vivo.

A

B



GRUPO Metazoa. PHYLUM Arthropoda.

GRUPO Aracnidos. CLASE Arachnida.

Copépodo (metazoo) CLASE Crustacea. SUBCLASE Copepoda. División en región cefalotoráxica, toráxica y abdominal. Dos grandes antenas en la zona principal que actúan como órgano sensorial. Dos segundas antenas cortas que funcionan a modo de timón. Cinco pares de patas toráxicas locomotoras. Tamaño: 800 µm-4 mm. No es común en fangos activados. Puede estar asociado a una elevación en la concentración salina. 100X, campo claro. In vivo.

Ácaro (metazoo) ORDEN Acari. Parte dorsal quitinosa del caparazón, blando. En el gnatosoma se encuentra el aparato bucal y sus apéndices; en el propodosoma se encuentran el primer y segundo par de patas y junto con el gnatosoma forman el proterosama Se identifican en función del número de quelíceros y sedas. Bastante complejo. Tamaño: 0,5-2 mm. Raro en fangos activos. Depuradoras sin control. 100X, campo claro. In vivo.



GRUPO Metazoa. PHYLUM Tardigrada.

Tardígrados (“ositos de agua”) (metazoo) TARDÍGRADOS. Cuatro pares de patas, no articuladas, terminadas en uñas dobles. Boca en zona anterior, provista de un estilete para su alimentación. Tamaño: 50 µm-1,2 mm. Ocasionalmente en aguas dulces y marinas. Raro en fangos activos. 100X, campo claro. In vivo.



OTRAS OBSERVACIONES: ALGAS, ESTRUCTURAS DE RESISTENCIA, ETC.

A

B

C

D

E

F G

H I

(A) Staurastrum sp. 100X, campo claro (B) Esporangio de hongo. 400X, campo claro. (C) Diatomeas. 1000X, campo claro. (D) Oscillatoria putrida. 400X, campo claro. (E) Huevo de helminto. 1000X, campo claro. (F) Grano de polen. 400X, campo claro. (G) Zoogloea sp. 100X, campo claro. (H) Dinobryum sp. (I) Restos vegetales. 200X, campo claro.



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http://protist.i.hosei.ac.jp/PDB/Images/menuE.html



AGRADECIMIENTOS

Queremos dejar constancia de nuestro agradecimiento a todos los autores de microfotografías, por confiar en

nosotros en la realización de este atlas, entregándonos su material fotográfico y el consiguiente trabajo de

identificación.

Agradecemos también a D. Fernando Estévez la confianza depositada en el grupo así como la oportunidad

brindada para la realización de este documento.

Nuestro agradecimiento a las doctoras Susana Serrano y Blanca Pérez-Uz (Universidad Complutense de

Madrid), por la colaboración establecida en estos últimos meses con el grupo, la cual ha repercutido

positivamente en el estado final del presente trabajo.

A Humbert Salvadó (Universidad de Barcelona), queremos agradecerle su amable respuesta a nuestras

consultas planteadas.

2008 - Atlas de protistas y metazoos presentes en fangos activos

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