2. Director de la Estación Experimental del Austro: 3. 4 ...
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119 1. Departamento / Programa: Frutales 2. Director de la Estación Experimental del Austro: Ing. Maximiliano Ochoa 3. Responsable: Carlos Feicán Mejía. Ing. Agr. M. Sc. 4. Equipo técnico multidisciplinario I+D: Ing. Agr. M. Sc Carlos Feicán Mejía. 5. Financiamiento: Gasto Corriente Estación Experimental del Austro 6. Proyectos: Caracterización agromorfológica y molecular de accesiones de mora (Rubus sp.) de la Sierra Sur ecuatoriana, fuente de financiamiento Gasto Corriente Estación Experimental del Austro, presupuesto, $4 000, fecha de inicio, Enero 2018 y fin del proyecto, Enero 2024 7. Socios estratégicos para investigación Universidad Estatal de Cuenca, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Católica de Cuenca Unidad Académica de Ingeniería Agronomía, Minas, Veterinaria y Ecología. Productores, GAD Provincial de Luis Cordero. 8. Publicaciones Caracterización morfoagronómica del germoplasma de chirimoya (Annona cherimola Mill.), en las colecciones ex situ del INIAP y Universidad de Cuenca, Ecuador 9. Participación en eventos de difusión científica, técnica o de difusión: 9.1 Replica de conocimientos sobre pasantía en el Brasil (EMBRAPA) a técnicos del programa de fruticultura y del departamento de producción del INIAP, 26 de enero del 2018. (20 Técnicos) 9.2 Conferencia técnica como expositor en la segunda feria de la Manzana en Bulan, sobre la fruticultura caducifolio en el Sur del país, 28 de abril del 2018. (70 productores) 9.3 Conferencia teórico-práctica, como expositor, sobre mosca de la fruta, fertilización, podas en frutales caducifolios. A productores de la parroquia Luis Cordero, 4 de julio del 2018 (35 Participantes)
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1. Departamento / Programa: Frutales
2. Director de la Estación Experimental del Austro: Ing. Maximiliano Ochoa
3. Responsable: Carlos Feicán Mejía. Ing. Agr. M. Sc.
4. Equipo técnico multidisciplinario I+D: Ing. Agr. M. Sc Carlos Feicán Mejía.
5. Financiamiento: Gasto Corriente Estación Experimental del Austro
6. Proyectos: Caracterización agromorfológica y molecular de accesiones de mora
(Rubus sp.) de la Sierra Sur ecuatoriana, fuente de financiamiento Gasto Corriente Estación
Experimental del Austro, presupuesto, $4 000, fecha de inicio, Enero 2018 y fin del
proyecto, Enero 2024
7. Socios estratégicos para investigación
Universidad Estatal de Cuenca, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad
Católica de Cuenca Unidad Académica de Ingeniería Agronomía, Minas, Veterinaria y
Ecología. Productores, GAD Provincial de Luis Cordero.
8. Publicaciones
Caracterización morfoagronómica del germoplasma de chirimoya (Annona
cherimola Mill.), en las colecciones ex situ del INIAP y Universidad de Cuenca, Ecuador
9. Participación en eventos de difusión científica, técnica o de difusión:
9.1 Replica de conocimientos sobre pasantía en el Brasil (EMBRAPA) a técnicos del
programa de fruticultura y del departamento de producción del INIAP, 26 de enero del
2018. (20 Técnicos)
9.2 Conferencia técnica como expositor en la segunda feria de la Manzana en Bulan,
sobre la fruticultura caducifolio en el Sur del país, 28 de abril del 2018. (70 productores)
9.3 Conferencia teórico-práctica, como expositor, sobre mosca de la fruta, fertilización,
podas en frutales caducifolios. A productores de la parroquia Luis Cordero, 4 de julio del
2018 (35 Participantes)
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9.4 Conferencia, como expositor, sobre Investigaciones en chirimoya. A estudiantes de
la Universidad de Cuenca, 5 de junio del 2018 (60 Estudiantes).
9.5 Conferencia, como expositor, sobre Investigaciones en chirimoya. A estudiantes de
la Universidad Cesar Vallejo de Perú, 6 de julio del 2018 (38 Participantes)
9.6 Conferencia, como expositor, Investigaciones en chirimoya. A estudiantes de la
Universidad Técnica de Babahoyo. 26 de julio del 2018 (12 Participantes)
9.7 Participación como asistente, al seminario de nuevas tecnologías para el
fitomerjoramiento realizado en Guayaquil el 4 de septiembre del 2018.
9.8 Participación en el II congreso provincial de la mora del 27 al 28 de septiembre del
2018, en Tisaleo-Ambato
10. Propuestas presentadas
10.1 Propuesta 1
Título: Determinación de la distinción, homogeneidad y estabilidad (DHE) del clon de
Chirimoya INIAP Fabulosa 2015.
Tipo propuesta: Protocolo de investigación
Fondos o Convocatoria: Gasto Corriente Estación Experimental del Austro
Fecha presentación: Noviembre 2018
Responsable Ing. Agr. M. Sc. Carlos Feicán Mejía
Equipo multidisciplinario: Ing. Agr. M. Sc. Carlos Feicán Mejía
Presupuesto: $ 500
Duración proyecto: 24 meses
Estado: Aprobado
Fecha probable inicio ejecución: Enero 2019
10.2 Propuesta 2
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Título: Evaluación de la sintomatología producida por deficiencia de macro y micro
elementos en plantas de chirimoya en condiciones hidropónicas bajo invernadero.
Tipo propuesta: Protocolo de investigación
Fondos o Convocatoria: Gasto Corriente Estación Experimental del Austro
Fecha presentación: Noviembre 2018
Responsable Ing. Agr. M. Sc. Carlos Feicán Mejía
Equipo multidisciplinario: Ing. Agr. M. Sc. Carlos Feicán Mejía
Presupuesto: $ 8 022,21
Duración proyecto: 12 meses
Estado: Aprobado
Fecha probable inicio ejecución: febrero 2019
11. Hitos/Actividades por proyecto establecidas en el POA
HITO 1. Obtención de dos ecotipos de mora con resistencia y/o tolerancia al frio fase
II de VI
HITO 2. Nivel de fertilización para incrementar rendimiento y producción en el cultivo
de la chirimoya generada, Fase II de III
HITO 3. Publicación científica en el rubro chirimoya publicada en revista científica
HITO 4. Escritura de 2 protocolos de investigación.
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Actividad 1
Caracterización agromorfológica y molecular de accesiones de mora (Rubus sp.) de la
Sierra Sur ecuatoriana.
Antecedentes
Las especies de mora en latino américa del género Rubus se encuentran agrupadas
principalmente en tres subgéneros: Rubus, Idaeobatus y Orobatus, este último, exclusivo de
Suramérica (Ballington J.R. M Lutein, 1193, págs. 9-15); (Marulanda, 2007, págs. 242-252).
La mora de castilla se considera un híbrido porque combina características de los
subgéneros Idaeobatus y Rubus, además es un anfi diploide fértil (L., 1988, pág. 230);
(Marulanda, 2007, págs. 242-252). En el Ecuador podemos encontrar especies silvestres y
cultivadas como: Rubus floribundus (mora silvestre), Rubus glabratus (mora de la virgen),
Rubus adenotrichas (mora silvestre), Rubus roseus (mora silvestre), Rubus azuayensis,
Rubus glaucus (mora de Castilla), etc., distribuidas desde 2 200 hasta 4 000 m s.n.m
(Romoleroux, 1996, pág. 100).
El 50% de los cultivares que se producen en el mundo son semierectos, 25% erectos y
25% cultivares rastreros. Los cultivares erectos y semierectos se prefieren para producir
frutos de consumo en fresco, mientras que los cultivares rastreros se utilizan principalmente
para fruta para procesamiento. (Strik, 2007, págs. 205-213).
Muchos de los trabajos de mejoramiento de especies Rubus se han realizado en las
zonas templadas, con el objetivo de desarrollar genotipos sin aguijones, ramas erectas,
frutos firmes, mayor tamaño de los frutos, alto rendimiento y en los últimos años en pro de
buscar la fructificación de la rama primaria o principal, debido a que no produce frutos en el
primer año de cultivo. Estas investigaciones se han dirigido directamente en la Universidad
de Arkansas (Clark, 2007, págs. 17-146).
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Por otra parte, se considera que, la diversidad genética de una especie puede medirse de
diferentes formas, la más común es mediante descriptores morfológicos. No obstante, las
condiciones ambientales influyen en la manifestación de ciertos caracteres fenotípicos como
el color de los tallos y flores, que pueden interpretarse erróneamente como variabilidad
genética dentro de una especie, cuando lo que ocurre realmente es una adaptación
diferencial entre poblaciones (Marshall B., 2001, págs. 671-682); (Roa, 2010, págs. 173-
192).
Para que el germoplasma de las especies de Rubus se pueda conservar, manejar y
utilizar eficientemente se deben caracterizar morfológica, agronómica y genéticamente
(Morillo, Cruz, Muñoz, Vásquez, y Zamorano, 2005., pág. 13). La caracterización es un
factor estratégico en la investigación, para solucionar problemas que ya estén presentes en
los campos de cultivo, con el desarrollo de variedades arquetipo. La caracterización se
puede realizar, mediante la utilización de métodos tradicionales como: caracterización
morfoagronómica; o por métodos moleculares (IPGRI, 2003, pág. 364) y (Andrade, 2009,
pág. 156).
Generalmente el germoplasma de Rubus, es difícil de caracterizar debido a la
diversidad de hábitos de desarrollo, distribución de las especies, reproducción sexual,
dispersión de semillas por aves, rápida propagación vegetal, prolífica producción de
semillas apomícticas, hibridación, eventos de poliploidía, apomixis, alta variabilidad
fenotípica, son las causas para una difícil clasificación de zarzamoras en distintas especies
biológicas. (Ellis, Converse, & Williams, Compendium of Raspberry and Blackberry
Diseases and Insects. United States of America. USDA, 1991, pág. 100)
(Andrade, 2009, pág. 156), indica que la caracterización morfoagronómica se debe
realizar en poblaciones representativas, mediante la utilización de descriptores. Estos
descriptores son caracteres o atributos referentes a la forma, estructura, y comportamiento
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de un individuo que forma parte de una población en estudio.
Los descriptores tienen la ventaja de ser tomados fácilmente, requieren de equipos poco
sofisticados, representando así una directa apreciación del fenotipo en estudio, los
descriptores pueden ser utilizados de manera inmediata. Las determinaciones morfológicas
deben ser tomadas por un experto, ya que podría cambiar al someterse a factores
ambientales (IPGRI, 2003, pág. 364). Los descriptores deben ser evaluados en estado adulto
y a la totalidad de la planta (Andrade, 2009, pág. 156).
La caracterización y registro se la debe realizar en forma sistematizada, para que la
información del germoplasma pueda ser utilizada, los descriptores se han utilizado para la
identificación de familias y especies. Las plantas de importancia económica tienen estos
descriptores para ser evaluadas y caracterizadas; estos descriptores pueden ser dominantes o
recesivos, los descriptores que son menos influenciados por el medio ambiente son los más
útiles, siendo estos flor, fruto; siguiéndoles en importancia las hojas, raíces y tejidos
celulares (Andrade, 2009, pág. 156).
Para implementar el cultivo de la mora, hay que tener presente muchos factores que son
indispensables para su desarrollo como son las condiciones de clima en lo referente a su
temperatura, precipitación, altitud, vientos y heladas (De la Cadena, 1984, pág. 35) En la
sierra ecuatoriana la variedad que más se cultiva es la mora de castilla la cual se planta entre
altitudes comprendidas desde los 2 500 hasta los 3 100 m s.n.m. Con temperaturas que
varían entre los 12 y 18°C, una humedad relativa del 80% al 90% y precipitaciones de
entre 500 y 1 000 mm al año. (Martinez A. , 2007, pág. 12)
El clima es el factor más importante a considerarse para la implementación de huertos
de mora ya que de este dependerá el éxito o fracaso de nuestra explotación frutícola,
convirtiéndose las heladas en el principal elemento a tener en cuenta, ya que, la mora es
susceptible a este factor climático; debiendo entonces primeramente definir una zona libre
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de heladas. (De la Cadena, 1984, pág. 36).
Si escogemos un lugar libre de heladas, pero de mucho viento, se recomienda realizar la
protección del huerto mediante la implementación de cortinas rompe vientos. (De la Cadena,
1984, pág. 36)
Objetivos
Objetivo General
Contribuir al conocimiento de la diversidad genética y uso potencial de Rubus sp. como
base científica para la ejecución de proyectos de mejora genética en la Sierra Sur
ecuatoriana.
Objetivos Específicos
Evaluar agro-morfológicamente las accesiones de mora disponibles en la Sierra Sur.
Identificar grupos de genotipos con características morfológicas favorables para
usarlos en un programa de fitomejoramiento.
Caracterizar molecularmente la variabilidad genética de Rubus sp colectados en la
Sierra Sur.
Determinar los niveles de ploidia de los genotipos seleccionados
Analizar la viabilidad del polen de las accesiones en estudio con el propósito de
usarlos en un plan de mejora genética.
Metodología
Manejo del experimento
Se realizó la recolección de las accesiones en las provincias de Azuay, Cañar y Loja.
luego se implementaron los huertos colección, en las zonas de Guavizay Alto y Burgay; una
vez que las plantas hayan desarrollado en los sitios plantados, se procederá a realizar un
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estudio agromorfologico de los materiales de mora silvestre del Austro del país, con los
descriptores mencionados para el efecto. Posteriormente se ejecutó un estudio de fenología
floral de las accesiones de los materiales de mora silvestre del Austro del país, los análisis
moleculares y ploidía se los realizara en los laboratorios de la Estación Experimental Litoral
Sur del INIAP.
Preparación del terreno
Se realizó un pase de arado y uno de rastra con la finalidad de desintegrar las capas
duras del suelo y nivelar la superficie. Previo a esta labor se tomaron muestras de suelo para
su respectivo análisis químico.
Trazado, hoyado y plantación
Se trazó el lote de terreno con la medición y el uso de estacas, se realizaron los hoyos
de 0.35 m de ancho por 0.35 m de profundidad. La plantación de los ecotipos se realizó a
una distancia de 2.0 m entre plantas y 3.0 m entre hileras
Abonadura, fertilización y riego
La incorporación de abonos y fertilizantes se efectuó de acuerdo a las necesidades del
cultivo, basándose en las recomendaciones de análisis de suelo.
Manejo de plagas
Se realizó controles preventivos con productos de contacto y cuando fue necesario se
aplicó productos sistémicos para el manejo racional de plagas enfermedades.
Deshierbas
Las deshierbas se realizaron oportunamente cuando los ensayos lo requirieron,
procediendo de forma manual o mecánica.
Poda y Tutorado
La sensibilidad del ramaje de estos árboles al viento determina la necesidad de colocar
un sistema de tutoreo en telégrafo, amarrando las ramas al alambre principal con cinta de
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tutoreo para evitar el desgaje de las mismas. La poda se realizó de acuerdo a las necesidades
del cultivo, primero una poda de formación, de sanidad y fructificación.
Cosecha de frutos
Se realizará en forma manual, cuando los frutos presenten el 75% del color rojo o negro
característico a la madurez. Desde el momento que ha empezado la fase de fructificación, la
cosecha se realizará cada 15 días durante el tiempo de evaluación.
En la caracterización agromorfológica el estudio constará de dos fases. En la primera
fase o de campo se analizará las características externas de hojas, flores y frutos existentes
en los árboles; se seleccionarán las hojas, flores y frutos más representativos y se
recolectará. Estos serán etiquetados al igual que la planta de la que procede.
En la segunda fase o de laboratorio las hojas y flores se procederá analizar
inmediatamente observando las características cualitativas mediante un estereomicroscopio,
los frutos recolectados serán puestos en labor de post-cosecha para cuando estos se
encuentren en madurez optima se realizará la caracterización pomológica.
La presente investigación se ejecutará en el Cantón Sigsig, Parroquia Jima, Sector
Guavisay alto de la Provincia del Azuay.
Tabla 1
Ubicación política y geográfica del sitio experimental. Sierra Sur del Ecuador, 2018.
Provincia Azuay Cañar
Cantón Sigsig Biblian
Parroquia Jima Jerusalén
Sitio Guavizay Alto Burgay
Altitud 2 737 m s.n.m. 3 264 m s.n.m.
Latitud UTM 9650356
Longitud UTM 727834 Fuente: Elaboración Programa de Frutales EEA, 2018.
Tabla 2
Características edafoclimáticas del sitio experimental. Sierra Sur del Ecuador, 2018.
Zona climática Bosque húmedo templado frío (bhtf)
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Temperatura promedio 4-20 oC
Precipitación media anual 500 a 2.000 mm
Humedad relativa promedio 85%
Topografía Inclinada
Tipo de suelo Arcilloso Fuente: Elaboración Programa de Frutales EEA, 2018.
Tabla 3
Características climáticas del sitio experimental. Sierra Sur del Ecuador, 2018.
Zona climática bosque húmedo-montano (bh-M)
Temperatura promedio 14oC
Precipitación media anual Mm
Humedad relativa promedio %
Topografía Inclinada
Tipo de suelo Arcilloso Fuente: Elaboración Programa de Frutales EEA, 2018
Materiales
Físicos
Cajas de cartón, papel periódico, etiquetas, rollo de hilo, tijeras de podar, guantes, libreta
de campo, flexómetro, esferos gráficos, marcadores, lápiz, cinta métrica, cinta adhesiva,
cinta maski, balanza, computadora, phmetro, calibrador, penetrómetro, refractometro, vasos
de precipitación, navaja, lupas, pinzas, mango con bisturí, fundas, refrigeradora.
Biológicos
Accesiones de Mora de las diferentes provincias del sur del país
Químicos
Fertilizante 18-46-0. 00-00-60 urea (N al 46%), Herbicida (Glifosato), Insecticida.
(Cipermetrina), Fungicidas. (Difenoconazol, Mancoceb, Asufre micronizado, Penconazol,
Metalaxil +Mancoseb y Clorotalonil), Kelatos de boro, Zing y Magnesio.
Datos a evaluarse
La evaluación se ejecuta de acuerdo con la metodología utilizada en una observación de
registro, para ello se analizarán las siguientes variables:
Hoja: Datos tomados de 4 hojas maduras y sanas obtenidas de la mitad de los brotes.
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Flor: Datos tomados de 4 flores o inflorescencias obtenidas de cada árbol en floración.
Fruto: Todas las observaciones sobre el fruto deben hacerse en la fase de maduración
óptima Datos observados en 4 frutos típicos y bien desarrollados.
Semilla: Evaluar 5 semillas por fruto
Ramas: Datos tomados de 4 ramas maduras y sanas
Los descriptores y variables se tomaron de investigaciones anteriores (Romoleroux
1996 Graber, 1997, Morillo et al 2006 Proaño 2008) y fueron modificados por el
Programa Nacional de Fruticultura del INIAP
Tabla 4 Descriptores Cualitativos y Cuantitativos para Mora:
CUALITATIVOS CUANTITATIVOS 1. Serosidad del tallo (CET): 1. Diámetro del tallo (DIAMT):
2. Pubescencia en el tallo (PUT): 2. Longitud de entrenudos (LENT):
3. Forma del tallo (FT): 3. Número de aguijones en el tallo (NAGT):
4. Forma de aguijones en el tallo (AGT): 1 Elíptico
5. Base del aguijón en el tallo (BAGT): 2. Redondeado
6. Forma de aguijones en la hoja (AGH): 3. Lanceolado
7. Base del aguijón en la hoja (BAGH): 4. Número de aguijones en la hoja (NAGH):
8. Forma de la hoja (FHOJ): 5. Tamaño de estípulas (TAMEST):
9. Margen de la hoja (MARH): 6. Longitud del foliolo (LFOL):
10. Base de la hoja (BASH): 7. Ancho del foliolo (ANFOL):
11. Ápice de la hoja (APHOJ): 8. Longitud del peciolo (LPEC):
12. Forma del foliolo (FFOL 9. Longitud del peciolo (LPLULO):
13. Color del envés (CENV): 10. Número de piezas de la corola (NPCOR):
14. Color de la corola bb: 11. Número de piezas del cáliz (NPCA):
15. Forma del pétalo (FPET): 12. Longitud del pétalo (LPET):
16. Color del cáliz me: 13. Ancho del pétalo (APET):
14. Nº de frutos de forma primaria (NFP):
15. Nº de frutos de forma secundaria (NFS):
16. Peso del fruto (PFRUT):
17. Diámetro del fruto (DFRUT):
18. Longitud del fruto (LFRUT):
19. Diámetro del receptáculo (DREC):
20. Longitud del receptáculo (LREC):
21. Número de drupeolas (NDRUP):
22. Rendimiento (REND):
Fuente: Romoleroux 1996 Graber, 1997, Morillo et al 2006, Proaño 2008
Los siguientes 41 descriptores que se describen a continuación corresponden a
caracterización agromorfológica.
Cualitativos (Romoleroux, 1996; Graber, 1997; Morillo et al 2006 Proaño 2008)
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Serosidad del tallo (CET), Ramas reproductivas (CETR), Pubescencia en el tallo (PUT):
Ramas Vegetativas (PUTV), Ramas Reproductivas (PUTR), Forma del tallo (FT), Forma de
aguijones en el tallo (AGT)
Evaluación morfoagronómica
Ramas Vegetativas (AGTV), Ramas Reproductivas (AGTR), Base del aguijón en el
tallo (BAGT), Ramas Vegetativas (BAGTV), Ramas Reproductivas (BAGTR), Forma de
aguijones en la hoja (AGH), Ramas Vegetativas (AGHV), Ramas Reproductivas (AGHR),
Base del aguijón en la hoja (BAGH), Ramas Vegetativas (BAGHV), Ramas Reproductivas
(BAGHR), Forma de la hoja (FHOJ): Ramas Vegetativas (FHOJV), Ramas Reproductivas
(FHOJR). Margen de la hoja (MARH), Ramas Vegetativas (MARHV), Ramas
Reproductivas (MARHR), Base de la hoja (BASH), Ramas vegetativas (BASHV), Ramas
reproductivas (BASHR), Ápice de la hoja (APHOJ): Ramas vegetativas (APHOJV), Ramas
reproductivas (APHOJR). Forma del foliolo (FFOL): Ramas vegetativas (FHOJV), Ramas
reproductivas (FHOJR), Color del envés (CENV): Ramas vegetativas (CENVV), Ramas
reproductivas (CENVR). Color de la corola bb: Forma del pétalo (FPET), Color del cáliz.
Cuantitativos (Romoleroux 1996 Graber, 1997, Morillo et al 2006 Proaño 2008)
Diámetro del tallo (DIAMT): diámetro del tallo en el tercio medio de la planta de 3
ramas vegetativas y 3 reproductivas por planta.
Longitud de entrenudos (LENT): longitud (desde la base de la hoja a la base de la
siguiente hoja) de los tres entrenudos posteriores a la quinta hoja desde el ápice, en un tallo
vegetativo y un tallo reproductivo, por planta.
Número de aguijones en el tallo (NAGT): número de aguijones en cada uno de los tres
entrenudos posteriores a la quinta hoja contando desde el ápice, en un tallo vegetativo y un
tallo reproductivo por planta.
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Número de aguijones en la hoja (NAGH): número de aguijones presentes sobre el
peciolo y la nervadura central de tres foliolos terminales, de un tallo vegetativo y de un tallo
reproductivo por planta. Tomando las hojas en los tres nudos siguientes a la quinta hoja
desde el ápice.
Tamaño de estípulas (TAMEST): longitud de tres estípulas en un tallo vegetativo y en
un tallo reproductivo por planta, Tomando las estípulas en los tres nudos siguientes a la
quinta hoja desde el ápice.
Longitud del foliolo (LFOL): longitud del limbo de tres folíolos terminales, en un tallo
vegetativo y en un tallo reproductivo por planta, Tomando las hojas en los tres nudos
siguientes a la quinta hoja desde el ápice.
Ancho del foliolo (ANFOL): ancho de tres foliolos terminales, tomado en la parte más
amplia del limbo, en un tallo vegetativo y en un tallo reproductivo por planta. Tomando las
hojas en los tres nudos siguientes a la quinta hoja desde el ápice.
Longitud del peciolo (LPEC): longitud de tres pecíolos, en un tallo vegetativo y en un
tallo reproductivo por planta. Tomando las hojas en los tres nudos siguientes a la quinta hoja
desde el ápice.
Longitud del peciolo (LPLULO): longitud de tres peciolos, en un tallo vegetativo y en
un tallo reproductivo por planta. Tomando las hojas en los tres nudos siguientes a la quinta
hoja completamente desarrollada desde el ápice.
Número de piezas de la corola (NPCOR): número de pétalos de la corola en cinco
Número de piezas del cáliz (NPCA): número de sépalos del cáliz en cinco flores por
planta,
Longitud del pétalo (LPET): longitud de un pétalo por flor en milímetros, tomando
cinco flores por planta.
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Ancho del pétalo (APET): ancho de un pétalo por flor en milímetros, tomando cinco
flores por planta.
Nº de frutos de forma primaria (NFP): número de frutos cónicos en 20 frutos.
Nº de frutos de forma secundaria (NFS): número de frutos redondeados en 20 frutos.
Peso del fruto (PFRUT): peso promedio de 20 frutos por planta.
Diámetro del fruto (DFRUT): diámetro de 20 frutos por planta.
Longitud del fruto (LFRUT): longitud de 20 frutos por planta.
Diámetro del receptáculo (DREC): diámetro del receptáculo de cinco frutos por
planta.
Longitud del receptáculo (LREC): longitud del receptáculo de cinco frutos por planta.
Número de drupeolas (NDRUP): número de drupeolas de cinco frutos por planta.
Rendimiento (REND): rasgo a tomar con base en el peso en gramos de frutos por
planta.
Factores en estudio
Tratamientos
Para la caracterización Agromorfologica y Molecular. El material de experimentación
estará compuesto por 20 accesiones de mora (tratamientos).
Se evaluarán veinte tratamientos en dos repeticiones.
Tabla 5
Tratamientos evaluados en el sitio experimental
TRATAMIENTOS ACCESIONES
T1 ACCESION 1
T2 ACCESION 2
T3 ACCESION 3
T4 ACCESION 4
T5 ACCESION 5
T6 ACCESION 6
T7 ACCESION 7
T8 ACCESION 8
T9 ACCESION 9
T10 ACCESION 10
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T11 ACCESION 11
T12 ACCESION 12
T13 ACCESION 13
T14 ACCESION 14
T15 ACCESION 15
T16 ACCESION 16
T17 ACCESION 17
T18 ACCESION 88
T19 ACCESION 19
T20 ACCESION 20
Fuente: Elaboración Programa de Frutales EEA, 2018.
Características de las Unidades Experimentales
Número de repeticiones: 2
Número de tratamientos: 20
Número de unidades experimentales (parcelas = UE): 40
Número de plantas por UE: 20
Área total de las parcelas: 72 m2.
Área neta de las parcelas: 6 m2.
Área total del experimento: 160 m2
Área neta total del experimento: 96 m2
Área total del ensayo incluidos caminos: 160 m2
Diseño experimental
Para esta investigación se utilizará un diseño de Bloques al Azar (DBA) con 20
tratamientos y dos repeticiones.
Análisis estadístico
Para análisis de los resultados se utilizó, la prueba significación de TUKEY al 5%,
luego de la toma de datos de los respectivos tratamientos se realizó el Análisis de Variancia
(ADEVA) de acuerdo al siguiente modelo.
Tabla 6
134
Análisis de varianza para evaluar las variables en estudio. Sierra Sur del Ecuador,
2018.
F de V G.L.
Total 39
Tratamientos 19
Repeticiones 1
Error Exp. 19
Fuente: Elaboración Programa de Frutales EEA, 2018.
Se determinará el coeficiente de varianza en porcentaje (%).
CV=√(CM E.Exp.)/X*100
Avances
Se han ejecutado las siguientes actividades durante el año de manejo del huerto, con la
finalidad de que las plantas puedan crecer bien (anexo1)
Se ha iniciado con la recolección de materiales para realizar los análisis moleculares, a
continuación, se detalla la información sobre la localización de los materiales Tabla 7:
Tabla 7
Localización de los materiales recolectados de mora silvestre
Accesión Código Altitud Latitud Longitud Sector Provincia
1 CFM Cañar
1+F4:G28 3206 02°34,9´ 07” 78° 57,0´ 24” Chorocopte Cañar
2 CFM Cañar 2 3447 02°35,2´ 80” 78° 57,1´ 44” Chorocopte
los Encalada Cañar
3 CFM Cañar 3 3206 02°34,9´ 07” 78° 57,0´ 24” Cungapiti Cañar
CFM Cañar 4 3345 02°56,7´ 37” 79° 09,9´ 31” Malal Cañar
4 CFM SH2 3457 02°37,7´ 55” 78° 54,5´ 81” Guavisay Azuay
5 CFM SH3 2750 727787 9648457 Guavisay Azuay
6 CFM SH4 3000 03° 0.18´ 49” 78° 44,6´ 93” Guavisay Azuay
7 CFM SH5 3200 03° 0.18 ´51” 78° 44,6´ 70” Principal Azuay
8 CFMGuagra
Mora 3100 03° 0.18 ´45” 78° 44,6´ 57” Payacorral Azuay
9 CFM Chili Frut 3128 03 13 06 78 58 31 Payacorral Azuay
10 CFM SigSig 1 3129 4 13 06 79 58 31 Curin alto Azuay
11 CFM SigSig 2 3218 2 13.9 51 77 56.6 65 Curin alto Azuay
12 CFM SigSig 3 3149 747765 9663971
CAMINO Curin alto Azuay
13 CFM SigSig 4 3149 747732 9663976 U
SEM Curin alto Azuay
14 CFM ZH1 3457 02°37,7´ 55” 78° 54,5´ 81” Chanin Azuay
15 CFM LR 3458 02°37,7´ 55” 78° 54,5´ 81” Chanin Azuay
16 CFM 1 2750 727787 9648457 Chanin Azuay
17 CFM 2 3000 2 71 49,58 78 72 61,54 Chanin Azuay
18 CFM 3 3084 03°12´ 56” 78° 58,1´79”
Azuay
19 CFM 4 3126 03°12,8´ 49 78° 58,2´ 89” Payacorral Azuay
135
20 CFM 5 3128 03°13,0´ 06” 78° 58,3´ 31” Payacorral Azuay
21 CFM 6 3028 03°12,2´ 43” 78° 57,3´ 49” Payacorral Azuay
22 CFM 7 3219 03°13,9´ 51” 78° 56,6´ 65” Pucashapa Azuay
23 CFM 9 3293 03°14,7´ 93” 78° 55,7´ 70” Pucashapa Azuay
24 CFM 10 3200 03°14,7´ 90” 78° 55,7´ 69” Pucara Azuay
25 CFM 12 2900 03°14,6´ 89” 78° 54,7´ 58” Guno Azuay
26 CFM 13 3120 3 16 46 79 9 17 la paz Azuay
27 CFM 18 3090 3 16 45 79 9 15 la paz Azuay
28 CFM B 2800 729063 9649764 la paz Azuay
29 CFM C 3130 3 16 46 79 9 19 Pucara Azuay
30 CFM D 2840 03°39´ 15” 79° 14´ 58” Saraguro
lagunas alto Loja
31 CFM F 2840 03°39´ 10” 79° 15´ 7” Saraguro
lagunas Loja
32 CFM I 3070 03°33´ 5” 79° 10´ 44”
carb. Carboncillo Loja
33 CFM H 3351 04°42´ 41,62” 79° 26´ 26,30” Jimbura Loja
34 CFM J 3351 04°42´ 41,62” 79° 26´ 26,30” Jimbura Loja
35 CFM K 3351 04°42´ 41,62” 79° 26´ 26,30” Jimbura Loja
36 CFM L 3351 04°42´ 41,62” 79° 26´ 26,30” Jimbura Loja
37 CFM Q 3337 04°44´ 58,17” 79° 25´ 12,93” Jimbura Loja
38 CFM Z 3337 04°44´ 58,17” 79° 25´ 12,93” Jimbura Loja
Fuente: Programa de Fruticultura EEA. 2018 Codificación: CFM 1 Carlos Feican Mejía Localidad 1
Conclusiones
Se han colectado 38 accesiones en la provincia del Azuay, Cañar y Loja mismas que
se encuentran ya trasplantadas en los huertos ubicados en las provincias del Azuay y Cañar,
igualmente se está elaborando un protocolo de investigación para el análisis molecular.
Referencias Bibliográficas
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chirimoya Anona cherimola Mill en la Granja Experimental Tumbaco INIAP.
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138
Anexo 1
Tabla 8
Actividades realizadas durante el año de manejo de las parcelas de caracterizaciòn ACTIVIDAD DOSIS PROBLEMA FECHA
Control fitosanitario Daconil / Azufre
micronizado dosis de 1.5
cc/1.5 g por litro de agua
Control preventivo contra
lancha y oidio
01/03/2018
15/03/2018
23/05/2018
19/07/2018
02/08/2018
8/03/2018
06/09/2018
Deshierba Control de malezas en la
corona de la planta
18/04/2018
10/08/2018
Poda Se realiza la poda de
fructificación y
conducción de ramas
nuevas.
20/09/2018
Fertilización yaramila 80 g/planta Se realiza el
coronamiento, la
fertilización y se realiza el
riego correspondiente.
15/02/2018
19/05/2018
11/10/2018
Trasplante al huerto
definitivo
Se realiza el trasplante de
las moras recolectadas 32
accesiones
14/06/2018 Guavisay
07/08/2018 L. Cordero
Riegos de las accesiones
15/02/2018
16/03/2018
22/03/2018
05/04/2018
18/04/2018
10/05/2018
31/05/2018
21/06/2018
05/07/2018
19/07/2018
02/08/2018
08/08/2018
06/09/2018
13/09/2018
20/09/2018
03/10/2018
18/10/2018
25/10/2018
07/11/2018
Fuente: Programa de Fruticultura EEA. 2018
139
Actividad 2
Niveles de Fertilización en el cultivo de la Chirimoya (Annona cherimola) en el Cantón
Guachapala (Fase 2)
Antecedentes
La provincia de Loja y el llamado valle sagrado de Vilcabamba, en el Ecuador son los
probables centros de biodiversidad de esta especie (Van Damme & Scheldeman, 2014, págs.
158-180), En el valle de Vilcabamba todavía subsisten rodales silvestres de chirimoya. El
árbol ya se había extendido hacia el sur de México, América Central y la parte septentrional
de América del Sur cuando lo conocieron los conquistadores en el siglo XVI. Sin embargo,
no fue hasta el siglo XVIII cuando las semillas de la chirimoya llegaron a España y Portugal,
desde donde pasaron a Italia, Egipto y Palestina, y finalmente al resto del mundo.
(Association., 1996, pág. 70)
El fruto se cultiva principalmente en el Mediterráneo (POPENOE, 1989, págs. 161-165);
(Anderson, 1990, págs. 51-57); (Sanewski, 1991, pág. 103). España es el principal productor
mundial de chirimoya, con unas 3 600 ha cultivadas en el sur del país, que en 1991
produjeron 20 000 toneladas de fruta (Sanewski, 1991, pág. 103).
Tomando en cuenta los análisis de suelo realizados, se determinaran las dosis de los
fertilizantes. Así se realizan aplicaciones de fertilizantes a base de N-P-K. A medida que la
planta se va desarrollando se debe ir incrementando la dosis de nitrógeno. Se debe tener en
cuenta la frecuente carencia de potasio en este cultivo, las que presentan una sintomatología
en las márgenes foliares con decoloraciones que evolucionan a necrosis. Las necesidades de
calcio y magnesio son importantes sobre todo en la última fase de crecimiento del fruto,
previo a la maduración. (Flores D. 2013 pag. 16)
Los análisis de suelo son valiosos para estimar la disponibilidad de nutrientes, pero los
140
análisis foliares son ampliamente utilizados por ser las hojas los principales centros de
síntesis de la planta (Molina., 2002 , pág. 2) . Una tercera y muy importante herramienta es
el monitoreo del huerto en diferentes estados fenológicos (floración, fruto cuajado,
crecimiento de brotes, cosecha) y la toma de información valiosa del desarrollo de los
árboles. (P. Macy, 1936., págs. 749-764)
Entre 1940 y 1960, se establecieron los estándares de nutrientes foliares óptimos y los
métodos de muestreo para la mayoría de los cultivos frutales (Kenworthy, 1950., págs. 41-
46). Sin embargo, los análisis de tejidos deben interpretarse con cautela ya que es esencial
comprender la dinámica de nutrientes en el árbol para interpretar adecuadamente los niveles
nutricionales.
Objetivos
Objetivo General
Obtener el nivel óptimo de fertilización del cultivo de la chirimoya de acuerdo al tipo de
suelo en el que se establezca el cultivo.
Objetivos Específicos
Evaluar niveles de fertilización que incrementen los rendimientos en el cultivo de
chirimoya
Analizar el nivel óptimo de N-P-K en el cultivo de Chirimoya para incrementar sus
rendimientos.
Identificar la fertilización más económica.
Metodología
Manejo del experimento
141
El experimento se ejecuta en la granja Zulay del Cantón Guachapala (Tabla 1). En una
plantación de 5 años de edad, en donde se aplicaron los componentes tecnológicos para el
manejo integral del cultivo de chirimoya desarrollado por el programa de fruticultura del
INIAP.
Para lo cual, se realizó el control de malezas de forma manual, en la poseta hecha para
cada una de las plantas y de los tratamientos, se realizaron los riegos correspondientes, la
poda de fructificación y los controles fitosanitarios correspondientes a: control de plagas
como mosca de la fruta y plateado del chirimoyo, en cuanto a enfermedades se realizó el
control preventivo para la antracnosis para prevenir la enfermedad.
La fertilización se la realizó en dos ocasiones, una al inicio de la brotación, aplicando el
50% de la recomendación de fertilización y la segunda se la realizó a los 90 días aplicando el
otro 50% de fertilizante por tratamiento y por repetición.
Tabla 1
Ubicación política y geográfica del sitio experimental. Sierra Sur del Ecuador, 2017.
Fuente: Elaboración Programa de Frutales EEA, 2017.
Tabla 2
Características edafo climáticas del sitio experimental Guachapala, 2018.
Zona climática Bosque seco montano bajo
Temperatura Promedio 17°C
Precipitación media annual 1362 mm
Humedad relativa promedio 75%
Topografía
Relieve escarpado 14,25%, Terraza
baja 16,58% y Vertientes irregulares
56,22%
Tipo de suelo
Dystropepts, Uderts, Histic
Hydrandepts y/o Histic Cryandepts,
Tropudalfs y/o Eutropepts Fuente: Elaboración Programa de Fruticultura EEA, 2017.
Provincia Azuay
Cantón Guachapala
Parroquia Guachapala
Sitio Gullancay
Altitud 2 190 m s.n.m.
Latitud UTM 754955,58 m S
Longitud UTM 9694206,09 m W
142
Materiales
Físicos
Cajas de cartón, Papel periódico, Etiquetas, Tijeras de podar, Libreta de campo,
Flexómetro, Esferos gráficos, Marcadores, Lápiz, Cinta métrica, Cinta maski, Balanza,
Computadora, phchimetro, Calibrador, Penetrómetro, Refractometro.
Biológicos
Plantas de chirimoya de 5 años de edad de la variedad cumbe
Químicos
Fertilizante 18-46-0. 00-00-60 urea (N al 46%), Herbicida (Glifosato), Insecticida.
(Cipermetrina, Succes y Dimethoato), Fungicidas. (Difenoconazol, Mancoceb, Asufre
micronizado, Penconazol, Metalaxil +Mancoseb y Clorotalonil), Kelatos de boro, Zing y
Magnesio.
Factores en estudio
Tratamientos
Se utilizaron 4 niveles de fertilización, aplicándose fertilizantes completos, ya que son
los que mayormente utilizan los productores, la aplicación de los mismos se realizó al inicio
de la brotación y a los noventas días de acuerdo a la curva del crecimiento de los frutos,
aplicando el 50% de la dosificación al inicio y en la segunda etapa descrita anteriormente.
Tabla 3
Tratamientos en estudio, niveles de fertilización en chirimoya 2017.
Tratamientos 18-46-00 Urea Muriato
Requerimiento
por tratamiento y
aplicando dos veces
N P2O5 K2O N P N 00-00-60 N P K
1 225 150 180 59 326 166 300 83 163 150
2 150 100 120 39 217 111 200 55 108 100
3 75 50 60 20 109 55 100 225 54 50
4 000 000 000 000 000 000 000 000 000 000 Fuente: Elaboración Programa de Fruticultura EEA, 2017.
Características de las Unidades Experimentales
143
Número de repeticiones: 3
Número de tratamientos: 4
Número de unidades experimentales 12
Área total de las parcelas: 48 m²
Área neta de las parcelas: 24 m²
Área total del experimento: 288 m²
Área total del ensayo incluidos caminos: 416 m²
Número de pantas por parcela total: 12 plantas
Número de plantas por parcela neta: 3 plantas
Diseño experimental
Tipo de diseño DBCA, (Diseño de Bloques Completos al Azar)
Numero de repeticiones: tres (3)
Análisis estadístico
Luego de la toma de datos de los respectivos tratamientos se realizó el Análisis de
Variancia (ADEVA) de acuerdo al siguiente modelo.
Tabla 4 Esquema del análisis de varianza para evaluar las variables en estudio. Sierra Sur del
Ecuador, 2017.
Fuentes de variación gl
Total: 11
Tratamientos 3
Repeticiones 2
Error experimental 6
Fuente: Elaboración Programa de Frutales EEA, 2018.
Se determinará el coeficiente de varianza en porcentaje (%).
CV=√(CM E.Exp.)/X*100
Para análisis de los resultados se utilizó, la prueba significación de TUKEY al 5%.
Variables en estudio
144
Grosor del tronco.- Se midió al inicio del ciclo productivo y final del mismo a 20 cm
del nivel del suelo en todas las plantas del experimento.
Análisis foliar.- Se realizó a los 120 días después de la floración.
Época de floración.- Se tomó cuando las plantas presenten el 50% de este
estado(fecha).
Rendimiento kg/planta.- Se clasificaron los rendimientos de cada una de las plantas,
en frutos de primera, segunda y tercera. Se contó el número de frutos y se los pesó para
obtener el rendimiento total de la planta con una balanza de tubo.
Diámetro ecuatorial y polar.- Se midió mediante un vernier tomando la longitud
ecuatorial y polar de 5 frutos por planta, por repetición y por tratamiento.
Grados Brix.- Se evaluó mediante un refractómetro tomando de 5 frutos por planta por
repetición y por tratamiento.
Firmeza.- Se la tomo mediante un Penetrometro, tomando de 5 frutos por planta por
repetición y por tratamiento.
Avances
Figura 1. Rendimiento en gramos de fruta por planta, en los niveles de fertilización en chirimoya año 2017-
2018.
0
5000
10000
15000
20000
25000
30000
1 2 3 4
Rendimiento g/planta (2017)
0,00
5000,00
10000,00
15000,00
20000,00
N1 N2 N3 N4
Rendimiento en g/planta (2018)
145
Analizando Figura 1 correspondiente a rendimiento en gramos por planta, se observa
que en el comportamiento en cuanto al rendimiento para los años 2017 y 2018, existen
diferencias, ya que nivel de fertilización con el de mayor rendimiento en el 2018 fue el
nivel 3, comparado con el nivel 1 que fue el que obtuvo mayor rendimiento en el año 2017,
igualmente no se puede dar una recomendación precisa de cuál es el nivel óptimo de
nutrición para chirimoya, ya que se espera que los niveles se estabilicen a partir del cuarto
año. Este comportamiento se puede apreciar en otros frutales como, manzano, cerezo y
melocotonero evaluados por 10 años por Gericke 1963 y citado por (Kramer, 1991, pág. 55),
en donde se observa que la absorción de los nutrientes se va dando conforme avanzan los
años, así como se observa en el incremento en los rendimientos. Conforme avanzan en edad
las plantas.
Figura 2. Diámetro ecuatorial en cm de fruta y por planta, en los niveles de fertilización en chirimoya 2017-
2018.
En la Figura 2 se observa el comportamiento del crecimiento de los frutos en el
diámetro ecuatorial, el cual manifiesta un comportamiento diferente al año anterior 2017, en
donde el nivel tres fue el de mayor crecimiento y para este año 2018 el nivel 1 es el que
presenta el de mayor crecimiento ecuatorial, esto se debe, posiblemente a que van
definiéndose, los niveles de nutrición conforme pasan los años. No así el comportamiento
con los otros niveles, mismos que se encuentran en una medida intermedia como el nivel
8,5
9
9,5
10
10,5
11
11,5
12
N1 N2 N3 N4
Diametro Ecuatorial (2018)
146
dos y cuatro; al terminar esta investigación, se definirá la forma del fruto en función de los
ejes perpendiculares lo que nos permitirá verificar si la fruta es redonda, elíptica o alargada.
Este procedimiento en el crecimiento, se observan en trabajos realizados en 15
cultivares de chirimoya, en donde se ha determinado que las curvas de crecimiento en base
al diámetro ecuatorial y diámetro polar a partir de los 71 días después de polinizado, se
ajustan a una curva doble sigmoidea, para todas las variedades se aprecia que tanto el
diámetro ecuatorial y diámetro polar manifiestan dicha tendencia en el crecimiento, Herrera
(2005), como ocurre en la presente investigación en donde se observa este comportamiento.
Figura 3. Diámetro Polar en cm de fruta y por planta, en los niveles de fertilización en chirimoya 2017-2018.
En lo que corresponde al diámetro polar Figura 3, nos indica el comportamiento del año
2018, variable que se incrementó con el nivel de fertilización 1, en comparación con el año
2017 que fue el nivel 3 el que mejor diámetro presento, Estos datos si concuerdan con otros
trabajos realizados por O. Lilleland y citado por (RYUGO, 1993., pág. 264), ejemplo en
durazno en donde a mayor concentración de potasio se tiene un mayor diámetro en esta
fruta, cabe indicar, que conforme van pasando los años los niveles de fertilización se van
estabilizando de allí el comportamiento de los frutos en cuanto a estas variables.
0
5
10
15
N1 N2 N3 N4
Diametro Polar (2018)
147
Esto nos lleva a pensar que, la aplicación de los fertilizantes en forma fraccionada, si
está actuando en esta variable como lo demuestra Rodríguez (2013), el cual indica que
chirimoyo presenta tres fases de crecimiento, en el cual se presenta una primera fase de
crecimiento rápido del fruto, que ocurre aproximadamente entre los 21 y 56 días después de
la polinización; después de dos meses, el crecimiento del fruto es menor durante unos 40
días, considerando este como la segunda fase. La tercera y última fase, de crecimiento
rápido, se inicia en torno a los 100 días después de polinización extendiéndose hasta su
recolección. Es importante mencionar igualmente que la aplicación de potasio en esta época,
favorece la calidad del fruto en cuanto a grados brix y tamaño, esto se ha obtenido con
experiencias del programa de fruticultura del INIAP en durazno. Pudiendo observarse en la
presente investigación diferentes comportamientos de crecimiento debido a la estabilización
de los minerales.
Figura 4. Grados Brix por planta, en los niveles de fertilización en chirimoya, 2017 y 2018
La Figura 4 sobre grados brix por planta, se observa que en el año 2018 el mejor nivel
en grados brix fue el nivel tres, no así en el año 2017 el cual se comportó como el de mayor
niveles de azucares totales el nivel 1, el cual en este año, se encuentra con un rango menor
de 0,5 Brix en comparación el nivel tres, esto podría explicarse que conforme avanza el
tipo del manejo de la fertilización o nutrición los elementos se van estabilizando en el suelo,
de allí el comportamiento con esta variable de acuerdo a los niveles de fertilización. Los
148
valores obtenidos en este trabajo, se comportan igual con trabajos realizados por Kawamata
(1977) en donde explica que, el alto contenido de azúcares, su valor calórico se clasifica
entre moderado y alto, ya que la mayoría de los frutos tienen un Brix superior a 20 grados.
En donde predomina la glucosa (11.75 %) y sacarosa (9.4 %)
Figura 5. Firmeza por planta, en los niveles de fertilización en chirimoya, 2017 y 2018
En la figura 5 se puede observar igualmente el comportamiento de la firmeza de los
frutos, en donde en el año 2018 el nivel 3 y 4 son los que mejor se comportaron con esta
variable, difiriendo del año 2017 en donde el que mejor se comportó fue el nivel 1. Esto nos
explica que mientras más alto es la firmeza del fruto, le confiere a la fruta una mayor vida de
anaquel o un mayor tiempo para comercializarlo. (Brito, 2013, pág. 32).
Cabe resaltar que la firmeza está relacionada con la pérdida de agua a menor
deshidratación los frutos permanecen más turgentes (Jiménez et al., 2005) y por
consecuencia presentan más firmeza, esto explica que, el ablandamiento de los frutos entre
otros factores, debido a la hidrólisis de los polipéctidos presentes en la lámina media y pared
celular, son los responsables de la firmeza en los frutos (Seymour y Gross, 1996).
Conclusiones
Observando las variables evaluadas se puede indicar que, la fertilización anualmente,
ésta va variando, posiblemente a la estabilización de los minerales en el suelo. Pudiendo
3
3,2
3,4
3,6
3,8
4
1 2 3 4
Firmeza (2017)
0
5
10
15
20
N1 N2 N3 N4
Firmeza (2018)
149
indicarse que los tratamientos que más sobresalen en esta investigación para este año 2018,
son los niveles de fertilización 3 y 1 en cuanto a rendimiento, en cuanto a diámetros
ecuatorial y polar los niveles 1 y 3 son los que se comportan mejor, en cuanto a grados brix
se tienen los niveles 3 y 2 y firmeza los niveles 3 y 4 respectivamente, se espera ver este
último año de análisis, el comportamiento de los niveles frente a las diferentes variables
evaluadas. Cabe indicar que, para el análisis estadístico, se ha realizado la prueba de
significación de Tukey al 5%, y todavía no se puede ver una significación, por cuya razón se
presenta los datos estadísticos para poderlos interpretar por medio de los gráficos que se han
descrito anteriormente.
Recomendaciones
Continuar con las evaluación este último año para determinar el mejor nivel de
fertilización para la chirimoya.
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Actividad 3
Escritura de artículo científico en el cultivo de la Chirimoya (Annona cherimola).
Concluyendo con los cambios se enviará a la revista Enfoque con la cual se ha conversado
para enviar el documento.
Caracterización morfoagronómica del germoplasma de chirimoya (Annona cherimola Mill.), en las colecciones ex situ del INIAP y Universidad de Cuenca, Ecuador
Agromorphological characterization of cherimoya germplasm (Annona cherimola Mill.), In the ex situ
collections of the INIAP and University of Cuenca, Ecuador
Carlos Feican1, Maria Duchi2, Luis Minchala2 Ricardo Moreira3, William Viera4*
1Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias, Estación Experimental Del Austro, Cuenca-Ecuador. 2Universidad de Cuenca, Cuenca-Ecuador. 3nstituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias, Estación Experimental Litoral Sur, Guayaquil - Ecuador. 4*Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias, Granja Experimental Tumbaco, Quito - Ecuador.
RESUMEN Caracterización morfoagronómica del germoplasma de chirimoya (Annona cherimola Mill.) de colecciones ex situ en Ecuador Agromorphological characterization of cherimoya germplasm (Annona cherimola Mill.) from ex situ collections in Ecuador
Carlos Feican1, Maria Duchi2, Luis Minchala2 Ricardo Moreira3, William Viera4* 1Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias, Estación Experimental Del Austro, Cuenca-Ecuador. 2Universidad de Cuenca, Cuenca-Ecuador. 3nstituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias, Estación Experimental Litoral Sur, Guayaquil - Ecuador. 4*Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias, Granja Experimental Tumbaco, Quito - Ecuador.
RESUMEN La chirimoya (Annona cherimola Mill.) es un frutal semicaducifolio con un alto potencial económico por su cotización en el mercado mundial, debido a sus cualidades organolépticas, así como por sus bondades medicinales y/o terapéuticas. A pesar de que la zona sur andina del Ecuador es parte del centro de origen de esta especie, no se ha generado suficiente información que posibilite un adecuado aprovechamiento industrial, farmacéutico, e incrementar la productividad a través de la selección y empleo de individuos con características deseables. Se llevó a cabo la caracterización agromorfológica de 120 accesiones de chirimoya de germoplasmas ubicados en los cantones Guachapala y Gualaceo, de las cuales 30 accesiones se encuentran en la colección del INIAP y 90 accesiones en la Universidad de Cuenca. se evaluaron 66 descriptores, de los cuales, 33 fueron cualitativos y 33 cuantitativas A los datos obtenidos se les calculo media, la desviación estándar y el coeficiente de variación como parámetros descriptivos de la variabilidad del germoplasma. El Análisis de Componentes Principales indicó que los cuatro primeros componentes, explicaron el 69,45% de la variabilidad total y la clasificación jerárquica identificó cuatro grupos que junto con el ACP revelaron una alta contribución de los caracteres a la variación existente. Las características que más contribuyeron a la conformación de los componentes fueron peso de frutos, diámetro longitudinal y ecuatorial, longitud de la semilla, exocarpo grueso y diámetro del pedúnculo, firmeza, pH, longitud del pedúnculo, número de semillas, peso de todas las semilla frescas y contenido de sólidos solubles. Así como también las variables cuantitativas como: Defoliación al final de la
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fructificación, El habito de fructificación, el Tipo de exocarpo, Resistencia a la abrasión, Color del exocarpo, Color de la pulpa, Textura de la pulpa, Contenido de fruta en la pulpa, Sabor de la pulpa, Color de la semilla, Desprendimiento de la semilla, debiendo indicar con este estudio nos podría servir como referencia para los programas de mejoramiento de este frutal. Valiéndose mucho con las características pomológicas de los materiales, los mismos que presentaron variabilidad fenotípica en la presente investigación. Palabras clave: Chirimoya, accesiones, descriptores, variables cuantitativas y cualitativas. ABSTRACT The cherimoya (Annona cherimola Mill.) Is a semi-deciduous fruit with a high economic potential due to its price in the world market, due to its organoleptic qualities, as well as its medicinal and / or therapeutic benefits. Although the southern Andean area of Ecuador is part of the center of origin of this species, not enough information has been generated that allows an adequate industrial, pharmaceutical, and increase productivity through the selection and employment of individuals with characteristics desirable The agromorphological characterization of 120 chirimoya accessions of germplasm located in the Guachapala and Gualaceo cantons was carried out, of which 30 accessions are in the INIAP collection and 90 accessions in the University of Cuenca. 66 descriptors were evaluated, of which 33 were qualitative and 33 quantitative. The data obtained were calculated mean, the standard deviation and the coefficient of variation as descriptive parameters of the germplasm variability. The Principal Component Analysis indicated that the first four components explained 69.45% of the total variability and the hierarchical classification identified four groups that together with the ACP revealed a high contribution of the characters to the existing variation. The characteristics that contributed most to the conformation of the components were weight of fruits, longitudinal and equatorial diameter, length of the seed, coarse exocarp and diameter of the peduncle, firmness, pH, length of the peduncle, number of seeds, weight of all the seeds fresh and soluble solids content. As well as the quantitative variables such as: Defoliation at the end of the fructification, The fruiting habit, Exocarp type, Resistance to abrasion, Color of the exocarp, Color of the pulp, Texture of the pulp, Fruit content in the pulp , Taste of the pulp, Color of the seed, Detachment of the seed, should indicate with this study could serve as a reference for improvement programs of this fruit. Being very useful with the pomological characteristics of the materials, the same ones that presented phenotypic variability in the present investigation. Keywords: Chirimoya, accessions, descriptors, quantitative and qualitative variables. INTRODUCCIÓN Darwin (1835) ya conoció la existencia de la chirimoya antes de dirigirse a las islas Galapagos. Hoy en día, la diversidad de este cultivo se conserva principalmente en la agricultura tradicional sistemas como patios traseros y cercas vivas de áreas rurales en América Central, México y América del Sur, cultivada entre 1000 y 3000 msnm y sometida a una selección humana intensiva (Miller & Schaal 2005). La chirimoya pertenece a la familia Annonaceae, la cual es extremadamente diversa dentro de las Magnoliales con aproximadamente 110 géneros y 2400 especies, 900 de las cuales se encuentran en el neotrópico (Chatrou et al., 2012). El fruto de esta especie tiene excelentes cualidades organolépticas y nutritivas, lo que ha despertado el interés por esta y otras especies de esta familia ya que sus órganos contienen acetogeninas, compuestos que poseen propiedades citotóxicas, antitumorales, antipalúdicas y plaguicidas (Alaly et al., 1999; Liaw et al., 2011). En cuanto al origen de esta especie, Pozorski y Pozorski (1997), indican que rara vez se encuentran poblaciones silvestres y no se puede excluir la posibilidad de que los materiales encontrados en Perú y el sur de Ecuador sean considerados como rodales salvajes nativos. Además, los restos arqueológicos de estructuras similares a la chirimoya en América del Sur podrían corresponder a una especie relacionada, la guanábana (Annona muricata); el resto de las especies estrechamente relacionadas dentro de esta familia se producen exclusivamente en Mesoamérica, el Caribe y el sur de México y la chirimoya seguramente estuvo ya presente en América Central al menos en el siglo XVII (Cobo 1653). Lo que nos explica que la chirimoya tiene su centro de origen en centro américa específicamente
Con el fin de establecer los principales puntos de diversidad que podrían ayudar a optimizar
la conservación de recursos genéticos valiosos de la especie, así como inferir su centro de origen y
154
diversificación, se utilizó marcadores moleculares junto con sistemas de información geográfica lo que permitió conocer la distribución espacial, la estructura y la historia de la diversidad genética de A. cherimola en todo el continente americano, concluyéndose que esta especie se originó en América Central (Hormaza, 2017); lo que coinde con Andrés-Agustín et al. (2004) quien indicó que la mayor diversidad genética se encuentra en Centroamérica, el sur de México y norte de Sudamérica. Dentro de las especies más cultivadas se encuentran la chirimoya (Annona cherimola Miller), guanábana (A. muricata), saramuyo (A. squamosa), annona (A. reticulata), ilama (A. diversifolia Safford), y atemoya (A. cherimola x A. squamosa) (Elías y Cruz-Castillo, 2002). De las especies mencionadas anteriormente, A. cherimola está adaptada a condiciones tropicales y sub-tropicales (Van Zonneveld, et al., 2012), mientras que el resto solo puede lograr un crecimiento eficiente en condiciones tropicales.
El desarrollo de este frutal se cimenta en una base genética amplia ya que significa que
existe un gran potencial para poder seleccionar materiales de alto valor agronómico y comercial, no obstante en muchos taxas, la cantidad de variabilidad disponible para procesos selectivos es limitada; por ello se hace necesario establecer una colección representativa de la variabilidad genética de estos taxas en el país y así; evaluar sus características agromorfológicas cuantitativas como cualitativas (Cooper et al. 2001). El grupo de accesiones seleccionadas por sus características de interés debe estar dirigido a obtener materiales locales y provenir de la variabilidad que poseen los productores de esta fruta en sus campos. Estos, pueden presentar una gran diversidad de caracteres tanto pomológicos como agronómicos, por lo que es necesario promover su utilización sostenible (Lobo et al., 2007).
El área total de cultivo de esta especie es de 13 500 ha en todo el mundo, con una producción estimada de 81 000 toneladas anuales (Pinto et al., 2005). España es el mayor consumidor y productor de chirimoya, seguidos por Perú y Chile. De acuerdo a González (2013), las anonas presentan una amplia diversidad genética; sin embargo en Ecuador no se ha realizado este tipo de estudios, pese a que cuenta con la diversidad necesaria para el desarrollo de cultivares, con características agronómicas superiores. Por lo expuesto, la caracterización pomológica y morfológica de la fruta de chirimoya, permitirá identificar materiales con características deseables que satisfagan las necesidades del productor y el consumidor final. MATERIALES Y MÉTODOS Ubicación geográfica La presente investigación se realizó en 120 accesiones de chirimoya de las cuales 30 corresponden a la colección ex situ de la Estación Experimental del Austro del INIAP en el cantón Gualaceo, cuya altitud es de 2 230 m s.n.m. en las coordenadas 2 25155 S, 78 46 24 W y 90 a la Granja Experimental el Romeral de la Universidad de Cuenca cantón Guachapala cuya ubicación geográfica es 02 47 S, 78 55 W y con una altitud de 2 200 m s.n.m. de la provincia del Azuay. En la Tabla 1 se puede observar la ubicación de donde se recolectaron los materiales evaluados.
Tabla 1. Ubicación geográfica de los árboles de chirimoya seleccionados in situ. PROVINCIA CANTÓN SECTOR LATITUD LONGITUD ALTITUD ACCESION
Azuay Paute Guayan 02° 45.579‘ 078°46.379‘ 2 322 5,6,7,8
Azuay Paute Sacre 02° 46.015‘ 078°40.560‘ 2 308 9,10
Azuay Paute Sacre 02° 44.076‘ 078°44.630 ‘ 2 259 11,12,
Azuay Paute Tutucan 02° 46.807‘ 078°45.172 ‘ 2 241 13,14,15,16
Azuay Paute Tutucan 02° 46.877‘ 078°45.284 ‘ 2 202 17,18,
Azuay Gualaceo Nallig (G) 9678107 0746076 2 240 19,20,21
Azuay Gualaceo Chiquintur (N)
9678344 0746126 2 240 ,22,23,24
Azuay Gualaceo La arcadia 9675688 0745149 2 229 25,26
Azuay Gualaceo Uzhar 9674731 0744939 2 316 27,28,29,30
Loja Loja Marcopamba 9518373 699819 1724 31,32,33,34,35 36,37
Loja Loja Marcopamba 9518432 699725 1736 38,39,40,
Loja Loja Vía Yangana - Quinara
9520980 697528 1597 41,42,43,44,45,46,
155
Loja Loja Tumianuma 9523704 693084 1543 47,48,49,50,
Loja Loja Marcopamba 9526360 688951 1458 51,52,53
Loja Loja Marcopamba 9526360 688951 1458 54,55,56,57,58,59
Loja Loja Marcopamba 9526360 688951 1458 60,61,62,63,64,65,
Loja Loja 9526360 688951 1458 66,67,68,69,70
Loja Gonzanamá
Nambacola 9541615 674075 1887 71,72,73,74
Loja Gonzanamá
Vía Gonzanamá
9539971 674144 2004 75,76,77,78
Loja Gonzanamá
Vía Quilanga 9529098 674916 2278 79,8081,82,83,84
Loja Paltas Vía Tacoranga
9549226 650654 2045 85,86,87,88,
Loja Paltas Vía Tacoranga
9549053 650572 2037 89,90,91,92,93,94,95,96,97
Loja Paltas Lauro Guerrero
9561225 636786 1875 98,99,100, 101,102, 103,104, 105, 106, 107,
Loja Catamayo Vía Veracruz - Catamayo
9560187 659447 2069 108, 109, 110,
Loja Espíndola Guarinja 9488505 669278 2113 111, 112, 113
Loja Loja Nangora 9537180 698122 1674 114, 115, 116
Loja Loja Nangora 9537391 697956 1705 117, 118, 119, 120
Análisis estadístico. Se realizó un análisis descriptivo a las variables cuantitativas para la determinación de la media, desviación estándar y el coeficiente de variación. Se realizó un análisis de componentes principales (ACP) para la selección de los descriptores de mayor contribución en la caracterización. El criterio de selección de autovectores utilizados fue el de los valores más próximos al mayor valor y la contribución en porcentaje de cada eje a la variabilidad total. Para la identificación de los grupos de variabilidad se realizó un análisis de conglomerados jerárquicos, que integró a los caracteres cuantitativos y cualitativos a través de la matriz de distancias de cluster combinado y el método de agrupamiento jerárquico como forma de agregación jerárquica ascendente. Previo a la realización del ACP se realizó un test de correlación entre las variables a través de la prueba KMO y Barlett. Para registrar los datos de la caracterización agro-morfológica, se empleó los descriptores para chirimoya desarrollados por Bioversity International (2008). Las variables cualitativas evaluadas fueron: Color del tronco, Color de la rama joven, Pubescencia de la rama joven, Defoliación al final de la fructificación, Número de flores por metro de rama, Forma de la lámina foliar o limbo, Forma de la base de la lámina foliar, Forma del ápice de la lámina foliar, Pubescencia del haz de la lámina foliar, Pubescencia del envés de la lámina foliar, Color de las hojas maduras, Color de las hojas jóvenes, Ondulación de la lámina foliar, Venación en el haz, Color exterior de los pétalos, Color de la base interna de los pétalos, Pubescencia del pétalo, Pubescencia del sépalo, Presencia de color rojo en el estigma, Hábito de fructificación, Forma del fruto, Uniformidad, Simetría del fruto, Tipo de exocarpo, Color del exocarpo, Resistencia a la abrasión, Color de la pulpa, Textura de la pulpa, Contenido de fibra en la pulpa, Sabor de la pulpa, Oxidación de la pulpa, Color de la semilla fresca, y Desprendimiento de la semilla de su epitelio. Por otro lado, las variables cuantitativas fueron: Edad del árbol, Altura del árbol, Diámetro de la copa, Diámetro del tronco, Ramificación del tronco, Número de nudos por metro de rama, Longitud de la lámina foliar, Anchura de la lámina foliar, Espesor de la lámina foliar, Longitud del pecíolo, Grosor del pecíolo, Número de venas primarias en el haz, Peso de la flor, Longitud del pétalo, Anchura del pétalo, Peso del pétalo, Longitud del pedúnculo de la flor, Peso del cono estigmático, Longitud del fruto, Diámetro del fruto, Peso del fruto, Longitud del pedúnculo, Diámetro del pedúnculo, Peso de exocarpo, Grosor del exocarpo, Resistencia al penetrómetro, Peso de todas las semilla frescas por fruto, Número de semillas, Contenido de sólidos solubles, pH, Peso de una semilla fresca, Longitud de la semilla, Anchura de la semilla RESULTADOS Y DISCUSIÓN Los descriptores Peso del fruto (MED=330.96, DE=143.22), Diámetro de la copa (MED=224.25, DE=77.05), Altura del árbol (MED=255.88, DE=56.43) y Peso del exocarpo (MRD=102.12,
156
DE=45.66) contribuyeron a la mayor variabilidad del germoplasma como lo manifiesta González-Andrés (2001) en trabajos sobre variación morfológica de la hoja del chirimoyo. También se puede observar que el Número de semillas (CV=52.52%), Peso de semillas (CV=51.64%), Peso del exocarpo (CV=44.71%), Peso del fruto (CV=43.28%) presentan los mayores coeficientes de variación, con relación al resto de variables evaluadas, lo que explica, que estas variable relacionadas al fruto aportan a la variabilidad de la población, resultados compatible con los reportados por Oviedo (2004) en el comportamiento de caracterización en otra especie. En lo que respecta a la variable número de semillas, que tiene la mayor variabilidad en este estudio puede ser una ventaja y limitante a la vez, ya que un número bajo de semillas es deseable para el consumo, pero al igual que ocurre en otras especies, una alta presencia de semillas favorece la formación de frutos con mayor tamaño, debido a la influencia de fitohormonas, como las auxinas o giberelinas, segregadas por las semillas (Fos et al., 2000) En cuanto al pH de la fruta (MED=4.29, DE=0.24) que presenta el coeficiente de variación más bajo (5.5%), es normal en la chirimoya ya que es una fruta dulce, con alto contenido de azucares y bajo en ácidos (Cholota et. al., 1999), lo que concuerda con Palma et al. (1993) quienes mencionan que en frutos climatéricos como chirimoya, el contenido de solidos solubles, acidez y la adquisición de aroma y sabor se presentan en la maduración de los frutos de chirimoya. Tabla 2. Parámetros cuantitativos usados para la estimación de la variabilidad genética de colección ex situ de chirimoya (Annona cherimola Mill).
Variables Media Desviación Estandar
CV (%)
Diámetro de la copa (DC) 224,25 77,05 34,36
Diámetro del tronco (DT) 8,47 2,54 29,99
Peso de la flor en g (PFg) 1,09 0,30 27,28
Largo del pétalo en mm (LP mm) 24,69 4,16 16,84
Peso del pétalo en g (PPg) 0,91 0,27 29,81
Diámetro del Pedúnculo (DP) 6,36 1,38 21,70
Longitud del Fruto (LF) 87,91 15,59 17,73
Diámetro del fruto (DF) 87,15 13,51 15,50
Peso del Fruto en g (PFrg) 330,96 143,22 43,28
Peso de Semillas (PS) 19,49 10,06 51,64
Numero de Semillas (NS) 33,73 17,72 52,52
Peso Exocarpo (PE) 102,12 45,66 44,71
Grosor del Exocarpo (GE) 4,26 0,87 20,44
Solidos solubles (Brix) 20,47 3,60 17,59
PH (pH) 4,29 0,24 5,50
Firmeza (F) 10,73 3,56 33,15
Ancho lamina foliar (ALF) 90,65 14,49 15,98
Altura del árbol (AA) 255,88 56,43 22,05
Espesor lamina foliar (ELF) 0,22 0,02 10,89
Ancho del pétalo en mm (APmm) 6,33 0,88 13,88
Análisis de la variabilidad del germoplasma basado en descriptores fenológicos cuantitativos El valor de Kaiser-Meyer-Olkin mide la idoneidad de la muestra, cuyo valor es 0.78, el mismo que es considerado como bueno (Bisschoff & Kade, 2010). La prueba de esfericidad de Bartlett=2205,99 obtuvo alta significación estadística (p<0,01), la misma que indica que la matriz de correlación no es una matriz de identidad, es decir que las variables muestran alguna correlación. En la tabla 3 se observa los valores propios y las varianzas explicadas por los 4 componentes, los mismos que explican el 69,45% de la variabilidad total. Los 4 componentes o factores son una combinación lineal de las variables originales, y además serán independientes entre sí. Tomado los 4 primeros componentes de este estudio, se puede observar que la primera componente explicó el 34,35% de la variabilidad total, en donde los
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descriptores: Peso, Diámetro y Longitud del fruto; Peso y Grosor del exocarpo; y Diámetro del pedúnculo y Ancho de la lámina foliar, integran el componente 1 denominado “Fruto”. El segundo componente explica el 14,88% de variabilidad, con los siguientes descriptores: Peso, Ancho y Largo del pétalo; Peso de flor denominado “Flor”. El tercer componente explica el 11,15% de variabilidad, en donde se definen los siguientes descriptores: Firmeza, pH, Diámetro de tronco, Espesor de la lámina foliar, Diámetro de copa y Altura del árbol, denominado “Planta”. Finalmente, el cuarto componente explica el 9,07% de variabilidad, encontrándose los descriptores: Número y Peso de semillas y Sólidos solubles, denominado “Semillas”. El porcentaje de la variabilidad, (69,45% ) estaría dentro de los parámetros considerados por Cliff (1987) quien indicó que se deben considerar como aceptables los componentes cuyos valores propios expliquen alrededor de un 70% o más de la varianza total, López e Hidalgo, (1994). Esta metodología se utilizó para interpretar los resultados también por Franco (2003) en caracterización en Chenopodium quinoa. Tabla 3. Autovalores y proporción de la varianza explicada en el análisis de los componentes principales en la caracterización de 120 materiales de chirimoya.
Valores propios de varianza
Rotación de sumas de cargas cuadradas
Componentes Total % de
Varianza
% de varianza
acumulada Total
% de Varianza
% de varianza
acumulada
1 6.87 34.35 34.35 5.07 25.35 25.35
2 2.98 14.88 49.23 3.48 17.40 42.75
3 2.23 11.15 60.38 3.33 16.64 59.39
4 1.81 9.07 69.45 2.01 10.06 69.45
La Contribución de las variables cuantitativas a la conformación de los cuatro componentes en la caracterización de la colección ex situ de Annona cherimola. factores rotados (tabla 4) indica de forma más precisa las relaciones posibles, al identificarse 4 componentes. En el primer componente fue posible distinguir las accesiones de chirimoya (42 materiales 1,2,5,7,9,12,13,17,18,22,23,24,27,28,30,31,33,34,35,37,38,41,43,46,47,48,49, 51,52,55,56,57,58,59,61,72,74,86,94,96 y 107) que tuvieron los mayores valores de peso de frutos, diámetro longitudinal y ecuatorial, peso y grosor de exocarpo, diámetro del pedúnculo y ancho de lámina foliar. La segunda componente distinguió las accesiones (44 materiales 6,10,14,20,21,25,32,39,45,50,54,62,70,78,83,84,87,89,91,93,98,100,102,103,113,114, 115,130,63,69,71,77,79,85,95,97,99,105,106,120,121,125,129) que presentaron mayores valores de peso, ancho y largo del pétalo, peso de la flor. La tercera componente distinguió las accesiones (26 materiales 15,16,19,26,36,40,42,44,53,65,68,80,82,90,92,101,104,111,112,117, 118,122,123,124,126,127) que presentaron en los frutos el mayor contenido acidez y firmeza, así como mayor diámetro del tronco, la copa y espesor de la lámina foliar. En la cuarta componente se encontraron las accesiones (8 materiales 64,81,108,109,110,116,119,128) que presentaron el mayor número de semillas y peso de estas así como los frutos con mayor dulzor. Es importante mencionar que en el estudio realizado por Andrade (2009) en la colección ex situ de la Granja Experimental Tumbaco del INIAP, se identificó tres grupos, resultado que difiere de esta investigación, en la cual se obtuvieron cuatro grupos, así como sus descriptores son diferentes a los del sur de país, lo que indica una diferencia entre los dos lugares evaluados, posiblemente debido a la diversidad de los materiales en estudio y a las zonas de reelección de los materiales, ya que en el primer caso fueron materiales del norte del país y en el segundo los del sur del Ecuador. Pudiendo destacarse en este estudio, que en el primer grupo, coinciden con los materiales que presentaron mayor variación en el peso del fruto y peso del exocarpo como reporta Andrade (2009). Parece ser que el comportamiento de los frutales andinos se visualiza mucho en las características cualitativas de los frutos, así se señala en trabajos con Solanum quitoense en donde se visualiza que las variables con mayor contribución a la explicación de la variabilidad, estuvieron relacionadas con atributos del fruto (Lobo et al., 2007).
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Tabla 4. Contribución de las variables cuantitativas a la conformación de los primeros cuatro componentes en la caracterización de la colección ex situ de Annona cherimola.
VARIABLES COMPONENTES 1 2 3 4
Peso del Fruto en g 0,92 Diámetro del fruto 0,89 Peso Exocarpo 0,89 Longitud del Fruto 0,88 Diámetro del Pedúnculo 0,75 Grosor del Exocarpo 0,52 Ancho lamina foliar 0,40 Peso del pétalo en g 0,95 Peso de la flor en g 0,95 Ancho del pétalo en mm 0,85 Largo del pétalo en mm 0,77 Firmeza -0,81 PH -0,75 Diámetro del tronco 0,71 Espesor lamina foliar -0,68 Diámetro de la copa 0,63 Altura del árbol 0,54 Numero de Semillas 0,82 Peso de Semillas 0,81 Solidos solubles -0,54
Análisis de agrupamiento El análisis de agrupamiento jerárquico muestra la relación en grado de disimilitud entre los 120 individuos seleccionados, determinándose cuatro grupos con base a los 66 descriptores evaluados (Figura 1). Con base en la distancia genética de los caracteres evaluados, se pudo apreciar que existe poca variación que se exprese a nivel fenotípico.
Figura 1. Dendograma de la clasificación de 120 árboles seleccionados de chirimoya en base a variables cuantitativas. El primer grupo se encuentra formado por 42 árboles, con las siguientes características: presentan el menor peso de fruto con 233 g, buen nivel de solidos solubles (20°Brix), nivel de pH ácido de 4,4 y firmeza de 12 (N/cm2). También se pudo observar hojas de color verde, pubescentes, ovadas de base acorazonada y ápice agudo hábito de fructificación medio, frutos cordiformes, no simétricos, sin uniformidad, tipo de exocarpo impresa y umbonata, resistencia a la abrasión fuerte, exocarpo de color verde claro, pulpa de color blanco y de textura cremosa, bajo en fibra, de buen sabor, sin oxidación en 5 minutos, semillas de color marrón oscuro y están semi-adheridas al epitelio. El segundo grupo se encontró formado por 44 árboles, que presentaron el mayor peso de fruto con 481 g, buen nivel de solidos solubles 21(°Brix), nivel de pH acido 4,37, firmeza de 13 (N/cm2) y tipo de exocarpo impresa. En el tercer grupo se encontraron 26 árboles con las siguientes características: peso de fruto de 304 g, contenido de sólidos solubles de 17 (°Brix), nivel de pH 4,22 y firmeza de 6 (N/cm2), tipo de exocarpo impressa y umbonata y con resistencia a la abrasión intermedia.
159
En el cuarto grupo se encontraron 8 árboles con las siguientes características: peso de fruto de 430 g, contenido de solidos solubles 23 (°Brix), pH de 3,98, firmeza de 7 (N/cm2), tipo de exocarpo impressa y alto en fibra. Para los análisis de las variables cuantitativas se realizó un análisis de componentes principales Categóricos, obteniéndose 8 componentes en donde sobresalen los siguientes descriptores: Para Defoliación al final de la fructificación se obtuvieron 49 plantas que presentan una defoliación completa (40,8%); 68 plantas defoliación parcial (56,/%) y 3 plantas con defoliación ausente(2,5%) 1,2,3,8,10,13,15,16,18,19,20,28,29,37,41,42,46,49,52,54,55,56,58,64,65,70,72, 74,78,83,84,94,95,96,97,98,100,103,104,105,107,108,112,113,114,119 Para el habito de fructificación se tuvieron 89 plantas que presentaron fructificación media con el (74,2%) siendo los siguientes materiales:2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,16,17,18,19,20,21,22,23,24, 27,28,29,30,31,32,33,34,35,36,38,40,,41,42,43,44,45,46,47,48,49,50,51,55,58,59,60,61,62,63,64 ,66,67,68,69,70,72,73,75,76,77,78,81,82,85,86,87,88,90,91,92,94,96,97,98,100,101,102,103,104 105,106,107,108,109,110,111,113,114,117,118,119,,122,123,124,125,126,129,130 Para el Tipo de exocarpo se obtuvieron 72 plantas que presentan un exocarpo Impresa (60%) 3,4,5,7,8,9,11,13,16,20,23,26,28,29,30,32,34,35,,36,40,42,43,44,45,46,48,50,52,53,55,58,59,60 1,62,69,70,72,73,75,75,77,79,80,83,85,87,88,91,,94,96,97,98,100,102,103,104,105,106,108,109, 110,111,113,114,116,117,118,122,123,124,125,126,128. Para Resistencia a la abrasión se obtuvieron 97 plantas que presentan resistencia a la abrasión (80,8%) 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22,23,24,25,26,27,28,,29,30,31, 32,33,3,34,35,36,37,38,39,40,41,42,43,44,45,46,47,48,49,50,51,52,53,54,55,56,57,58,59,60,61, 62,63,65, 66,67,68,70,71,72,73,74,75,76,80,83,84,85,86,87,88,89,91,92,93,94,95,96,98,100,101, 102,103,104,105,,107,111,113,114,117,118,121,122,123,124,125,129,130 Para Color del exocarpo se obtuvieron 99 plantas que presentan un color verde claro (82,5%) 1,2,3,4,5,6,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22,23,,24,25,26,28,29,30,31,32,33,37,38,41, 42,43,46,47,49,50,51,52,53,54,56,57,58,59,60,61,62,63,65,66,67,68,69,70,71,73,74,75,76,77,78, 79,80,81,82,84,85,86,88,89,90,91,92,93,95,96,97,98,99,100,101,102,103,104,107,108,109,110, 111,112,113,114,,115,117,119,120,121,122,125,126,127,128,129,130 Para Color de la pulpa se obtuvieron 92 plantas presentan un color de pulpa blanca (76,7%) 1,2,3,4,6,8,9,10,11,13,14,16,17,19,20,21,22,23,24,27,28,29,30,31,32,34,35,36,3738,39,40,41, 42,43,46,47,48,49,50,51,52,53,55,56,57,58,59,60,62,63,64,65,66,67,68,69,70,72,73,75,76 77,78,79,81,83,88,89,93,94,95,96,97,98,99,101,102,103,104,106,107,108,109,110,111,112 113,115,116,117,118,119,120,121,122,123,124,125,126,127,128,130 Para Textura de la pulpa se obtuvieron 111 plantas que presentan textura cremosa (92,5%) 1,,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22,25,26,27,28,29,30,31,32,33,34,35,36,37 38,39,40,40,41,42,44,46,48,49,50,51,52,53,54,55,56,57,59,60,61,62,63,64,65,66,67,68,69,70,71, 72,73,74,75,76,77,78,79,80,81,,83,84,85,86,87,89,90,91,92,93,94,95,96,97,98,99,100,101,102 103,104,105,106,107,108,109,110,113,114,115,116,117,,118,119,120,121,122,123,124,125,126 127, 128, 129,130 Para Contenido de fruta en la pulpa se obtuvieron 18 plantas que presentan un contenido alto de fibra (15%%) 2,13,14,18,23,37,39,43,47,64,80,108,111,112,119,122,123,128 Para Sabor de la pulpa se obtuvieron 109 plantas que presentan un buen sabor de pulpa (90,8%) 1,,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,18,19,20,21,22,24,25,26,27,28,29,30,31,32,33,34,35,37,38, 39,40,40,41,42,43,44,45,47,48,49,50,51,52,53,54,55,56,57,59,60,61,62,63,65,66,67,68,69,70,71, 72,73,74,75,76,77,78,79,80,81,83,84,85,86,87,89,90,91,92,93,94,95,96,97,98,99,100,101,102, 103,104,105,106,107,109,110,111,112,113,114,115,117,,118,120,121,122,123,124,125,126,127, 129,130 Para Color de la semilla se obtuvieron 7plantas que presentan un color de semilla negra (5,8%) 15, 49, 50, 69, 80, 106,121.
160
Para Desprendimiento de la semilla se obtuvieron 6 plantas que presentan semilla suelta (5,0%) 32,61,77,79,113. CONCLUSIONES La diversidad de materiales de Annona cherimoya Mill, que se encuentra en los valles subtropicales de las provincias de, Azuay y Loja, incluyen individuos con características fenotípicas sobresalientes. Los caracteres cualitativos y cuantitativos evaluados sugieren una baja variabilidad fenotípica, posiblemente inducido por la homogeneidad de los árboles seleccionados. Las variables cuantitativas y cualitativas más discriminantes que incidieron en la variabilidad de los grupos fueron: cualitativos peso de frutos, diámetro longitudinal y ecuatorial, longitud de la semilla, exocarpo grueso y diámetro del pedúnculo, firmeza, pH, longitud del pedúnculo, número de semillas, peso de todas las semilla frescas y contenido de sólidos solubles. Así como también como también variables cuantitativas como: Defoliación al final de la fructificación, El habito de fructificación, el Tipo de exocarpo, Resistencia a la abrasión, Color del exocarpo, Color de la pulpa, Textura de la pulpa, Contenido de fruta en la pulpa, Sabor de la pulpa, Color de la semilla, Desprendimiento de la semilla Estos resultados permitirán en el corto plazo la disponibilidad de materiales para la siembra puede basarse en procesos selectivos en las poblaciones locales, y clonación de individuos superiores; mientras que en el mediano y largo plazo se puede enfocar en la generación de una base genética amplia, enriquecida con atributos de esta especie. Los procesos de caracterización han demostrado la presencia de atributos que ayudarían a solucionar problemas limitantes, como es el caso de calidad organoléptica de los frutos, así como la resistencia y/o tolerancia a plagas; por lo tanto este estudio podría servir como referencia para los programas de mejoramiento de este frutal. Además, se debería introducir materiales foráneos (de otros países) que mejoren la variabilidad genética de la especie. REFERENCIAS Alaly FQ, Liu X, McLaughlin JL (1999) Annonaceous acetogenins: recent progress. Journal of
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162
Actividad 4
Escritura de 2 protocolos de Investigación
Protocolo 1
Determinación de la distinción, homogeneidad y estabilidad (DHE) del clon de
Chirimoya INIAP Fabulosa 2015. Anexo 1
Protocolo 2
Evaluación de la sintomatología producida por deficiencia de macro y micro elementos
en plantas de chirimoya en condiciones hidropónicas bajo invernadero. Anexo 2
163
Anexos
Anexo 1
INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES AGROPECUARIAS
ESTACIÓN EXPERIMENTAL DEL AUSTRO
PROTOCOLO DE INVESTIGACIÓN Y DESARROLLO
1. Título de la actividad
Determinación de la distinción, homogeneidad y estabilidad (DHE) del clon de
Chirimoya INIAP Fabulosa 2015.
2. Antecedentes
La chirimoya pertenece a la familia Annonaceae, la cual es extremadamente diversa
dentro de las Magnoliales con aproximadamente 110 géneros y 2400 especies, 900 de las
TITULO DE LA ACTIVIDAD:
Determinación de la distinción,
homogeneidad y estabilidad (DHE) del
clon de Chirimoya INIAP Fabulosa 2015.
LOCALIZACIÓN DE LA
ACTIVIDAD: Estación Experimental del Austro
RESPONSABLES DE LA
ACTIVIDAD: Ing. Agr. Carlos Feicán Mejía
EQUIPO MULTIDISCIPLINARIO:
William Viera.
Programa de Fruticultura
COLABORADORES DE LA
INVESTIGACIÓN (Externos):
IEPI
Lenin Ron (UCE)
FECHA DE INICIO DE LA
ACTIVIDAD: Junio 2017
FECHA DE TÉRMINO DE LA
ACTIVIDAD: Diciembre 2019
PRESUPUESTO: $ 2 984,00
TITULO DEL PROYECTO:
Generación de investigación, desarrollo e
innovación en la Estación Experimental
del Austro
ÁREA DE INVESTIGACIÓN: Incremento de la productividad
LINEA DE INVESTIGACIÓN: Mejoramiento genético
164
cuales se encuentran en el neotrópico (Chatrou. LW.; Pirie. MD.; Erkens. RHJ.; Couvreur.
TLP.; Neubig. KM.; Abbott. JR.; Mols. JB.; Maas. JW.: Saunders. RMK.; Chase. MW.;
2012). El fruto de esta especie tiene excelentes cualidades organolépticas y nutritivas, por lo
que el interés por esta y otras especies de Annonaceaes ha aumentado en los últimos años
debido a la presencia de acetogeninas, compuestos que se encuentran solo en esta familia;
estos poseen propiedades citotóxicas, antitumorales, antipalúdicas y plaguicidas (Alaly.
FQ.; Liu. X.; McLaughlin. JL.; 1999), (Liaw. C.; Wu. TY.: Chang. FR.; Wu. YC.; 2011).
El área total de cultivo de esta especie es de 13 500 ha-1 en todo el mundo, con una
producción estimada de 81 000 toneladas anuales (Pinto. A.; Cordeiro. M.; de Andrade. C.;
Ferreira. F.; Filguiera. H.; Alves. R.; Kinpara. D.; 2005). España es el mayor consumidor y
productor de chirimoya con un 28 %, Perú y Chile son los países que le siguen en
producción. Estos datos muestran que la chirimoya, es una fruta que tiene una escasa
importancia económica a nivel mundial, se podría decir que su consumo no está difundido a
pesar, de ser muy apreciada por su exquisito sabor (Guirado, E.; Hermoso. J.; Perez. M.;
Garcia. J.; Farré. J.; 2004).
De acuerdo a las estadísticas del MAGAP del año 2000, en Ecuador existían
aproximadamente 385.2 ha-1 de chirimoya, con un promedio de producción de 10 t/ha-1
Vanegas, E; Encalada. C.; Feicán. C.; Gómez. M.; Viera. W.; (2016) Sin embargo Andino, F.
(2014) manifiesta que nuestro país cuenta con una producción de 1 000 ha-1 de chirimoya
distribuidas en diferentes localidades de clima subtropical y que es comercializada a
pequeña escala en ciertas temporadas del año.
El clon de chirimoya INIAP Fabulosa 2015, es el resultado de un plan de
mejoramiento iniciado en el 2010 por parte del Programa de Fruticultura de la Estación
Experimental del Austro, con el fin de ofertar a los productores de fruta, un material de alto
rendimiento y calidad. En este contexto se inició el proceso con colectas de germoplasma,
165
de plantaciones comerciales de chirimoya ubicadas en las provincias de Loja (Vilcabamba),
Azuay (Paute y Gualaceo), se seleccionaron 10 accesiones de buen comportamiento
agronómico y fruta de calidad, de los cuales se elaboró los datos pasaporte registrados en el
anexo número 1; mismas que fueron evaluadas en dos localidades de la Provincia del
Azuay Cantones Gualaceo (Latitud: 22º51’55’’ S, Longitud: 78º46’24’’ W) y Guachapala
(Latitud: 02º45’56’’ S, Longitud: 79º13’03’’ W) y en la Provincia de Loja Parroquia
Vilcabamba Latitud: 4º16’38’’ S, Longitud: 78º42’13’’ W hasta el año 2015 en que fue
seleccionada (Encalada. C.; Feicán. C.; Gomez. M.; Viera. W.; Viteri. P.; Brito. B.;
Minchala. L.; 2015).
Este clon durante el periodo de evaluación 2010-2014 demostró tener alta capacidad
productiva, ya que rindio las 26 t ha-1 promedio, frente a 14 t ha-1 que se obtuvo con el
material local Nallig (INIAP, 2013; INIAP 2014). Complementariamente, en el 2014 se
realizó la evaluación de la calidad poscosecha de las 10 accesiones seleccionadas, donde la
accesión INIAP Fabulosa presentó como atributos alto contenido de sólidos solubles
24,72°Brix, peso del fruto de 491,55 g, firmeza de 4,04 newton, índice de 9,45 semillas/100
g de pulpa, pH de 4,55 y concentración de vitamina C de 63,06 mg/100 g, entre otras
características que fueron superiores a los otros materiales y a la variedad local (Brito. B.;
Cajas. P.; Rosales. C.; Ortiz. B.; 2015).
Luego del proceso de caracterización y selección respectivo, la Estación
Experimental del Austro, presentó al IEPI la información y documentación solicitada para el
registro oficial del primer clon de chirimoya, INIAP Fabulosa 2015 y proceder al examen
DHE respectivo. Este examen exige que una nueva variedad protegida sea distinta a todas
las demás variedades notoriamente conocidas; uniforme en la expresión de sus
características distintivas; y estable, tal que conserve estas características después de al
166
menos dos ciclos reproductivos. (Gilliland. T.; Gensollen. V.; 2010.), (Ramírez. M.;
Carballo. A.; Santacruz. A.; Conde. V.; Espitia. E.; González. F.; 2010).
Los procedimientos a seguir son determinados por la Unión Internacional para la
Protección de Obtenciones Vegetales (UPOV). Para que una nueva variedad pueda ser
registrada debe cumplir con este procedimiento, para lo cual el obtentor debe caracterizar la
nueva variedad, tal como indica la UPOV en el acta de 1991, en el sentido que una variedad
se define por sus caracteres (UPOV, 2016; Ramírez et al., 2010).
3. Justificación
Las pruebas de distinción, homogeneidad y estabilidad (DHE), son un requerimiento
a cumplir para obtener el título de obtentor, y con ello la protección legal a este derecho;
siendo hasta ahora los caracteres morfológicos la base para el examen DHE, con el cual
debe probarse que una variedad cumple con los tres criterios siguientes: a) distinta, al
considerar que sea claramente diferente de toda la colección de variedades de referencia; b)
uniforme, si las plantas atípicas no excede el mínimo permitido y c) estable, siempre y
cuando se mantengan todos los caracteres en diversos ambientes, a través del tiempo.
El INIAP, como institución obtentora protegerá sus cultivares y podrá
comercializarlos, si es de su interés, cobrando regalías que pueden ser destinadas a fortalecer
los programas de mejoramiento genéticos que le dieron origen, y fortalecer el programa de
mejoramiento, atendiendo con nuevos materiales acordes a las necesidades de productores y
consumidores.
4. Objetivos
4.1 Objetivo General.
167
Determinar las características de distinción, homogeneidad y estabilidad (DHE) del
clon de chirimoya INIAP Fabulosa 2015 en la Estación Experimental del Austro para su
registro en el IEPI como nuevo clon.
4.2 Objetivos Específicos.
Evaluar 23 caracteres morfológicos y fenológicos que describan la distinción,
homogeneidad y estabilidad (DHE).
Analizar la distancia fenotípica entre los cultivares mediante la formación de
conglomerados.
5. Hipótesis
Ho: Los caracteres morfológicos y fenológicos del clon INIAP Fabulosa 2015
evaluados no permiten diferenciarlo de los cuatro cultivares de referencia, ni garantizan su
homogeneidad y estabilidad, lo que impide registrarlo como nuevo cultivar.
Ha: Los caracteres morfológicos y fenológicos del clon INIAP Fabulosa 2015
evaluados permiten diferenciarlo de los cuatro cultivares de referencia, además garantizan la
homogeneidad y estabilidad, lo que permite el registro como nuevo cultivar.
6. Materiales y métodos
6.1 Materiales.
6.1.1 Materiales Físicos.
Cajas de cartón, papel periódico, etiquetas, rollo de hilo, tijeras de podar, libreta de
campo, esferos gráficos, lápiz y marcadores, cinta métrica, cinta masking, balanza,
refractómetro, ph-metro, calibrador, penetrómetro, vasos de precipitación, navaja, lupa,
pinza, fundas, refrigeradora, computadora, impresora, cámara fotográfica
6.1.2 Materiales Químicos.
Agua destilada, agua de grifo
168
6.2 Metodología
6.2.1 Características del sitio experimental
6.2.1.1 Ubicación
Tabla 1.
Ubicación geográfica
Provincia Azuay
Cantón Gualaceo
Parroquia Bullcay
Localidad: Bullcay
Altitud 2 200 m s.n.m.
Latitud 2 25155 S
Longitud 78 46 24 W
Fuente: (Vanegas Vásquez, 2014)
6.2.1.2 Características climáticas
Tabla 2
Condiciones climáticas del lugar de investigación
Zona climática Bosque seco Montano bajo
Temperatura promedio 18⁰ C
Precipitación media anual 750 mm/año
Humedad relativa promedio 75% Fuente: (Vanegas et al., 2015)
6.2.1.3 Características edáficas
La Estación Experimental del Austro en su mayoría presenta suelos del Orden de los
Vertisoles, del suborden Usterts: que se caracterizan por presentar grietas abiertas al menos
90 días acumulativos por año, globalmente, este suborden es el más extenso del orden
Vertisol. Las propiedades del suelo encontradas se detallan a continuación:
Tabla 3.
Características físico-químicas del lugar de investigación
Características físico-químicas del suelo de Estación Experimental del Austro.
Textura: Franca arcillo arenoso
Pendiente: 1%
Drenaje: Bueno
169
pH: 7.5
Fuente: Idrovo, I. (2 008)
6.3 Método
6.3.1 Factores en estudio
Cultivares de chirimoya a evaluarse: INIAP Fabulosa (ECU-17502), Fino de Jete
(ECU-17488), MAG Tumbaco T55 (ECU-17461) y Variedad Cumbe semilla
6.3.2 Unidad experimental
La unidad experimental, estará representada por 5 plantas de cada accesión,
distanciadas a 4,00 m x 2,00 m, ocupando un área de 40,00 m2 por accesión. Un área neta de
160 m2 y total de 200 m2.
6.3.3 Tratamientos
Tabla 4
Tratamientos a evaluarse
Nº Tratamiento Descripción
T1 INIAP Fabulosa (ECU-17502)
T2 Fino de Jete (ECU-17488)
T3 MAG Tumbaco T55 (ECU-17461)
T4 Variedad Cumbe semilla
6.3.4 Análisis estadístico
Para la distinción de variedades/cultivares se realizarán análisis multivariados tales
como MANOVA (análisis de varianza multivariado), análisis de componentes principales
para variables continuas y de análisis de correspondencias para las variables cualitativas. La
información conjunta se traducirá en una matriz de similaridad misma que permitirá hacer
un análisis de conglomerados de los materiales evaluados.
Con la información obtenida de los descriptores de chirimoya para cada accesión, se
procederá a calcular el coeficiente de variación (CV) para cada uno de ellos, con el fin de
identificar aquellos que aporten una variabilidad significativa (CV > 20%), mismos que
170
serán sometidos a un análisis de correlación usando el Coeficiente de correlación de Karl
Pearson, Para medir la relación entre variables cuantitativas
Las distancias fenotípicas entre cultivares se analizarán a través del método de
conglomerados «Manhattan Promedios» en el programa estadístico Infostat 2016 (Di Rienzo
et al., 2016). Este análisis mide la similitud entre las unidades a estudiar (Boschi, 2012).
Con los conglomerados resultantes se aplicará un análisis de componentes principales para
explicar la variabilidad entre conglomerados, estos serán comparados en base a una
prueba de Tukey (α≤ 0,05).
6.3.5 Evaluación de la distinción, la homogeneidad y la estabilidad
6.3.5.1 Distinción
3.5.1.1 Diferencias consistentes
Se evaluará dicho carácter observado en al menos dos ciclos de cultivo independientes para
garantizar que es una diferencia consistente, Aunque las diferencias observadas sean muy
evidentes entre cultivares
3.5.1.2 Diferencias claras
Para determinar si una diferencia entre dos variedades es clara, se considerará, en
particular, el tipo de expresión del carácter que se esté examinando, es decir, si éste se
expresa de manera cualitativa, cuantitativa o pseudocualitativa. Por consiguiente, es
importante que los usuarios de estas directrices de examen estén familiarizados con las
recomendaciones contenidas en la Introducción General antes de tomar decisiones relativas
a la distinción. Contenidas en la Introducción General antes de tomar decisiones relativas a
la distinción.
Homogeneidad.
171
Para la evaluación de la homogeneidad de las plantas de un cultivar respecto a los
caracteres en evaluación, deberá aplicarse una población estándar del 1% y una probabilidad
de aceptación del 95%, como mínimo. En el caso de un tamaño de muestra de cinco plantas,
no se permitirán plantas fuera de tipo.
6.3.5.3 Estabilidad.
En esta variable si un material resulta ser homogéneo, se lo considerará también
estable, en caso de duda o confirmación se realizará una evaluación de un ciclo adicional.
6.4 Variables o descriptores y métodos de evaluación
Se observará las variables tanto del árbol, rama y frutos de 5 plantas, para la presente
evaluación y de 5 repeticiones por cada una. Utilizando igualmente las escalas propuestas
para cada descriptor y que fueron aprobadas en la directriz para chirimoya. (Anexo 1)
ÁRBOL
Altura Se evaluará la altura del árbol cuando empiece la floración
RAMA
Longitud del entrenudo, color, pubescencia
HOJA
Longitud, anchura, relación longitud/anchura, forma, color verde (haz), pubescencia
(haz), pubescencia (envés), ondulación de la lámina foliar, forma del ápice de la lámina
foliar, forma de la base de la lámina foliar, anchura
PECIOLO
Longitud, Grosor
RAMA FLORAL
Densidad de flores
PÉTALO
172
Color, longitud, anchura, relación longitud/anchura, torsión inmediatamente antes
de la antesis, pubescencia.
FRUTO:
Longitud, Diámetro en sección transversal, Forma en vista lateral, Brillo de la
epidermis, Grosor de la corteza, Segmentación de la superficie, Protuberancia en la
superficie, Firmeza de la pulpa, Cantidad de fibra, Cantidad de lóculo óseo, Acidez, Aroma,
Número de semillas
SEMILLA
Longitud, Anchura, Relación entre la longitud y la anchura, Adherencia a la pulpa.
Época de madurez para la cosecha, Defoliación al final de la fructificación
6.5 Manejo específico del experimento
6.5.1 Duración del ensayo
La duración mínima del ensayo será de al menos de dos ciclos de cultivo. Ya que, en
este tiempo se observará las diferencias de los caracteres a evaluarse, dependiendo del
cultivar, las condiciones de manejo y ambientales (IEPI-INIAP, 2016).
6.5.2 Lugar de ejecución del ensayo
El ensayo se implementará en un sólo lugar (IEPI-INIAP, 2017), en este caso, se lo
realizara en un huerto de chirimoya establecido en la Estación Experimental del Austro.
6.5.3 Número de plantas/partes de plantas que se han de examinar
En esta prueba se emplearán 5 plantas por cultivar, para la evaluación.
6.5.4 Podas
Se realizará la poda de las plantas en el mes de agosto para incentivar la brotación de
nuevas ramas y estructurar las plantas. Se podarán ramas que ya produjeron o ramas
excesivas para mantener el equilibrio, la sanidad, ventilación de la planta y permitir el
ingreso de sol a la misma.
173
6.5.5 Riego
Se los realizara de acuerdo a la demanda del cultivo y a las condiciones climáticas de
la zona
6.5.6 Controles fitosanitarios
Los controles se realizarán de acuerdo a las condiciones climáticas o cuando se
presente un nivel de incidencia próximo al umbral económico de la plaga, se manejará un
control específico para mosca de la fruta y minador de la hoja.
6.5.7 Fertilización
Según los requerimientos del cultivo. Se realizará un fraccionamiento de la
fertilización edáfica en al menos dos aplicaciones, y se complementará con aplicaciones
foliares.
6.5.8 Sistema de conducción
Las plantas se conducirán en sistema de vaso abierto
6.5.9 Control de malezas
El control de malezas se realizará en forma manual con la aplicación del herbicida al
inicio del ciclo y posteriormente mecánicamente.
7. Cronograma de actividades
ACTIVIDADES MESES
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16
1. Elaboración perfil
2. Control de invierno
3. Fertilización
7. Poda
4. Fase vegetativa
5. Fase productiva
6. Cosecha
7. Toma de datos
174
8. Presupuesto del ensayo
Rubro Unidad Cantidad $ Unitario $ Total
Análisis de laboratorio
- Análisis de suelo Análisis 1 30,00 30,00
Mantenimiento
- Fertilizantes Sacos 50 kg 2 30,00 60,00
- Compost saco 20 4,00 80,00
- Aplicación fertilizantes jornal 3 32,00 96,00
- Pesticidas kg 10 30,00 300,00
- Foliares kg 3 10,00 30,00
- Aplicación pesticidas jornal 5 32,00 160,00
- Riego jornal 4 32,00 128,00
- Deshierbas jornal 5 32,00 160,00
- Poda jornal 6 32,00 192,00
- Cosecha jornal 8 32,00 256,00
Total 2 años
2984,00
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175
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cherimola mill.). ECUADOR ES CALIDAD: Revista Científica Ecuatoriana, Vol. 3
177
10. ANEXOS
ANEXO 1a
Datos pasaporte de las accesiones de chirimoya recolectadas en las Provincias de Loja y
Azuay
ACCESION CODIGO PROVINCIA SECTOR ALTITUD LATITUD LONGITUD
1 CHB FAB Loja Villcabamba 1 705 04° 242 079°255
2 CHB 027 Pichincha Tumbaco 2348 0°13' 78°24'
3 CHB
Guille Azuay Gualaceo 2233 2°51′33″ 78°45′40″
4 CHB Abu Azuay Paute 2200 02º45’56’’ 78º42’13’’
5 CHB F.
Jete Pichinha Tumbaco 2348 0°13' 78°24'
6 CHB La
Loma Azuay Paute 2 259 02°
44.076‘
078°44.630
‘
7 CHB T-55 Pichincha Tumbaco 2348 0°13' 78°24'
8 CHB La
Playa Azuay Paute 2 202 02°
46.877‘
078°45.284
‘
9 CHB T-61 Pichincha Tumbaco 2348 0°13' 78°24'
10 CHB
Cumbe s. Loja Vilcabamba 1 705 04° 242 079°255
DNOV/006
FECHA: 2017-07-12
INSTITUTO ECUATORIANO DE LA PROPIEDAD INTELECTUAL
-IEPI-
INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES AGROPECUARIAS
-INIAP-
DIRECTRIZ NACIONAL PARA LA EJECUCIÓN DEL EXAMEN DE LA
DISTINCIÓN, HOMOGENEIDAD Y ESTABILIDAD 1
DESCRIPCIÓN DE CULTIVARES DE CHIRIMOYO
(Annona cherimola Mill.)
178
El propósito de esta directriz es proyectar los principios para la realización del examen
DHE en variedades de chirimoyo, con la finalidad de que sirva de orientación práctica y
detallada para el examen armonizado de la distinción, homogeneidad y estabilidad (DHE) y
en exclusiva, para reconocer los caracteres apropiados para el examen DHE y crear
descripciones armonizadas de las variedades. Para su utilización en Ecuador se considerarán
los documentos técnicos utilizados y generados por las entidades de investigación.
1 Documento adaptado de la Directriz UPOV TG/208/1 Rev. A las condiciones nacionales.
Contenido
OBJETO DE ESTA DIRECTRIZ DE EXAMEN ................................................ 179
MATERIAL NECESARIO .................................................................................... 179
MÉTODO DE EXAMEN ........................................................................................ 179
Duración de los ensayos ....................................................................................... 180
Lugar de ejecución de los ensayos. ..................................................................... 180
Condiciones de ejecución de los ensayos ............................................................ 180
Diseño de los ensayos ........................................................................................... 180
EVALUACIÓN DE LA DISTINCIÓN, LA HOMOGENEIDAD Y LA
ESTABILIDAD ........................................................................................................ 181
DISTINCIÓN ........................................................................................................... 181
Recomendaciones generales ................................................................................ 181
Diferencias consistentes ....................................................................................... 181
Diferencias claras ................................................................................................. 181
HOMOGENEIDAD................................................................................................. 181
ESTABILIDAD ...................................................................................................... 182
MODO DE AGRUPAR LAS VARIEDADES Y ORGANIZACIÓN DE LOS
ENSAYOS EN CULTIVO ...................................................................................... 182
INTRODUCCIÓN A LA TABLA DE CARACTERES ....................................... 183
Categorías de caracteres ...................................................................................... 183
Niveles de expresión y notas correspondientes. ................................................. 183
Tipos de expresión ................................................................................................ 183
Variedades ejemplo .............................................................................................. 183
Leyenda ................................................................................................................. 183
TABLA DE CARACTERES ........................................ ¡Error! Marcador no definido.
EXPLICACIONES DE LA TABLA DE CARACTERES ................................... 201
179
13. (b) HOJA: Ondulación de la lámina foliar. ........................................................ 202
BIBLIOGRAFÍA ........................................................ ¡Error! Marcador no definido.
CUESTIONARIO TÉCNICO ...................................... ¡Error! Marcador no definido.
6. OBJETO DE ESTA DIRECTRIZ DE EXAMEN
Las presentes Directrices de Examen se aplican a todas las variedades de Annona
cherimola Mill. y sus híbridos.
7. MATERIAL NECESARIO
1. Las autoridades competentes deciden cuándo, dónde y en qué cantidad y calidad se
deberá entregar el material vegetal necesario para la ejecución del examen de la
variedad.
2. Los solicitantes que presenten material procedente de un país distinto de aquel en el
que se efectuará el examen, deberán asegurarse de que se han cumplido todas las
formalidades aduaneras y fitosanitarias.
3. El material se entregará en forma de injertos de un año en portainjertos de Annona
cherimola Mill.
La cantidad mínima de material vegetal que ha de entregar el solicitante deberá ser
de:
a. General
Ocho plantas.
1. El material vegetal proporcionado deberá presentar una apariencia saludable y no
carecer de vigor ni estar afectado por enfermedades o plagas importantes. De
preferencia, no deberá haber sido obtenido por propagación in vitro. De ser así, este
hecho deberá ser señalado por el solicitante.
2. El material vegetal deberá estar exento de todo tratamiento que afecte la expresión
de los caracteres de la variedad, salvo autorización en contrario o solicitud expresa
de las autoridades competentes. Si ha sido tratado, se deberá indicar en detalle el
tratamiento aplicado.
MÉTODO DE EXAMEN
180
Duración de los ensayos
La duración mínima de los ensayos deberá ser normalmente de dos ciclos
independientes de vegetación. A los fines de las presentes Directrices de Examen, un ciclo
de vegetación se refiere a un ciclo de fructificación.
Lugar de ejecución de los ensayos.
Normalmente los ensayos deberán efectuarse en un solo lugar. Si ese lugar no
permite la expresión de ciertos caracteres de la variedad que sean pertinentes para el examen
DHE, se podrá examinar la variedad en otro lugar.
Condiciones de ejecución de los ensayos
Se deberán efectuar los ensayos en condiciones que aseguren un desarrollo
satisfactorio de la expresión de los caracteres pertinentes de la variedad y de la ejecución del
examen. En particular, es esencial que los árboles produzcan una cosecha satisfactoria de
frutos en cada uno de los dos ciclos de vegetación.
Diseño de los ensayos
Cada ensayo será diseñado para obtener un total de al menos cinco plantas.
Los ensayos deberán concebirse de tal manera que se permita la extracción de
plantas o partes de plantas para efectuar medidas y conteos, sin perjudicar las observaciones
ulteriores que deberán efectuarse hasta el final del ciclo de vegetación.
Número de plantas/partes de plantas que se ha de examinar.
Salvo indicación en contrario, todas las observaciones determinadas por medición o
conteo se deberán efectuar en cinco plantas o partes de cada una de las cinco plantas. En el
caso de las partes de plantas, se tomarán dos partes de cada planta.
Ensayos adicionales.
Se podrán efectuar ensayos adicionales para estudiar caracteres pertinentes.
181
EVALUACIÓN DE LA DISTINCIÓN, LA HOMOGENEIDAD Y LA
ESTABILIDAD
DISTINCIÓN
Recomendaciones generales
Una Variedad será considerada distinta si se distingue claramente de cualquier otra
variedad cuya existencia, en la fecha de presentación de la solicitud, sea notoriamente
conocida (UPOV, 1991).
Diferencias consistentes
Las diferencias observadas entre variedades pueden ser tan evidentes que no sea
necesario más de un ciclo de cultivo. Asimismo, en algunas circunstancias, la influencia del
medio ambiente no reviste la importancia suficiente como para requerir más de un único
ciclo de cultivo con el fin de garantizar que las diferencias observadas entre variedades son
suficientemente consistentes. Una manera de garantizar que una diferencia en un carácter,
observada en un ensayo en cultivo, sea lo suficientemente consistente es examinar el
carácter en al menos dos ciclos de cultivo independientes.
Diferencias claras
Determinar si una diferencia entre dos variedades es clara depende de muchos
factores y, para ello se tendría que considerar, en particular, el tipo de expresión del carácter
que se esté examinando, es decir, si éste se expresa de manera cualitativa, cuantitativa o
pseudocualitativa.
HOMOGENEIDAD
Una variedad será considerada homogénea si es suficientemente uniforme en sus
caracteres esenciales y discriminatorios. (Código Ingenio, 2016)
182
Para la evaluación de la homogeneidad, deberá aplicarse una población estándar del
1% y una probabilidad de aceptación del 95%, como mínimo. En el caso de un tamaño de
muestra de 6 plantas y 9 plantas, se permitirá una planta fuera de tipo.
ESTABILIDAD
En la práctica no es corriente efectuar exámenes de la estabilidad que brinden
resultados tan fiables como los obtenidos en el examen de la distinción y la homogeneidad.
No obstante, la experiencia ha demostrado que en muchos tipos de variedades, cuando una
variedad haya demostrado ser homogénea, también podrá considerarse estable.
Cuando corresponda, o en caso de duda, la estabilidad podrá examinarse ya sea
cultivando una generación adicional, ya sea examinando una nueva reserva de plantas, para
asegurarse de que presenta los mismos caracteres que el material suministrado
anteriormente.
MODO DE AGRUPAR LAS VARIEDADES Y ORGANIZACIÓN DE LOS
ENSAYOS EN CULTIVO
El modo de agrupar las variedades contribuye a la selección de las variedades
notoriamente conocidas que se han de cultivar en el ensayo con las variedades candidatas y
a la manera en que estas variedades se dividen en grupos para facilitar la evaluación de la
distinción.
Los caracteres de agrupamiento son aquellos en los que los niveles de expresión
documentados, aun cuando hayan sido registrados en distintos lugares, pueden utilizarse,
individualmente o en combinación con otros caracteres similares: a) para seleccionar las
variedades notoriamente conocidas que puedan ser excluidas del ensayo en cultivo utilizado
para el examen de la distinción; y b)para organizar el ensayo en cultivo de manera tal que
variedades similares queden agrupadas conjuntamente.
Ha habido acuerdo sobre la utilidad de los siguientes caracteres de agrupamiento:
183
Fruto: forma en vista lateral (carácter 31)
Fruto: segmentación de la superficie (carácter 35)
Fruto: protuberancias en la superficies (carácter 36)
INTRODUCCIÓN A LA TABLA DE CARACTERES
Categorías de caracteres
1. Caracteres estándar de las Directrices de Examen.
Los caracteres estándar de las Directrices de Examen son aquellos que han sido
aprobados por la UPOV para el examen DHE y de los cuales los miembros de la
Unión pueden elegir los que convengan para determinadas circunstancias.
2. Caracteres con asterisco.
Los caracteres con asterisco (señalados con *) son los caracteres incluidos en las
Directrices de Examen que son importantes para la armonización internacional de las
descripciones de variedades y que deberán utilizarse siempre en el examen DHE e
incluirse en la descripción de la variedad por todos los miembros de la Unión,
excepto cuando el nivel de expresión de un carácter precedente o las condiciones
medioambientales de la región lo imposibiliten.
Niveles de expresión y notas correspondientes.
Se atribuyen a cada carácter niveles de expresión con el fin de definir el carácter y
armonizar las descripciones. A cada nivel de expresión le corresponde una nota numérica
para facilitar el registro de los datos y la elaboración y el intercambio de la descripción.
Tipos de expresión
En la Introducción General figura una explicación de los tipos de expresión de los
caracteres (cualitativo, cuantitativo y pseudocualitativo).
Variedades ejemplo
En caso necesario, se proporcionan ejemplos de variedades en las Directrices de
Examen con el fin de aclarar los niveles de expresión de un carácter.
Leyenda
184
(*) Carácter con asterisco
(QL) Carácter cualitativo
(QN) Carácter cuantitativo
(PQ) Carácter pseudocualitativo
(a) Rama, (b) Hoja, (c) Flor, (d) Fruto.
(+) Caracteres individuales
DESCRIPTOR DE: CHIRIMOYO, Annona cherimola Mill.
NOMBRE PROPUESTO:
La siguiente descripción corresponde a observaciones efectuadas en:
PROVINCIA:
LOCALIDAD:
DEPARTAMENTO:
LATITUD:
LONGITUD:
ALTURA SOBRE EL NIVEL DEL MAR:
Las evaluaciones y mediciones de los respectivos caracteres se realizarán de acuerdo a las
observaciones anotadas en cada uno de ellos, basados en la tabla de caracteres y leyenda
respetivamente
No. Nacional
Carácter Nivel de
expresión Nota
Variedades ejemplo
Observación carácter
1 QN
ÁRBOL: Altura
Se evaluará la
altura del árbol
Pequeño
3 (≤ 2 m)
Se observará el
color de las
ramas jóvenes de Mediano
5 (2.5 m)
185
cuando empiece
la floración
5 plantas para la
presente
evaluación
(mínimo 3
máximo 5)
Grande 7 (≥ 3
m)
2 QN a RAMA:
Longitud del entrenudo
Corto
3
Se determinará
tomando 5 ramas
de 5 plantas para
la presente
evaluación
(mínimo 3
máximo 5)
Medio
5
Largo 7
3 PQ a RAMA: Color
Verde grisáceo 1
Se observará el
color de las
ramas jóvenes de
5 plantas para la
presente
evaluación
(mínimo 3
máximo 5)
Gris 2
Marrón 3
4 QL a RAMA:
Pubescencia
Ausente
1
Se observará
186
6 QN b HOJA: Anchura
Estrecho
3 (≤ 10 cm)
Se evaluará la
hoja adulta,
tomando 5 hojas
de 5 plantas para
la presente
evaluación
(mínimo 3 máximo
5)
Medio
5 (11.5 cm)
Ancho 7 (≥ 13
cm)
7 QN b HOJA: Relación
Longitud/Anchura
Pequeña
A 3 (≤ 8
cm)
B (≤ 10 cm)
Se evaluará
tomando 5 hojas
de 5 plantas para
la presente
evaluación
Medio 5 (14
cm) (11.5 cm)
Grande 7 (≥ 20
cm) (≥ 13 cm)
Presente 9
tomando 5 plantas
para la presente
evaluación (mínimo
3 máximo 5)
5 QN b HOJA:
Longitud
Corto 3 (≤ 8 cm)
Se evaluará las
hojas adultas,
tomando 5 hojas de
5 plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo 5)
Medio 5 (14 cm)
Largo 7 (≥ 13
cm)
187
(mínimo 3 máximo
5)
8 (*) (+)
PQ b HOJA: Forma
Oval ancha 1
Se determinará
tomando 5 hojas de
5 plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo 5)
Oval 2
Oval estrecha 3
Lanceolada 4
QN b
HOJA: Color verde (haz)
Claro 3
Se evaluará
tomando 5 hojas de
5 plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo 5)
Medio 5
Oscuro 7
10 QN b HOJA: Color verde (envés)
Claro 3
Se determinará
tomando 5 hojas de
5 plantas para la
presente evaluación
Medio 5
Oscuro 7
188
(mínimo 3 máximo 5)
11 QL b HOJA:
Pubescencia (haz)
Ausente
1
Se determinará
tomando 5 hojas de
5 plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo 5)
Presente 9
12 QN b HOJA:
Pubescencia (envés)
Ausente
1
Se determinará
tomando 5 hojas de
5 plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo 5)
Presente 9
13 QN b HOJA:
Ondulación de la lámina foliar
Plana
1
Se determinará
tomando 5 hojas de
5 plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo 5)
Ondulada 2
189
14 QN b HOJA: Forma del ápice de la lámina foliar
Aguda 1
Se determinará
tomando 5 hojas de
5 plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo 5)
Atenuada 2
Cordada 3
15 QN b HOJA: Forma de
la base de la lámina foliar
Aguda 1
Se determinará
tomando 5 hojas de 5
plantas para la presente
evaluación (mínimo 3
máximo 5)
Atenuada 2
Cordada 3
Redondeada 4
16 QN b PECIOLO: Longitud
Claro 3 (≤ 6 mm)
Se evaluará tomando
5 hojas de 5 plantas
para la presente
evaluación (mínimo 3
máximo 5)
Medio 5 (9 mm)
Oscuro 7 (≥ 12 mm)
17 QN b PECIOLO:
Grosor
Delgado 3 (≤ 0.3
cm)
Se determinará Medio 5 (0.4 cm)
190
18 QN c
RAMA FLORAL:
Densidad de flores
Laxa
3
Se evaluará la rama
floral, tomando 5
ramas de 5 plantas
(mínimo 3 máximo 5)
Medio
5
Densa 7
Grueso 7 (≥ 0.5
cm)
tomando 5 hojas de 5
plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo 5)
19 PQ c PÉTALO: Color
Verde 1
Se evaluará el color
exterior de los
pétalos, tomando 5
flores de 5 plantas
(mínimo 3 máximo 5)
Amarillo
2
Marrón claro 3
20 PQ c PÉTALO: Color
Claro 1
Se evaluará el color
de la base interna de
los pétalos, tomando
5 flores de 5 plantas
(mínimo 3 máximo 5)
Medio 2
Oscuro 3
191
22 QN c PÉTALO: Anchura
Estrecho
3 (≤ 0.5 cm)
Se evaluará la
anchura del pétalo
cuando esté
abierto, tomando 5
flores de 5 plantas
(mínimo 3 máximo
5)
Medio
5 (0.75 cm)
Ancho 7 (≥ 1 cm)
23 QN c PÉTALO: Relación
Longitud/Anchura
Pequeño
A 3 (≤ 1
cm)
B (≤ 0.5 cm)
Se evaluará
tomando 5 flores
de 5 plantas
(mínimo 3 máximo
5)
Medio 5 (2.5
cm) (0.75 cm)
Grande 7 (≥ 4 cm)
(≥ 1 cm)
21 QN c PÉTALO: Longitud
Corto 3 (≤ 1 cm)
Se determinará
tomando 5 hojas de
5 plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo 5)
Medio 5 (2.5 cm)
Largo 7 (≥ 4 cm)
24 QN c
PÉTALO: Torsión
inmediatamente antes de la
antesis
Débil 3
Se evaluará
tomando 5 flores de
192
Medio 5 5 plantas (mínimo 3
máximo 5)
Fuerte 7
25 PQ c PÉTALO: Curvatura
débil 3
Se evaluará
tomando 5 flores de
5 plantas (mínimo 3
máximo 5)
Medio 5
Fuerte 7
26 QN
PÉTALO:
Pubescencia
Ausente
1
De acuerdo a la
pubescencia del
pétalo se evaluará
tomando 5 flores de
5 plantas (mínimo 3
máximo 5)
Presente 9
27 QN c
SÉPALO:
Pubescencia
Ausente
1
Se observará el sépalo y
de acuerdo a la
magnitud de la
pubescencia se
Presente 9
193
calificará tomando 5
flores de 5 plantas
(mínimo 3 máximo 5)
28 QN c PEDÚNCULO:
Longitud
Corto 3 (≤ 1 cm)
Se evaluará la longitud
del pedúnculo de la flor
cuando esté abierta,
tomando 5 flores de 5
plantas (mínimo 3
máximo 5)
Medio 5 (1.5 cm)
Largo 7 (≥ 2 cm)
29 QN d FRUTO: Longitud
Corto
3 (≤ 10
cm)
Se evaluará el color
exterior de los pétalos,
tomando 5 flores de 5
plantas (mínimo 3
máximo 5)
Medio
5 (12 cm)
Largo
7 (≥ 14 cm)
30 QN d
FRUTO: Diámetro en
sección transversal
Pequeño 3
Se determinará
tomando 3 frutos de 5
plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo 5
plantas)
Medio 5
Grande 7
194
31 (*) (+)
PQ d FRUTO: Forma en vista lateral
Circular 1
Se determinará
tomando 3 frutos
de 5 plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo 5
plantas)
Cordiforme 2
Cónico 3
Cónico ancho 4
Trapezoidal 5
32 QL d FRUTO: Brillo
de la epidermis
Ausente
1
Se determinará tomando
3 frutos de 5 plantas
para la presente
evaluación (mínimo 3
máximo 5 plantas)
Presente 9
33 (*)
PQ d FRUTO: Color
de la epidermis
Verde amarillo pálido
1
Se determinará tomando
3 frutos de 5 plantas
para la presente
evaluación (mínimo 3
máximo 5 plantas)
Verde pálido 2
Verde grisáceo 3
195
34 QN d FRUTO: Grosor
de la corteza
Delgada
3 (≤ 0.36 cm)
Se evaluará el
grosor de la
corteza con los
siguientes
parámetros
tomando 3 frutos
de 5 plantas para
la presente
evaluación (mínimo
3 máximo 5
plantas)
Medio
5 (1.85 cm)
Gruesa 7 (≥ 3.33
cm)
35 (*) (+)
QL d FRUTO:
Segmentación de la superficie
Reticular
1
Se determinará tomando
3 frutos de 5 plantas
para la presente
evaluación (mínimo 3
máximo 5 plantas)
Solapada 2
36 (*) (+)
QN d FRUTO:
Protuberancia en la superficie
Ausente o muy pequeña
1
Se determinará tomando
3 frutos de 5 plantas
para la presente
evaluación (mínimo 3
Pequeña 3
Media 5
196
37 PQ d HOJA: Anchura
Blanco
1
Se determinará
tomando 3 frutos
de 5 plantas para
la presente
evaluación
(mínimo 3
máximo 5 plantas)
Crema 2
38 QN d
FRUTO:
Firmeza de la
pulpa
Blanda
A
3 (≤ 3N)
B
≤ 17 lib/pulg4
Se determina
sobre una porción
de la pulpa, de la
que previamente
se ha retirado la
piel y cuidando de
no tocar la
semilla, utilizando
un penetrómetro
(embolo 6 mm) y
el resultado se
expresa en N
(Newton).
Media 5 (4N) 22..5
lib/pulg4
Firme 7 (≥ 5N) ≥ 28
lib/pulg4
39 QN d FRUTO:
Cantidad de
Grande 7
máximo 5 plantas)
197
fibra Poca
3
Se determinará
tomando 3 frutos de
5 plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo
5plantas)
Media
5
Mucha 7
40 QN d FRUTO:
Cantidad de lóculo óseo
Pequeña
3
Se determinará
tomando 3 frutos
de 5 plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo 5
plantas)
Media
5
Alta 7
41 QN d FRUTO:
Suculencia de la pulpa
Baja 3
Se determinará
tomando 3 frutos
de 5 plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo 5
plantas)
Media 5
Alta 7
42 QN d FRUTO:
Contenido de sólido soluble
Bajo 3 (≤ 14°
Brix)
e determina
tomando 3 frutos
de 5 plantas para la Medio 5 (19° Brix)
198
Altoo 7 (≥ 24°
Brix)
presente evaluación
(mínimo 3 máximo
5plantas). De
acuerdo a la norma
NTE INEN 2475
43 QN d FRUTO: Acidez
Baja
3 (≤ 4.3 g)
Se determinará
tomando 3 frutos
de 5 plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo 5
plantas)
Media
5 (4.5 g)
Alta 7 (≥ 4.8 g)
44 QN d FRUTO: Aroma
Débil 3
Se tomará 5 frutos al
azar (mínimo 3
máximo 5 frutos)
Medio 5
Fuerte 7
45 QN d FRUTO: Número
de semillas
Bajo 3 (≤ 39
semillas)
Se determina
tomando 3 frutos
de 5 plantas para la
presente evaluación
(mínimo 3 máximo
5plantas). De
Medio 5 (40
semillas)
Altoo 7 (≥ 50
semillas)
199
48 QN
SEMILLA:
Relación entre
la longitud y la
anchura
Pequeño
A 3 (≤ 1
cm)
B (≤ 0.9 cm)
Se evaluará
tomando 5 frutos al
azar (mínimo 3
máximo 5)
Medio 5 (1.5
cm) (0.1 cm)
Grande 7 (≥ 2 cm) (≥ 1.3 cm)
acuerdo a la norma
NTE INEN 2475
46 QN SEMILLA: Longitud
Corta
3 (≤ 1 cm)
La longitud de la
semilla se evaluará de
acuerdo a los
siguientes
parámetros, tomando
3 frutos de 5
plantas(mínimo 3
máximo 5 plantas)
Media
5 (1.5 cm)
Larga 7 (≥ 2 cm)
47 QN SEMILLA: Anchura
Estrecha 3 (≤ 0.9
cm)
Se evaluará la anchura de la semilla de acuerdo a los siguientes parámetros, tomando 3 frutos de 5 plantas(mínimo 3 máximo 5 plantas)
Media 5 (1 cm)
Ancha 7 (≥ 1.3
cm)
200
49 QL
SEMILLA: Brillo
Ausente
1
Se evaluará
tomando 5 frutos al
azar (mínimo 3
máximo 5)
Presente 9
50 QN SEMILLA:
Adherencia a la pulpa
Débil
3
La adherencia de la
pulpa a la semilla se
determinará de acuerdo
a la presión con los
dedos que se someta la
pulpa/semilla, tomando
5 frutos al azar (mínimo
3 máximo 5)
Media
5
Fuerte 7
51 QN
Época de
madurez para la
cosecha
Temprana 3 (6 meses)
Se evaluará la anchura de la semilla de acuerdo a los siguientes parámetros, tomando 3 frutos de 5 plantas(mínimo 3 máximo 5 plantas)
Media 5 (7 meses)
Tardía 7 (≥ 8
meses)
52 QL
Defoliación al
final dela
Parcial
1
Se evaluará el nivel
201
EXPLICACIONES DE LA TABLA DE CARACTERES
Los caracteres que contienen la siguiente clave en la columna de caracteres se examinarán
tal como se indica a continuación.
(a) RAMA: las observaciones de la rama de un año deberán efectuarse en el tercio
medio de las ramas de un año durante la estación de latencia.
(b) HOJA: las observaciones de la hoja se realizará en hojas plenamente desarrolladas
del tercio medio de una rama de la estación en curso.
(c) FLOR: las observaciones de las flores se efectuarán en el momento de la floración
en que comiencen a separarse los pétalos.
(d) FRUTO: las observaciones del fruto se efectuarán en frutos en la época de madurez
para la cosecha.
8. (*)(+) (b) HOJA: Forma
fructificación
Total 9
de defoliación al final
de la cosecha
Fuente: Directriz UPOV 2003 TG/208/1
202
9. (b) HOJA: Color verde (haz)
13. (b) HOJA: Ondulación de la lámina foliar.
3 Claro 7 Oscuro 5 Medio
Fuente: Directriz UPOV 2003 TG/208/1
+del+chirimoyo&tbm=isch&tbs=rimg:CRf69jt5_1XFnIjjwxSPQSQTwULc4
lqKeHnMuOSSSTfUtdefLyWFz_1RFEPmHhQQ6nKlP7F6b3M8xi7SCgU4
fD2BW4AioSCfDFI9BJBPBQEWnLPOsuavlyKhIJtziWop4ecy4RLirStJe4z
-YqEgk5JJJN9S115xFM3vapvzC9vSoSCcvJYXP9EUQ-
EXcm6LY1ZdeFKhIJYeFBDqcqU_1sRVCBjBMprb0oqEgkXpvczzGLtIBE
XMlENkbJ1hSoSCaBTh8PYFbgCEaQyKvRo5MWI&imgrc=F_r2O3n9cWf
oWM:
1 Plana 2 Ondulada
Fuente: INIAP Programa de fruticultura EEA (Duchi 2016)
1 Ovada 2 Elíptica 3 Obovada 4 Lanceolada
Fuente: INIAP Programa de fruticultura EEA (Duchi 2016)2016)
203
14. (b) HOJA: forma del ápice de la lámina foliar
15. (b) HOJA: forma de la base de la lámina foliar
19. (c) PÉTALO: Color
25. (c) PÉTALO: Curvatura
1 Verde 2 Amarillo 3 Marrón claro
Fuente: Directriz UPOV 2003 TG/208/1
1 Agudo 2 Redondo 3 Acuminado
Fuente: INIAP Programa de fruticultura EEA (Duchi 2016)
1 Aguda 2 Redondeada 3 Obtusa 4 Acorazonada
Fuente: INIAP Programa de fruticultura EEA (Duchi 2016)
204
26. (c) PÉTALO: Pubescencia
31. (*) (+) (d) FRUTO: Forma en vista lateral
32. (d) FRUTA: Brillo de la epidermis
3 Débil 5 Medio 7 Fuerte
Fuente: Directriz UPOV 2003 TG/208/1
1 Ausente 9 Presente
Fuente: Fuente: Directriz UPOV 2003 TG/208/1
Fuente: Directriz UPOV 2003 TG/208/1
205
35. (*)(+) (d) FRUTO: Segmentación de la superficie
36. (*) (+) (d) FRUTO: Protuberancia en la superficie
1 Ausente 9 Presente
Fuente: Manual técnico de la chirimoya
Fuente: Directriz UPOV 2003 TG/208/1
Fuente: Directriz UPOV 2003 TG/208/1
206
37. (d) FRUTO: Color de la pulpa
49. SEMILLA: Brillo
1 Ausente 9 Presente
Fuente: https://www.google.com.ec/search?q=color+de+la+pulpa+del+chirimoya&source=lnms&tbm=isch&sa=X&ved=0ahUKEwjC
7pPB5PLUAhUIQSYKHVrLACsQ_AUIBigB&biw=1525&bih=709#tbm=isch&q=semilla+del+chirimoya&imgrc=eqEsyxG
xj9_JBM:
1 Blanco 2 Crema Fuente: Directriz UPOV 2003 TG/208/1
_n_DvM:
207
Anexo 2
INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES AGROPECUARIAS
ESTACIÓN EXPERIMENTAL DEL AUSTRO
PROTOCOLO DE INVESTIGACIÓN Y DESARROLLO
PROGRAMA DE FRUTICULTURA
TITULO DE LA ACTIVIDAD: Evaluación de la sintomatología
producida por deficiencia de macro y
micro elementos en plantas de chirimoya
en condiciones hidropónicas bajo
invernadero
LOCALIZACIÓN DE LA
ACTIVIDAD:
Estación Experimental del Austro
RESPONSABLES DE LA
ACTIVIDAD: Ing. Agr. M. Sc. Carlos Feicán Mejía, Ing.
Quim. Pedro Guerrero.
EQUIPO MULTIDISCIPLINARIO: Ing. Agr. Pablo Viteri. Dr. Yamil
Cartagena INIAP EESC, Dr. Manuel
Carrillo INIAP EEP.
COLABORADORES DE LA
INVESTIGACIÓN (Externos): Dr. Gilberto Nava EMBRAPA Brasil
FECHA DE INICIO DE LA
ACTIVIDAD:
Diciembre 2018
FECHA DE TÉRMINO DE LA
ACTIVIDAD:
Octubre 2019
PRESUPUESTO: 8022,21
TITULO DEL PROYECTO: Generación de investigación, desarrollo e
innovación en la Estación Experimental
del Austro
ÁREA DE INVESTIGACIÓN: Incremento de la Productividad
LINEA DE INVESTIGACIÓN: Nutrición de frutales
208
1. Antecedentes
La chirimoya pertenece a la familia de las Annonaceae, que es diversa dentro de las
Magnoliales con aproximadamente 110 géneros y 2 400 especies, 900 de las cuales se
encuentran en el neotrópico (México y parte de California, toda Centro América, las
Antillas y Sud América: Venezuela, Colombia Guyana, Ecuador, Perú y Brasil) (Chatrou.
LW; Pirie. MD.; Erkens. RHJ; Couvreur. TLP; Neubig. KM.; Abbott. JR.; Mols. JB.; Maas.
JW.: Saunders. RMK.; Chase. MW.; 2012).
Las frutas de chirimoya tienen excelentes cualidades organolépticas y nutritivas, por
ser rica en fibra, minerales y vitaminas del grupo B y C. El interés en la chirimoya y otras
especies de Annonaceae se ha incrementado en los últimos años debido a la presencia de
acetogeninas, compuestos que se encuentran solo en esta familia con propiedades
citotóxicas, antitumorales, antipalúdicas y plaguicidas (Alaly. FQ. Liu. X.; McLaughlin.
JL.; 1999), (Liaw. C.; Wu. TY. Chang. FR.; Wu. YC.; 2011).
Las especies del género Annona, inclusive la Annona chirimola, Mill., se habitúan a
suelos de diferentes texturas: arenosos, arcillosos, limo-arenosos; ligeros profundos, con
materia orgánica, bien drenados, que posibiliten una buena aireación de las raíces, también
crecen en suelos pedregosos, compactos e impermeables. Las condiciones óptimas de pH se
encuentran entre 6 a 7.5 y con contenidos en carbonato de calcio total inferiores al 7%,
(Rossell. Galán. & Hernádez. 1997).
Los requerimientos de elementos minerales y los niveles de extracción de nutrientes
son aún incipientes; las diferencias en cantidades y formas de aplicación, en el campo se
observan, ya que existe una serie de deficiencias que no están claramente establecidas pero
influyen en el rendimiento y calidad de la fruta (Feicán, 2015)
La sintomatología visual es la primera herramienta disponible para conocer la
209
situación nutricional de una planta y la identificación de los signos de falta de determinado
nutriente. Esta técnica es rápida y efectiva, pero requiere de mucha experiencia en el manejo
de un cultivo. En el caso de algunos nutrientes, los síntomas de deficiencias son muy
semejantes, haciendo aún más complicado su diagnóstico (Sierra, 2003).
Para aproximarse a una descripción de los síntomas de deficiencias de nutrientes en
plantas, se emplea la técnica del elemento faltante y/o aditivo, que es un procedimiento
rápido para la detección de carencias, el cual incluye el uso de plantas indicadoras bajo
condiciones de invernadero o campo (Sánchez, 1981).
El reconocimiento de los síntomas producidos por carencias y deficiencias
nutricionales es muy útil para proporcionar a los árboles los elementos que en un momento
determinado estén limitando su crecimiento y producción. También permite distinguir entre
enfermedades fisiológicas y patológicas, (Barrera. 1995)
Esta sintomatología debe estar apoyada por análisis químicos de suelo y foliares, ya
que permitan determinar la cantidad de macro y micro nutrientes existentes en el suelo y en
los tejidos foliares como indicadores del grado de nutrición de las plantas y descartar la
posibilidad de trastornos causados por la carencia o sobredosis de los elementos minerales
esenciales. (Feicán. 2001).
El diagnóstico foliar asume una importancia real, considerando que, las hojas son los
órganos de los vegetales más utilizados en el diagnóstico por mejor reflejarse el estado
nutricional, es decir, responden más a las variaciones en el suministro de los minerales, sea
por el suelo, o por el nutriente empleado. (Akashi Wilson, Shigueru, Takahashi A. 2010).
De acuerdo con Silva. (1998), el principio del análisis del estado nutricional es que el
elemento esencial esté presente en una concentración suficiente para su crecimiento,
desarrollo y producción. Por otro lado, las informaciones sobre metodología de muestreo y
diagnóstico nutricional son escasas para las anonáceas, razón por la cual, es importante el
210
aplicar la metodología del elemento faltante, que permitirá reconocer las deficiencias
nutrimentales en chirimoya y generar documentación descriptiva y fotográfica que
contribuya a un mejor manejo de la nutrición.
2. Justificación
La chirimoya es un frutal con alto potencial comercial, que ha sido poco estudiada en
diferentes aspectos relacionados con el manejo agronómico y aún menos en lo referente a la
nutrición del cultivo, que conlleva a producir en campo alteraciones nutricionales que se
manifiestan por deficiencia de macro y micro nutrientes esenciales, que afectan el desarrollo
normal de las plantas, así como, el rendimiento y calidad de la fruta.
La presente investigación nos permitirá mediante el uso de la metodología del
elemento faltante, describir y fotografiar cada una de las deficiencias, de tal manera que
puedan ser plasmadas en un documento que sirva de guía para su reconocimiento y
corrección oportuna en las plantaciones de los valles interandinos.
Esta investigación será un aporte importante a los productores de este frutal y el
ambiente, se beneficien del uso racional de los fertilizantes, al seleccionar el que
proporcione los elementos requeridos, aplicados en la cantidad y momento oportunos.
3. Objetivos
3.1. Objetivo General
Determinar y documentar el efecto de la omisión de, macro y micronutrientes en la
presencia de síntomas, en plantas de chirimoya variedad INIAP Fabulosa, en condiciones de
hidroponía bajo invernadero.
3.2. Objetivos Específicos
Evaluar los síntomas del efecto de la deficiencia de nutrientes a nivel foliar y radicular
en plantas de Chirimoya.
211
Estudiar la producción de biomasa y el contenido nutrimental de los tratamientos de
omisión en relación a los tratamientos completo y testigo solo con agua
4. Hipotesis
Ha: La ausencia de un nutriente provoca cambios en la morfología, biomasa y
contenido nutrimental de las plantas de chirimoya.
Ho: La ausencia de un nutriente no provoca cambios en la morfología, biomasa y
contenido nutrimental de las plantas de chirimoya.
5. Materiales y métodos
5.1Características del sitio experimental
5.1.1 Ubicación
La presente investigación se realizará en condiciones de invernadero en la Estación
Experimental del Austro (EEA) del Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuaria
(INIAP), cuyas características climáticas se detallan en las Tablas 1 y 2.
Tabla 1.
Ubicación geográfica del experimento
Ubicación Descripción
Provincia: Azuay
Cantón: Gualaceo
Parroquia: Gualaceo
Localidad: Bullcay
Latitud: 02º51´55´´S
Longitud: 78º46´24´´W
Altitud: 2 230 m s. n. m.
Fuente: Estación Experimental del Austro, 2013
Tabla 2.
Características climáticas de la zona de investigación.
Zona climática Bosque seco Montano bajo
Temperatura promedio 18⁰ C
Precipitación media anual 750 mm/año
212
Humedad relativa promedio 75% Fuente: (Vanegas et al. 2014)
Tabla 3.
Características climáticas del lugar de investigación.
Invernadero Valores
Temperatura media 36⁰ C
Temperatura baja 24⁰ C
Humedad relativa media 61%
Humedad relativa baja 36% Fuente: Estación Experimental del Austro, 2018
5.2 Materiales
5.2.1. Material Biológico
Plantas de chirimoya, Clon INIAP Fabulosa 2015.
5.2.2. Materiales para invernadero Baldes de 20 litros, pomina, libro de campo, cinta métrica, calibrador, spadd, tabla
de colores.
5.2.3. Materiales y equipos para laboratorio
pHmetro, Conductivimetro, Balanza de precisión, Agua destilada, Probeta, Agitador
5.2.3.1 Reactivos:
Fosfato de potasio monobásico, Nitrato de potasio, Nitrato de calcio, Sulfato de
magnesio, Cloruro de potasio, Cloruro de calcio, Fosfato de amonio, Nitrato de amonio,
Sulfato de amonio, Nitrato de magnesio, Fe-EDTA, Ácido bórico, Sulfato ferroso,
heptahidratado, Cloruro de manganeso tetrahidratado, Cloruro de zinc.
5.2.4. Materiales y equipos de Oficina
Calculadora, memoria externa, Computador, Impresora, Papel bond
5.2.5. Materiales y equipos de campo
Etiquetas, tijeras de podar, libreta de campo, esferos gráficos, marcadores, lápiz,
cinta maskin, balanza, navaja, fundas, cámara fotográfica,
5.2.6. Insumos agrícolas
Insecticida (Cipermetrina), Fungicidas (Difenoconazol, Mancoceb, Azufre
micronizado, Penconazol, Metalaxil +Mancoseb y Clorotalonil), Phyton.
5.3. Métodos
5.3.1 Preparación de la solución madre
Se preparará un litro de solución madre: macros (0,5M); micro (1M) y EDTA (0,5M)
para lo cual se empleará los pesos moleculares, la pureza, la densidad y la concentración por
213
litro de cada fuente de fertilizante tabla 4.
Tabla 4
Preparación de soluciones madres (0,5M) para macros
Fuente de fertilizante g/L
KH2PO4 68
KNO3 50,5
Ca(NO3)2.4H2O 118,1
Mg SO4.7H2O 123,7
KCl 37,3
CaCl2 73,5
NH4H2PO4 57,6
NH4NO3 40,0
(NH4)2SO4 66,1
Mg ( NO3) 2.6H2O 128,2
Fuente: Feicán, Guerrero 2018
Para el caso de micronutrientes y EDTA (etilen diamino tetraacetico), se utilizarán las
siguientes cantidades:
La solución de micronutrientes tiene la siguiente composición (g/l): H3BO3, 2,86;
MnCl2.4H2O, 1,81; ZnCl2 0,10.
Se disolverá 26,1 g de EDTA disódico en 286 ml de NaOH 1N, mezclar con 24,9 g de
FeSO4.7H2O. Airear por una noche y completar a 1 litro.
5.3.2. Preparación de soluciones nutritivas según tratamiento
Las soluciones nutritivas según los tratamientos se prepararán de acuerdo a las
concentraciones descritas en el Tabla 5. Se utilizarán los respectivos ml de cada solución
madre y la mezcla de fertilizantes será llevada a 1 litro de solución nutritiva (solución de
214
trabajo).
Tabla 5
Fuentes de fertilizante elemento y cantidades para preparar las soluciones nutritivas.
Fuentes de fertilizante
Soluciones 0,5 M Elementos y dosis (ml)
TC T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T9 T10 TA
-N -P -K -Ca -Mg -S -B -Fe -Mn -Zn
KH2PO4 1 1 1 1 1 1 1 1 1 0
KNO3 5 5 5 3 3 5 5 5 5 0
Ca(NO3)2.4H2O 5 5 5 4 4 5 5 5 5 0
Mg SO4.7H2O 2 2 2 2 2 2 2 2 2 0
KCl 5 1 2 2 0
CaCl2 5 1 1 0
NH4H2PO4 1 0
NH4NO3 2 5 0
(NH4)2SO4 2 0
Mg ( NO3) 2.6H2O 2 0
Micronutrientes 1M 1 1 1 1 1 1 1 0
Fe-EDTA 0,5M 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 0
Micronutrientes -B 1 0
Micronutrientes –Fe 1 0
Micronutrientes –Mn 1 0
Micronutrientes -Zn 1 0 Fuente: Adaptado de Sarruge, 1974 y modificado EEA-
DMSA
5.4. Factores en estudio
En el ensayo de chirimoya se estudiará el factor nutrición utilizando la técnica del
elemento faltante, con 11 elementos.
5.4.1. Tratamientos en estudio
La solución nutritiva utilizada se formuló a partir de los nutrientes y cantidades
215
adaptadas por Sarruge 1974 y modificada por la Estación Experimental del Austro (EEA)
Departamento de Manejo de Suelos y Aguas (DMSA) Tabla 6, la misma que tiene relación
directa con el esquema de tratamientos expresados en la Tabla 5; en la cual se realizan las
mezclas de las diferentes fuentes de fertilización, en las cantidades señaladas en la misma y
expresadas en mililitros.
Tabla 6
Tratamientos del elemento faltante en miligramos por litro.
Trat Código N P K Ca Mg S Zn Fe Mn B
1 TC 105,4 15,49 117,32 100,23 24,41 32,2 0,485 4,98 0,5 0,5
2 -N 0 15,49 117,32 100,23 24,41 32,2 0,485 4,98 0,5 0,5
3 -P 105,4 0 117,32 100,23 24,41 32,2 0,485 4,98 0,5 0,5
4 -K 105,4 15,49 0 100,23 24,41 32,2 0,485 4,98 0,5 0,5
5 -Ca 105,4 15,49 117,32 0 24,41 32,2 0,485 4,98 0,5 0,5
6 -Mg 105,4 15,49 117,32 100,23 0 32,2 0,485 4,98 0,5 0,5
7 -S 105,4 15,49 117,32 100,23 24,41 0 0,485 4,98 0,5 0,5
8 -Zn 105,4 15,49 117,32 100,23 24,41 32,2 0 4,98 0,5 0,5
9 -Fe 105,4 15,49 117,32 100,23 24,41 32,2 0,485 0 0,5 0,5
10 -Mn 105,4 15,49 117,32 100,23 24,41 32,2 0,485 4,98 0 0,5
11 -B 105,4 15,49 117,32 100,23 24,41 32,2 0,485 4,98 0,5 0
12 TA 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Fuente: Feicán, Guerrero 2018
5.4.2. Características del experimento
Número de unidades experimentales: 36
Número de tratamientos: 12
Número de repeticiones: 3
5.4.3. Características de la unidad experimental
El número de plantas por unidad experimental será de una, del clon INIAP fabulosa
de un año de injertadas.
5.4.4. Diseño experimental
Para esta investigación se aplicará un diseño completamente al azar (DCA), donde se
evaluará el efecto del elemento faltante en las características agronómicas del cultivo de
chirimoya.
216
5.4.4.1. Esquema del análisis de varianza del ensayo.
Tabla 7
Esquema del análisis de varianza (ADEVA).
Fuentes de variación Grados de libertad
Total 35
Tratamientos 11
Error Experimental 24
Fuente: Equipo de trabajo de la investigación 2018
5.5. Variables y métodos de evaluación
5.5.1 Altura de la planta:
La medición se realizará desde la base del tallo de la planta hasta el ápice vegetativo,
se utilizará una regla y el resultado se expresará en centímetros. Se tomará al trasplante y
luego cada siete días, durante tres meses.
5.5.2 Diámetro del tallo:
Esta variable se tomará a la altura del injerto, se utilizará un calibrador Vernier y el
resultado se expresará en milímetros. La primera medición se realizará al trasplante y luego
cada siete días, durante tres meses.
5.5.3 Tamaño de hoja:
Se determinará en 3 hojas marcadas de la parte media de la planta por planta. Se
medirá el ancho y largo de las mismas, al trasplante y luego cada siete días, durante tres
meses. El resultado se expresará en cm.
5.5.4 Distancia de entrenudos:
Se determinará midiendo la distancia de los entrenudos de las 3 hojas – previamente
marcadas en la parte media de la planta. Se medirá al trasplante y luego cada siete días,
durante tres meses. El resultado se expresará en cm
5.5.5 Color de las hojas:
Se realizará utilizando la Tabla de Comparación de Colores (TCC), desarrollada por el
IRRI (2003); para ello se evaluará 3 hojas de la parte alta, media y baja de la planta cada 15
días.
217
5.5.6 Diagnóstico visual:
Se registrarán los cambios ya sea de color, forma y tamaño que se vayan presentando
en las hojas y tallos de las plantas en los diferentes tratamientos. Los registros serán diarios
y se utilizará la matriz indicada en el Tabla 8. Para el análisis de deficiencias en las hojas, se
utilizará una escala subjetiva de deficiencia Anexo 1
Tabla 8.
Matriz de calificación para diagnóstico visual.
Fuente: Feicán, Guerrero 2018
5.5.7 Àrea foliar:
De las plantas que se utilizarán para obtener la biomasa, antes de colocarlas en las
fundas de papel, se tomará la parte aérea para la medición del área foliar, utilizando el
siguiente procedimiento:
- Se montará una cámara fotográfica en un soporte a una altura de 0.28 m.
- Se colocará un papel de color rosado de 0.2 x 0.25 m, sobre el cual se pondrá un
vidrio esmerilado de 0.03 m de espesor. Adicionalmente se trazará una escala de 0.02 m.
- Las hojas de la planta se colocarán entre el papel rosado y el vidrio para que se
puedan extender.
- Se tomará la fotografía y con el programa Image J se obtendrá el área foliar en cm2
(Rincón et al., 2012).
Tratamientos Características
Color Forma Tamaño
T1
T2
T3
T4
T5
T6
T7
T8
T9
T10
T11
T12
218
Este procedimiento se realizará al final del experimento, antes de proceder a analizar
el peso freso y seco.
5.5.8 Largo de la raíz:
A los 90 días, se medirá el largo del sistema radicular de cada una de las plantas de
los tratamientos en estudio, se medirá con una regla y se expresará en cm,
5.5.9 Biomasa:
A los 90 días, se registrará el peso fresco de la parte aérea de la planta en una balanza
de precisión marca Shimadzu, luego se colocarán en fundas de papel previamente
identificadas y se secarán en la estufa a una temperatura de 65°C durante 72 horas, hasta
alcanzar un peso constante (peso seco). Los resultados se expresarán en gramos por planta
por tratamiento y se llevará a porcentaje de materia seca (%MS) utilizando la siguiente
fórmula:
%MS= Ps / Pf x 100
Dónde:
%MS = Porcentaje de materia seca.
Ps = Peso seco (g).
Pf = Peso fresco (g).
100 = Constante para expresar en porcentaje.
5.5.10 Peso de la raíz:
A los 90 días, en todos los tratamientos, se extraerán las plantas, se contara la raíz y se
registrará el peso fresco en una balanza de precisión marca Shimadzu, se colocarán en
fundas de papel previamente identificadas y se secará en la estufa a una temperatura de
65°C durante 72 horas, hasta obtener un peso constante (peso seco). Los resultados se
expresarán en gramos por planta por tratamiento y se llevará a porcentaje de materia seca
219
(%MS)
5.5.10 Extracción de nutrientes:
Para determinar la extracción de nutrientes; en el caso del N se utilizará el método
de Semimicro-Kjeldahl; que consiste en someter 0.1 g de muestra a una digestión ácida,
para luego realizar una destilación con NaOH 10 N sobre H3BO3 y una titulación con ácido
sulfúrico. La extracción de N del tejido vegetal se expresará en miligramos por planta y se
determinará con la siguiente formula:
EN= (%N x Ps)/100 x 1000
Dónde:
EN = Extracción de N (mg planta-1).
%N= N obtenido en la determinación utilizando el método Semimicro-Kjeldahl.
Ps = Peso seco (g planta-1).
Para el caso de la extracción de P, K, Ca, Mg, S, Zn, Cu, Fe, Mn, B y Mo se
utilizará el método de digestión húmeda con ácido nítrico perclórico en relación 5:1; para lo
cual se pesará 0.25 g de material vegetal seco y molido y se realizará una digestión nítrica
perclórica y el digestado será leído en el equipo ICP. La extracción de estos elementos se
expresará en miligramos por planta y se calculará con la siguiente fórmula:
EE= (CE x Ps)/1000000 x 1000
Dónde:
EE = Extracción del elemento (mg planta-1).
CE= Concentración total del elemento (mg kg-1).
Ps = Peso seco (g planta-1).
220
5.6. Manejo del experimento
Se utilizarán plantas de chirimoya clon INIAP Fabulosa 2015, injertada de un año de
edad.
Los patrones se plantaron en fundas con un sustrato en la proporción de 8, 4, 2 y 2 de:
suelo negro andino, suelo común, limo y abono orgánico respectivamente, así como también
se ha fertilizado con muriato de potasio y 18-46-00 en dosis de 0.5 gramos por funda.
Las plantas, serán injertadas el mismo día, en un patrón franco de un año de edad,
igualmente serán podadas y se las dejara a una altura uniforme, así como también serán de
un solo eje y se las trasplantará, al lugar del ensayo; las raíces serán lavadas con agua
destilada para remover el máximo posible del suelo adherido a ellas, luego se desinfectará
su sistema radicular y cuello con una mezcla de fungicida y bactericida. Serán plantadas en
los baldes de 20 litros, que tendrán como sustrato pomina, la misma que se cernirá en un
tamiz de 5 mm a fin de obtener partículas con una buena relación entre porosidad y
retención de humedad. Posteriormente se realizará un lavado con ácido clorhídrico 0,01 mol
L-1 y agua destilada en abundancia, se esterilizará para disminuir el riesgo de propagar
enfermedades; al momento del trasplante se compactará suavemente el sustrato y se regará
con agua destilada dos veces al día para mantener la humedad.
Una vez trasplantadas, se regará cada maceta durante los primeros 3 días con dos
riegos diarios solo agua, hasta que las plantas se adapten al nuevo sustrato; y posteriormente
se aplicará la solución nutritiva completa para todas las macetas, con excepción del
tratamiento que solo se lo regara (TA); a partir del séptimo día se procederá a aplicar los
tratamientos con el elemento faltante. Esta solución se utilizará para irrigar con la frecuencia
que esté determinada por la conductividad eléctrica y el pH, manteniendo, el pH entre 6,0 y
6,8 y la conductividad eléctrica entre 1,2 y 2,4 mS.cm-1. Debiendo indicarse que el riego
estará sujeto a la variación de los parámetros pH y conductividad eléctrica, por razones de
221
disponibilidad de macros y micronutrientes y a la cantidad de sales solubilizadas en el
sustrato respectivamente. Indicándose que la medición de estas variables se las realizara en
el sustrato, más nos en la solución percolada.
Se tomarán fotografías una vez por semana de una misma planta en cada uno de los
diferentes tratamientos para analizar el crecimiento y la presencia o ausencia de deficiencias
o excesos de elementos en las plantas.
6. CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES
ACTIVIDADE
S
MESES
1 2 3 4 5 6 7 8 9 1
0
1
1
1
2
1
3
1
4
1
5
1
6
1
7
1
8
1
9
2
0
21
22
1. Elaboración
perfil
2. Control de
invierno
3. Fertilización
7. Poda
4. Fase
vegetativa
5. Fase
productiva
6. Cosecha
7. Toma de
datos
7. Presupuesto
Tabla 9
Presupuesto para el experimento.
Rubro Unidad Cantidad Valor
Unitario
Valor
Total
Equipos y herramientas
Baldes de 25 litros Unidad 40 4.0 160
Piloneras Unidad 2 10 20
Spadd 1 1 4500 4500
Potenciometro 1 1 600 600
Conductivimetro 1 1 400 400
Sutotal A
5680
222
Insumos
Plantas Unidad 33 3.0 99
Pomina o chasqui m3 3 25.0 75.0
Fosfato de Potasio monobásico g 500 37.5 37.5
Nitrato de potasio g 500 24.25 24.25
Nitrato de Calcio g 500 40.0 40.0
Sulfato de magnesio g 500 21.25 21.25
Cloruro de potasio g 500 24.0 24.0
Cloruro de Calcio g 500 27.0 27.0
Fosfato de amonio g 500 45.50 45.50
Nitrato de amonio g 500 22.50 22.50
Sulfato de amonio g 500 30.0 30.0
Nitrato de Magnesio g 500 52.25 52.25
Micronutirntes
Fe-EDTA 24.50 24.50
Micronutrientes -B 30.0 30.0
Micronutrientes –Fe g 500 30.0 30.0
Micronutrientes –Mn g 500 30.0 30.0
Micronutrientes -Zn g 500 30.0 30.0
Subtotal B 1146,75
Rubro
Análisis de materia seca Análisis 33 3.22 106.26
Análisis de contenido de nutrientes Análisis 33 21.43 707.19
Subtotal C
813.45
Subtotal A
5680
Subtotal B 1146,75
Subtotal C 813.45
Subtotal A+B+C 7640,2
Imprevistos (5%)
382.01
TOTAL
8022,21
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Católica de Cuenca.p.6-18.
225
Anexo 1
Escala subjetiva de medición de deficiencias de nutrientes
10% 15% 25% 40%
50% 70% 80% 100%
