0.Toxopla..
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Laboratorio de Toxoplasmosis
Hospital Alemán
Bioquímicos:
Federico Kaufer
Liliana Carral
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Dr Ch.J.H. Nicolle
Ctenodactilus gundiDr A. Splendore
1908
Toxoplasma gondii
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81
60
46
23
435
37
39
46
739
60
43
14
164
15
30
1535
38
37
32
65
45
67
26
32
64
20
57
58
12
55
49
20
84
Prevalencia de anticuerpos anti Toxoplasma gondii
<10 11-20 21-49 > 50
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3742
2572
41
16
20
Prevalencia deanticuerposanti Toxoplasmagondii
<20
21-50
>50
55
50
62
13
52
22
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Esporoquistes
Quistes tisulares
vegetales
agua
Huéspedes intermediarios
(div. asexual)
herbívoros
carnívoros
Huésped definitivo
(div.sexual) felinos
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DINÁMICA DE LA
INFECCIÓN
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Gra4
Gra7
Gra2
Gra6
Rop1
Rop2
Mic1
SAG1SAG2SAG3
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SITUACIONES EN LAS QUE SE DEBE CONTEMPLAR SITUACIONES EN LAS QUE SE DEBE CONTEMPLAR EL DIAGNEL DIAGNÓÓSTICO DE LA TOXOPLASMOSISSTICO DE LA TOXOPLASMOSIS
• Adenopatías: diagnóstico diferencial
• Problemas visuales, uveítis posteriores, lesiones en retina
• Inmunosupresión, viral o inducida: HIV, oncológicos,transplantes
• Embarazada
• Recién nacido
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LINFADENITIS TOXOPLLINFADENITIS TOXOPLÁÁSMICASMICA135 casos - Ganglios
Cervicales 94 %Occipitales 75 %Retroauriculares 52 %Axilares 38 %Supraclaviculares 35 %Submaxilares 29 %Inguinales 12 %
“Toxoplasmic lymphadenitis: clinical and serological profile”.. German Hospital, Buenos Aires, Argentina. Clin. Microbiol. Infect. 2003 Jul; 9(7):625-31
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LINFADENITIS TOXOPLLINFADENITIS TOXOPLÁÁSMICASMICA135 casos - Clínica
• Astenia 62 %• Fiebre 40%• Cefalea 36%• Mialgias 31 %• Artralgias 24 %• Anorexia 24 %
• Esplenomegalia 14%• Odinofagia 15 %• Hepatomegalia 10 %• Eritrodermia 7 %• Dermografismo 2%• Anisocoria 2%
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Linfadenitis:Linfadenitis:distribución por edad y sexo
0
5
10
15
20
25
30
35
3a10 11a15 16a20 21a25 26a30 31a35 36a40 41a45 46a50 >51
fem
masc
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TOXOPLASMOSIS OCULAR
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RETINOCOROIDITIS
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Retinocoroiditis Retinocoroiditis toxopltoxopláásmicasmica• Congénita
• 2ª a 3ª década de vida• Bilateral• Lesiones cicatrizales • Compromiso de la
mácula• Serológicamente:
infección de vieja data
• Adquirida del adulto
• A partir de 4ª década• Unilateral• Ausencia de cicatrices• Sin compromiso macular• Serológicamente:
infección aguda
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Toxoplasmosis ocular aguda y Toxoplasmosis ocular aguda y reactivadareactivada
ComparaciComparacióón edadesn edades
0
5
10
15
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30
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0-10 11-20 21-30 31-40 41-50 51-60 61-70 71-80
e da dnº pacientes
0
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3
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6
7
8
9
10
0-10 11-20 21-30 31-40 41-50 51-60 61-70 71-80
e da dnº pacientes
Edad media : aguda 43 años reactivada 21 años n:268 pacientes
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Toxoplasmosis ocularToxoplasmosis oculardistribución por edad y sexo
0
5
10
15
20
25
0-10 11-20 21-30 31-40 41-50 51-60 61-70 71-80edad
sexo
M F
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Toxoplasmosis Toxoplasmosis :paciente inmunocomprometido
• Pacientes HIV +• Pacientes trasplantados• Enf . de Hodgkin y otros linfomas• Tratamientos inmunosupresores.
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Toxoplasmosis en pacientes trasplantados
Riesgo R- / D+
Cardíaco 50-60%
Hepático 20%
Renal 1%
Médula ósea 1%
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Toxoplasmosis Toxoplasmosis y embarazoy embarazo
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InfecciInfeccióón toxopln toxopláásmica prenatalsmica prenatal
trasmisióndaño fetal
T. ocularProblemasneurológicos
1 2 3 trim. años
15
44
71
No infectados: 50%
Mortinato: 1%
Tx severa: 5%
Tx leve: 17%
Inf. subclínica: 77% 85%
Systematic Review on Congenital Toxoplasmosis (SYROCOT) European Study group. The Lancet 2007; 369:115
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Toxoplasmosis congénita
• Mortinato• Macro/microcefalia• Calcificaciones• Retinocoroiditis• Microftalmia• Nistagmus• Retraso psicomotor• Epilepsia• Sordera
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TOXOPLASMOSIS CONGÉNITA SEVERAEstudio retrospectivo realizado sobre 164 recién nacidos de madres con toxoplasmosis
durante el embarazo NO tratadas. Pediatr Infect Dis J. 2011 Dec;30(12):1056-61.
CLÍNICA
84 % una o mas manifestaciones clínicas
• 92.2 % retinocoroiditis• 79.6 % calcificaciones
cerebrales• 67.7 % hidrocefalia
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TOXOPLASMOSIS CONGÉNITA
Manifestaciones clínicas en recién nacidos con toxoplasmosis congénita en países de Europa con programas de screening
prenatal durante el embarazo
15 ( 5.7 % )43 (16.4 %)262Total
003Eslovenia
3315Italia
4857Austria
827187Francia
Calcificaciones cerebrales %
Lesiones oculares %
Nº de RNPaís
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80 15%
70%
20 15%
20 40 edad
ESTUDIO DE PREVALENCIA- INCIDENCIA A FIN DE ESTIMAR RIESGO DE INFECCIÓN
curvas tipo I y II
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Prevalencia y riesgo fetal
Frenkel;1973
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Prevalencia de Ac. anti Toxoplasma gondiiaños 1967/1992/1997/2002/2007
Hemodonantes- Hospital Alemán
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
15-20
21-25
26-30
31-35
36-40
41-45
46-50
51-55
56-60
> 60
1967
1992
1997
2002
2007
31,932,33637,867,4prevalencia
16001548149619651260N
20072002199719921967año
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Nos tomamos 5 minutos?
![Page 44: 0.Toxopla..](https://reader033.fdocuments.ec/reader033/viewer/2022042606/544ec64cb1af9f27638b50ea/html5/thumbnails/44.jpg)
MetodologMetodologíías as diagndiagnóósticassticas:
-directas- indirectas
![Page 45: 0.Toxopla..](https://reader033.fdocuments.ec/reader033/viewer/2022042606/544ec64cb1af9f27638b50ea/html5/thumbnails/45.jpg)
Giemsa microscopía Inmunofluorescencia Peroxidasa Hibridización in situ Identificación PCR inoculación en ratón Aislamiento cultivo en células
Toxoplasmosis: diagnToxoplasmosis: diagnóóstico por stico por metodologmetodologíía directaa directa
![Page 46: 0.Toxopla..](https://reader033.fdocuments.ec/reader033/viewer/2022042606/544ec64cb1af9f27638b50ea/html5/thumbnails/46.jpg)
Materiales utilizados en metodologMateriales utilizados en metodologíía directa y su a directa y su utilidad clutilidad clíínicanica
L.amniótico, sangre de cordón ó recién nacido
prenatal
L. cefalorraquídeo del sistema nervioso central
lavado broncoalveolar pulmonar
humor acuoso ocular
ganglios linfáticos linfática
placenta presunta PN
cerebro presunta ET
Material : Diagnóstico de toxoplasmosis:
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METODOLOGMETODOLOGÍÍA INDIRECTAA INDIRECTA
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METODOLOGIA INDIRECTA
MÉTODO REACCIÓN
Lisis/tinción Sabin Feldman
AglutinaciónHemaglutinación IndirectaAg. Directa con 2 ME
Isaga IgM IgA IgE
Inmunofluorescencia IgGIndirecta IgM
Enzimoinmunoensayo EIA IgG/IgMDS-Elisa IgM, IgA, IgETest de avidez
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METODOLOGIA INDIRECTA
MÉTODO REACCIÓN
Lisis/tinción Sabin Feldman
AglutinaciónHemaglutinación IndAg. Directa con 2 ME
Isaga IgM IgA IgE
Inmunofluorescencia IgGIndirecta IgM
Enzimoinmunoensayo EIA IgG/IgMDS-Elisa IgM, IgA, IgTest de avidez
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METODOLOGIA INDIRECTA
MÉTODO REACCIÓN
Lisis Sabin Feldman
AglutinaciónHemaglutinación IndirectaAg. Directa con 2 ME
Isaga IgM IgA IgE
Inmunofluorescencia IgGIndirecta IgM
Enzimoinmunoensayo EIA IgG/IgMDS-Elisa IgM, IgA, IgETest de avidez
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METODOLOGIA INDIRECTA
MÉTODO REACCIÓN
Lisis Sabin Feldman
AglutinaciónHemaglutinación IndirectaAg. Directa con 2 ME
Isaga IgM IgA IgE
Inmunofluorescencia IgGIndirecta IgM
Enzimoinmunoensayo EIA IgG/IgMDS-Elisa IgM, IgA, IgETest de avidez
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METODOLOGIA INDIRECTA
MÉTODO REACCIÓN
Lisis Sabin Feldman
AglutinaciónHemaglutinación IndirectaAg. Directa con 2 ME
Isaga IgM IgA IgE
Inmunofluorescencia IgGIndirecta IgM
Enzimoinmunoensayo EIA IgG/IgMDS-Elisa IgM, IgA, IgETest de avidez
![Page 53: 0.Toxopla..](https://reader033.fdocuments.ec/reader033/viewer/2022042606/544ec64cb1af9f27638b50ea/html5/thumbnails/53.jpg)
INSTAND e.V.Institut für Standardisierung und Dokumentation
in medizinischen Laboratorium e.V.Postfach 250211 40093 Düsseldorf 0211(159213-0)
0
50
100
150
200
Abbo
tt
BioM
er
Behr
ing
Euro
gen
Past
eur
Roc
he
Sorin
Abb.2 Toxoplasmose-EIA IgG Ringversuch Mai 2000 Probe 22
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Test de avidez
Cociente de EIA IgG con / sin agente disociante
<20%: Ac. IgG de baja avidez; característicos de fase aguda, pero en algunos casos pueden persistir varios meses
21-30%: avidez intermedia, zona gris
>31%: Ac. IgG de alta avidez; no se forman antes de 3-4 meses post-infección
![Page 55: 0.Toxopla..](https://reader033.fdocuments.ec/reader033/viewer/2022042606/544ec64cb1af9f27638b50ea/html5/thumbnails/55.jpg)
LINFADENITIS TOXOPLÁSMICA - Evolución serológica de 135 pacientes
título1:64000
IsagasSabin Feldman If-IgG
If-IgM E A M
1:256
IDR
10 20 días 6 9 meses 1 2 años
CTHA
Clin
Microbiol
Clin Microbiol Infect. 2003 Jul;9(7):625-31
![Page 56: 0.Toxopla..](https://reader033.fdocuments.ec/reader033/viewer/2022042606/544ec64cb1af9f27638b50ea/html5/thumbnails/56.jpg)
Tipos de anticuerpos en las distintas Tipos de anticuerpos en las distintas etapas de la infeccietapas de la infeccióónn
No detectableMayormente presente.(4 meses)
ISAGA EIgE
No detectablePresente.(7 meses)ISAGA A EIA AIgA
No detectableResiduales
Presente.Duración según técnica (6-12 meses)
IFI M EIA MDS ElisaISAGA M
IgM
Bajos establesBajos establesAlta
Altos o en ascensoConversión tardíaBaja
SF IFI AD EIAHAIAvidez
IgG
Infección crónica
Infección recienteReacción
![Page 57: 0.Toxopla..](https://reader033.fdocuments.ec/reader033/viewer/2022042606/544ec64cb1af9f27638b50ea/html5/thumbnails/57.jpg)
DDiagniagnóóstico de stico de toxoplasmosis agudatoxoplasmosis aguda
5 (24 % )16 ( 76 % )21 ( 100 % )
HAI negativaHAI positivaAvidez débil
21 ( 0.68 %)56 ( 1.8 % )3147
Avidez débilIgM + IgG +
Dr Arienti, Hector Congreso de zoonosis 2006 con permiso.
![Page 58: 0.Toxopla..](https://reader033.fdocuments.ec/reader033/viewer/2022042606/544ec64cb1af9f27638b50ea/html5/thumbnails/58.jpg)
Linfadenitis toxoplásmicaPaciente sexo masculino, 23 años
fecha IDR SF AV IFIM ISAGA M ISAGA A ISAGA E4 dias N 1:16 ND 0 0 S/D S/D1 sna N 1:4000 ND 1:80 1:64000 1:1000 S/D1 mes N 1:4000 B 1:40 1:64000 1:64000 1:256
2meses N 1:16000 B 1:40 1:64000 1:16000 1:645meses 1:16000 A 0 1:4000 1:64 015meses P 1:4000 0 0 0
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TOXOPLASMOSIS OCULARSEROLOGIA
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Retinocoroiditis toxoplRetinocoroiditis toxopláásmica:smica:serologserologííaa
Primoinfección Reactivación sangre
IgG >1:1000 <1:256IgM 95% negativoIgA 90% 14%IgE 95% 18%
humor acuosoCoeficiente C 41% 81%
PCR 37% 4-16%
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Concordancia serológica y clínica
0102030405060708090
100% coincidencia clínica-serologia
aguda reactivada inactiva
no coincide coincide
Concordancia : 90 % N:268 pacientes, CTHA año 2005
Aguda: Sabin Feldman>=1/1000;ISAGA-M positivaReactivada y crónica: SF <= 1/256; ISAGA-M: negativa
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Reactivación clínica y serológica de una
coriorretinitis Paciente de sexo femenino,54 años
Fecha SF FC IFIM ISAGA M ISAGA A ISAGA E
15/12/92 1:1000 1:508/07/93 1:64 0 0 015/07/94 1:4000 0 >1:25625/07/94 1:16000 20 1:64000 1:64000 1:25606/10/94 1:16000 0 1:4000 1:4000 009/02/95 1:4000 1:20 0 0 1:256 0
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PACIENTES INMUNOCOMPROMETIDOS
CONTROL SEROLÓGICO
NEGATIVO POSITIVO
Riesgo de infección Riesgo de reactivación
Medidas de prevención primaria Recuento de CD4 < de 150 cel/mm3
Control serológico periódico
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ToxoplasmosisPacientes HIV+ Encefalitis
Sabin Feldman
NEGATIVOVPN 99,7 %
POSITIVOIgG ≥ 1:256 + <150cel/ mm3 VPP 88%Isaga IgM 12%Isaga IgA 38%Isaga IgE 25%
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Paciente HIV+, sexo masculino, 32 años
• 4/10 sindrome gripal
• 3/2 diagnóstico HIV. Tratamiento
• 24/2 fiebre prolongada, anemia, transfusiones, lipotimias. • Adenopatías cervicales, diagnóstico Toxoplasmosis. Tratamiento • Sabin Feldman 1/16000, ISAGA M 1/64, A 1/64, E 1/16, AV.63 %
• Sindrome hemofagocítico
• 4/3 Histopatología confirma Toxoplasmosis
• Fallecimiento del paciente
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Toxoplasmosis Toxoplasmosis y embarazoy embarazo
SEROLOGIASEROLOGIA
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Prevención de la infección toxoplásmica congénita:
• Primaria: Evitando la exposición durante el embarazo.
• Secundaria: Exámenes serológicos y eventual tratamiento durante el embarazo
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Profilaxis primaria•• IngestiIngestióón de carne bien cocida (incluye n de carne bien cocida (incluye molmolúúscosscos
bivbiváálvoslvos))
•• No ingerir vegetales crudos cuando no se pueda No ingerir vegetales crudos cuando no se pueda asegurar que fueron bien lavadosasegurar que fueron bien lavados
•• Lavado de manos luego de manipular carne cruda o Lavado de manos luego de manipular carne cruda o vegetales frescosvegetales frescos
•• Limpieza de las superficies y utensilios de cocina que Limpieza de las superficies y utensilios de cocina que tuvieron contacto con carne crudatuvieron contacto con carne cruda
•• Si realiza trabajos de jardinerSi realiza trabajos de jardineríía, usar guantes y luego a, usar guantes y luego lavarse las manoslavarse las manos
•• Evitar contacto con excretas de gato.Evitar contacto con excretas de gato.
•• LavadoLavado de manos antes de ingerir alimentosde manos antes de ingerir alimentos..
![Page 70: 0.Toxopla..](https://reader033.fdocuments.ec/reader033/viewer/2022042606/544ec64cb1af9f27638b50ea/html5/thumbnails/70.jpg)
Control prenatal y seguimiento del recién nacido
Ampliación de estudio:IFI-M, Isaga-A, isaga-ETest de avidez
Probable infección reciente
POSITIVAPOSITIVA
No más controlesSin riesgos para el fruto
Infección de vieja data
NEGATIVAPOSITIVA
Controles al 2º y 3º trimestre y parto
Medidas de prevención primaria
Ausencia de infección óperíodo pre-serológico
NEGATIVANEGATIVA
SEGUIMIENTOCONDUCTADIAGNÓSTICOISAGA-MSF
Protocolo control Toxoplasmosis y embarazo:
Primer trimestre
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TOXOPLASMOSIS PRENATAL Diagnóstico por metodología directa
en líquido amniótico:S (%) E (%)
PCR 59 - 80 94 - 100
Aislamiento 41 - 74 100
PCR + Aislamiento 81 - 91
en placenta: 40- 60 sangre de cordón 50- 70
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Perfil serológico del recién nacido
materna
Prenatal:15 días.sangre
Infecciónmás decon
IndicioPersistePareada
negativanegativanegativanegativanegativa al año de vida
NO infectado
50-67%78-90%75-85%25%positiva al año confirma
Recién nacido infectado
ISAGA EISAGA AISAGA MIFI MIgG
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Recién nacido
120012001100110010001000900900800800700700600600500500400400300300200200100100
2048204810241024512512256256128128646432321616884422
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 2 3 4 5 6 7 8 9 10 111
IgG
Ig
G m
gm
g/ 1
00 m
l/ 1
00 m
l
DYE
TES
T TI
TER
DYE
TES
T TI
TER
meses
mgmg IgG totales por ml.IgG totales por ml.ConcentraciConcentracióón de anticuerpos especn de anticuerpos especííficos por ml en el nificos por ml en el niñño.o.Curva esperada de la concentraciCurva esperada de la concentracióón de IgG especn de IgG especííficas, si estas fueran de origen materno.ficas, si estas fueran de origen materno.
![Page 74: 0.Toxopla..](https://reader033.fdocuments.ec/reader033/viewer/2022042606/544ec64cb1af9f27638b50ea/html5/thumbnails/74.jpg)
Prevalencia e incidencia de Toxoplasmosis en embarazadas en un
hospital de Buenos Aires.El objetivo del estudio fue estimar:
• La prevalencia de anticuerpos anti Toxoplasma gondiien una cohorte de embarazadas
• El riesgo de infección durante el embarazo
• La incidencia de toxoplasmosis congénita
Toxoplasmosis Centennial Congress. Sept 2008 Buzios Brasil
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Estudio de prevalencia e incidencia sobre 8452 partos en el Hospital Alemán
0,85‰7Seroconversiones
3.6‰31 Serología infección aguda
79.4%6708Seronegativas (susceptibles)
20.6%1744Seropositivas (prevalencia)
8452N° embarazadas controladas
4,5 ‰38/8452Riesgo de una embarazada de adquirir toxoplasmosis
0,23 ‰2/8452Riesgo de un RN de nacer infectado (a pesar de prevención)
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Paciente 1:Importancia del control serológico en el parto
MADRE SF IFI M ISA M ISA A ISA E1° trim 0 02° trim 03° trim 0parto 1:1000 1:160 1:64000 1:4000 1:64
1mes pp 1:16000 1:640 1:64000 1:16000 1:643m pp 1:16000 1:20 1:64000 1:256 1:16
BEBE1sem 1:16000 0 1:64000 1:256 1:641 mes 1:16000 0 1:64 0 0
3meses 1:4000 0 1:256 1:64 01año 1:1000 0 0 0 0
MM 24970 BB250102 ASINTOMÁTICO
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Paciente 2
madre SF ISA M ISA A ISA Eparto 1:4000 1:16000 1:16000 1:16
RN 1:16000 1:16000 1:1000 03 meses 1:16000 1:1000 1:64 09 meses 1:4000 1:16 0 03 años 1:4000 1:256 1:16 1:256
Hc mm 201179 bb 180507 CORIORRETINITIS ESTRABISMO
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Utilidad de un programa de prevención de la toxoplasmosis congénita
– Nacimientos en la R. Argentina por año: 700.000
– Tasa de incidencia probable: 3 a 6‰
– Entre 2100 y 4200 niños cursarán sus primeros meses de vida en el vientre de una madre con infección toxoplásmica aguda.
– Tasa de transmisión vertical: 14-65% (según período del embarazo).
– La mitad (promedio, según trimestre) se infectará si no recibe tratamiento.
Riesgo de una embarazada de adquirir toxoplasmosis: 4,5 ‰(38/8452)
Con esquema prevención: 2/8452 --> 0,23 ‰1000 a 2000 RN por año con toxoplasmosis congénita (1,5-3.0 ‰)
![Page 79: 0.Toxopla..](https://reader033.fdocuments.ec/reader033/viewer/2022042606/544ec64cb1af9f27638b50ea/html5/thumbnails/79.jpg)
Consenso 2005:
Prevención de la toxoplasmosis congénita
MEDICINA 2008;68:75-87
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Participantes
• Walter Ferreira. Director del Instituto de Medicina Tropical de San Pablo. Prof. del departamento de Enfermedades Infecciosas y Parasitarias de la Facultad de Medicina de la Universidad de San Pablo, Brasil.
• Eduardo Guarnera. Vicepresidente de la AAZ. Coordinador de la Red Nacional de Toxoplasmosis y Paludismo, INEI; ANLIS:” Carlos Malbrán”.
• Ricardo Durlach: Médico infectólogo. Vocal de la Comisión Directiva de la AAZ. Coordinador del Centro de Toxoplasmosis del Hospital Alemán.
• Néstor Gutierrez. Prof. de Parasitología de la Facultad de Medicina de Tucumán.• Cristina Salomón. Titular cátedra de Parasitología de la Facultad de Medicina de la Universidad
de Cuyo. Mendoza.• Emilio Cecchini. Prof. de Infectología , Facultad de Medicina de La Plata. Buenos Aires.• Cristina Freuler. Médica infectóloga . Jefa de Infectología. Hospital Alemán. Buenos Aires.• Maria L. Dalla Fontana. Red de Laboratorios de la Provincia de Santa Fe.• Héctor Arienti. Jefe de Parasitología del laboratorio Central del Ministerio de Salud de la Provincia
de Córdoba. Referente juridiccional de la Red Nacional de Toxoplasmosis.• Federico Kaufer. Laboratorio de Toxoplasmosis del Hospital Alemán.• Lilinana Carral. Laboratorio de Toxoplasmosis del Hospital Alemán.• Hector Freilij. Médico infectólogo.Jefe, Hospital de Niños Ricardo Gutierrez.• Jaime Altcheh Médico infectólogo, Hospital de Niños Ricardo Gutierrez• Liliana Vazquez. Médica infectóloga del Centro de Estudios Infectológicos• Edgardo Sturba. Bioquímico del Centro de Estudios Infectológicos.• Rosana Coraza. Médica infectóloga. Hospital Eva Perón. San Martin. Prov.Buenos Aires.• Mariana Ceriotto.Médica infectológiga. Hosp Cecilia Gierson. Prov Buenos Aires.• Mónica Nadal. Laboratorio Central de la Maternidad Sardá.
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Control serológico de la embarazadaPrimer trimestre
IgGIFI G EIA AD Sabin Feldman
IgG positiva +IgM negativa
Probable infección crónica
IgG positiva + IgM positiva
Probableinfección reciente
IgG negativaAusencia de infecciónMedidas de prevención
Control trimestraly al parto
Laboratorio de referenciaPanel serológico*
*Sabin Feldman, IFI G y M, IgM, IgA e IgE por inmunocaptura, Avidez
+ -
IgM
![Page 82: 0.Toxopla..](https://reader033.fdocuments.ec/reader033/viewer/2022042606/544ec64cb1af9f27638b50ea/html5/thumbnails/82.jpg)
Recién nacidode madre con toxoplasmosis durante el embarazo
Serología
IgG IgM IgA
IgG negativa al añoAusencia de infección
IgG positiva al añoInfección prenatal
IgM IgA positivasInfección prenatal
Exámen clínico, fondo de ojo, ecografía cerebral.
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Estudio multicéntrico:Prevención de la toxoplasmosis
congénita
Hospital Alemán – HMI Sardá- HMI Santa Rosa-HIGA Peron-HIGA Gandulfo-HIGA Grierson-HIGA Fiorito- HM Rivadavia-HM Thompson
Beca Carrillo-Oñativia 2006/7
Medicina (Buenos Aires) 2008; 68: 417-422
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ObjetivoAplicar las propuestas del consenso 2005
Estimar la prevalencia de anticuerpos anti Toxoplasma gondii en una cohorte de embarazadas en 9 hospitales de Buenos Aires.Riesgo de infección durante el embarazoLa incidencia de toxoplasmosis congénita
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61
60
49
22
47
59
54
44
30
H.Alemán
HIGA Eva Perón
HIGA Fiorito
HIGA Gandulfo
HIGA Grierson
H.Mun. B.Rivadavia
Maternidad Sarda
Inst.Mat. Infantil Santa Rosa
H.Mun. D.Thompson
22
60
44
30
54
59
47
49
61
Prevalencia de anticuerpos anti T.gondii en embarazadas de 9 Hospitales de Cap. Federal y conurbano
Medicina (Buenos Aires) 2008; 68: 417-422
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Estudio multicéntrico
• Control con IgG e IgM de 13632 embarazadas• Prevalencia 49 % (n positivas 6680)• Sueros con sospecha infección aguda se
remitieron a laboratorio de referencia (n 381) (5.7%)
• Panel de serológico: Sabin Feldman, ISAGA M, ISAGA A, ISAGA E, Prueba de avidez, IFI M.
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Resultados serológicos
sin FUM infección
aguda
infecciónpasada
noconcluyente
36% 137
44 % 168
13% 50
7% 26
N: 381
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Sabin Feldman
ISA M ISA A ISA E Clínica
RN 1 1:16000 0 1:256 0 microcefalia4 meses 0 1:64 0
Mama 2 1:16000 1:4000 1:4000 1:16 parto
RN2-15 d 1:16000 1:1000 1:1000 0 coriorretinitis
3 meses 1:4000 1:64 0 0
Toxoplasmosis prenatal
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Mamá 3 1:4000 1:1000 1:1000 0 partoRN 3 1:16000 1:16000 1:4000 1:16 coriorretinitis4 meses 1:4000 0 0 011 meses 1:256 0 0 0
Mamá 4 1:16000 1:4000 1:1000 0 9°mes AV 5%
RN 4 1:16000 1:1000 1:256 0 coriorretinitis
1 mes 1:16000 1:256 1:256 0
Mamá 5 1:16000 1:4000 1:4000 parto
RN 5 1:16000 1:1000 1:1000 coriorretinitis
15 días 1:16000 1:1000 1:1000
SF ISA M ISA A ISA E Clínica
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Conclusiones
• Importancia del control serológico de la embarazada y del recién nacido de acuerdo a las propuestas del Consenso 2005
• El panel serológico permite diagnósticarcon mayor precisión la infección aguda
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Centro de Toxoplasmosis
Coordinador: Director Médico Dr. Ricardo DurlachInfectología: Dra. Cristina FreulerObstetricia: Dra. Patricia OlejnikOftalmología: Dr. Guillermo IribarrenLaboratorio: Bq. Federico Kaufer- Liliana Carral