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2. EPIDEMIOLOGIA TBC 3. DIAGNOSTICO DE MICOBACTERIAS POR EL LABORATORIO
4. DIAGNOSTICO DE MICOBACTERIAS POR EL LABORATORIO
5. DIAGNOSTICO DE MICOBACTERIAS POR EL LABORATORIO 6. ESQUEMADE LA PARED DE LAS MICOBACTERIAS 7. DIAGNOSTICO DE TBC POR METODOS TRADICIONALES 50-55 DIAS Pbas bioqumicas tradicionales (Niacina, Catalasa, Reduccin de Nitratos etc)IDENTIFICACIN DE LA ESPECIE 20-25 DAS Lowestein-Jensen Ogawa- KudohDETECCION DE CRECIMIENTO24 HORAS Coloracin de Kinyoun Coloracin de Ziehl-NeelsenEXAMEN DIRECTO TIEMPO PROMEDIO DEL REPORTE DESDE EL DIA EN QUE SE PROCESA LA MUESTRATECNICAS PROCEDIMIENTO 8. DIAGNOSTICO DE TBC POR METODOS TRADICIONALES 60 DIAS Mtodo de las proporciones mltiplesPRUEBAS DE SENSIBILIDADTIEMPO PROMEDIO DEL REPORTE DESDE EL DIA EN QUE SE PROCESA LA MUESTRATECNICAS PROCEDIMIENTO 9. DIAGNOSTICO DE TBC POR METODOS RECOMENDADOS POR EL CDC 18 das BACTEC, Sondas deADN, HPCLIDENTIFICACIN DE LA ESPECIE 15 das BACTEC,DETECCION DE CRECIMIENTO24 horas Coloracin Auramina/RodaminaEXAMEN DIRECTO TIEMPO PROMEDIO DEL REPORTE DESDE EL DIA EN QUE SE PROCESA LA MUESTRA TECNICAS PROCEDIMIENTO 10. DIAGNOSTICO DE TBC POR METODOS RECOMENDADOS POR EL CDC 30 das BACTECPRUEBAS DE SENSIBILIDADTIEMPO PROMEDIO DEL REPORTE DESDE EL DIA EN QUE SE PROCESA LA MUESTRA TECNICAS PROCEDIMIENTO 11. BACILOSCOPIA CON TINCIONES ACIDORRESISTENTES
12. BACILOSCOPIA CON TINCIONES ACIDORRESISTENTES
13. COLORACION DE ZIEHL-NEELSEN 14. COLORACIN A AURAMINA-RODAMINA 15. Comparacin entre los tiempos requeridos para observar extendidos negativos coloreados con una coloracin convencional y Auramina-Rodamina 15 Minutos 3 Minutos S:96.5% E: 98% TIEMPO TOTAL PARA OBSERVAR UN EXTENDIDO 300 30 MAXIMO DE CAMPOS OBSERVADOS 1000X 400X AUMENTO FUSCHINA AURAMINA-RODAMINA CONDICION 16. Comparacin entre los tiempos requeridos para observar extendidos negativos coloreados con una coloracin convencional y Auramina-Rodamina 12 horas con 50 minutos 2 horas con 5 minutos TIEMPO TOTAL PARA 50 EXTENDIDOS FUSCHINA AURAMINA-RODAMINA CONDICION 17. BACILOSCOPIA Y TINCIONES ACIDORRESISTENTES
18. BACILOSCOPIA Y TINCIONES ACIDORRESISTENTES 80% 66% 61% Ziehl-Neelsen 92% 83% 83% Fluorescencia TRES MUESTRAS DOS MUESTRAS UNA MUESTRA TIPO DE TINCION 19. MEDIOS DE CULTIVO 20. MEDIOS DE CULTIVO
21. MTODO DE CULTIVO EN CAPA DELGADA MCD 22. Porcentaje de deteccin de las muestras positivas comparando los dos cultivos (CIB) EN 761 MUESTRAS 76.2% 40.4% 14.6% 1.3% LJ 100% 95.2% 82.3% 65.3% MCD 4 SEMANA 3 SEMANA 2 SEMANA 1 SEMANA Medio de cultivo 23. Tiempo (das) necesario para obtener el crecimiento en cada medio de cultivo CIB 28.5 +/-9.3 24.6+/- 7.3 26.5+/- 8.6 LJ 14+/-7.1 8.4+/- 3.2 11+/- 4.9 MCD Muestras extrapulmonares Muestras pulmonares Todas las muestras Medios de cultivos 24. SISTEMA MGIT(Mycobacterial Growth indicator tube) 25. COMPARACION DE MGIT CON OK Y MCD 5.6% 99.1% 71.1% 15.1% MCD 15.5% 94.1% 84% 24.3% MGIT 4.6% 24.7% OK SENSIBILIDAD EN MUESTRAS PAUCIBACILARES ESPECIFICIDAD SENSIBILIDAD PORCENTAJE DE POSITIVIDAD MEDIO DE CULTIVO 26. SISTEMA BACTEC 27. BACTEC 9000 28. Evaluation of Nonradiometric System (BACTEC 9000 MB) for Detection of Mycobacteria in Human Clinical Samples.1997 PORCENTAJE DE RECUPERACION DE MICOBACTERIAS 95.1% 10.3 91.9% 10.0 69.3% 27.3 TOTAL DIAS + 82.3% 88.2% 52.9% Especimenes NO respiratorios100% 93.3% 75.5% Especimenes respiratoriosBACTEC 9000 BACTEC 460 LJ TIPO DE MUESTRAS 29. II Difco ESP culture system 30. Multicenter Comparison of ESP Culture System II with BACTEC 460 TB and with Lowenstein-Jensen Medium for Recovery of Mycobacteria from diferent Clinical Specimens including Blood 199833.3% 27 66.6% 17 100%* 18 SANGRE TIME 64.8% 67.6% 90.5%* 85.3%* 77.0% 85.3%* Respiratorias NO Respiratorias 64.4% 89%* 78.9% TODAS LJ BACTEC ESP II MUESTRA 31. BACTEC 960 MGIT 32. Comparison of Recoveries ofMycobacterium tuberculosisusing the automated BACTEC MGIT 960 System, The BACTEC 460TB System, and Lowenstein-Jensen Medium 2000( ) 50% 81.8% 80.7% 36.2 LJ Tiempo 100% 92.7% 93.0% 16.8 BACTEC 460 Tiempo 100% 96.4% 96.5% 13.2 BACTEC MGIT 960 Tiempo MNT M.tuberculosis TODAS LAS MICOBACTERIAS MEDIO 33. CROMATOGRAFIA LIQUIDA DE ALTA PRESION (HPCL) 34. Identificacin correcta por HPCL deM. tuberculosissegn diferentes autores 100 98 319 80 319 82 3 Butler (1991) CIB 100 122 122 2 Guthertz (1993) 99 648 649 1 Glickman(1994) CONCOR. ( %) No. confir. HPCL NO CEPAS EVALUADAS REFERENCIA 35. MAPIA (Prueba serolgica multiantignica )
36. MAPIA (Prueba serolgica multiantignica) 37. MAPIA (Prueba serolgica multiantignica
38. MAPIA (Prueba serolgica multiantignica
39. PCR REACCION EN CADENA DE LA POLIMERASA 40. PCR REACCION EN CADENA DE LA POLIMERASA
41. PCR
42. PCR LABORATORIO INMUNOLOGA, UNIVERSIDADDEL CAUCA 66.6% 14 28 TBC CLINICA 92.5% 1 12 TBC ESTABLECIDA S ENSIBILIDADPCR NEGATIVO PCR POSITIVO MUESTRA 43. TCNICASMOLECULARES RECIENTES Amplicor test
44. TCNICASMOLECULARES RECIENTES el EnchancedM. tuberculosisDirect Test (E-MTD; Gen-Probe, San Diego).
45. MTODOS PARA DETERMINAR LA SUCEPTIBILIDAD DEMycobacterium tuberculosis (MTB)
46. CONCLUSIONES
47. CONCLUSIONES
48. GRACIAS